全 文 ：Ｏｐｅｎ　Ａｃｃｅｓｓ开放获取 Ｓｕｂｍｉｓｓｉｏｎ　Ｇｕｉｄｅ投稿指南
ＤＯＩ：１０．３７３６／ｊｃｉｍ２０１１１２１６
ｈｔｔｐ：／／ｗｗｗ．ｊｃｉｍｊｏｕｒｎａｌ．ｃｏｍ
Ｄｕｓａｎｅ　ＭＢ，Ｊｏｓｈｉ　ＢＮ．Ｓｅｅｄｓ　ｏｆ　Ｓｙｚｙｇｉｕｍ
ｃｕｍｉｎｉ（Ｌ．）Ｓｋｅｅｌｓ：ｐｏｔｅｎｔｉａｌ　ｆｏｒ　ｉｓｌｅｔ　ｒｅｇｅｎ－
ｅｒａｔｉｏｎ　ｉｎ　ｅｘｐｅｒｉｍｅｎｔａｌ　ｄｉａｂｅｔｅｓ．Ｊ　Ｃｈｉｎ　Ｉｎｔｅｇｒ
Ｍｅｄ．２０１１；９（１２）：１３８０－１３８７．
Ｄｕｓａｎｅ　ＭＢ，Ｊｏｓｈｉ　ＢＮ．海南蒲桃种子促进实
验性糖尿病胰岛细胞再生的研究．中西医结
合学报．２０１１；９（１２）：１３８０－１３８７．
Ｒｅｃｅｉｖｅｄ　Ｊｕｌｙ　１８，２０１１；ａｃｃｅｐｔｅｄ　Ｓｅｐｔｅｍｂｅｒ
１６，２０１１；ｐｕｂｌｉｓｈｅｄ　ｏｎｌｉｎｅ　Ｄｅｃｅｍｂｅｒ　１５，２０１１．
Ｆｕｌ－ｔｅｘｔ　ＬｉｎｋＯｕｔ　ａｔ　ＰｕｂＭｅｄ．Ｊｏｕｒｎａｌ　ｔｉｔｌｅ　ｉｎ
ＰｕｂＭｅｄ：Ｚｈｏｎｇ　Ｘｉ　Ｙｉ　Ｊｉｅ　Ｈｅ　Ｘｕｅ　Ｂａｏ．
Ｃｏｒｒｅｓｐｏｎｄｅｎｃｅ：Ｂｉｍｂａ　Ｎ．Ｊｏｓｈｉ，ＰｈＤ；Ｔｅｌ：
＋９１－０２０－２５６５４３５７－３６５；Ｅ－ｍａｉｌ：ｂｉｍｂａｊｏｓｈｉ
＠ａｒｉｐｕｎｅ．ｏｒｇ
Ｊｏｕｒｎａｌ　ｏｆ　Ｃｈｉｎｅｓｅ　Ｉｎｔｅｇｒａｔｉｖｅ　Ｍｅｄｉｃｉｎｅ（ＪＣＩＭ）ｏｒ　Ｚｈｏｎｇ　Ｘｉ　Ｙｉ　Ｊｉｅ　Ｈｅ
Ｘｕｅ　Ｂａｏ　ｉｓ　ａｎ　ｉｎｔｅｒｎａｔｉｏｎａｌ，ｐｅｅｒ－ｒｅｖｉｅｗｅｄ，ｏｐｅｎ　ａｃｃｅｓｓ　ｊｏｕｒｎａｌ　ｆｏｒ　ｔｈｅ
ｓｔｕｄｙ　ｏｆ　ｃｏｍｐｌｅｍｅｎｔａｒｙ　ａｎｄ　ａｌｔｅｒｎａｔｉｖｅ　ｍｅｄｉｃｉｎｅ　ｏｒ　ｉｎｔｅｇｒａｔｉｖｅ　ｍｅｄｉｃｉｎｅ
ｆｒｏｍ　ａｌ　ｒｅｇｉｏｎｓ　ｏｆ　ｔｈｅ　ｗｏｒｌｄ．ＪＣＩＭｉｓ　ｉｎｄｅｘｅｄ　ｉｎ　ＰｕｂＭｅｄ　ａｎｄ　Ｄｉｒｅｃｔｏｒｙ
ｏｆ　Ｏｐｅｎ　Ａｃｃｅｓｓ　Ｊｏｕｒｎａｌｓ（ＤＯＡＪ）．ＪＣＩＭｉｓ　ａ　ｍｅｍｂｅｒ　ｊｏｕｒｎａｌ　ｏｆ　ＣｒｏｓｓＲｅｆ．
Ａｒｔｉｃｌｅｓ　ｐｕｂｌｉｓｈｅｄ　ｉｎ　ＪＣＩＭｈａｖｅ　ｍａｘｉｍｕｍ　ｅｘｐｏｓｕｒｅ　ｔｏ　ｔｈｅ　ｉｎｔｅｒｎａｔｉｏｎａｌ
ｓｃｈｏｌａｒｌｙ　ｃｏｍｍｕｎｉｔｙ．
Ｓｕｂｍｉｔ　ｙｏｕｒ　ｍａｎｕｓｃｒｉｐｔ　ｈｅｒｅ：
ｈｔｔｐ：／／ｍｃ０３．ｍａｎｕｓｃｒｉｐｔｃｅｎｔｒａｌ．ｃｏｍ／ｊｃｉｍ－ｅｎ（ｆｏｒ　ｍａｎｕｓｃｒｉｐｔｓ　ｗｒｉｔｔｅｎ　ｉｎ
Ｅｎｇｌｉｓｈ）
ｈｔｔｐ：／／ｍｃ０３．ｍａｎｕｓｃｒｉｐｔｃｅｎｔｒａｌ．ｃｏｍ／ｊｃｉｍ－ｃｎ（ｆｏｒ　ｍａｎｕｓｃｒｉｐｔｓ　ｗｒｉｔｔｅｎ　ｉｎ
Ｃｈｉｎｅｓｅ）
● Ｎｏ　ｓｕｂｍｉｓｓｉｏｎ　ａｎｄ　ｐａｇｅ　ｃｈａｒｇｅｓ　ｆｏｒ　ｍａｎｕｓｃｒｉｐｔｓ　ｗｒｉｔｔｅｎ　ｉｎ　Ｅｎｇｌｉｓｈ
● Ｑｕｉｃｋ　ｄｅｃｉｓｉｏｎ　ａｎｄ　ｒａｐｉｄ　ｐｕｂｌｉｃａｔｉｏｎ
Ｓｅｎｄ　ｙｏｕｒ　ｐｏｓｔａｌ　ａｄｄｒｅｓｓ　ｂｙ　ｅ－ｍａｉｌ　ｔｏ　ｊｃｉｍ＠１６３．ｃｏｍ，ｗｅ　ｗｉｌ　ｓｅｎｄ　ｙｏｕ　ａ
ｃｏｍｐｌｉｍｅｎｔａｒｙ　ｐｒｉｎｔ　ｉｓｓｕｅ　ｕｐｏｎ　ｒｅｃｅｉｐｔ．
ＩＳＳＮ　１６７２－１９７７．Ｐｕｂｌｉｓｈｅｄ　ｂｙ　ＪＣＩＭ　Ｐｒｅｓｓ，Ｓｈａｎｇｈａｉ，Ｃｈｉｎａ．
Ｏｒｉｇｉｎａｌ　Ｅｘｐｅｒｉｍｅｎｔａｌ　Ｒｅｓｅａｒｃｈ　实验论著
Ｓｅｅｄｓ　ｏｆ　Ｓｙｚｙｇｉｕｍ　ｃｕｍｉｎｉ（Ｌ．）Ｓｋｅｅｌｓ：ｐｏｔｅｎｔｉａｌ　ｆｏｒ
ｉｓｌｅｔ　ｒｅｇｅｎｅｒａｔｉｏｎ　ｉｎ　ｅｘｐｅｒｉｍｅｎｔａｌ　ｄｉａｂｅｔｅｓ
Ｍｅｎａｋｓｈｉ　Ｂｈａｔ　Ｄｕｓａｎｅ，Ｂｉｍｂａ　Ｎ．Ｊｏｓｈｉ
Ｂｉｏｍｅｔｒｙ　ａｎｄ　Ｎｕｔｒｉｔｉｏｎ　Ｇｒｏｕｐ，Ａｎｉｍａｌ　Ｓｃｉｅｎｃｅ　Ｄｉｖｉｓｉｏｎ，Ａｇｈａｒｋａｒ　Ｒｅｓｅａｒｃｈ　Ｉｎｓｔｉｔｕｔｅ，Ｐｕｎｅ　４１１００４，Ｉｎｄｉａ
Ｏｂｊｅｃｔｉｖｅ：Ｔｈｅ　ｐｒｅｓｅｎｔ　ｓｔｕｄｙ　ｄｅａｌｓ　ｗｉｔｈ　ｔｈｅ　ｉｓｌｅｔ－ｒｅｇｅｎｅｒａｔｉｖｅ　ｐｏｔｅｎｔｉａｌ　ｏｆ　ｐｕｒｉｆｉｅｄ　ｆｒａｃｔｉｏｎ　ｏｆ
Ｓｙｚｙｇｉｕｍ　ｃｕｍｉｎｉ（Ｌ．）Ｓｋｅｅｌｓ　ｓｅｅｄｓ（ＳＣ２）ｉｎ　ｓｔｒｅｐｔｏｚｏｔｏｃｉｎ（ＳＴＺ）－ｉｎｄｕｃｅｄ　ｄｉａｂｅｔｉｃ　ｍｉｃｅ．
Ｍｅｔｈｏｄｓ：Ｄｉａｂｅｔｅｓ　ｗａｓ　ｉｎｄｕｃｅｄ　ｉｎ　Ｓｗｉｓｓ　ｍｉｃｅ　ｂｙ　ｓｉｎｇｌｅ　ｉｎｔｒａｐｅｒｉｔｏｎｅａｌ　ｉｎｊｅｃｔｉｏｎ　ｏｆ　ＳＴＺ
（１２０　ｍｇ／ｋｇ）．Ｔｈｅ　ｔｒｅａｔｍｅｎｔ　ｇｒｏｕｐ　ｍｉｃｅ　ｗｅｒｅ　ｔｒｅａｔｅｄ　ｂｙ　ａｄｍｉｎｉｓｔｅｒｉｎｇ　ｏｒａｌ　ｄｏｓｅ　ｏｆ　ｉｓｏｌａｔｅｄ
ＳＣ２　ｆｒａｃｔｉｏｎ　ｏｆ　Ｓ．ｃｕｍｉｎｉ（２　ｇ／Ｌ）ｆｏｒ　２１　ｄ．Ｂｌｏｏｄ　ｇｌｕｃｏｓｅ　ｌｅｖｅｌ　ａｎｄ　ｂｏｄｙ　ｗｅｉｇｈｔ　ｍｅａｓｕｒｅｍｅｎｔｓ
ｗｅｒｅ　ｃｏｎｄｕｃｔｅｄ　ｒｅｇｕｌａｒｌｙ　ｄｕｒｉｎｇ　ｔｈｅ　２１　ｄ．Ｏｎ　ｔｈｅ　２０ｔｈ　ｄａｙ　ｏｆ　ｔｈｅ　ｅｘｐｅｒｉｍｅｎｔ，ｏｒａｌ　ｇｌｕｃｏｓｅ
ｔｏｌｅｒａｎｃｅ　ｔｅｓｔ　ｗａｓ　ｐｅｒｆｏｒｍｅｄ　ｏｎ　ｏｖｅｒｎｉｇｈｔ　ｆａｓｔｅｄ　ｍｉｃｅ．Ｅｘｐｅｒｉｍｅｎｔａｌ　ｍｉｃｅ　ｗｅｒｅ　ｓａｃｒｉｆｉｃｅｄ　ａｔ
ｔｈｅ　ｅｎｄ　ｏｆ　ｔｈｅ　ｔｒｅａｔｍｅｎｔ　ａｎｄ　ｔｉｓｓｕｅｓ　ｗｅｒｅ　ｓｅｐａｒａｔｅｄ．Ｔｈｅ　ｌｉｖｅｒ　ｇｌｕｃｏｓｅ－６－ｐｈｏｓｐｈａｔｅ－ｄｅｈｙｄｒｏｇｅｎａｓｅ
（Ｇ６ＰＤ）ａｃｔｉｖｉｔｙ　ａｎｄ　ｃｏｎｔｅｎｔｓ　ｏｆ　ｈｅｐａｔｉｃ　ａｎｄ　ｍｕｓｃｌｅ　ｇｌｙｃｏｇｅｎｓ　ｗｅｒｅ　ｍｅａｓｕｒｅｄ；ｌｅｖｅｌｓ　ｏｆ
ｐｌａｓｍａ　ｉｎｓｕｌｉｎ　ａｎｄ　Ｃ－ｐｅｐｔｉｄｅ　ｗｅｒｅ　ａｌｓｏ　ｍｅａｓｕｒｅｄ．
Ｒｅｓｕｌｔｓ：ＳＣ２－ｔｒｅａｔｅｄ　ｍｉｃｅ　ｓｈｏｗｅｄ　ｓｕｓｔａｉｎｅｄ　ｒｅｖｅｒｓａｌ　ｉｎ　ｅｘｐｅｒｉｍｅｎｔａｌ　ｄｉａｂｅｔｅｓ　ａｓ　ｅｖｉｄｅｎｃｅｄ　ｂｙ
ｒｅｓｔｏｒａｔｉｏｎ　ｏｆ　ｎｏｒｍｏｇｌｙｃｅｍｉａ，ｉｎｃｒｅａｓｅｓ　ｉｎ　Ｇ６ＰＤ　ａｎｄ　ｈｅｐａｔｉｃ　ａｎｄ　ｍｕｓｃｌｅ　ｇｌｙｃｏｇｅｎｓ　ａｌｏｎｇ　ｗｉｔｈ
ｉｎｃｒｅａｓｅｓ　ｉｎ　ｐｌａｓｍａ　ｉｎｓｕｌｉｎ　ａｎｄ　Ｃ－ｐｅｐｔｉｄｅ　ｌｅｖｅｌｓ．Ｔｈｅ　ｏｃｃｕｒｒｅｎｃｅ　ｏｆ　ｎｅｏ－ｉｓｌｅｔｓ　ｉｎ　ｈｉｓｔｏｌｏｇｉｃａｌ
ｓｔｕｄｉｅｓ　ｓｕｇｇｅｓｔｅｄ　ｒｅｇｅｎｅｒａｔｉｖｅ　ｐｒｏｐｅｒｔｙ　ｏｆ　ＳＣ２．Ｔｈｅｓｅ　ｎｅｏ－ｉｓｌｅｔｓ　ｗｅｒｅ　ｆｏｕｎｄ　ｔｏ　ｂｅ　ｐｒｏｄｕｃｉｎｇ
ｉｎｓｕｌｉｎ　ｉｎ　ｉｎ　ｖｉｖｏ　ＳＴＺ－ｉｎｄｕｃｅｄ　ｄｉａｂｅｔｉｃ　ｍｉｃｅ．
Ｃｏｎｃｌｕｓｉｏｎ：Ｔｈｅｓｅ　ｆｉｎｄｉｎｇｓ　ｓｕｂｓｔａｎｔｉａｔｅ　ｔｈｅ　ａｃｔｉｏｎ　ｏｆ　ＳＣ２　ｆｒａｃｔｉｏｎ　ｉｓｏｌａｔｅｄ　ｆｒｏｍ　Ｓ．ｃｕｍｉｎｉ
