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黄蜀葵开花结实生物学研究



全 文 :收稿日期:2015-10-27
基金项目:校级教育教学研究项目(编号:延大教发[2014]13号)。
作者简介:李子羊(1991—),男,硕士研究生,研究方向:蔬菜学。
通讯作者:全雪丽(1973—),女,博士,硕士导师,教授,研究方向:植物
学教学与科研;E-mail::qxl2000@aliyun.com。
黄蜀葵开花结实生物学研究
李子羊, 吴松权, 全雪丽, 金美玉
(延边大学农学院 , 吉林 延吉133002)
摘 要:通过田间观察,采用TTC法、联苯胺-过氧化氢法、花粉-胚珠比等方法,对黄蜀葵的花部特征、花粉活力、柱头可
授性、繁育系统进行了研究。结果表明:黄蜀葵花为两性花,单花开花期为1d,每棵开花历时70d左右,花粉-胚珠比为
83.74±12.956 9,表明其繁育系统类型为兼性自交。柱头可授性在开花初期最强。花朵即将开放与开花初期花粉活力
最高、最强,达到90%左右。
关键词: 黄蜀葵;柱头可授性;花粉-胚珠比(P/O);繁育系统
DOI编码: 10.16590/j.cnki.1001-4705.2016.02.025
中图分类号: Q 944.4   文献标志码: A   文章编号: 1001-4705(2016)02-0025-05
Study on Flowering and Seed Setling Biology of Abelmoschus manihot
LI Ziyang,WU Songquan,QUAN Xueli,JIN Meiyu
(Agriculture Colege of Yanbian University,Yanji Jilin 133002,China)
Abstract:Studies of floral characters,polen viability,stigma receptivity and breeding system of Abel-
moschus manihot were carried out with the methods of field observation,TTC,Benzidine H2O2and
polen-ovule ratio.The results showed that the flower of A.manihot was hermaphrodite,flowering
stage of single flower and each plant was about one day and 70days respectively,and polen-ovule ratio
was 83.74±12.956 9,which suggested that the breeding system of A.manihot was facultative inbred.
Stigma receptivity was the highest at early stage of flowering.Polen viability was the highest and
strongest at opening and early stage of flowering,which reached about 90%.
Key words: Abelmoschus manihot(L.)Medic.;stigma receptivity;polen-ovule ratio(P/O);
breeding system
  黄蜀葵[Abelmoschus manihot(L.)Medic.]为锦
葵科秋葵属药用植物和园林观赏植物。
黄蜀葵全身都是宝,其茎皮纤维可替代麻和制造
人造棉,根含有粘液质,淀粉和糖类;种子、根和花入
药,具有清热解毒、凉血、消肿等功效[2-3]。民间发现,
长期饮用新鲜花朵的水煎液,对治疗老年人高血脂、高
血压有一定疗效[5]。黄蜀葵的花大,淡黄色,花瓣内部
基部紫色,具有较高的观赏价值[5]。目前黄蜀葵的主
要研究集中在成分分析[4-7]和药理研究方面[8-13],有关
黄蜀葵生殖生物学系统研究未见报道,鉴于此,对黄蜀
葵植物花部特征、花粉活力、柱头可授性等生殖生物学
特征进行了观察和测定,以期为黄蜀葵的人工驯化栽
培、种质研究提供植物生物学基础。
