全 文 :收稿日期:2016-04-10
基金项目:西南林业大学科研启动基金项目资助,云南省林学一流学科
建设经费资助和云南省高校林木遗传改良与繁育重点实验
室开放基金资助。
作者简介:孙 琪(1992—),女,硕士研究生,研究方向:林木遗传育种;
E-mail:camugn@163.com。
通讯作者:许玉兰(1979—),女,副教授,硕士生导师,研究方向:林木遗
传育种;E-mail:xvyulan@163.com。
PEG模拟干旱胁迫对思茅松幼苗生长的影响
孙 琪a, 蔡年辉a,b, 陈 诗b, 王大玮a, 段安安a, 许玉兰a
(西南林业大学a.云南省高校林木遗传改良与繁育重点实验室;
b.西南山地森林保育与利用省部共建教育部重点实验室, 云南 昆明650224)
摘 要:本试验研究了PEG模拟干旱胁迫对思茅松种子发芽和幼苗生长的影响。采用不同浓度(0%(对照)、5%、10%、
15%)的PEG-6000处理种子,分析不同处理下思茅松种子萌发后幼苗的生长情况以及幼苗的可溶性糖、脯氨酸和超氧
化物歧化酶等渗透调节物质与保护酶活性含量的变化。结果表明:随着干旱胁迫强度的增加,思茅松萌发幼苗胚根长度
呈现先上升后下降的趋势,而胚轴长度则呈下降趋势。幼苗的可溶性糖含量随着PEG-6000浓度的上升呈下降趋势,脯
氨酸含量随着干旱胁迫浓度的增加而增加,超氧化物歧化酶则呈先少量上升后下降的趋势。在一定范围内,随着干旱胁
迫强度的增加,胚根逐渐增加,胚轴生长变慢,力求减少水分消耗,适应干旱生境。
关键词: 干旱胁迫;思茅松;幼苗生长
DOI编码: 10.16590/j.cnki.1001-4705.2016.09.020
中图分类号: S 791.24 文献标志码: A 文章编号: 1001-4705(2016)09-0020-04
Effects on the Growth of Seedlings of Pinus kesiyavar.langbianensis
Under Drought Stress Simulated by PEG
SUN Qi a,CAI Nianhui a,b,CHEN Shi b,WANG Dawei a,DUAN An’ana,XU Yulana
(Southwest Forestry University a.Key Laboratory for Forest Genetic and Tree Improvement &
Propagation in Universities of Yunnan Province;
b.Key laboratory for Forest Resources Conservation and Use in the Southwest Mountains of China,
Ministry of Education,Kunming Yunnan 650224,China)
Abstract:Impact on the seed germination and seedling growth of Pinus kesiyavar.langbianensis under
drought stress simulated by Polyethylene Glycol(PEG)was studied.Four different concentrations
such as CK(0%),5%,10%,15%were used.The growth of seedlings of P.kesiyavar.langbianensis
after seeds germination was measured.And the changes of the seedling soluble sugar,proline and su-
peroxide dismutase(SOD)changes under different treatments were analyzed.The results showed:
the seed radicle length of P.kesiyavar.langbianensis increased first and then decreased,and hypocotyl
length declined with the increase of drought stress.Soluble sugar content of seedlings showed a down-
ward trend with the rise in the concentration of PEG-6000,proline content increased with the in-
creasing of the drought stress,superoxide dismutase(SOD)increased first and then decreased.Within
a certain range,with the increasing of drought stress,roots gradualy increased and hypocotyl grew
slowly to reduce water consumption,which was helpful for the adaptation of drought habitat.