ｓｅｅｄｓ　ｉｎ　ｉｓｌｅｔ　ｒｅｇｅｎｅｒａｔｉｏｎ　ａｎｄ　ｉｎｓｕｌｉｎ　ｓｅｃｒｅｔｉｏｎ．Ｓｕｃｈ　ｒｅｇｅｎｅｒａｔｉｖｅ　ａｐｐｒｏａｃｈｅｓ，ｉｎ　ｃｏｍｂｉｎａｔｉｏｎ
ｗｉｔｈ　ｏｔｈｅｒ　ｔｈｅｒａｐｅｕｔｉｃ　ｓｔｒａｔｅｇｉｅｓ　ｍａｙ　ｐｒｏｖｉｄｅ　ａ　ｂｅｔｔｅｒ　ｍｅａｎｓ　ｆｏｒ　ｔｈｅ　ｃｏｎｔｒｏｌ　ａｎｄ　ｍａｎａｇｅｍｅｎｔ　ｏｆ
ｄｉａｂｅｔｅｓ　ｉｎ　ｔｈｅ　ｆｕｔｕｒｅ．
Ｋｅｙｗｏｒｄｓ：ｄｉａｂｅｔｅｓ　ｍｅｌｉｔｕｓ，ｅｘｐｅｒｉｍｅｎｔａｌ；Ｓｙｚｙｇｉｕｍ；ｐｌａｎｔ　ｅｘｔｒａｃｔｓ；ｈｙｐｏｇｌｙｃｅｍｉｃ　ａｇｅｎｔｓ；
ｉｓｌｅｔｓ　ｏｆ　Ｌａｎｇｅｒｈａｎｓ；ｍｉｃｅ
　Ｓｙｚｙｇｉｕｍ　ｃｕｍｉｎｉ（Ｌ．）Ｓｋｅｅｌｓ　ｃｏｍｍｏｎｌｙ　ｋｎｏｗｎ　ａｓ
Ｊａｍｕｎ　ｏｒ　Ｊａｍｂｏｌａｎ，ｓｙｎｏｎｙｍｓ　Ｓｙｚｙｇｉｕｍ　ｊａｍｂｏｌａｎｕｍ，
Ｅｕｇｅｎｉａ　ｃｕｍｉｎｉ　ａｎｄ　Ｅｕｇｅｎｉａ　ｊａｍｂｏｌａｎ，ｂｅｌｏｎｇｓ
ｔｏ　ｔｈｅ　Ｍｙｒｔａｃｅａｅ　ｆａｍｉｌｙ　ａｎｄ　ｉｓ　ｎａｔｉｖｅ　ｔｏ　ｔｈｅ　ｓｕｂｔｒｏｐｉ－
ｃａｌ　Ｈｉｍａｌａｙａｓ，Ｉｎｄｉａ，Ｓｒｉ　Ｌａｎｋａ，Ｍａｌａｙｓｉａ　ａｎｄ　Ａｕｓ－
ｔｒａｌｉａ．Ｓ．ｃｕｍｉｎｉ　ｈａｓ　ｂｅｅｎ　ｕｔｉｌｉｚｅｄ　ｉｎ　ｔｈｅ　ｔｒａｄｉ－
·０８３１· 中西医结合学报２０１１年１２月第９卷第１２期　Ｊｏｕｒｎａｌ　ｏｆ　Ｃｈｉｎｅｓｅ　Ｉｎｔｅｇｒａｔｉｖｅ　Ｍｅｄｉｃｉｎｅ，Ｄｅｃｅｍｂｅｒ　２０１１，Ｖｏｌ．９，Ｎｏ．１２
ｔｉｏｎａｌ　ｓｙｓｔｅｍ　ｏｆ　ｍｅｄｉｃｉｎｅ （Ａｙｕｒｖｅｄａ）ｆｏｒ　ｔｈｅ
ｔｒｅａｔｍｅｎｔ　ｏｆ　ｄｉａｂｅｔｅｓ［１］．Ｓ．ｃｕｍｉｎｉ　ｓｅｅｄｓ　ｈａｖｅ　ｂｅｅｎ
ｃｏｎｓｉｄｅｒｅｄ　ａｓ　ａｎ　ｉｎｄｉｇｅｎｏｕｓ　ｓｏｕｒｃｅ　ｏｆ　ｍｅｄｉｃｉｎｅｓ
ｐｏｓｓｅｓｓｉｎｇ　ｈｙｐｏｇｌｙｃａｅｍｉｃ，ａｎｔｉｐｙｒｅｔｉｃ，ａｎｔｉ－ｉｎ－
ｆｌａｍｍａｔｏｒｙ，ａｎｔｉｏｘｉｄａｎｔ，ａｎｄ　ａｎｔｉｈｙｐｅｒｇｌｙｃｅｍｉｃ
ｐｒｏｐｅｒｔｉｅｓ［２－７］．Ｓ．ｃｕｍｉｎｉ　ｉｓ　ｍｏｓｔ　ｏｆｔｅｎ　ｒｅｃｏｍｍｅｎｄｅｄ
ａｓ　ａｎ　ａｄｊｕｖａｎｔ　ｔｈｅｒａｐｙ　ｉｎ　ｔｙｐｅ　２　ｄｉａｂｅｔｅｓ．Ｉｔ　ｉｓ　ｏｎｅ
ｏｆ　ｔｈｅ　ｅｘｔｅｎｓｉｖｅｌｙ　ｓｔｕｄｉｅｄ　ｐｌａｎｔｓ　ｉｎ　ｔｈｅ　ｌａｓｔ　１２５
ｙｅａｒｓ［８］．Ｉｎ　ｓｐｉｔｅ　ｏｆ　ｖａｒｉｏｕｓ　ｂｉｏａｃｔｉｖｅ　ｐｈｙｔｏｃｈｅｍｉ－
ｃａｌ　ｃｏｎｓｔｉｔｕｅｎｔｓ　ａｎｄ　ｄｉｖｅｒｓｅ　ｍｅｄｉｃｉｎａｌ　ｐｒｏｐｅｒｔｉｅｓ
ａｔｔｒｉｂｕｔｅｄ　ｔｏ　Ｓ．ｃｕｍｉｎｉ，ｔｈｅｒｅ　ａｒｅ　ｎｏ　ｄｅｔａｉｌｅｄ
ｓｔｕｄｉｅｓ　ｃａｒｒｉｅｄ　ｏｕｔ　ｔｏ　ｉｄｅｎｔｉｆｙ　ｔｈｅ　ｍｅｃｈａｎｉｓｔｉｃ　ｂａｓｉｓ　ｏｆ
ｉｔｓ　ａｎｔｉｄｉａｂｅｔｏｇｅｎｉｃ　ｐｒｏｐｅｒｔｙ．Ｗｅ　ｈａｖｅ　ｐｒｅｖｉｏｕｓｌｙ　ｒｅ－
ｐｏｒｔｅｄ　ｔｈｅ　ｇｌｕｃｏｓｉｄａｓｅ－ｉｎｈｉｂｉｔｏｒｙ　ａｃｔｉｖｉｔｙ　ｏｆ　Ｓ．ｃｕｍｉｎｉ
ｓｅｅｄ　ｅｘｔｒａｃｔｓ　ａｇａｉｎｓｔ　ｍｕｒｉｎｅ　ｐａｎｃｒｅａｔｉｃ　ａｎｄ　ｉｎｔｅｓｔｉ－
ｎａｌ　ｇｌｕｃｏｓｉｄａｓｅ［９］．
Ｒｅｌａｔｅｄ　Ａｒｔｉｃｌｅｓ推荐阅读
曹和欣，何立群，沈雅静．糖尿病高血脂所致大鼠肾组织ＳＯＤ和ＧＳＨ及 ＭＤＡ的变化．中西医结合学报．２００４；２（１）：
３６－３８．
Ｃａｏ　ＨＸ，Ｈｅ　ＬＱ，Ｓｈｅｎ　ＹＪ．Ｃｈａｎｇｅｓ　ｏｆ　ＳＯＤ，ＧＳＨ　ａｎｄ　ＭＤＡ　ｉｎ　ｒｅｎａｌ　ｔｉｓｓｕｅｓ　ｏｆ　ｄｉａｂｅｔｉｃ　ｈｙｐｅｒｌｉｐｉｄｅｍｉａ　ｒａｔｓ．Ｊ　Ｃｈｉｎ　Ｉｎｔｅｇｒ
Ｍｅｄ．２００４；２（１）：３６－３８．
Ｆｒｅｅ　ｆｕｌ　ｔｅｘｔ　ａｖａｉｌａｂｌｅ　ａｔ　ｈｔｔｐ：／／ｗｗｗ．ｊｃｉｍｊｏｕｒｎａｌ．ｃｏｍ／ＦｕｌＴｅｘｔ２．ａｓｐｘ？ａｒｔｉｃｌｅＩＤ＝２４４
王静，王庆，王珍贞，冯卓，刘绍云，张琦祺，蔡奇文，潘静娟．中医不同治法对四氧嘧啶糖尿病模型大鼠的降糖作用．中
西医结合学报．２０１０；８（８）：７８１－７８４．
Ｗａｎｇ　Ｊ，Ｗａｎｇ　Ｑ，Ｗａｎｇ　ＺＺ，Ｆｅｎｇ　Ｚ，Ｌｉｕ　ＳＹ，Ｚｈａｎｇ　ＱＱ，Ｃａｉ　ＱＷ，Ｐａｎ　ＪＪ．Ｃｏｍｐａｒａｔｉｖｅ　ｓｔｕｄｙ　ｏｎ　ｈｙｐｏｇｌｙｃｅｍｉｃ　ｅｆｆｅｃｔｓ　ｏｆ
ｄｉｆｆｅｒｅｎｔ　ｔｒａｄｉｔｉｏｎａｌ　Ｃｈｉｎｅｓｅ　ｍｅｄｉｃｉｎｅ　ｔｒｅａｔｍｅｎｔｓ　ｉｎ　ｒａｔｓ　ｗｉｔｈ　ｄｉａｂｅｔｅｓ　ｍｅｌｉｔｕｓ　ｉｎｄｕｃｅｄ　ｂｙ　ａｌｏｘａｎ．Ｊ　Ｃｈｉｎ　Ｉｎｔｅｇｒ　Ｍｅｄ．
２０１０；８（８）：７８１－７８４．
Ｆｒｅｅ　ｆｕｌ　ｔｅｘｔ　ａｖａｉｌａｂｌｅ　ａｔ　ｈｔｔｐ：／／ｗｗｗ．ｊｃｉｍｊｏｕｒｎａｌ．ｃｏｍ／ＦｕｌＴｅｘｔ２．ａｓｐｘ？ａｒｔｉｃｌｅＩＤ＝ｊｃｉｍ２０１００８０９
Ｍｏｒｅ　ｆｒｅｅ　ｒｅｌａｔｅｄ　ａｒｔｉｃｌｅｓ　ａｔ　ｈｔｔｐ：／／ｗｗｗ．ｊｃｉｍｊｏｕｒｎａｌ．ｃｏｍ／ＦｕｌＴｅｘｔ２．ａｓｐｘ？ａｒｔｉｃｌｅＩＤ＝ｊｃｉｍ２０１１１２１６
　Ｄｉａｂｅｔｅｓ　ｍｅｌｉｔｕｓ（ｔｙｐｅ　１　ａｎｄ　ｔｙｐｅ　２）ｉｓ　ａ　ｍｅｔａｂｏｌｉｃ
ｄｉｓｏｒｄｅｒ　ｃｈａｒａｃｔｅｒｉｚｅｄ　ｂｙ　ｄｙｓｒｅｇｕｌａｔｉｏｎ　ｉｎ　ｃａｒｂｏ－
ｈｙｄｒａｔｅ，ｐｒｏｔｅｉｎ　ａｎｄ　ｆａｔ　ｍｅｔａｂｏｌｉｓｍｓ　ｃａｕｓｅｄ　ｂｙ
ｉｎｓｕｆｆｉｃｉｅｎｔ　ｉｎｓｕｌｉｎ　ｓｅｃｒｅｔｉｏｎ　ａｎｄ／ｏｒ　ｉｎｓｕｌｉｎ　ａｃｔｉｏｎ［１０，１１］．
Ｖａｒｉｏｕｓ　ｏｒａｌ　ａｎｔｉｄｉａｂｅｔｉｃ　ａｇｅｎｔｓ　ｓｕｃｈ　ａｓ　ｓｕｌｆｏｎｙ－
ｌｕｒｅａｓ，ｂｉｇｕａｎｉｄｅｓ，α－ｇｌｕｃｏｓｉｄａｓｅ　ｉｎｈｉｂｉｔｏｒｓ，ｇｌｉｎ－
ｉｄｅｓ　ａｒｅ　ｕｓｅｄ　ｔｏ　ａｃｈｉｅｖｅ　ｇｌｙｃｅｍｉｃ　ｃｏｎｔｒｏｌ．Ａｌ
ｔｈｅｓｅ　ｍｅｄｉｃｉｎｅｓ　ｈａｖｅ　ｌｉｍｉｔｅｄ　ｅｆｆｉｃａｃｙ　ａｎｄ　ｈａｖｅ
ｂｅｅｎ　ｒｅｐｏｒｔｅｄ　ｔｏ　ｂｅ　ａｓｓｏｃｉａｔｅｄ　ｗｉｔｈ　ｕｎｄｅｓｉｒａｂｌｅ
ｓｉｄｅ　ｅｆｆｅｃｔｓ［１２－１４］．Ａｓ　ａ　ｒｅｓｕｌｔ，ａｔｔｅｍｐｔｓ　ｈａｖｅ　ｂｅｅｎ
ｍａｄｅ　ｔｏ　ｄｉｓｃｏｖｅｒ　ｎｅｗ　ａｎｔｉｄｉａｂｅｔｉｃ　ｒｅｇｉｍｅｎｓ　ｄｅｒｉｖｅｄ
ｆｒｏｍ　ｐｌａｎｔ　ｓｏｕｒｃｅｓ［１５，１６］．
　Ｔｈｅ　ｍｅｃｈａｎｉｓｍ　ｏｆ　ｉｓｌｅｔ　ｒｅｇｅｎｅｒａｔｉｏｎ　ｉｓ　ｐｏｏｒｌｙ
ｕｎｄｅｒｓｔｏｏｄ，ｂｕｔ　ｔｈｅ　ｉｄｅｎｔｉｆｉｃａｔｉｏｎ　ｏｆ　ｉｓｌｅｔ　ｐｒｏｇｅｎｉｔｏｒ
ｓｏｕｒｃｅｓ　ｉｓ　ｃｒｉｔｉｃａｌ　ｆｏｒ　ｕｎｄｅｒｓｔａｎｄｉｎｇβｃｅｌ　ｒｅｇｅｎｅｒａ－
ｔｉｏｎ．Ｕｎｒａｖｅｌｉｎｇ　ｔｈｅ　ｍｅｃｈａｎｉｓｍ　ｏｆ　ｉｓｌｅｔ　ｃｅｌ　ｄｅｖｅｌ－