1 材料与方法
1.1 研究地点与实验材料
试验于2014年7—8月在延边大学农学院园艺园
林系大田进行。实验材料为黄蜀葵,为种植在田间的
黄蜀葵植株。
1.2 方 法
1.2.1 每植株开花时间和每1朵花开放时间:每植株
开花时间为从第1朵花开花时期一直到最后1朵花开
放时间。
1.2.2 每棵植株上的开花数:在每植株最后1朵花开
放时期调查每棵植株上的开花数。
1.2.3 每朵花内花药的数量及花药开裂的顺序:在花
瓣即将要展开时用手或镊子把花瓣去掉后调查花朵内
花药的数量。调查不同植株上的10朵花。在已经开
放的花朵中观察花药开裂的顺序。
1.2.4 花器形态调查:观察开花盛期(花瓣完全展开)
的10朵花。测量花瓣的直径、花瓣的长度、柱头横径、
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研究报告  李子羊 等:黄蜀葵开花结实生物学研究
表1黄蜀葵花部特征(单位:cm)
编号 花瓣长度,颜色 花朵直径 5个柱头总直径,颜色 花柱长度
1  7.8,淡黄 12.3  0.60,紫红色 2.0
2  8.5,淡黄 16.0  0.60,紫红色 2.2
3  8.0,淡黄 17.0  0.65,紫红色 2.2
4  8.0,淡黄 18.8  0.60,紫红色 2.2
5  10.8,淡黄 18.0  0.60,紫红色 2.3
6  10.0,淡黄 18.5  0.70,紫红色 2.0
7  10.3,淡黄 19.5  0.60,紫红色 2.4
8  10.8,淡黄 20.0  0.75,紫红色 2.3
9  10.6,淡黄 16.0  0.60,紫红色 2.3
10  10.2,淡黄 14.5  0.65,紫红色 2.0
平均值 9.5±1.263 2  17.06±2.310 9  0.635±0.052 9  2.19±0.144 9
柱头数量等。
1.2.5 花粉量调查与花粉粒形态:取开花初期的花药
(花药未开裂),放在载玻片上,用镊子轻轻挤破花药,
用水稀释,尽量把花粉从花药壁分离出来。盖上盖玻
片,在显微镜下计数,重复计数5次。调查10个花药
的花粉量取平均值。采用石蜡切片法观察测定了花粉
粒形态与大小。
1.2.6 花粉/胚珠比率(P/O)测定:在开花初期取子
房,把子房壁去掉后调查里面胚珠的数量。调查10
朵。花粉量除上胚珠数量就是花粉-胚珠比。最后计
算P/O值。按Cruden的标准,P/O为2.7~5.4时,
其繁育系统为闭花受精;P/O 18.1~39.0时,繁育系
统为专性自交;P/O为31.9~396.0时,繁育系统为兼
性自交;P/O为244.7~2 588.0时,繁育系统为兼性异
交;P/O为2 108.0~195 525.0时,繁育系统为专性异
交[14-15]。
1.2.7 柱头可授性测定:根据黄蜀葵的开花特性,将
其划分为4个时期,即将开放时期(花瓣还没打开,花
药没开裂)、开花初期(花瓣刚打开)、开花盛期(花瓣完
全展开)、开花末期(花瓣萎蔫)。取这4个时期的花朵
内柱头,放在载玻片上,滴加联苯胺-过氧化氢溶液,检
测柱头可授性。若柱头具有可授性,柱头周围的反映
液呈现蓝色并有大量气泡出现,根据气泡的多少可确
定可授性的强弱[16]。
1.2.8 花粉生活力测定:将1.2.7划分的4个开花时
期花粉进行生活力测定,采用 TTC法染色。先取新
鲜花药置于载玻片上,用镊子轻轻挤破后滴1滴TTC
溶液,再用镊子疏散花粉后盖上盖玻片,置于温台上,
温度在30℃左右,5min后显微镜下观察花粉的染色
情况。染红色的为活力高,染浅粉色为活力一般,未染
色的为无活力[17]。花粉活力(%)=(红色花粉数+浅
粉色花粉数)/总花粉数×100%[17]。
1.2.9 结实率测定:对黄蜀葵植株不进
行任何处理的情况下测定结实率。结实
率(%)=果实成熟后内部成熟种子数/
子房内胚珠数×100%。10个观察值的
平均值。
2 结果与分析
  黄蜀葵花为两性花,花单生于叶腋,
花由花梗、苞片,萼片、花瓣、雄蕊和雌蕊
构成。
2.1 开花时间
每株开花时间为70d左右,每朵开
花时间为1d左右。一般上午开放,下
午萎蔫,最后花瓣掉落。
2.2 开花数
每株(调查10株)上的开花数为32、40、26、50、
45、42、43、37、35、38朵不等,平均开花数为38.8±
6.844 3朵。调查发现有些植株分枝多,有些植株分枝