Key words: drought stress;Pinus kesiyavar.langbianensis;seedling growth
在全球变暖的背景下,干旱等极端天气频发,特别
是2003年以来,江南、华南以及西南部分地区发生严
重的伏秋连旱,云南更是发生近50年少见的严重春
旱。历史上西南地区的干旱总体呈现“每年有旱情,
3~6年一中旱,7~10年一大旱”的特点[1-3]。干旱在
人类所面临的非生物灾害中造成的损失最大,其损失
·02·
第35卷 第9期 2016年9月 种 子 (Seed) Vol.35 No.9 Sep. 2016
表1 干旱胁迫对思茅松幼苗生长的影响
处理
浓度
胚根(mm) 胚轴(mm) 幼苗长度(mm) 胚根/胚轴
变幅 均值 变幅 均值 变幅 均值 变幅 均值
活力
指数
对照 2.70~20.50 8.97 27.66~40.21 34.18 34.27~58.99 43.15 0.07~0.53 0.26 216.61
5% 4.68~19.55 9.90 23.76~35.70 29.08 29.65~55.25 38.98 0.15~0.55 0.34 242.85
10% 18.68~34.40 24.47 11.07~28.91 22.79 33.32~59.89 47.26 0.73~1.35 1.14 237.25
15% 1.42~3.10 2.26 2.08~7.40 4.14 4.23~10.50 6.40 0.38~1.03 0.62 5.76
是其它逆境损失之和[4]。在中国科学技术蓝皮书中,
干旱列为我国气候灾害之首[5],近些年旱灾的发生给
林业的发展与建设带来了诸多不利的影响[6]。西南地
区旱灾频发,近10年干旱强度明显增大,并处于一个
干旱化过程[7]。不同物种的耐旱性不同,在干旱胁迫
作用下反映也不尽相同。幼苗是森林植物生长周期内
比较敏感和脆弱的阶段,是植物度过逆境的关键时
期[8],一些生理指标的变化可以反映幼苗期的抗逆境
能力,如超氧化物歧化酶、可溶性糖、脯氨酸等渗透调
节物质,从而了解植物的耐旱性与适应性[4]。
思茅松(Pinus kesiyavar.langbianensis)是卡西
亚松(P.kesiyaKoyle ex Gordon)的一个地理变种,在
我国仅产于云南,是滇南亚热带山地造林的先锋树种,
同时也是该地山区木材工业的首要树种,具有生长较
快、木材质量好等特点,在云南思茅松适生区已大量栽
植造林[9]。有关思茅松的研究工作开展较多,包括苗
木培育、经营管理、资源利用、遗传变异等方面,取得阶
段性的研究成果[10-16],但对其干旱胁迫的研究较
少[17]。鉴于此,本研究采用分子质量为6000的渗透
调节剂聚乙二醇(polyethylene glycol,PEG)模拟干旱
胁迫处理思茅松种子,了解思茅松种子萌发及幼苗生
长对干旱胁迫的响应,分析不同PEG-6000处理浓度
下渗透调节物质的变化情况及其抗旱能力,探讨思茅
松对干旱胁迫的响应,为综合评价思茅松的耐旱性提
供科学依据。
1 材料与方法
1.1 材 料
所用种子采自普洱市林业科学研究所,种子千粒
重为27.4g。
1.2 方 法
试验在西南林业大学林学院森林培育实验室内进
行,采用人工智能培养箱(PQX-300A),选取颗粒饱
满、健康的思茅松种子并装入纱布,浸泡在0.5%
KMnO4中消毒,30min后取出用蒸馏水洗净,将包有
思茅松种子的纱布洗好后置于50℃温水中,24h后洗
净,继续浸种24h,最后用蒸馏水冲洗3次,完成后将
种子均匀摆在铺有2层无菌滤纸的培养皿中。设置不
同质量浓度(5%、10%、15%)的PEG-6000溶液,对应