ｏｐｍｅｎｔ　ａｎｄ　ｒｅｇｅｎｅｒａｔｉｏｎ　ｒｅｐｒｅｓｅｎｔｓ　ａｎ　ｉｍｐｏｒｔａｎｔ
ｍｅｄｉｃａｌ　ｉｓｓｕｅ　ｂｅｃａｕｓｅ　ｉｔ　ｃｏｕｌｄ　ｌｅａｄ　ｔｏ　ｓｔｒａｔｅｇｉｅｓ
ａｉｍｅｄ　ａｔ　ｒｅｓｔｏｒｉｎｇ　ｔｈｅ　ｆｕｎｃｔｉｏｎａｌβｃｅｌ　ｍａｓｓ
ｗｈｉｃｈ　ｉｓ　ｋｎｏｗｎ　ｔｏ　ｂｅ　ｄｅｆｉｃｉｅｎｔ　ｏｒ　ｅｖｅｎ　ａｂｓｅｎｔ　ｉｎ
ｄｉａｂｅｔｅｓ［１７］．Ｔｈｅｒｅｆｏｒｅ，ｅｘｐａｎｓｉｏｎ　ｏｆ　ｔｈｅβｃｅｌ
ｍａｓｓ　ｆｒｏｍ　ｅｎｄｏｇｅｎｏｕｓ　ｓｏｕｒｃｅｓ，ｅｉｔｈｅｒ　ｉｎ　ｖｉｖｏ　ｏｒ
ｉｎ　ｖｉｔｒｏ，ｒｅｐｒｅｓｅｎｔｓ　ａｎ　ａｒｅａ　ｏｆ　ｉｎｃｒｅａｓｉｎｇ　ｉｎｔｅｒｅｓｔ．
Ｂａｎｅｒｊｅｅ　ａｎｄ　Ｂｈｏｎｄｅ［１８］ｈａｖｅ　ｄｅｍｏｎｓｔｒａｔｅｄ　ｔｈａｔ
ｓｔｒｅｐｔｏｚｏｔｏｃｉｎ（ＳＴＺ）－ｉｎｄｕｃｅｄ　ｄｉａｂｅｔｉｃ　ｍｉｃｅ　ｒｅｔａｉｎｅｄ
ｔｈｅｉｒ　ｐｏｏｌ　ｏｆ　ｉｎｔｒａ－ｉｓｌｅｔ　ｐｒｅｃｕｒｓｏｒ　ｃｅｌｓ　ａｎｄ　ｃａｎ
ｇｉｖｅ　ｒｉｓｅ　ｔｏ　ｍａｔｕｒｅ　ｆｕｎｃｔｉｏｎａｌ　ｉｓｌｅｔｓ　ｉｆ　ｔｒｉｇｇｅｒｅｄ
ｅｘｔｅｒｎａｌｙ．Ｉｎ　ｓｕｃｈ　ａ　ｓｃｅｎａｒｉｏ，ａｎｙ　ａｇｅｎｔ　ｔｈａｔ　ｃａｎ
ｉｎｃｒｅａｓｅ　ｔｈｅ　ｌｅｖｅｌ　ｏｆ　ｒｅｇｅｎｅｒａｔｉｏｎ，ｂｙ　ｔｒｉｇｇｅｒｉｎｇ
ｉｓｌｅｔ　ｒｅｇｅｎｅｒａｔｉｏｎ（ｎｅｓｉｄｉｏｂｌａｓｔｏｓｉｓ）ｉｎ　ｔｈｅ　ｐｒｅｃｕｒｓｏｒ
ｃｅｌｓ，ｗｏｕｌｄ　ｂｅ　ａｂｌｅ　ｔｏ　ｒｅｔａｒｄ　ｔｈｅ　ｐｒｏｇｒｅｓｓｉｏｎ　ｏｆ
ｄｉａｂｅｔｅｓ．Ｒｅｓｅａｒｃｈｅｒｓ　ａｒｅ　ｎｏｗ　ｓｈｉｆｔｉｎｇ　ｔｈｅｉｒ　ａｒｅａ
ｏｆ　ｉｎｔｅｒｅｓｔ　ｔｏｗａｒｄｓ　ｔｏ　ｔｈｅ　ｈｅｒｂａｌ　ｐｌａｎｔｓ　ｔｈａｔ　ｍａｙ
ｐｏｓｓｅｓｓ　ｉｓｌｅｔ－ｎｅｏｇｅｎｉｃ　ａｃｔｉｖｉｔｙ．
　Ｏｎｅ　ｏｆ　ｔｈｅ　ｂｅｎｅｆｉｃｉａｌ　ｅｆｆｅｃｔｓ　ｓｈｏｗｎ　ｂｙ　ａｎｔｉｄｉａｂｅｔｉｃ
ｐｌａｎｔｓ　ｉｎ　ｔｈｅ　ｄｉａｂｅｔｉｃ　ｅｎｖｉｒｏｎｍｅｎｔ　ｉｓ　ｉｍｐｒｏｖｉｎｇ
ｉｎｓｕｌｉｎ　ａｃｔｉｏｎ　ａｎｄ／ｏｒ　ｅｎｈａｎｃｉｎｇ　ｉｎｓｕｌｉｎ　ｓｅｃｒｅｔｉｏｎ
［１９］．
Ｔｈｅ　ｐｌａｎｔ　ｅｘｔｒａｃｔｓ　ｏｆ　Ｅｎｉｃｏｓｔｅｍｍａ　ｌｉｔｔｏｒａｌｅ　ｉｓ
ｓｈｏｗｎ　ｔｏ　ｂｅ　ｅｘｅｒｔｉｎｇ　ｂｅｎｅｆｉｃｉａｌ　ｅｆｆｅｃｔｓ　ｉｎ　ｔｈｅ　ｄｉａｂｅｔｉｃ
ｅｎｖｉｒｏｎｍｅｎｔ　ｂｙ　ｉｍｐｒｏｖｉｎｇ　ａｎｄ／ｏｒ　ｍｉｍｉｃｋｉｎｇ
ｉｎｓｕｌｉｎ　ａｃｔｉｏｎ　ｖｉａ　ｐａｎｃｒｅａｔｉｃ　ｉｓｌｅｔ　ｒｅｇｅｎｅｒａｔｉｏｎ　ｉｎ
ｉｎ ｖｉｔｒｏ ｓｔｕｄｉｅｓ［２０］．Ｖａｒｉｏｕｓ　ｂｉｏｍｏｌｅｃｕｌｅｓ　ｌｉｋｅ
ｇａｓｔｒｏｉｎｔｅｓｔｉｎａｌ　ｎｅｕｒｏｐｅｐｔｉｄｅｓ　ａｎｄ　ｃｏｌｅｃｙｓｔｏｋｉｎｉｎ，
ｈａｖｅ　ｓｈｏｗｎ　ｔｏ　ｓｔｉｍｕｌａｔｅ　ｐａｎｃｒｅａｔｉｃ　ｒｅｇｅｎｅｒａｔｉｏｎ
ａｎｄ　ｒｅｓｔｏｒａｔｉｏｎ　ｏｆ　ｉｓｌｅｔ　ｃｅｌ　ｍａｓｓ　ｉｎ　ｖｉｖｏ［１７，２１］．
Ｔｅｒｍｉｎａｌｉａ　ｃａｔａｐｐａ Ｌｉｎｎ　ｆｒｕｉｔｓ，Ｖｉｎｃａ　ｒｏｓｅａ
ｅｘｔｒａｃｔｓ　ａｎｄ　ａｌｋａｌｏｉｄ　ｅｘｔｒａｃｔ　ｏｆ　Ｅｐｈｅｄｒａｅ　ｈｅｒｂａ，
Ｅｖｅｒｔｉａｍｉａ　ｍｉｃｒｏｐｈｙｌｌａ，Ｅｎｉｃｏｓｔｅｍｍａ　ｌｉｔｔｏｒａｌｅ，
Ｇｙｍｎｅｍａ　ｓｙｌｖｅｓｔｒｅ，Ｍｏｍｏｒｄｉｃａ　ｃｈａｒａｎｔｉａ　ａｎｄ
Ｂｅｔａ　ｖｕｌｇａｒｉｓ　ｈａｖｅ　ｓｏ　ｆａｒ　ｓｈｏｗｎ　ｓｉｇｎｉｆｉｃａｎｔ　ｉｓｌｅｔ
ｒｅｇｅｎｅｒａｔｉｏｎ　ｅｆｆｅｃｔ　ｉｎ　ｄｉａｂｅｔｉｃ　ａｎｉｍａｌｓ［２２－２９］．Ｉｎ
ｔｈｅ　ｐｒｅｓｅｎｔ　ｓｔｕｄｙ，ｗｅ　ｐｕｒｉｆｉｅｄ　ｔｈｅ　ａｃｔｉｖｅ　ｆｒａｃｔｉｏｎ
ｆｒｏｍＳ．ｃｕｍｉｎｉ　ｓｅｅｄｓ　ａｎｄ　ｆｕｒｔｈｅｒ　ｉｎｖｅｓｔｉｇａｔｅｄ　ｉｔｓ
ｒｏｌｅ　ｉｎ　ｉｓｌｅｔ　ｒｅｇｅｎｅｒａｔｉｏｎ　ａｎｄ　ｉｎｓｕｌｉｎ－ｓｅｃｒｅｔｏｇｏｇｕｅ
ａｃｔｉｖｉｔｙ　ｉｎ　ＳＴＺ－ｉｎｄｕｃｅｄ　ｄｉａｂｅｔｉｃ　ｍｉｃｅ．
１　Ｍａｔｅｒｉａｌｓ　ａｎｄ　ｍｅｔｈｏｄｓ
１．１　Ｐｌａｎｔ　ｍａｔｅｒｉａｌｓ　ａｎｄ　ｅｘｔｒａｃｔｉｏｎ　Ｓ．ｃｕｍｉｎｉ
（ｖｏｕｃｈｅｒ　ｎｕｍｂｅｒ　ＭＢＢＰ　６）ｆｒｕｉｔｓ　ｗｅｒｅ　ｃｏｌｅｃｔｅｄ
ｆｒｏｍ　ｔｈｅ　Ｗｅｓｔｅｒｎ　Ｇｈａｔｓ　ｏｆ　Ｐｕｎｅ，Ｉｎｄｉａ　ａｎｄ　ｗｅｒｅ
ａｕｔｈｅｎｔｉｃａｔｅｄ　ｂｙ　ｔｈｅ　Ｂｏｔａｎｉｃａｌ　Ｓｕｒｖｅｙ　ｏｆ　Ｉｎｄｉａ
（ＢＳＩ），Ｐｕｎｅ，Ｉｎｄｉａ．Ｔｈｅ　ｓｅｅｄｓ　ｗｅｒｅ　ｃｏｌｅｃｔｅｄ　ａｆｔｅｒ
ｄｅｐｕｌｐｉｎｇ　ｔｈｅ　ｆｒｕｉｔｓ．Ｔｈｅ　ｃｈｌｏｒｏｆｏｒｍ，ｍｅｔｈａｎｏｌ
ａｎｄ　ａｑｕｅｏｕｓ　ｅｘｔｒａｃｔｓ　ｗｅｒｅ　ｐｒｅｐａｒｅｄ　ｓｅｑｕｅｎｔｉａｌｙ
ｉｎ　ａ　Ｓｏｘｈｌｅｔ　ｅｘｔｒａｃｔｏｒ　ｕｓｉｎｇ　３０　ｇ　ｏｆ　ｔｈｅ　ｄｒｉｅｄ　ｔｉｓｓｕｅ
ｍｉｘｅｄ　ｗｉｔｈ　１５０　ｍＬ　ｏｆ　ｔｈｅ　ｒｅｓｐｅｃｔｉｖｅ　ｓｏｌｖｅｎｔ
（１００％，ｖｏｌｕｍｅ　ｒａｔｉｏ）ｆｏｒ　２４　ｈ［１６，３０］．Ｃｈｌｏｒｏｆｏｒｍ，
ｍｅｔｈａｎｏｌ　ａｎｄ　ａｑｕｅｏｕｓ　ｅｘｔｒａｃｔｓ　ｗｅｒｅ　ｃｏｌｅｃｔｅｄ　ａｎｄ
ｄｒｉｅｄ　ｕｎｄｅｒ　ｒｅｄｕｃｅｄ　ｐｒｅｓｓｕｒｅ　ｕｓｉｎｇ　ａ　Ｂｕｃｈｉ　ｒｏｔａｖａｐｏｒ
（Ｂｕｃｈｉ，Ｇｅｒｍａｎｙ）ａｎｄ　ａ　ｌｙｏｐｈｉｌｉｚｅｒ　ｒｅｓｐｅｃｔｉｖｅｌｙ
（Ｔｈｅｒｍｏ　Ｅｌｅｃｔｒｏｎ　Ｃｏｒｐｏｒａｔｉｏｎ，Ｇｅｒｍａｎｙ）．Ａ
·１８３１·中西医结合学报２０１１年１２月第９卷第１２期　Ｊｏｕｒｎａｌ　ｏｆ　Ｃｈｉｎｅｓｅ　Ｉｎｔｅｇｒａｔｉｖｅ　Ｍｅｄｉｃｉｎｅ，Ｄｅｃｅｍｂｅｒ　２０１１，Ｖｏｌ．９，Ｎｏ．１２
ｔｏｔａｌ　ｏｆ　２５　ｍｇ　ｄｒｙ　ｗｅｉｇｈｔ　ｏｆ　ｅａｃｈ　ｃｒｕｄｅ　ｅｘｔｒａｃｔ
ｗａｓ　ｆｕｒｔｈｅｒ　ｒｅｃｏｎｓｔｉｔｕｔｅｄ　ｉｎ　２．５　ｍＬ　ｏｆ　ｄｉｓｔｉｌｅｄ
ｗａｔｅｒ．Ａｌ　ｔｈｅ　ｆｒａｃｔｉｏｎｓ　ｗｅｒｅ　ｉｎｉｔｉａｌｙ　ｔｅｓｔｅｄ　ｉｎ　ｔｈｅ
ｉｎｖｉｖｏＳＴＺ－ｉｎｄｕｃｅｄ　ｄｉａｂｅｔｉｃ　ｍｉｃｅ．Ｔｈｅ　ｃｈｌｏｒｏｆｏｒｍ
ｅｘｔｒａｃｔ　ｈａｖｉｎｇ　ｓｉｇｎｉｆｉｃａｎｔ　ａｎｔｉｈｙｐｅｒｇｌｙｃｅｍｉｃ　ａｃｔｉｖｉｔｙ
ｗａｓ　ｆｕｒｔｈｅｒ　ｐｕｒｉｆｉｅｄ　ｔｏ　ｉｓｏｌａｔｅ　ｔｈｅ　ａｃｔｉｖｅ　ｆｒａｃｔｉｏｎ．
１．２　Ｐｕｒｉｆｉｃａｔｉｏｎ　ｏｆ　ａｃｔｉｖｅ　ｃｏｍｐｏｎｅｎｔ　ｆｒｏｍ　ｔｈｅ
ｃｈｌｏｒｏｆｏｒｍ　ｅｘｔｒａｃｔ　Ｃｈｌｏｒｏｆｏｒｍ　ｅｘｔｒａｃｔ（２５　ｍｇ／ｍＬ）
ｗａｓ　ｓｕｂｊｅｃｔｅｄ　ｔｏ　ｐｕｒｉｆｉｃａｔｉｏｎ　ｕｓｉｎｇ　ｓｉｌｉｃａ　ｇｅｌ（６０ｔｏ