少,分枝多开花就多(35~50朵),分枝少开花就少
(20~30朵)。
2.3 花药数与花药开裂顺序
每朵花内花药的数量差异不大,调查10朵花花药
的数量为78、74、77、76、76、77、75、75、78、76不等,平
均为76.2±1.316 5。花药开裂顺序从上往下,说明花
药成熟顺序由上而下。
2.4 花器形态调查
对于开花盛期的花朵进行了花器形态调查,结果
如表1。开花盛期花瓣颜色为淡黄色(图版Ⅰ,1),花
瓣的长度为7.8~10.8cm之间,开花时花朵的横径在
12.3~20.00cm之间,说明花特大。柱头有5个,颜色
为紫红色,5个柱头的总的直径为0.6~0.75cm之间。
花柱的长度变化不大,在2.0~2.4cm之间。处于不
同时期的花朵在颜色大小上有一定的差异,如花瓣的
颜色由最初的绿色慢慢转变成淡绿、黄色至淡黄色,花
瓣内基部为紫色。雄蕊多数,花丝结合成圆筒状,白
色,为单体雄蕊。花药由最初的绿色慢慢转变成淡黄
色、黄色,子房下位,5个子房室,每个子房室多个胚
珠。柱头5枚,由暗紫色转变成紫红色,5枚花柱开始
紧凑,随着花瓣的展开,5个柱头也展开,最后向外弯
曲(图版Ⅰ,2)。
2.5 花粉量
每个花药花粉的数量为106、90、81、71、95、98、91、
77、92、101不等(图版Ⅰ,3),平均值为90.2±10.962 6。
显微镜下观察成熟花粉粒近似圆形,花粉粒直径为
107.25~114.5μm,表面有针刺状(图版Ⅰ,4),成熟花粉
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注:①黄蜀葵花朵;②不同发育时期花内部的雌雄蕊(从左到右依次为即将开放、开花初期、开花盛期、开花末期);③花内部的花药;
④成熟花粉粒(Bar=50μm);⑤双核花粉粒(Bar=50μm);⑥子房内胚珠;⑦果实开裂;⑧成熟种子。
图版Ⅰ
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研究报告  李子羊 等:黄蜀葵开花结实生物学研究
粒属2-细胞型花粉粒(图版Ⅰ,5)。
2.6 花粉/胚珠比
黄蜀葵花粉/胚珠比如表2,黄蜀葵一朵花内平均
总花粉数约为6 773.1±806.416 3,平均胚珠数81.6±
6.801 9(图版Ⅰ,6),花粉/胚珠比约83.74±12.956 9。
按照Cruden的标准,黄蜀葵的繁育系统属于兼性自
交类型。
表2 黄蜀葵花粉-胚珠比(P/O)
编号 总花粉数/朵花 胚珠数/花 花粉-胚珠比
1  8 056  86  93.67
2  6 840  80  85.50
3  6 156  78  78.92
4  5 396  94  57.40
5  7 220  79  91.39
6  6 992  72  97.11
7  5 852  90  65.02
8  6 688  76  88.00
9  6 855  77  89.03
10  7 676  84  91.38
平均值 6 773.1±806.416 3  81.6±6.801 9  83.74±12.956 9
2.7 柱头可授性测定
从表3可以看出,4个不同开花时期的柱头都具
有可授性,在开花初期可授性最强,开花盛期与开花末
期次之,即将开放时期的柱头最弱。
表3 不同花期黄蜀葵柱头可授性
开花时期 柱头可授性
即将开放 
开花初期 
开花盛期 
开花末期 
  注:“”具有可授性;“”具有较强可授性;“”具有强可授性。
2.8 花粉生活力测定
用TTC法来检测了黄蜀葵花粉的生活力,从表4
可看出,4个不同开花时期的花粉都具有一定的活力,
即将开放时期的花粉中具有强活力的花粉占优势,开
花初期的花粉中具有强活力和一般活力的花粉占优
势,开花盛期与开花末期的花粉具有强活力的花粉少,
具有一般活力的花粉占优势。从花粉生活力来看,即
将开放与开花初期花粉的生活力无明显差异。
2.9 结实率测定
果实成熟后种子数为56、47、74、66、55、67、53、
63、53、71,平均数为60.5±8.922 5(图版Ⅰ,7-8),胚珠
数86、80、78、94、79、72、90、76、77、84,平均数为
81.6±6.801 9。因此,结实率为60.5/81.6×100%=
74.14%。种子没有休眠期,萌发率高。
表4 不同花期黄蜀葵花粉的活力