的水势梯度为-0.054,-0.177,-0.393MPa[18],将不
同质量浓度的PEG-6000溶液浸透滤纸,并以蒸馏水
作为对照,重复4次。培养条件设为16h(25℃、3 000
lx),8h(16℃、无光照),采用2个时段模拟种子自然
发芽条件,为了防止种子发霉和处理液水势发生变化,
需每4d更换1次滤纸,检查并添加相应溶液以保证
滤纸湿润。种子发芽记录按照《GB 2772—1999林木
种子检验规程》来进行。
1.3 指标测定
1.3.1 幼苗生长的测定
种子发芽结束后,测定幼苗的胚根与胚轴长,计算
胚根/胚轴。将胚根与胚轴总长作为幼苗长度,计算幼
苗的活力指数[19]。
1.3.2 生理指标的测定
可溶性糖含量测定采用硫代巴比妥法[20-21],脯氨
酸含量采用磺基水杨酸法测定[22-23],超氧化物歧化酶
(SOD)活性用氮蓝四唑(NBT)比色法测定[21]。
1.4 数据分析处理
数据采用 Excel和SPSS 13.0软件进行统计分
析,Excel绘图。
2 结果与分析
2.1 干旱胁迫对思茅松幼苗生长的影响
PEG模拟干旱胁迫对思茅松幼苗胚根和胚轴生
长的影响见表1。
由表1可知,在低浓度(5%)条件下,幼苗的活力
指数随着PEG-6000浓度升高有一定的提高,当浓度
达到10%时,比浓度为5%时的活力指数略有降低,总
体来看,随着PEG-6000浓度升高至10%,思茅松幼苗
的活力指数与对照差异不大;但是,当PEG-6000浓度
升高至15%时,思茅松幼苗活力指数明显下降,幼苗
生长势变弱。
随着PEG-6000浓度的增加,思茅松幼苗胚轴长
度逐渐变短,对照为34.18mm,随着干旱胁迫强度的
增加,胚轴长度下降至4.14mm。胚根长度的变化表
现为先上升后下降,对照的胚根长8.97mm,15%
PEG-6000处理时胚根最短(2.26mm),10% PEG-
·12·
研究报告 孙 琪 等:PEG模拟干旱胁迫对思茅松幼苗生长的影响
6000处理的胚根最长(24.47mm),PEG-6000为5%
时胚根长为9.90mm,表明过高的PEG-6000浓度严
重抑制了胚根生长,而适当的干旱胁迫促进根的生长。
从ck至浓度为10%时,胚根/胚轴的比值明显升高,
表明在一定范围内,随着干旱程度的加剧,生长量以根
的分配逐渐增加;当浓度为15%时,幼苗整体生长量
均降低。
2.2 干旱胁迫对幼苗可溶性糖含量的影响
由图1可知,随着PEG-6000浓度的增加,思茅松幼
苗可溶性糖含量逐渐降低,当PEG-6000浓度为10%
时,思茅松幼苗可溶性糖含量最小,植物可溶性糖的积
累明显下降,可溶性糖含量均小于对照。由图1也可以
看出,在低浓度胁迫时,可溶性糖含量降低较为急剧,当
干旱胁迫强度逐渐增加,可溶性糖含量下降变得缓慢。
图1 不同PEG浓度处理下思茅松幼苗可溶性糖含量的变化
2.3 干旱胁迫对幼苗脯氨酸含量的影响
从图2可看出,随着PEG-6000浓度的增加,思茅
松幼苗脯氨酸含量上升,在PEG-6000浓度为10%时,
脯氨酸含量得到最大积累,且脯氨酸含量明显高于对
照和PEG-6000浓度为5%时的处理,PEG-6000模拟
干旱胁迫处理后脯氨酸含量均高于对照,思茅松幼苗
中脯氨酸含量随着胁迫强度的增加而呈现上升的趋
势。由图2也可以看出,在轻度(5%)胁迫时,思茅松
幼苗脯氨酸含量增加较慢,当胁迫强度增加至10%
时,脯氨酸含量增加较明显。
图2 不同PEG浓度处理下思茅松幼苗
脯氨酸含量的变化
2.4 干旱胁迫对超氧化物歧化酶含量的影响
不同PEG浓度处理下对超氧化物歧化酶含量的
影响如图3所示,当PEG-6000浓度为5%时,植物受