１２０　ｍｅｓｈ）ｃｏｌｕｍｎ　ｃｈｒｏｍａｔｏｇｒａｐｈｙ　ｗｉｔｈ　１００％
ｃｈｌｏｒｏｆｏｒｍ　ｓｏｌｖｅｎｔ　ｓｙｓｔｅｍ．Ｔｈｒｅｅ　ｆｒａｃｔｉｏｎｓ　ｗｅｒｅ
ｅｌｕｔｅｄ　ａｎｄ　ｏｕｔ　ｏｆ　ｔｈｅｍ　ｏｎｌｙ　ｏｎｅ　ｆｒａｃｔｉｏｎ（ｆｒａｃｔｉｏｎ
２）ｓｈｏｗｅｄ　ａｎｔｉｈｙｐｅｒｇｌｙｃｅｍｉｃ　ａｃｔｉｖｉｔｙ．Ｔｈｅ　ｔｈｉｎ
ｌａｙｅｒ　ｃｈｒｏｍａｔｏｇｒａｐｈｙ（ＴＬＣ）ｏｆ　ａｃｔｉｖｅ　ｆｒａｃｔｉｏｎ　２
（５．８　ｍｇ）ｓｈｏｗｅｄ　ｍｉｘｔｕｒｅ　ｏｆ　ｔｈｒｅｅ　ｃｏｍｐｏｎｅｎｔｓ
ｕｎｄｅｒ　ｕｌｔｒａｖｉｏｌｅｔ　ｌｉｇｈｔ．Ｔｈｅｒｅｆｏｒｅ，ｆｒａｃｔｉｏｎ　２　ｗａｓ
ｆｕｒｔｈｅｒ　ｐｕｒｉｆｉｅｄ　ｂｙ　ｓｅｍｉｐｒｅｐａｒａｔｉｖｅ　ｈｉｇｈ－ｐｅｒｆｏｒｍａｎｃｅ
ｌｉｑｕｉｄ　ｃｈｒｏｍａｔｏｇｒａｐｈｙ（ＨＰＬＣ，Ｗａｔｅｒｓ，ＵＳＡ）ｓｙｓｔｅｍ
ｕｓｉｎｇ　Ｃ１８ｃｏｌｕｍｎ（２５　ｃｍ×１０　ｍｍ；５μｍ　ｐａｒｔｉｃｌｅ
ｓｉｚｅ）ｃｈｒｏｍａｔｏｇｒａｐｈｙ．Ｔｈｅ　ｉｎｊｅｃｔｉｏｎ　ｖｏｌｕｍｅ　ｗａｓ
５０μＬ　ａｎｄ　ｅｌｕｔｉｏｎ　ｗａｓ　ｃａｒｒｉｅｄ　ｏｕｔ　ｗｉｔｈ　ａ　ｆｌｏｗ　ｒａｔｅ
ｏｆ　０．６　ｍＬ／ｍｉｎ　ｕｓｉｎｇ　ｔｈｅ　ａｃｅｔｏｎｉｔｒｉｌｅ－ｗａｔｅｒ（８０∶２０
ｖｏｌｕｍｅ　ｒａｔｉｏ）ｓｏｌｖｅｎｔ　ｓｙｓｔｅｍ．Ｔｈｅ　ｄｅｔｅｃｔｉｏｎ　ｗａｓ
ｓｅｔ　ａｔ　２５４　ｎｍ　ａｎｄ　ｔｈｅ　ｆｒａｃｔｉｏｎｓ　ｗｅｒｅ　ｃｏｌｅｃｔｅｄ　ｆｏｒ
ｆｕｒｔｈｅｒ　ａｎａｌｙｓｉｓ．Ｔｈｅ　ａｃｔｉｖｅ　ｆｒａｃｔｉｏｎ（ＳＣ２，１．２　ｍｇ）
ｗａｓ　ｏｂｔａｉｎｅｄ　ａｎｄ　ｒｅｃｈｒｏｍａｔｏｇｒａｐｈｅｄ　ｏｎ　ｔｈｅ　ＨＰＬＣ
ｓｙｓｔｅｍ　ｕｓｉｎｇ　ｔｈｅ　Ｃ１８ｃｏｌｕｍｎ　ｔｏ　ｃｈｅｃｋ　ｔｈｅ　ｐｕｒｉｔｙ．
Ｔｈｅ　ｍａｓｓ　ｏｆ　ｔｈｅ　ｆｒａｃｔｉｏｎ　ｗａｓ　ｄｅｔｅｒｍｉｎｅｄ　ｂｙ　ｌｉｑｕｉｄ
ｃｈｒｏｍａｔｏｇｒａｐｈｙ－ｍａｓｓ　ｓｐｅｃｔｒｏｍｅｔｒｙ（ＬＣ－ＭＳ，Ｗａｔｅｒｓ，
ＵＳＡ）．
１．３　Ｏｒａｌ　ａｄｍｉｎｉｓｔｒａｔｉｏｎ　ｏｆ　ａｃｔｉｖｅ　ｆｒａｃｔｉｏｎ　ｔｏ　ｔｈｅ
ＳＴＺ－ｉｎｄｕｃｅｄ　ｄｉａｂｅｔｉｃ　ｍｉｃｅ　Ｍａｌｅ　Ｓｗｉｓｓ　ｍｉｃｅ（６　ｔｏ
８　ｗｅｅｋｓ）ｗｅｒｅ　ｄｅｒｉｖｅｄ　ｆｒｏｍ　ａ　ｃｏｌｏｎｙ　ｍａｉｎｔａｉｎｅｄ
ａｔ　ｔｈｅ　Ｄｅｐａｒｔｍｅｎｔ　ｏｆ　Ｚｏｏｌｏｇｙ，Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｙ　ｏｆ
Ｐｕｎｅ，Ｉｎｄｉａ．Ｔｈｅ　ｍｉｃｅ　ｗｅｒｅ　ｉｎ　ａｎ　ａｉｒ－ｃｏｎｄｉｔｉｏｎｅｄ
ｒｏｏｍ　ａｔ　２２℃ ｗｉｔｈ　ａ　ｌｉｇｈｔ／ｄａｒｋ　ｃｙｃｌｅ　ｏｆ　１２　ｈ　ａｎｄ
ｗｅｒｅ　ｆｅｄ　ｏｎ　ａ　ｓｔａｎｄａｒｄ　ｐｅｌｅｔｅｄ　ｄｉｅｔ　ａｄｌｉｂｉｔｕｍ．
Ｍｉｃｅ　ｗｅｒｅ　ｄｉｖｉｄｅｄ　ｉｎｔｏ　ｔｈｒｅｅ　ｇｒｏｕｐｓ（ｓｉｘ　ｍｉｃｅ　ｐｅｒ
ｇｒｏｕｐ），ｎａｍｅｌｙ，ｎｏｒｍａｌ　ｃｏｎｔｒｏｌ，ｄｉａｂｅｔｉｃ　ｃｏｎｔｒｏｌ
ａｎｄ　ｔｒｅａｔｍｅｎｔ　ｇｒｏｕｐｓ，ｒｅｓｐｅｃｔｉｖｅｌｙ．Ｔｈｅ　ｄｉａｂｅｔｉｃ
ｃｏｎｔｒｏｌ　ａｎｄ　ｔｒｅａｔｍｅｎｔ　ｇｒｏｕｐ　ｍｉｃｅ　ｗｅｒｅ　ｒｅｎｄｅｒｅｄ
ｄｉａｂｅｔｅｓ　ｕｓｉｎｇ　ａ　ｓｉｎｇｌｅ　ｉｎｔｒａｐｅｒｉｔｏｎｉａｌ　ｉｎｊｅｃｔｉｏｎ　ｏｆ
ＳＴＺ（Ｓｉｇｍａ　Ｃｈｅｍｉｃａｌ　Ｃｏ，ＵＳＡ）（１２０　ｍｇ／ｋｇ）ｉｎ
ｃｉｔｒａｔｅ　ｂｕｆｆｅｒ（ｐＨ４．５）．Ｓ．ｃｕｍｉｎｉ　ａｃｔｉｖｅ　ｆｒａｃｔｉｏｎ
ＳＣ２（２　ｇ／Ｌ，８　ｍｇ／ｋｇ）ｗａｓ　ｓｕｓｐｅｎｄｅｄ　ｉｎ　ｄｉｓｔｉｌｅｄ
ｗａｔｅｒ　ｗｉｔｈ　０．５％ ｄｉｍｅｔｈｙｌ　ｓｕｌｆｏｘｉｄｅ　ａｎｄ
ａｄｍｉｎｉｓｔｅｒｅｄ　ｏｒａｌｙ　ｉｎ　ｇｒｏｕｐ　ｏｆ　ｓｉｘ　ｍｉｃｅ　ｆｏｒ　２１　ｄ．
Ｔｈｅ　ｒｅｍａｉｎｉｎｇ　ｅｘｐｅｒｉｍｅｎｔａｌ　ｐｒｏｃｅｄｕｒｅ　ｆｏｒ　ｉｎｖｉｖｏ
ｓｔｕｄｉｅｓ　ｗａｓ　ｓｉｍｉｌａｒ　ｔｏ　ｗｈａｔ　ｗａｓ　ｐｒｅｖｉｏｕｓｌｙ　ｄｅｓｃｒｉｂｅｄ
［３０］．
Ｂｌｏｏｄ　ｇｌｕｃｏｓｅ　ｌｅｖｅｌ　ａｎｄ　ｂｏｄｙ　ｗｅｉｇｈｔ　ｍｅａｓｕｒｅ－
ｍｅｎｔｓ　ｗｅｒｅ　ｃｏｎｄｕｃｔｅｄ　ｒｅｇｕｌａｒｌｙ　ｄｕｒｉｎｇ　ｔｈｅ　２１　ｄ．
Ａｌ　ｔｈｅ　ｐｒｏｃｅｄｕｒｅ　ｗａｓ　ｃａｒｒｉｅｄ　ｏｕｔ　ｕｎｄｅｒ　ｔｈｅ　ｇｕｉｄｅ－
ｌｉｎｅｓ　ｏｆ　ｔｈｅ　Ａｎｉｍａｌ　Ｅｔｈｉｃａｌ　Ｃｏｍｍｉｔｔｅｅ　ｏｆ　ｔｈｅ
Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｙ　ｏｆ　Ｐｕｎｅ，Ｉｎｄｉａ．Ｔｈｅ　ｔｏｘｉｃｉｔｙ　ａｎａｌｙｓｉｓ
ｏｆ　ＳＣ２　ｆｒａｃｔｉｏｎ　ｏｎ　ｂｒｉｎｅ　ｓｈｒｉｍｐ（Ａｒｔｅｍｉａ　ｓａｌｉｎａ）
ｄｅｖｅｌｏｐｅｄ　ｂｙ　Ｍｉｃｈａｅｌ　ｅｔ　ａｌ
［３１］ｗａｓ　ｐｅｒｆｏｒｍｅｄ　ａｓ
ｄｅｓｃｒｉｂｅｄ　ｅａｒｌｉｅｒ．
１．４　Ｏｒａｌ　ｇｌｕｃｏｓｅ　ｔｏｌｅｒａｎｃｅ　ｔｅｓｔ　Ｏｎ　ｔｈｅ　２０ｔｈ　ｄａｙ
ｏｆ　ｔｈｅ　ｅｘｐｅｒｉｍｅｎｔ，ｏｒａｌ　ｇｌｕｃｏｓｅ　ｔｏｌｅｒａｎｃｅ　ｔｅｓｔ　ｗａｓ
ｐｅｒｆｏｒｍｅｄ　ｏｎ　ｏｖｅｒｎｉｇｈｔ　ｆａｓｔｅｄ　ｍｉｃｅ．Ｇｌｕｃｏｓｅ（２　ｇ／ｋｇ
ｂｏｄｙ　ｗｅｉｇｈｔ）ｗａｓ　ａｄｍｉｎｉｓｔｅｒｅｄ　ａｎｄ　ｔｈｅ　ｂｌｏｏｄ　ｗａｓ
ｃｏｌｅｃｔｅｄ　ｕｓｉｎｇ　ｔａｉｌ　ｐｒｉｃｋ　ｍｅｔｈｏｄ．Ｔｈｅ　ｒｅｄｕｃｔｉｏｎ
ｉｎ　ｇｌｕｃｏｓｅ　ｌｅｖｅｌｓ　ｗａｓ　ｍｏｎｉｔｏｒｅｄ　ａｔ　０，３０，６０，９０
ａｎｄ　１２０　ｍｉｎ　ａｆｔｅｒ　ｇｌｕｃｏｓｅ　ａｄｍｉｎｉｓｔｒａｔｉｏｎ　ｕｓｉｎｇ　ａｎ
ＡｃｃｕＣｈｅｃｋ　Ａｃｔｉｖｅ　Ｇｌｕｃｏｍｅｔｅｒ［３０］．
１．５　Ｂｉｏｃｈｅｍｉｃａｌ　ａｎａｌｙｓｉｓ　Ｅｘｐｅｒｉｍｅｎｔａｌ　ｍｉｃｅ
ｗｅｒｅ　ｓａｃｒｉｆｉｃｅｄ　ｂｙ　ｃｅｒｖｉｃａｌ　ｄｉｓｌｏｃａｔｉｏｎ　ａｔ　ｔｈｅ　ｅｎｄ
ｏｆ　ｔｈｅ　ｔｒｅａｔｍｅｎｔ　ａｎｄ　ｔｉｓｓｕｅｓ（ｐａｎｃｒｅａｓ，ｌｉｖｅｒｓ　ａｎｄ
ｓｋｅｌｅｔａｌ　ｍｕｓｃｌｅｓ）ｗｅｒｅ　ｕｔｉｌｉｚｅｄ　ｔｏ　ｃｈｅｃｋ　ｔｈｅ　ｏｖｅｒａｌ
ｇｌｕｃｏｓｅ　ｈｏｍｅｏｓｔａｓｉｓ．Ｌｉｖｅｒ　ｇｌｕｃｏｓｅ－６－ｐｈｏｓｐｈａｔｅ－
ｄｅｈｙｄｒｏｇｅｎａｓｅ（Ｇ６ＰＤ）ａｃｔｉｖｉｔｙ　ｗａｓ　ｅｓｔｉｍａｔｅｄ　ｂｙ
Ｌａｎｇｄｏｎ’ｓ　ｍｅｔｈｏｄ［３２］．Ｃｏｎｔｅｎｔｓ　ｏｆ　ｈｅｐａｔｉｃ　ａｎｄ
ｍｕｓｃｌｅ　ｇｌｙｃｏｇｅｎｓ　ｗｅｒｅ　ｅｓｔｉｍａｔｅｄ　ａｃｃｏｒｄｉｎｇ　ｔｏ　ｔｈｅ
ｍｅｔｈｏｄ　ｄｅｖｅｌｏｐｅｄ　ｂｙ　Ｓａｄａｓｉｖａｍ　ａｎｄ　Ｍａｎｉｃｋａｍ
［３３］．