处理
TTC染色法
染红色 粉红色 未染色
花粉活力
(%)
平均花粉生活力
(%)
即将开放
33  3  4  90.00
62  10  5  93.51
26  3  2  93.54
43  14  6  90.47
37  2  5  88.63
91.23aA
开花初期
40  13  5  91.38
26  28  6  90.00
35  35  3  95.23
15  20  4  89.74
38  14  6  89.66
91.20aA
开花盛期
0  15  4  78.94
0  24  8  75.00
3  22  5  83.33
0  18  2  90.00
3  17  2  90.90
83.63abAB
开花末期
0  11  2  84.16
0  9  6  60.00
0  14  2  87.50
0  16  4  80.00
0  19  7  73.08
76.95bB
  注:a=0.05;A=0.01。
3 讨论与结论
  首次对黄蜀葵植物进行生殖生物学研究,结果显
示:黄蜀葵植株地上部分生长旺盛,株高可达到2m左
右,多半部分植株分枝较多,持续开花,能产生大量的
花、并且花特大。但单花开花时期短,1d左右。黄蜀
葵花为两性花,都能正常产生花粉,花粉具有较高的生
活力(90%左右),能正常授粉、结果。
  柱头可授性是花朵成熟过程中的一个重要时期,
它能在很大程度上影响传粉率、传粉成功率、开花不同
阶段的传粉成功率等[18]。本试验研究结果,虽然黄蜀
葵植物单花开花时间短(1d左右),但柱头可授性的持
续时间相对较长,从即将开放到开花末期仍具有可授
性。这些特征为异花授粉提供了可能。黄蜀葵在整个
开花时期柱头发生变化(图版Ⅰ,2),起初5个柱头是
紧凑的,随着花的发育,柱头往外延伸,翻转,离花药很
近,这便于进行自花受粉。
  黄蜀葵植物的花粉/胚珠比为83.74±12.956 9。
按照Cruden的标准,黄蜀葵的繁育系统属于兼性自
交类型。课题组曾对黄蜀葵花进行套袋(花蕾期)初步
试验,后观察到能结实,说明黄蜀葵能够进行自交,这
与本研究测定繁育系统结果相符合。黄蜀葵也能进行
异花传粉,这与花的形态结构有一定的相关,如黄蜀葵
的花大,柱头及雄蕊外露,在开花期有昆虫在花上。果
实成熟后,开裂,种子为黑褐色,表面有毛。
(下转第32页)
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生长呈逐渐降低的趋势,这与刘炳响等[8]的研究结果
相一 致;家 系 MZ 002 和 MZ 003 呈 先 增 加 (50
mmol/L NaCl)后降低的趋势,这与孙景宽等[9]的研
究相一致;而在同一个种内出现盐胁迫下生长趋势不
一致的现象,在其它研究中也有报道[10]。白榆不同家
系幼苗在 NaCl胁迫条件下表现出生长趋势的不一
致,表明白榆不同家系间幼苗耐盐性具有较大的遗传
变异,这也说明白榆不同家系间具有较大的耐盐良种
选育潜力。
3.3 白榆不同家系耐盐性
在植物的整个生活史中不同阶段对逆境的忍耐能
力不同,种子阶段具有最强的抵抗极端环境条件的能
力,而萌发后的幼苗抵抗极端环境条件的能力最
弱[11]。因此,萌发的种子不一定出苗,即便出苗也不
一定能够成活,这也解释了为什么滨海盐碱地有很多
白榆资源分布,每年大量种子散落,但林下极少有白榆
幼苗成活;所以,对白榆这类结实量很大的树种来说,
不应单纯以发芽率等种子萌发时的指标作为耐盐性评
价的依据,更应关注其萌发后在盐胁迫条件下的生长
状况,从而对其耐盐性做出准确评价。
基于以上原因,本研究最终以白榆种子萌发后在
NaCl胁迫下的生长情况为主要依据,计算了不同家系
的耐盐阈值,在105.87~188.75mmol/L之间,表明白
榆不同家系间耐盐性遗传差异较大。因此,在白榆不
同家系间开展耐盐选育工作显得尤为重要。
参考文献:
[1]续九如,宋婉,邹受益,等.榆属树种遗传改良研究现状及思
考[J].北京林业大学学报,2000,22(6):95-99.
[2]黄成就,张永田,徐永椿,等.中国植物志(第二十二卷)[M].
北京:科学出版社,1998:356-360.
[3]侯军铭,梁海永,王颖,等.不同盐碱区白榆、白蜡、紫穗槐、
柽柳体内离子分布特征[J].中国农学通报,2009,25(9):
277-281.