到轻度干旱胁迫,超氧化物歧化酶(SOD)活性少量上
升,表明细胞膜超氧化物歧化酶促保护系统保护能力
增强,随着PEG-6000浓度增加到10%,超氧化物歧化
酶活性下降较快。
图3 不同PEG浓度处理下思茅松幼苗
超氧化物歧化酶的变化
3 结论与讨论
研究结果表明,在PEG-6000低浓度处理时,思茅
松幼苗活力指数随浓度的升高波动不大,胚轴长度则
随着PEG-6000浓度增加而逐渐变短,胚根长度的变
化表现为上升;当干旱胁迫加剧,在高浓度时,胚轴与
胚根均显著变短,幼苗活力指数也急剧降低;当PEG-
6000浓度达到15%时,对幼苗生长造成一定的抑制。
由此表明,清水引发PEG液培养的水分胁迫处理不利
于思茅松幼苗生长,随着PEG浓度的升高,幼苗受干
旱胁迫的程度加剧,生长受到抑制。在一定浓度范围
内,胚根生长随浓度增加而升高、胚轴随浓度升高而降
低,即水分胁迫下幼苗优先胚根生长,这有利于思茅松
幼苗对干旱环境的适应[24-25]。
渗透调节物质可以帮助植物在干旱逆境下适应缺
水条件,防止在干旱环境中体内水分丧失,使植物体的
代谢过程能正常进行。随着PEG-6000浓度的增加,
脯氨酸含量呈上升趋势,氨基酸中脯氨酸的水溶性效
果最强,当植物受到干旱胁迫时,有助于细胞维持水分
平衡[25]。随着PEG-6000浓度的增加,可溶性糖含量
呈下降趋势,可能是因脯氨酸含量的增加缓解了干旱
胁迫引起的伤害,即思茅松幼苗处于干旱胁迫的逆境
中时,脯氨酸含量变化较为敏感,幼苗自身通过调节脯
氨酸含量增加来降低伤害[26]。正常情况下植物体内
脯氨酸含量不高,只有在胁迫发生时,才迅速增加[27]。
研究结果也表明,在低浓度干旱胁迫时,脯氨酸含量上
升较少,当胁迫强度增加时,脯氨酸含量快速增加,以
·22·
第35卷 第9期 2016年9月 种 子 (Seed) Vol.35 No.9 Sep. 2016
减少干旱胁迫对幼苗造成的伤害。由此表明思茅松处
于水分胁迫时,脯氨酸的渗透调节能力大于可溶性糖
的渗透调节能力,相较于可溶性糖,脯氨酸为思茅松幼
苗干旱胁迫下的主要渗透调节物质。此外,脯氨酸含
量的增加而可溶性糖含量的降低是由于脯氨酸和可溶
性糖两者之间具有相互补偿的作用[28]。
随着胁迫强度的增加,思茅松幼苗超氧化物歧化
酶表现为先上升后下降,但上升的幅度不明显。一般
来讲,植物处在逆境时,体内活性氧代谢系统的平衡受
到影响,增加了自由基的产生,破坏或降低活性氧清除
剂如超氧化物歧化酶的结构、活性或含量水平,致使超
氧化物歧化酶含量降低,保护作用失效[29]。干旱胁迫
前期超氧化物歧化酶活性上升,是思茅松处于水分胁
迫时的自我保护机制,通过增加超氧化物歧化酶活性
来抵御干旱,胁迫后期水分胁迫程度增强,超氧化物歧
化酶的保护失去作用,导致超氧化物歧化酶活性逐渐
降低,水分胁迫已经对思茅松幼苗造成一定的影响,此
时幼苗的活力指数也呈现降低的现象。
综上所述,思茅松幼苗在水分胁迫环境下有自己
的适应对策,处于干旱逆境时思茅松通过优先生根的
生长,并通过渗透调节物质与保护酶活性含量的改来
来降低干旱逆境对自身的伤害,这是思茅松应对干旱
逆境的生理反应,以降低由此带来的伤害。综合来看,
思茅松幼苗可以在轻度干旱胁迫时正常生长,具有一
定的耐旱性。
参考文献:
[1]庞晶,覃军.西南干旱特征及其成因研究进展[J].南京信息
工程大学学报,2013,5(2):127-134.
[2]臧文斌,阮本清,李景网,等.基于TRMM 降雨数据的西南
地区特大气象干旱分析[J].中国水利水电科学研究院学报,
2010,8(2):97-106.
[3]马建华.西南地区近年特大干旱灾害的启示与对策[J].人民
长江,2010,41(24):7-12.