Ｔｈｅ　ｌｅｖｅｌｓ　ｏｆ　ｐｌａｓｍａ　ｉｎｓｕｌｉｎ （Ｍｅｒｃｏｄｉａ，Ｓｗｅｄｅｎ）
ａｎｄ　ｐｌａｓｍａ　Ｃ－ｐｅｐｔｉｄｅ（Ｙａｎａｉｈａｒａ　Ｉｎｓｔｉｔｕｔｅ，Ｊａｐａｎ）
ｗｅｒｅ　ｍｅａｓｕｒｅｄ　ｕｓｉｎｇ　ｅｎｚｙｍｅ－ｌｉｎｋｅｄ　ｉｍｍｕｎｏｓｏｒｂｅｎｔ
ａｓｓａｙ（ＥＬＩＳＡ）ｋｉｔｓ．
１．６　Ｈｉｓｔｏｌｏｇｉｃａｌ　ａｎｄ　ｉｍｍｕｎｏｈｉｓｔｏｃｈｅｍｉｃａｌ　ｓｔａｉｎｉｎｇｓ
　Ｔｈｅ　ａｎｉｍａｌｓ　ｗｅｒｅ　ｓａｃｒｉｆｉｃｅｄ　ｏｎ　ｔｈｅ　２１ｓｔ　ｄａｙ　ｏｆ
ｔｒｅａｔｍｅｎｔ　ａｎｄ　ｔｈｅ　ｐａｎｃｒｅａｓ　ｗａｓ　ｅｘｃｉｓｅｄ　ａｎｄ　ｆｉｘｅｄ
ｉｎ　４％ｆｏｒｍａｌｄｅｈｙｄｅ．Ｔｈｅ　ｍｕｌｔｉｐｌｅ　ｐａｒａｌｅｌ　ｓｅｃｔｉｏｎｓ
（６μｍ）ｏｆ　ｔｈｅ　ｐａｎｃｒｅａｓ　ｆｒｏｍ　ｅｘｐｅｒｉｍｅｎｔａｌ　ｍｉｃｅ
ｗｅｒｅ　ｔａｋｅｎ　ｏｎ　ｒｏｔａｒｙ　ｍｉｃｒｏｔｏｍｅ（Ｔｈｅｒｍｏ　Ｅｌｅｃｔｒｏｎ
Ｃｏｒｐｏｒａｔｉｏｎ，Ｇｅｒｍａｎｙ）．Ｔｈｅ　ｓｅｃｔｉｏｎｓ　ｗｅｒｅ　ｓｔａｉｎｅｄ
ｗｉｔｈ　ｈｅｍａｔｏｘｙｌｉｎ　ａｎｄ　ｅｏｓｉｎ（ＨＥ）ｆｏｒ　ｈｉｓｔｏｌｏｇｉｃａｌ
ａｎａｌｙｓｉｓ．Ｉｍｍｕｎｏｈｉｓｔｏｃｈｅｍｉｃａｌ　ａｎａｌｙｓｉｓ　ｗａｓ　ｐｅｒｆｏｒｍｅｄ
ｕｓｉｎｇ　ｆｌｕｏｒｅｓｃｅｉｎ　ｉｓｏｔｈｉｏｃｙａｎａｔｅ （ＦＩＴＣ）－ｌａｂｅｌｅｄ
ｍｕｒｉｎｅ　ａｎｔｉ－ｉｎｓｕｌｉｎ　ａｎｔｉｂｏｄｙ　ｆｏｌｏｗｅｄ　ｂｙ　ｉｍａｇｅ
ａｎａｌｙｓｉｓ　ｕｓｉｎｇ　ａ　ｆｌｕｏｒｅｓｃｅｎｔ　ｍｉｃｒｏｓｃｏｐｅ（Ｎｉｋｏｎ，
Ｊａｐａｎ）．
１．７　Ｉｎ　ｖｉｔｒｏ　ｉｓｌｅｔ　ｄｉｆｆｅｒｅｎｔｉａｔｉｏｎ　Ｈｕｍａｎ　ｐａｎｃｒｅ－
ａｔｉｃ　ｃａｒｃｉｎｏｍａ　ｅｐｉｔｈｅｌｉａｌ－ｌｉｋｅ　ｃｅｌ　ｌｉｎｅ（ＰＡＮＣ－１）
（Ａｍｅｒｉｃａｎ　ｔｙｐｅ　ｃｕｌｔｕｒｅ　ｃｏｌｅｃｔｉｏｎ　Ｎｏ．ＣＲＬ４６９）
ｐｒｏｃｕｒｅｄ　ｆｒｏｍ　ｔｈｅ　Ｎａｔｉｏｎａｌ　Ｃｅｎｔｒｅ　ｆｏｒ　Ｃｅｌ
Ｓｃｉｅｎｃｅｓ，Ｐｕｎｅ，Ｉｎｄｉａ　ｗａｓ　ｕｓｅｄ　ｔｏ　ｃｈｅｃｋ　ｔｈｅ
ｆｏｒｍａｔｉｏｎ　ｏｆ　ｎｅｏ－ｉｓｌｅｔ　ａｎｄ　ｉｎｓｕｌｉｎ－ｓｅｃｒｅｔｏｒｙ　ａｃｔｉｖｉｔｙ
ｆｏｒ　ｔｈｅ　ｉｎ　ｖｉｔｒｏ　ｅｘｐｅｒｉｍｅｎｔ．ＰＡＮＣ－１　ｃｅｌｓ　ｗｅｒｅ
ｃｕｌｔｕｒｅｄ　ｉｎ　２４－ｗｅｌ　ｐｌａｔｅｓ　ａｔ　ｔｈｅ　ｄｅｎｓｉｔｙ　ｏｆ
１０５　ｃｅｌｓ／ｗｅｌ　ｗｉｔｈ　Ｄｕｌｂｅｃｃｏ’ｓ　ｍｉｎｉｍａｌ　ｅｓｓｅｎｔｉａｌ
ｍｅｄｉｕｍ （ＤＭＥＭ）ｃｏｎｔａｉｎｉｎｇ　１０％ ｆｅｔａｌ　ｂｏｖｉｎｅ
ｓｅｒｕｍ　ａｎｄ　０．１％ａｎｔｉｂｉｏｔｉｃ　ｓｏｌｕｔｉｏｎ　ａｔ　３７℃ａｎｄ
５％ ＣＯ２．Ａｆｔｅｒ　ａｄｈｅｒｅｎｃｅ，ｃｅｌｓ　ｗｅｒｅ　ｃｕｌｔｕｒｅｄ　ｉｎ
ｓｅｒｕｍ－ｆｒｅｅ　ｃｕｌｔｕｒｅ　ｍｅｄｉｕｍ　ｃｏｎｔａｉｎｉｎｇ　Ｋｒｅｂｓ－Ｒｉｎｇｅｒ
ｂｉｃａｒｂｏｎａｔｅ　ｂｕｆｆｅｒ（ＫＲＢＢ）（ｃｏｎｔａｉｎｉｎｇ　Ｄ－ｇｌｕｃｏｓｅ
１．８　ｇ／Ｌ，ｍａｇｎｅｓｉｕｍ　ｃｈｌｏｒｉｄｅ０．０４６　８　ｇ／Ｌ，ｐｏｔａｓｓｉｕｍ
ｃｈｌｏｒｉｄｅ　０．３４　ｇ／Ｌ，ｓｏｄｉｕｍ　ｃｈｌｏｒｉｄｅ　７．０ｇ／Ｌ，
ｓｏｄｉｕｍ　ｐｈｏｓｐｈａｔｅ　ｄｉｂａｓｉｃ　０．１　ｇ／Ｌ　ａｎｄ　ｓｏｄｉｕｍ
ｐｈｏｓｐｈａｔｅ　０．１８　ｇ／Ｌ）．Ｔｈｅ　ｅｘｐｅｒｉｍｅｎｔａｌ　ｗｅｌｓ
ｗｅｒｅ　ｓｕｐｐｌｅｍｅｎｔｅｄ　ｗｉｔｈ　ＫＲＢＢ　ａｌｏｎｇ　ｗｉｔｈ　ｄｉｆｆｅｒｅｎｔ
ｃｏｎｃｅｎｔｒａｔｉｏｎｓ（１，２　ａｎｄ　４μｇ）ｏｆ　ＳＣ２　ａｃｔｉｖｅ
ｆｒａｃｔｉｏｎ．Ｔｈｅ　ｃｏｎｔｒｏｌ　ｗｅｌｓ　ｗｅｒｅ　ｓｕｐｐｌｅｍｅｎｔｅｄ
ｗｉｔｈ　ＫＲＢＢ．Ｔｈｅ　ｃｅｌｓ　ｗｅｒｅ　ｏｂｓｅｒｖｅｄ　ｒｅｇｕｌａｒｌｙ
ａｎｄ　ｔｈｅ　ｍｅｄｉｕｍ　ｗａｓ　ｃｈａｎｇｅｄ　ｅｖｅｒｙ　ａｌｔｅｒｎａｔｅ　ｄａｙ
ｔｉｌ　ｔｈｅ　８ｔｈ　ｄａｙ．Ｏｎ　ｔｈｅ　８ｔｈ　ｄａｙ　ｔｈｅ　ｃｅｌｓ　ｗｅｒｅ
ｗａｓｈｅｄ　ｗｉｔｈ　ＫＲＢＢ．Ｔｈｅ　ｃｅｌ　ｄｉｆｆｅｒｅｎｔｉａｔｉｏｎ　ｗａｓ
ｏｂｓｅｒｖｅｄ　ｏｎ　ｔｈｅ　８ｔｈ　ｄａｙ　ｆｏｒ　ｉｓｌｅｔ－ｌｉｋｅ　ｃｅｌｕｌａｒ
ａｇｇｒｅｇａｔｅｓ（ＩＣＡｓ）ｕｎｄｅｒ　ａｎ　ｉｎｖｅｒｔｅｄ　ｍｉｃｒｏｓｃｏｐｅ．
Ｔｏ　ｅｖａｌｕａｔｅ　ｔｈｅ　ｔｏｔａｌ　ｎｕｍｂｅｒ　ａｎｄ　ａｓｓｅｓｓ　ｔｈｅ　ｓｐｅｃｉ－
ｆｉｃｉｔｙ　ｏｆ　ｔｈｅ　ｎｅｗｌｙ　ｇｅｎｅｒａｔｅｄ　ｉｓｌｅｔｓ，ｔｈｅｓｅ　ＩＣＡｓ
·２８３１· 中西医结合学报２０１１年１２月第９卷第１２期　Ｊｏｕｒｎａｌ　ｏｆ　Ｃｈｉｎｅｓｅ　Ｉｎｔｅｇｒａｔｉｖｅ　Ｍｅｄｉｃｉｎｅ，Ｄｅｃｅｍｂｅｒ　２０１１，Ｖｏｌ．９，Ｎｏ．１２
ｗｅｒｅ　ｗａｓｈｅｄ　ｗｉｔｈ　Ｈａｎｋ’ｓ　ｂａｌａｎｃｅｄ　ｓａｌｔ　ｓｏｌｕｔｉｏｎ
（ＨＢＳＳ）ａｎｄ　ｓｔａｉｎｅｄ　ｗｉｔｈ　ｉｎｓｕｌｉｎ－ｓｐｅｃｉｆｉｃ　ｄｙｅ
ｄｉｔｈｉｏｚｏｎｅ（ＤＴＺ）（Ｓｉｇｍａ，Ｓｔ．Ｌｏｕｉｓ，ＵＳＡ），ａｎｄ
ｖｉｓｕａｌｉｚｅｄ　ｕｎｄｅｒ　ａｎ　ｉｎｖｅｒｔｅｄ　ｍｉｃｒｏｓｃｏｐｅ（Ｏｌｙｍｐｕｓ，
Ｔｏｋｙｏ，Ｊａｐａｎ）［１８］．
１．８　Ｉｍｍｕｎｏｃｈａｒａｃｔｅｒｉｚａｔｉｏｎ　ｏｆ　ｆｕｎｃｔｉｏｎａｌ　ｃｅｌｕｌａｒ
ａｇｇｒｅｇａｔｅｓ　Ｉｎ　ｏｒｄｅｒ　ｔｏ　ｃｈｅｃｋ　ｔｈｅ　ｆｕｎｃｔｉｏｎａｌｉｔｙ　ｏｆ
ｔｈｅ　ｉｓｌｅｔｓ　ｔｏ　ｐｒｏｄｕｃｅ　ｉｎｓｕｌｉｎ　ｗｉｔｈ　ＳＣ２，ｔｈｅ　ＩＣＡｓ
ｗｅｒｅ　ｆｉｘｅｄ　ｗｉｔｈ　４％ ｐａｒａｆｏｒｍａｄｅｈｙｄｅ　ｓｏｌｕｔｉｏｎ．
Ｔｈｅ　ｆｉｘｅｄ　ｃｅｌｓ　ｗｅｒｅ　ｉｎｃｕｂａｔｅｄ　ｉｎ　ｂｌｏｃｋｉｎｇ　ｓｏｌｕ－
ｔｉｏｎ （１％ ｂｏｖｉｎｅ　ｓｅｒｕｍ　ａｌｂｕｍｉｎ　ａｎｄ　１％ ｐｈｏｓ－
ｐｈａｔｅ　ｂｕｆｆｅｒ　ｓａｌｉｎｅ）ｆｏｒ　１　ｈ．Ａｆｔｅｒ　ｉｎｃｕｂａｔｉｏｎ，
ＩＣＡｓ　ｗｅｒｅ　ｓｔａｉｎｅｄ　ｗｉｔｈ　ｍｕｒｉｎｅ　ａｎｔｉ－ｉｎｓｕｌｉｎ　ａｎｔｉ－
ｂｏｄｙ（ｄｉｌｕｔｉｏｎ　１∶１　０００）ｏｖｅｒｎｉｇｈｔ　ａｔ　４℃．Ｔｈｅ
ＩＣＡｓ　ｗｅｒｅ　ｔｈｅｎ　ｗａｓｈｅｄ　ｗｉｔｈ　ｗａｓｈｉｎｇ　ｂｕｆｆｅｒ　ａｎｄ
ｆｕｒｔｈｅｒ　ｉｎｃｕｂａｔｅｄ　ｗｉｔｈ　ＦＩＴＣ－ｌａｂｅｌｅｄ　ｓｅｃｏｎｄａｒｙ
ａｎｔｉｂｏｄｙ（ｄｉｌｕｔｉｏｎ　１∶５００）ｆｏｒ　１　ｈ　ａｔ　ｒｏｏｍ　ｔｅｍ－
ｐｅｒａｔｕｒｅ．Ｔｈｅ　ＩＣＡｓ　ｗｅｒｅ　ｏｂｓｅｒｖｅｄ　ｆｏｒ　ｉｎｓｕｌｉｎ－
ｐｏｓｉｔｉｖｅ，ｆｕｎｃｔｉｏｎａｌ　ｉｓｌｅｔｓ　ｕｎｄｅｒ　ａ　ｆｌｏｒｅｓｃｅｎｔ
ｍｉｃｒｏｓｃｏｐｅ（Ｎｉｋｏｎ，Ｊａｐａｎ）．
１．９　Ｓｔａｔｉｓｔｉｃａｌ　ａｎａｌｙｓｉｓ　Ｒｅｓｕｌｔｓ　ｗｅｒｅ　ｅｘｐｒｅｓｓｅｄ