[4]Fu-nan S,Chuan-ping Y,Xue-mei L,et al.Effect of salt
stress on activity of superoxide dismutase(SOD)in Ulmus
pumila L.[J].Journal of Forestry Research,2006,17(1):
13-16.
[5]慕德宇.离体培养条件下12个白榆优良无性系氯化钠盐分
抗性筛选的研究[J].山东大学学报(理学版),2013,48(3):
19-23.
[6]李庆贱,李悦,陈志强,等.盐碱胁迫下白榆苗期遗传变异与
优良家系选择[J].北京林业大学学报,2012,34(3):53-57.
[7]Guan B,Zhou D,Zhang H,et al.Germination responses of
Medicago ruthenica seeds to salinity,alkalinity,and temper-
ature[J].Journal of Arid Environments,2009,73:135-138.
[8]刘炳响,王志刚,杨敏生,等.模拟盐胁迫对白榆种子发芽、
出苗及幼苗生长的影响[J].草业学报,2012,21(5):39-46.
[9]孙景宽,刘俊华,陈印平.孩儿拳种子萌发特性和抗氧化系
统对盐胁迫的响应[J].种子,2009,28(1):31-37.
[10]李菊,郭燕飞.盐胁迫对不同青稞品种萌发与幼苗生长的
影响[J].种子,2014,33(5):35-37.
[11]王芳,肖洪浪,赵亮.单盐胁迫对红砂种子萌发的影响[J].
种子,2013,32(10):1-7.

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参考文献:
[1]谭业华,陈珍.黄蜀葵种子催芽技术探讨[J].江西园艺,2005
(4):33-34.
[2]梁文波,覃柳燕,严方明.中药材黄蜀葵的研究现状及存在
问题[J].农业研究与应用,2012(5):48-52.
[3]中国科学院植物研究所主编.中国高等植物图鉴[M].北京:
科学出版社,1980:814.
[4]林文群,陈忠,陈金玲,等.黄蜀葵种子形态及其化学成分的
研究[J].天然产物研究与开发,2002,14(3):41-44.
[5]莫明雅,王晓萌,白洁,等.黄蜀葵茎段植株再生体系的建立
和花各部位愈伤组织总黄铜含量的测定比较[J].四川大学
学报(自然科学版),2012,49(4):919-923.
[6]张元媛,贾晓妮,曹永翔,等.黄蜀葵花化学成分研究[J].西
北药学杂志,2008,23(2):80-82.
[7]王雪梅,施文婷,吴迷蒾,等.黄蜀葵胶中的糖分析[J].食品
科学,2011,32(6):256-260.
[8]范丽,董六一,江勤,等.黄蜀葵花总黄铜抗炎解热作用[J].
安徽医科大学学报,2003,38(1):25-27.
[9]李庆林,陈志斌,马传庚.黄蜀葵花总黄铜对心肌损伤的保
护作用及其机制[J].中国药理学通报,2001,17(4):466-468.
[10]胡克章,曹文斌,何书桃,等.黄蜀葵花胶囊对四氯化碳所
致小鼠肝损伤的保护作用[J].解放军药学学报,2011,27
(1):17-19.
[11]张红艳,董六一,江勤,等.黄蜀葵花总黄铜抗感染性口腔
黏膜溃疡及体外抗菌作用[J].安徽医药,2006,10(11):
810-811.
[12]江勤,董六一,方明,等.黄蜀葵花总黄酮体外抗单纯疱疹
病毒作用[J].安徽医药,2006,10(2):93-94.
[13]李杰,于人江,林霞,等.黄蜀葵花提取物对兔口腔黏膜溃
疡的药效学研究[J].山东中医药大学学报,2006,30(6):
97-98.
[14]CRUDEN R W.Polen-ovule ratios:A conservative indica-
tor of breeding systems in flowring[J].Plants Evlution,
1977,35(1):7-13.
[15]廖云海,陆嘉惠,张际昭,等.光果甘草生殖生物学特性的
初步研究[J].西北植物学报,2010,30(5):939-943.
[16]红雨,方海涛,那仁,等.濒危植物蒙古扁桃花粉活力和柱
头可授性研究[J].广西植物,2006,26(6):589-591.
[17]周旭红,莫锡君,王继华,等.香石竹开花结实生物学研究
[J].西北植物学报,2011,31(11):2 198-2 203.
·23·
第35卷 第2期 2016年2月             种 子 (Seed)          Vol.35 No.2 Feb. 2016