[4]钱永生,王慧中.渗透调节物质在作物干旱逆境中的作用
[J].杭州师范学院学报(自然科学版),2006,5(6):476-481.
[5]王林,陈文.近百年西南地区干旱的多时间尺度演变特征
[J].气象科技进展,2012,2(4):21-26.
[6]柴守权,于海英,尤德康,等.西南地区干旱对4种林业有害
生物发生的影响[J].西南林业大学学报,2013,33(1):71-75.
[7]姚玉璧,张强,王劲松,等.中国西南干旱对气候变暖的响应
特征[J].生态环境学报,2014,23(9):1 409-1 417.
[8]Happer JL.Population biology of plants[M].London:
Academic Press,1977:1-246.
[9]中国科学院昆明植物研究所编著.云南植物志(第四卷)
[M].北京:科学出版社,1986:44-62.
[10]欧光龙,胥辉,王俊峰,等.思茅松天然林林分生物量混合
效应模型构建[J].北京林业大学学报,2015,37(3):
101-111.
[11]李浩,张超,许彦红.思茅松空间分布特征研究[J].西南林
业大学学报,2015,35(1):47-51.
[12]许玉兰,段安安.思茅松遗传改良研究现状及育种策略的
探讨[J].西南林学院学报,2004,24(4):68-72.
[13]陈剑英.云南省林木种质资源保护及利用探讨[J].种子,
2004,23(12):61-65.
[14]施贵荣,郭美仙,李冬梅,等.思茅松化学成分研究[J].中成
药,2014,36(7):1 467-1 470.
[15]李童,张加研,秦永剑,等.思茅松树皮原花青素的化学降
度提取工艺[J].西南林业大学学报,2012,32(3):92-96.
[16]徐明艳,邓桂香,凌万刚.思茅松良种利用方法的探讨[J].
种子,2012,31(8):95-96.
[17]蔡年辉,赵丽芝,唐红燕.PEG模拟水分胁迫对思茅松种子
萌发的影响[J].西部林业科学,2014,43(6):76-79.
[18]Michel BE,Kaufmann MR.The osmotic potential of
polyethylene glycol 6000[J].Plant Physiology,1973,51
(5):914-916.
[19]蔡年辉,许玉兰,张瑞丽,等.云南松种子萌发及芽苗生长
对干旱胁迫的响应[J].种子,2012,31(7):44-46.
[20]中国科学院上海植物生理研究所,上海市植物生理学会.
现代植物生理学实验指南[M].北京:科学出版社,1999:
305-306.
[21]张治安,陈展宇.植物生理学实验技术[M].长春:吉林大学
出版社,2008:192-193.
[22]邹琦.植物生理学实验指导[M].北京:中国农业出版社,
2000:161-162.
[23]高俊凤.植物生理学实验指导[M].北京:高等教育出版社,
2006:228-231.
[24]张国萍,倪日群,赵新亮,等.水引发对干旱胁迫下水稻种
子发芽与幼苗生长的影响[J].种子,2002,21(2):21-23.
[25]赵丽芝,蔡年辉,夏清柱,等.干旱胁迫对云南松种子萌发
及渗透调节物质的影响[J].西南林业大学学报,2012,32
(2):21-25.
[26]孟鹏,李玉灵,张柏习,等.沙地彰武松与樟子松苗木抗旱
生理特性比较[J].林业科学,2010,46(12):56-63.
[27]喻晓丽,邸雪颖,宋丽萍.水分胁迫对火炬树幼苗生长和生
理特性的影响[J].林业科学,2007,43(11):57-61.
[28]刘艳,陈贵林,蔡贵芳,等.干旱胁迫对甘草幼苗生长和渗
透调节物质含量的影响[J].西北植物学报,2011,31(11):
2 259-2 264.
[29]庄国庆,陈万才,李锐,等.干旱胁迫对厚朴幼苗生理生化
影响的研究[J].种子,2013,32(2):13-15.
·32·
研究报告 孙 琪 等:PEG模拟干旱胁迫对思茅松幼苗生长的影响