ａｓ　ｍｅａｎ±ｓｔａｎｄａｒｄ　ｄｅｖｉａｔｉｏｎ．Ｓｔａｔｉｓｔｉｃａｌ　ａｎａｌｙｓｉｓ
ｗａｓ　ｃａｒｒｉｅｄ　ｏｕｔ　ｕｓｉｎｇ　ｏｎｅ－ｗａｙ　ａｎａｌｙｓｉｓ　ｏｆ　ｖａｒｉａｎｃｅ
ｆｏｌｏｗｅｄ　ｂｙ　Ｄｕｎｎｅｔｔ　ｔ　ｔｅｓｔ．Ｐ　ｖａｌｕｅ　ｌｅｓｓ　ｔｈａｎ　０．０５
ｗａｓ　ｃｏｎｓｉｄｅｒｅｄ　ｔｏ　ｂｅ　ｓｔａｔｉｓｔｉｃａｌｙ　ｓｉｇｎｉｆｉｃａｎｔ．
２　Ｒｅｓｕｌｔｓ
２．１　ＨＰＬＣ　ａｎａｌｙｓｉｓ　ｏｆ　ａｃｔｉｖｅ　ｆｒａｃｔｉｏｎ　ＳＣ２　Ｓ．ｃｕｍｉｎｉ
ｃｈｌｏｒｏｆｏｒｍ　ｅｘｔｒａｃｔ　ｓｈｏｗｉｎｇ　ｓｉｇｎｉｆｉｃａｎｔ　ａｎｔｉｈｙｐｅｒ－
ｇｌｙｃｅｍｉｃ　ａｃｔｉｖｉｔｙ　ｗａｓ　ｓｕｂｊｅｃｔｅｄ　ｔｏ　ｐｕｒｉｆｉｃａｔｉｏｎ．
Ｃｒｕｄｅ　ｅｘｔｒａｃｔ（２５　ｍｇ／ｍＬ）ｗａｓ　ｆｉｒｓｔ　ｆｒａｃｔｉｏｎａｔｅｄ
ｗｉｔｈ　ｓｉｌｉｃａ　ｇｅｌ（６０　ｔｏ　１２０　ｍｅｓｈ）ｃｏｌｕｍｎ　ｃｈｒｏｍａ－
ｔｏｇｒａｐｈｙ　ｕｓｉｎｇ　１００％ｃｈｌｏｒｏｆｏｒｍ．Ｆｏｒｔｙ　ｆｒａｃｔｉｏｎｓ
ｗｅｒｅ　ｃｏｌｅｃｔｅｄ　ａｎｄ　ａｎａｌｙｚｅｄ　ｏｎ　ＴＬＣ．Ｔｈｅ　ｆｒａｃ－
ｔｉｏｎｓ　ｓｈｏｗｉｎｇ　ｓｉｍｉｌａｒ　ｐｒｏｆｉｌｅ　ｏｎ　ＴＬＣ　ｗｅｒｅ　ｐｏｏｌｅｄ
ｙｉｅｌｄｉｎｇ　ｔｈｒｅｅ　ｍａｊｏｒ　ｆｒａｃｔｉｏｎｓ．Ｔｈｅ　ｆｒａｃｔｉｏｎ　２
（５．８　ｍｇ）ｅｘｈｉｂｉｔｉｎｇ　ｓｉｇｎｉｆｉｃａｎｔ　ａｎｔｉｄｉａｂｅｔｉｃ　ａｃｔｉｖｉｔｙ
ｉｎ　ｖｉｖｏ　ｗａｓ　ｆｕｒｔｈｅｒ　ｐｕｒｉｆｉｅｄ　ｂｙ　ｓｅｍｉｐｒｅｐａｒａｔｉｖｅ
ＨＰＬＣ　ｓｙｓｔｅｍ　ｕｓｉｎｇ　Ｃ１８ ｃｏｌｕｍｎ　ａｎｄ　ｄｅｎｏｔｅｄ　ａｓ
ＳＣ２ （１．２　ｍｇ）．Ｔｈｅ　ｐｕｒｉｆｉｅｄ　ｆｒａｃｔｉｏｎ　ｗａｓ　ｒｅ－
ｃｈｒｏｍａｔｏｇｒａｐｈｅｄ　ｏｎ　ＨＰＬＣ　ｔｏ　ｃｈｅｃｋ　ｔｈｅ　ｐｕｒｉｔｙ　ｏｆ
ｔｈｅ　ｆｒａｃｔｉｏｎ．Ｆｉｇｕｒｅ　１　ｓｈｏｗｓ　ｔｈｅ　ｓｉｎｇｌｅ　ｐｅａｋ　ｏｂｔａｉｎｅｄ
ａｆｔｅｒ　ｐｕｒｉｆｉｃａｔｉｏｎ　ｉｎｄｉｃａｔｉｎｇ　ｔｈｅ　ｐｕｒｉｔｙ　ｏｆ　ｔｈｅ　ｆｒａｃ－
ｔｉｏｎ．Ｔｈｅ　ｍａｓｓ　ｏｆ　ａｃｔｉｖｅ　ｆｒａｃｔｉｏｎ　ＳＣ２　ｗａｓ　ｅｓｔｉ－
ｍａｔｅｄ　ｔｏ　ｂｅ　３３６．５　ｍ／ｚ．
２．２　Ｔｏｘｉｃｉｔｙ　ａｎａｌｙｓｉｓ　Ｔｈｅ　ｌｅｔｈａｌ　ｃｏｎｃｅｎｔｒａｔｉｏｎ
（ＬＣ５０）ｖａｌｕｅ　ｏｂｔａｉｎｅｄ　ａｆｔｅｒ　ｂｒｉｎｅ　ｓｈｒｉｍｐ　ｔｏｘｉｃｉｔｙ
ａｎａｌｙｓｉｓ　ｏｆ　ＳＣ２　ｆｒａｃｔｉｏｎ　ｗａｓ　１２．３３　ｍｇ／ｍＬ．Ｔｈｅ
ｔｏｔａｌ　ｄｏｓａｇｅ　ｏｆ　２．１　ｍｇ　ｏｆ　ＳＣ２　ｆｒａｃｔｉｏｎ　ｗａｓ　ａｄｍｉｎ－
ｉｓｔｅｒｅｄ　ｔｏ　ｍｉｃｅ　ｗｉｔｈｉｎ　２１　ｄ　ｗｈｉｃｈ　ｉｓ　ｖｅｒｙ　ｍｉｎｉｍａｌ
ｔｏ　ｓｈｏｗ　ａｎｙ　ｔｏｘｉｃｉｔｙ．
２．３　Ｏｒａｌ　ｇｌｕｃｏｓｅ　ｔｏｌｅｒａｎｃｅ　ａｎｄ　ａｎｔｉｈｙｐｅｒｇｌｙｃｅｍｉｃ
ａｃｔｉｖｉｔｙ　ｏｆ　ＳＣ２　Ｓｕｐｐｌｅｍｅｎｔａｔｉｏｎ　ｏｆ　ＳＣ２ｉｍｐｒｏｖｅｄ
ｔｈｅ　ｏｒａｌ　ｇｌｕｃｏｓｅ　ｔｏｌｅｒａｎｃｅ　ｉｎ　ｔｈｅ　ＳＴＺ－ｉｎｄｕｃｅｄ
ｄｉａｂｅｔｉｃ　ｍｉｃｅ　ａｆｔｅｒ　２０　ｄ　ｏｆ　ｔｒｅａｔｍｅｎｔ．Ｔｈｅ　ｆａｓｔｉｎｇ
ｂｌｏｏｄ　ｇｌｕｃｏｓｅ　ｌｅｖｅｌｓ　ｏｆ　ｄｉａｂｅｔｉｃ　ｃｏｎｔｒｏｌ　ｍｉｃｅ　ｗｅｒｅ
ｓｉｇｎｉｆｉｃａｎｔｌｙ　ｈｉｇｈｅｒ　ｔｈａｎ　ｔｈｏｓｅ　ｏｆ　ｔｈｅ　ｎｏｒｍａｌ
ｃｏｎｔｒｏｌ　ｍｉｃｅ（Ｐ＜０．０１）．ＳＣ２－ｔｒｅａｔｅｄ　ｍｉｃｅ　ｓｈｏｗｅｄ
ｒｅｄｕｃｅｄ　ｆａｓｔｉｎｇ　ｇｌｕｃｏｓｅ　ｌｅｖｅｌ，ａｃｑｕｉｒｉｎｇ　ｇｏｏｄ　ｇｌｙｃｅｍｉｃ
ｃｏｎｔｒｏｌ　ｗｈｉｃｈ　ｒｅｖｅａｌｓ　ｉｔｓ　ａｎｔｉｈｙｐｅｒｇｌｙｃｅｍｉｃ　ａｃｔｉｖｉｔｙ
（Ｔａｂｌｅ　１）．
２．４　Ｂｉｏｃｈｅｍｉｃａｌ　ａｎａｌｙｓｉｓ　Ｇｌｙｃｏｌｙｔｉｃ　ｅｎｚｙｍｅ
Ｇ６ＰＤ　ｗａｓ　ｉｎｃｒｅａｓｅｄ　ａｆｔｅｒ　ｔｒｅａｔｍｅｎｔ　ｗｉｔｈ　ＳＣ２
ｆｒａｃｔｉｏｎ．ＳＣ２　ｔｒｅａｔｍｅｎｔ　ａｌｓｏ　ｉｍｐｒｏｖｅｄ　ｔｈｅ　ｌｅｖｅｌｓ
ｏｆ　ｈｅｐａｔｉｃ　ａｎｄ　ｍｕｓｃｌｅ　ｇｌｙｃｏｇｅｎｓ，ｒｅｓｐｅｃｔｉｖｅｌｙ．
Ｇｌｙｃｏｇｅｎ　ｃｏｎｔｅｎｔｓ　ｏｆ　ｔｈｅ　ｄｉａｂｅｔｉｃ　ｍｉｃｅ　ｗｅｒｅ　ｓｉｇ－
ｎｉｆｉｃａｎｔｌｙ　ｌｏｗｅｒ　ｔｈａｎ　ｔｈｏｓｅ　ｏｆ　ｔｈｅ　ｎｏｒｍａｌ　ｃｏｎｔｒｏｌ
ｍｉｃｅ（Ｐ＜０．０１）．Ｔｈｉｓ　ｉｎｄｉｃａｔｅｄ　ｔｈｅ　ｒｏｌｅ　ｏｆ　ＳＣ２ｉｎ
ｎｏｒｍａｌｉｚａｔｉｏｎ　ｏｆ　ｇｌｙｃｏｇｅｎｅｓｉｓ　ａｎｄ　ｃａｒｂｏｈｙｄｒａｔｅ
ｍｅｔａｂｏｌｉｓｍ　ｉｎ　ＳＴＺ－ｉｎｄｕｃｅｄ　ｄｉａｂｅｔｉｃ　ｍｉｃｅ．Ｐｌａｓｍａ
ｉｎｓｕｌｉｎ　ａｎｄ　Ｃ－ｐｅｐｔｉｄｅ　ｌｅｖｅｌｓ　ｏｆ　ｄｉａｂｅｔｉｃ　ｍｉｃｅ　ｔｒｅａｔｅｄ
ｗｉｔｈ　ＳＣ２　ｗｅｒｅ　ｉｎｃｒｅａｓｅｄ　ｗｈｅｎ　ｃｏｍｐａｒｅｄ　ｗｉｔｈ　ｔｈｏｓｅ
ｏｆ　ｔｈｅ　ｕｎｔｒｅａｔｅｄ　ｄｉａｂｅｔｉｃ　ｃｏｎｔｒｏｌ　ｍｉｃｅ（Ｔａｂｌｅ　２）．
Ｆｉｇｕｒｅ　１　ＨＰＬＣ　ｃｈｒｏｍａｔｏｇｒａｍ　ｏｆ　ＳＣ２ｆｒａｃｔｉｏｎ
ＨＰＬＣ　ｃｈｒｏｍａｔｏｇｒａｍ　ｏｆ　ＳＣ２ｆｒａｃｔｉｏｎ　ｕｓｉｎｇ　ｓｅｍｉｐｒｅｐａｒａｔｉｖｅ　ＨＰＬＣ　ｓｙｓｔｅｍ　ｕｓｉｎｇ　Ｃ１８ｃｏｌｕｍｎ（２５ｃｍ×１０ｍｍ；５μｍ　ｐａｒｔｉｃｌｅ　ｓｉｚｅ）ｉｎ　ａｃｅｔｏｎｉｔｒｉｌｅ－
ｗａｔｅｒ（８０∶２０ｖｏｌｕｍｅ　ｒａｔｉｏ）ｓｏｌｖｅｎｔ　ｓｙｓｔｅｍ．ＨＰＬＣ：ｈｉｇｈ－ｐｅｒｆｏｒｍａｎｃｅ　ｌｉｑｕｉｄ　ｃｈｒｏｍａｔｏｇｒａｐｈｙ；ＳＣ２：ｐｕｒｉｆｉｅｄ　ｆｒａｃｔｉｏｎ　ｏｆ　Ｓｙｚｙｇｉｕｍ　ｃｕｍｉｎｉ．
·３８３１·中西医结合学报２０１１年１２月第９卷第１２期　Ｊｏｕｒｎａｌ　ｏｆ　Ｃｈｉｎｅｓｅ　Ｉｎｔｅｇｒａｔｉｖｅ　Ｍｅｄｉｃｉｎｅ，Ｄｅｃｅｍｂｅｒ　２０１１，Ｖｏｌ．９，Ｎｏ．１２
Ｔａｂｌｅ　１　Ｏｒａｌ　ｇｌｕｃｏｓｅ　ｔｏｌｅｒａｎｃｅ　ｔｅｓｔ　ｒｅｓｕｌｔｓ　ｏｆ　ｅａｃｈ　ｇｒｏｕｐ
（ｍｅａｎ±ｓｔａｎｄａｒｄ　ｄｅｖｉａｔｉｏｎ）
Ｇｒｏｕｐ　 ｎ
Ｆａｓｔｉｎｇ　ｂｌｏｏｄ　ｇｌｕｃｏｓｅ　ｌｅｖｅｌ（ｍｇ／Ｌ）
０ｍｉｎ　 ３０ｍｉｎ　 ６０ｍｉｎ　 ９０ｍｉｎ　 １２０ｍｉｎ
Ｎｏｒｍａｌ　ｃｏｎｔｒｏｌ　 ６　 ８２０．０±９１．２　 １　４００．０±８７．６　 １　３２０．０±８２．５　 １　１５０．０±８５．６　 ８３０．０±７５．６
Ｄｉａｂｅｔｉｃ　ｃｏｎｔｒｏｌ　 ６　 ４　５６０．０±１０２．３＊＊ ４　７６０．０±１１２．５＊＊ ４　６３０．０±１０４．５＊＊ ４　７１０．０±１１２．５＊＊ ４　８１０．０±１２３．５＊＊
ＳＣ２ｔｒｅａｔｍｅｎｔ　 ６　 ８４０．０±９２．５　 ８９０．０±９１．２　 １　１００．０±７８．６　 １　０３０．０±８１．６　 ９８０．０±８６．９
　　＊＊Ｐ＜０．０１，ｖｓ　ｎｏｒｍａｌ　ｃｏｎｔｒｏｌ　ｇｒｏｕｐ．ＳＣ２：ｐｕｒｉｆｉｅｄ　ｆｒａｃｔｉｏｎ　ｏｆ　Ｓｙｚｙｇｉｕｍ　ｃｕｍｉｎｉ．
Ｔａｂｌｅ　２　Ｂｉｏｃｈｅｍｉｃａｌ　ａｎｄ　ｅｎｚｙｍａｔｉｃ　ａｎａｌｙｓｉｓ　ｒｅｓｕｌｔｓ　ｏｆ　ｅａｃｈ　ｇｒｏｕｐ
（ｍｅａｎ±ｓｔａｎｄａｒｄ　ｄｅｖｉａｔｉｏｎ）
Ｇｒｏｕｐ　 ｎ　 Ｇ６ＰＤ（Ｕ／ｍｇ）
Ｇｌｙｃｏｇｅｎ（μｇ／Ｌ）
Ｈｅｐａｔｉｃ　 Ｍｕｓｃｌｅ
Ｐｌａｓｍａ　ｉｎｓｕｌｉｎ
（ｎｇ／Ｌ）
Ｐｌａｓｍａ　Ｃ－ｐｅｐｔｉｄｅ（μｇ／Ｌ）
Ｎｏｒｍａｌ　ｃｏｎｔｒｏｌ　 ６　 ０．０１３　０±０．０００　１　 ７０±２　 ９１±４　 １３０±１０　 １０．７９±１．２３
Ｄｉａｂｅｔｉｃ　ｃｏｎｔｒｏｌ　 ６　 ０．００５　４±０．０００　２＊＊ ３０±５＊＊ ４２±３＊＊ 　　３４±１０＊＊ ３．７６±０．５６＊＊
ＳＣ２ｔｒｅａｔｍｅｎｔ　 ６　 ０．００９　９±０．０００　４　 ６１±３　 ８９±４　 １１０±２０　 ８．７７±１．０１
　　＊＊Ｐ＜０．０１，ｖｓ　ｎｏｒｍａｌ　ｃｏｎｔｒｏｌ　ｇｒｏｕｐ．ＳＣ２：ｐｕｒｉｆｉｅｄ　ｆｒａｃｔｉｏｎ　ｏｆ　Ｓｙｚｙｇｉｕｍ　ｃｕｍｉｎｉ；Ｇ６ＰＤ：ｇｌｕｃｏｓｅ－６－ｐｈｏｓｐｈａｔｅ－ｄｅｈｙｄｒｏｇｅｎａｓｅ．
２．５　Ｈｉｓｔｏｌｏｇｉｃａｌ　ａｎｄ　ｉｍｍｕｎｏｈｉｓｔｏｃｈｅｍｉｃａｌ　ａｎａｌｙｓｉｓ
　 Ｔｈｅ　ｈｉｓｔｏｌｏｇｉｃａｌ　ａｎｄ　ｉｍｍｕｎｏｈｉｓｔｏｃｈｅｍｉｃａｌ
ｓｔａｉｎｉｎｇｓ　ｗｅｒｅ　ｐｅｒｆｏｒｍｅｄ　ｏｎ　ｐａｎｃｒｅａｓ　ｏｆ　ｅｘｐｅｒｉ－
ｍｅｎｔａｌ　ｍｉｃｅ　ｔｏ　ｃｈｅｃｋ　ｔｈｅ　ｒｏｌｅ　ｏｆ　ＳＣ２　ｉｎ　ｒｅｔａｉｎｉｎｇ
ｉｓｌｅｔ　ｍｏｒｐｈｏｌｏｇｙ．ＳＣ２－ｔｒｅａｔｅｄ　ｐａｎｃｒｅａｓ　ｒｅｖｅａｌｅｄ
ｄｉｓｔｉｎｃｔ（ｎｅｓｉｄｉｏｂｌａｓｔｏｓｉｓ）ｉｓｌｅｔ　ｒｅｇｅｎｅｒａｔｉｏｎ　ｗｉｔｈ
ａ　ｃｏｎｎｅｃｔｉｏｎ　ｂｅｔｗｅｅｎ　ｔｈｅ　ｎｅｗｌｙ　ｆｏｒｍｅｄ　ｉｓｌｅｔｓ　ａｎｄ
ｔｈｅ　ｄｕｃｔａｌ　ｐｒｅｃｕｒｓｏｒ　ｃｅｌｓ（Ｆｉｇｕｒｅ　２Ａ）．Ｔｈｅ　ｆｕｎｃ－
ｔｉｏｎａｌｉｔｙ　ｏｆ　ｎｅｗｌｙ　ｆｏｒｍｅｄ　ｉｓｌｅｔｓ　ｗａｓ　ｃｏｎｆｉｒｍｅｄ
ｗｉｔｈ　ｐｏｓｉｔｉｖｅ　ｒｅａｃｔｉｏｎ　ｗｉｔｈ　ＦＩＴＣ－ｌａｂｅｌｅｄ　ａｎｔｉ－
ｉｎｓｕｌｉｎ　ａｎｔｉｂｏｄｙ （Ｆｉｇｕｒｅ　２Ｂ），ｗｈｅｒｅａｓ　ｄｉａｂｅｔｉｃ
ｐａｎｃｒｅａｓ　ｈａｄ　ｓｈｒｕｎｋｅｎ，ｄｅｆｏｒｍｅｄ　ｉｓｌｅｔｓ，ｎｅｇａｔｉｖｅ
ｆｏｒ　ｉｎｓｕｌｉｎ　ｓｔａｉｎｉｎｇ（Ｆｉｇｕｒｅｓ　２Ｅ　ａｎｄ　２Ｆ）．
２．６　Ｉｍｍｕｎｏｃｈａｒａｃｔｅｒｉｚａｔｉｏｎ　ｏｆ　ｉｎ　ｖｉｔｒｏｉｓｌｅｔ　ｒｅｇｅｎ－
ｅｒａｔｉｏｎ　ＰＡＮＣ－１　ｏｆ　ｐａｎｃｒｅａｔｉｃ　ｎａｔｕｒｅ　ｈａｖｉｎｇ
ｓｔｅｍ　ｃｅｌ－ｌｉｋｅ　ｐｒｏｐｅｒｔｙ　ｗａｓ　ｃｈｏｓｅｎ　ｔｏ　ｖｅｒｉｆｙ　ｔｈｅ　ｉｓｌｅｔ－
ｎｅｏｇｅｎｉｃ　ａｃｔｉｖｉｔｙ　ｏｆ　ＳＣ２　ｆｒａｃｔｉｏｎ．Ｄｉｆｆｅｒｅｎｔ　ｃｏｎ－
ｃｅｎｔｒａｔｉｏｎｓ　ｏｆ　ＳＣ２　ｗｅｒｅ　ａｄｄｅｄ　ｔｏ　ＰＡＮＣ－１　ｃｅｌ　ｌｉｎｅ
ａｎｄ　ｉｔ　ｗａｓ　ｏｂｓｅｒｖｅｄ　ｔｈａｔ　ｍａｘｉｍｕｍ　ｃｏｎｃｅｎｔｒａｔｉｏｎ
４μｇ　ｓｈｏｗｅｄ　ｃｅｌ　ｄｉｆｆｅｒｅｎｔｉａｔｉｏｎ　ａｆｔｅｒ　８　ｄ　ｉｎ　ｔｈｅ
ｓｅｒｕｍ－ｆｒｅｅ　ｃｕｌｔｕｒｅ　ｍｅｄｉｕｍ．Ｔｈｅ　ｐｒｅｓｅｎｃｅ　ｏｆ　ｉｓｌｅｔ－
ｌｉｋｅ　ｃｌｕｓｔｅｒｓ（ＩＣＡｓ）（５４．００±１０．２６ｉｓｌｅｔｓ　ｐｅｒ　ａ　２４－
ｗｅｌ　ｐｌａｔｅ（ｗｈｅｒｅ　Ｐ ＝０．０５）ｗａｓ　ｏｂｓｅｒｖｅｄ　ｗｈｉｃｈ
ｉｎ　ｔｕｒｎ，ｄｅｖｅｌｏｐｅｄ　ｉｎｔｏ　ｗｅｌ－ｄｅｆｉｎｅｄ　ｉｓｌｅｔｓ．Ｔｈｅ
ｇｅｎｅｒａｔｅｄ　ＩＣＡｓ　ｗｅｒｅ　ｓｔａｉｎｅｄ　ｐｏｓｉｔｉｖｅ　ｆｏｒ　ＤＴＺ
ａｎｄ　ａｐｐｅａｒｅｄ　ｃｒｉｍｓｏｎ　ｒｅｄ　ｉｎ　ｃｏｌｏｒ，ｃｏｎｆｉｒｍｉｎｇ
ｔｈｅ　ｄｉｆｆｅｒｅｎｔｉａｔｉｏｎ　ｏｆ　ｔｈｅ　ｃｅｌｓ　ｉｎｔｏ　ｎｅｗｌｙ　ｆｏｒｍｅｄ
ｉｓｌｅｔｓ　ａｆｔｅｒ　ｃｕｌｔｕｒｉｎｇ　ｗｉｔｈ　ＳＣ２ （Ｆｉｇｕｒｅ　３Ａ）．
Ｉｍｍｕｎｏｐｏｓｉｔｉｖｉｔｙ　ｏｆ　ＩＣＡｓ　ｗｉｔｈ　ＦＩＴＣ－ｌａｂｅｌｅｄ　ａｎｔｉ－
ｉｎｓｕｌｉｎ　ａｎｔｉｂｏｄｙ　ｐｒｏｖｅｄ　ｔｈａｔ　ｔｈｅ　ｎｅｗｌｙ　ｆｏｒｍｅｄ　ｉｓｌｅｔｓ
ｉｎ　ｉｎ　ｖｉｔｒｏ　ｃｕｌｔｕｒｅ　ａｒｅ　ｆｕｎｃｔｉｏｎａｌｙ　ｄｉｆｆｅｒｅｎｔｉａｔｅｄ
ｉｓｌｅｔｓ（Ｆｉｇｕｒｅ　３Ｂ）．
Ｆｉｇｕｒｅ　２　Ｈｉｓｔｏｌｏｇｉｃａｌ　ａｎｄ　ｉｍｍｕｎｏｈｉｓｔｏｃｈｅｍｉｃａｌ　ａｎａｌｙｓｉｓ　ｏｆ　ｐａｎｃｒｅａｔｉｃ　ｓｅｃｔｉｏｎｓ　ｆｒｏｍ　ＳＣ２－ｔｒｅａｔｅｄ
ｍｉｃｅ（Ａ，Ｂ），ｎｏｒｍａｌ　ｃｏｎｔｒｏｌ　ｍｉｃｅ（Ｃ，Ｄ）ａｎｄ　ｄｉａｂｅｔｉｃ　ｃｏｎｔｒｏｌ　ｍｉｃｅ（Ｅ，Ｆ）
Ｔｈｅ　ｄｅｖｅｌｏｐｍｅｎｔ　ｏｆ　ｎｅｗｌｙ　ｆｏｒｍｅｄ　ｎｅｏ－ｉｓｌｅｔｓ　ｆｒｏｍ　ｔｈｅ　ｐａｎｃｒｅａｔｉｃ　ｄｕｃｔ　ｃａｎ　ｂｅ　ｓｅｅｎ　ｗｉｔｈ　ＳＣ２ｔｒｅａｔｍｅｎｔ　ｗｉｔｈ　１：ｎｅｗｌｙ　ｆｏｒｍｅｄ　ｉｓｌｅｔ；２：ｃｏｎｎｅｃｔｉｏｎ
ｂｅｔｗｅｅｎ　ｔｈｅ　ｄｕｃｔ　ａｎｄ　ｔｈｅ　ｉｓｌｅｔ；３：ｄｕｃｔ　ｆｒｏｍ　ｗｈｉｃｈ　ｔｈｅ　ｉｓｌｅｔ　ｓｐｒｏｕｔｅｄ．Ａ，Ｃ　ａｎｄ　Ｅ　ａｒｅ　ｔｈｅ　ＨＥ　ｓｔａｉｎｉｎｇ　ｒｅｓｕｌｔｓ　ｕｎｄｅｒ　ａ　ｌｉｇｈｔ　ｍｉｃｒｏｓｃｏｐｅ　ｗｉｔｈ
ｍａｇｎｉｆｉｃａｔｉｏｎ　ｏｆ　４８０；Ｂ，Ｄ　ａｎｄ　Ｆ　ａｒｅ　ｔｈｅ　ＦＩＴＣ　ｓｔａｉｎｉｎｇ　ｒｅｓｕｌｔｓ　ｕｎｄｅｒ　ａ　ｆｌｕｏｒｅｓｃｅｎｔ　ｍｉｃｒｏｓｃｏｐｅ　ｗｉｔｈ　ｍａｇｎｉｆｉｃａｔｉｏｎ　ｏｆ　４８０．ＳＣ２：ｐｕｒｉｆｉｅｄ　ｆｒａｃｔｉｏｎ
ｏｆ　Ｓｙｚｙｇｉｕｍ　ｃｕｍｉｎｉ；ＨＥ：ｈｅｍａｔｏｘｙｌｉｎ　ａｎｄ　ｅｏｓｉｎ；ＦＩＴＣ：ｆｌｏｕｒｅｓｃｅｉｎ　ｉｓｏｔｈｉｏｃｙａｎａｔｅ．
·４８３１· 中西医结合学报２０１１年１２月第９卷第１２期　Ｊｏｕｒｎａｌ　ｏｆ　Ｃｈｉｎｅｓｅ　Ｉｎｔｅｇｒａｔｉｖｅ　Ｍｅｄｉｃｉｎｅ，Ｄｅｃｅｍｂｅｒ　２０１１，Ｖｏｌ．９，Ｎｏ．１２
Ｆｉｇｕｒｅ　３　Ｎｅｗｌｙ　ｇｅｎｅｒａｔｅｄ　ｉｓｌｅｔｓ（ＩＣＡｓ）ｉｎ　ｈｕｍａｎ　ｐａｎｃｒｅａｔｉｃ　ｃａｒｃｉｎｏｍａ　ｅｐｉｔｈｅｌｉａｌ－ｌｉｋｅ　ｃｅｌ　ｌｉｎｅ
ａｆｔｅｒ　ＳＣ２ｔｒｅａｔｍｅｎｔ（Ｆｌｕｏｒｅｓｃｅｎｔ　ｍｉｃｒｏｓｃｏｐｅ，×４８０）
Ｔｈｅ　ＩＣＡｓ　ａｒｅ　ｓｔａｉｎｅｄ　ｐｏｓｉｔｉｖｅ　ｗｉｔｈ　ＤＴＺ（Ａ）ａｎｄ　ＦＩＴＣ－ｌａｂｅｌｅｄ　ｉｎｓｕｌｉｎ　ａｎｔｉｂｏｄｙ（Ｂ），ｒｅｖｅａｌｉｎｇ　ｉｎｓｕｌｉｎ－ｐｏｓｉｔｉｖｅ　ｃｅｌｕｌａｒ　ａｇｇｒｅｇａｔｅｓ．ＩＣＡｓ：ｉｓｌｅｔ－
ｌｉｋｅ　ｃｅｌｕｌａｒ　ａｇｇｒｅｇａｔｅｓ；ＳＣ２：ｐｕｒｉｆｉｅｄ　ｆｒａｃｔｉｏｎ　ｏｆ　Ｓｙｚｙｇｉｕｍ　ｃｕｍｉｎｉ；ＤＴＺ：ｄｉｔｈｉｏｚｏｎｅ；ＦＩＴＣ：ｆｌｕｏｒｅｓｃｅｉｎ　ｉｓｏｔｈｉｏｃｙａｎａｔｅ．
３　Ｄｉｓｃｕｓｓｉｏｎ
　Ｓ．ｃｕｍｉｎｉ　ｉｓ　ａｎ　ｉｍｐｏｒｔａｎｔ　ｍｅｄｉｃｉｎａｌ　ｐｌａｎｔ
ｋｎｏｗｎ　ｔｏ　ｐｏｓｓｅｓｓ　ｎｕｍｅｒｏｕｓ　ｔｈｅｒａｐｅｕｔｉｃ　ｐｒｏｐｅｒｔｉｅｓ
ｓｕｃｈ　ａｓ　ａｎｔｉｈｙｐｅｒｇｌｙｃｅｍｉｃ　ａｎｄ　ａｎｔｉｏｘｉｄａｎｔ　ａｃｔｉｖｉ－
ｔｉｅｓ［３４，３５］．Ｉｎ　ｏｕｒ　ｅａｒｌｉｅｒ　ｓｔｕｄｙ，ｗｅ　ｈａｄ　ｄｅｍｏｎｓｔｒａｔｅｄ
ｔｈｅ　ｉｎ　ｖｉｔｒｏ　ｇｌｕｃｏｓｉｄａｓｅ－ｉｎｈｉｂｉｔｏｒｙ　ａｃｔｉｖｉｔｙ　ｏｆ
ｃｈｌｏｒｏｆｏｒｍ　ｅｘｔｒａｃｔ　ｏｆ　Ｓ．ｃｕｍｉｎｉ　ｓｅｅｄｓ　ｉｎ　ｐｏｒｃｉｎｅ
ｐａｎｃｒｅａｔｉｃ　ａｎｄ　ｍｕｒｉｎｅ　ｉｎｔｅｓｔｉｎａｌ　ａｎｄ　ｐａｎｃｒｅａｔｉｃ
ｇｌｕｃｏｓｉｄａｓｅｓ［９］．Ｔｈｅ　ｉｎ　ｖｉｖｏ　ｓｔｕｄｙ　ｕｓｉｎｇ　Ｓ．ｃｕｍｉｎｉ
ｃｈｌｏｒｏｆｏｒｍ　ｅｘｔｒａｃｔ　ｒｅｖｅａｌｅｄ　ｔｈｅ　ｓｉｇｎｉｆｉｃａｎｔ　ｉｓｌｅｔ
ｒｅｇｅｎｅｒａｔｉｏｎ　ａｎｄ　ｉｎｓｕｌｉｎ　ｓｅｃｒｅｔａｇｏｇｕｅ　ａｃｔｉｖｉｔｙ　ｉｎ
ＳＴＺ－ｉｎｄｕｃｅｄ　ｄｉａｂｅｔｉｃ　ｍｉｃｅ　ａｌｏｎｇ　ｗｉｔｈ　ｍｏｄｅｒａｔｅ
ｇｌｕｃｏｓｉｄａｓｅ－ｉｎｈｉｂｉｔｏｒｙ　ａｃｔｉｖｉｔｙ．Ｂａｓｅｄ　ｏｎ　ｔｈｅｓｅ
ｆｉｎｄｉｎｇｓ，ｉｎ　ｔｈｅ　ｐｒｅｓｅｎｔ　ｓｔｕｄｙ　ｗｅ　ｐｕｒｉｆｉｅｄ　ｔｈｅ
ａｃｔｉｖｅ　ｆｒａｃｔｉｏｎ　ｆｒｏｍ　Ｓ．ｃｕｍｉｎｉ　ｃｈｌｏｒｏｆｏｒｍ
ｅｘｔｒａｃｔ　ｗｉｔｈ　ｉｓｌｅｔ－ｒｅｇｅｎｅｒａｔｉｖｅ　ａｃｔｉｖｉｔｙ．Ｔｈｅ　ａｃｔｉｖｅ
ｆｒａｃｔｉｏｎ　ｗａｓ　ｄｅｎｏｔｅｄ　ａｓ　ＳＣ２．
　Ｉｎ　ｄｉａｂｅｔｅｓ　ｔｈｅｒｅ　ｉｓ　ａ　ｄｅｃｒｅａｓｅ　ｉｎ　ｆｕｎｃｔｉｏｎａｌ
ｍａｓｓ　ｏｆβｃｅｌｓ，ｓｏ　ｒｅｐｌａｃｉｎｇ　ｍｉｓｓｉｎｇβｃｅｌｓ　ｏｒ　ｔｒｉｇ－
ｇｅｒｉｎｇ　ｔｈｅｉｒ　ｒｅｇｅｎｅｒａｔｉｏｎ　ｍａｙ　ａｌｏｗ　ｆｏｒ　ｉｍｐｒｏｖｅ－
ｍｅｎｔ　ｉｎ　ｔｈｅ　ｃｏｎｔｒｏｌ　ｏｆ　ｄｉａｂｅｔｅｓ．Ｓｉｎｃｅ　ｔｈｅ　ｒｅｐｌｉｃａ－
ｔｉｖｅ　ｐｏｔｅｎｔｉａｌ　ｏｆβｃｅｌｓ　ｉｓ　ｌｉｍｉｔｅｄ，ｔｈｅｒｅｆｏｒｅ
ｓｅａｒｃｈ　ｆｏｒ　ｆａｃｔｏｒｓ　ｔｈａｔ　ｔｒｉｇｇｅｒ　ｉｓｌｅｔ　ｎｅｏｇｅｎｅｓｉｓ　ｉｓ
ｉｍｐｏｒｔａｎｔ［３６］．Ｉｎ　ｔｈｉｓ　ｓｔｕｄｙ　ｗｅ　ｓｈｏｗｅｄ　ｔｈｅ　ａｂｉｌｉｔｙ
ｏｆ　Ｓ．ｃｕｍｉｎｉ　ａｃｔｉｖｅ　ｆｒａｃｔｉｏｎ　ＳＣ２　ｔｏ　ｒｅｇｅｎｅｒａｔｅ
ｐａｎｃｒｅａｔｉｃ　ｉｓｌｅｔｓ　ｉｎ　ＳＴＺ－ｉｎｄｕｃｅｄ　ｄｉａｂｅｔｉｃ　ｍｉｃｅ．
Ｔｈｅ　ｒｅｇｅｎｅｒａｔｉｏｎ　ｏｆ　ｉｓｌｅｔｓ　ｗａｓ　ｏｂｓｅｒｖｅｄ　ｈｉｓｔｏｌｏｇｉ－
ｃａｌｙ　ｗｉｔｈ　ａ　ｐｒｅｓｅｎｃｅ　ｏｆ　ｎｅｓｄｉｏｂｌａｓｔｏｓｉｓ，ｔｈａｔ　ｉｓ，
ｃｏｎｎｅｃｔｉｏｎ　ｂｅｔｗｅｅｎ　ｔｈｅ　ｉｓｌｅｔｓ　ａｎｄ　ｔｈｅ　ｄｕｃｔａｌ
ｐｒｅｃｕｒｓｏｒ　ｃｅｌｓ（Ｆｉｇｕｒｅ　２Ａ）．Ｔｈｅｓｅ　ｎｅｗｌｙ　ｆｏｒｍｅｄ
ｉｓｌｅｔｓ　ｗｅｒｅ　ｃｏｎｆｉｒｍｅｄ　ｔｏ　ｂｅ　ｆｕｎｃｔｉｏｎａｌ　ｗｉｔｈ　ｅｖｉｄｅｎｃｅ
ｏｆ　ｉｎｓｕｌｉｎ－ｐｒｏｄｕｃｉｎｇβｃｅｌｓ　ａｓ　ｓｅｅｎ　ｉｎ　ｉｍｍｕｎｏｈｉｓ－
ｔｏｃｈｅｍｉｃａｌ　ａｎａｌｙｓｉｓ　ｕｓｉｎｇ　ＦＩＴＣ－ｌａｂｅｌｅｄ　ｍｕｒｉｎｅ
ａｎｔｉ－ｉｎｓｕｌｉｎ　ａｎｔｉｂｏｄｙ （Ｆｉｇｕｒｅ　２Ｂ）．Ｔｈｅ　ｉｓｌｅｔ
ｒｅｇｅｎｅｒａｔｉｏｎ　ａｎｄ　ｓｔｉｍｕｌａｔｉｏｎ　ｏｆ　ｉｎｓｕｌｉｎ－ｓｅｃｒｅｔｏｒｙ
ｅｆｆｅｃｔ　ｏｂｓｅｒｖｅｄ　ｆｒｏｍ　ｔｈｅｓｅ　ｎｅｗｌｙ　ｆｏｒｍｅｄ　ｉｓｌｅｔｓ
ａｆｔｅｒ　ＳＣ２　ｔｒｅａｔｍｅｎｔ　ｃｏｕｌｄ　ｂｅ　ｒｅｓｐｏｎｓｉｂｌｅ　ｆｏｒ　ｔｈｅ
ｈｏｍｅｏｓｔａｓｉｓ　ｏｆ　ｔｈｅ　ｇｌｕｃｏｓｅ　ｍｅｔａｂｏｌｉｓｍ，ｓｕｇｇｅｓｔｉｎｇ
ＳＣ２’ｓ　ｒｏｌｅ　ｉｎ　ｎｏｒｍａｌｉｚａｔｉｏｎ　ｏｆ　ｇｌｕｃｏｓｅ　ｍｅｔａｂｏｌｉｓｍ
（Ｔａｂｌｅ　２）．Ｔｈｉｓ　ｗａｓ　ｆｕｒｔｈｅｒ　ｓｕｐｐｏｒｔｅｄ　ｂｙ　ｔｈｅ
ｉｎｃｒｅａｓｅ　ｉｎ　ｐｌａｓｍａ　ｉｎｓｕｌｉｎ　ａｎｄ　Ｃ－ｐｅｐｔｉｄｅ　ｌｅｖｅｌｓ　ａｓ
ｖａｌｕａｂｌｅ　ｉｎｄｉｃｅｓ　ｆｏｒ　ｅｎｄｏｇｅｎｏｕｓ　ｉｎｓｕｌｉｎ　ｓｅｃｒｅｔｉｏｎ
ａｆｔｅｒ　ＳＣ２　ｔｒｅａｔｍｅｎｔ（Ｔａｂｌｅ　２）．Ｈｉｓｔｏｌｏｇｉｃａｌ　ａｎｄ
ｉｍｍｕｎｏｈｉｓｔｏｌｏｇｉｃａｌ　ｓｔｕｄｉｅｓ　ｓｕｐｐｏｒｔ　ｔｈｅ　ｒｅｇｅｎｅｒａｔｉｏｎ
ｏｆ　ｉｓｌｅｔｓ　ｂｙ　ＳＣ２　ｆｒａｃｔｉｏｎ，ａｓ　ａ　ｐｏｓｓｉｂｌｅ　ｍｅｃｈａｎｉｓｍ
ｏｆ　ｔｈｅｉｒ　ａｎｔｉｄｉａｂｅｔｏｇｅｎｉｃ　ａｃｔｉｖｉｔｙ　ｉｎ　ｄｉａｂｅｔｉｃ　ｍｉｃｅ
（Ｆｉｇｕｒｅ　２）．Ｍａｎｙ　ｐｌａｎｔｓ　ａｎｄ　ｔｈｅｉｒ　ｃｏｍｐｏｎｅｎｔｓ　ｓｕｃｈ
ａｓ　ｐａｎｃｒｅａｓ　ｔｏｎｉｃ　ａｎｄ　ｅｐｈｅｄｒｉｎｅ　ａｎｄ　Ｇｙｍｎｅｍａ
ｓｙｌｖｅｓｔｒｅ　ｌｅａｆ　ｅｘｔｒａｃｔｓ　ｈａｓ　ｂｅｅｎ　ｒｅｐｏｒｔｅｄ　ｔｏ　ｓｈｏｗ
ｐａｎｃｒｅａｔｉｃ　ｉｓｌｅｔ　ｒｅｇｅｎｅｒａｔｉｏｎ　ａｎｄ　ｓｔｉｍｕｌａｔｉｏｎ　ｏｆ
ｉｎｓｕｌｉｎ　ｒｅｌｅａｓｅ　ｉｎ　ｄｉａｂｅｔｉｃ　ａｎｉｍａｌｓ［２３，２５，３７］．
　Ｉｔ　ｗａｓ　ｒｅｐｏｒｔｅｄ　ｔｈａｔ　ｉｎｔｒｉｎｓｉｃ　ｆａｃｔｏｒｓ　ｐｒｅｓｅｎｔ
ｗｉｔｈｉｎ　ｔｈｅ　ｐａｎｃｒｅａｓ　ｃｏｕｌｄ　ｓｏｍｅｈｏｗ “ｓｅｎｓｅ”ｔｈｅ
ｉｓｌｅｔ　ｍａｓｓ　ａｎｄ　ｍａｎａｇｅ　ｈｏｍｅｏｓｔａｓｉｓ　ｏｆ　ｔｈｅβｃｅｌ
ｍａｓｓ　ｉｎ　ｎｏｒｍａｌ　ｈｅａｌｔｈｙ　ｃｏｎｄｉｔｉｏｎ
［３６－４２］．Ｈｏｗｅｖｅｒ，
ａｌｔｈｏｕｇｈ　ｔｈｅｓｅ　ｆａｃｔｏｒｓ　ａｒｅ　ｉｎｔｒｉｎｓｉｃ，ｔｈｅｙ　ｃａｎ　ｂｅ
ｍｏｄｕｌａｔｅｄ　ｂｙ　ｅｘｔｒｉｎｓｉｃ　ｆａｃｔｏｒｓ　ｓｕｃｈ　ａｓ　ｄｉｅｔ，
ｐａｎｃｒｅａｔｅｃｔｏｍｙ，ｅｔｃ［４３］．Ｔｈｉｓ　ｉｎｄｉｃａｔｅｓ　ｔｈａｔ　ＳＣ２
ｆｒａｃｔｉｏｎ　ｃａｎ　ｂｅ　ａｃｔｉｎｇ　ｏｎ　ｉｎｔｒｉｎｓｉｃ　ｆａｃｔｏｒｓ　ｗｈｉｃｈ
ｓｔｉｍｕｌａｔｅｓ　ｉｓｌｅｔ　ｒｅｇｅｎｅｒａｔｉｏｎ　ａｎｄ　ｐｌａｙｓ　ａ　ｒｏｌｅ　ｉｎ
ｒｅｇｅｎｅｒａｔｉｏｎ　ａｎｄ　ｉｎｓｕｌｉｎ－ｓｅｃｒｅｔｏｒｙ　ａｃｔｉｖｉｔｙ　ｉｎ　ｉｎ
ｖｉｖｏ　ｄｉａｂｅｔｉｃ　ｍｉｃｅ．Ｔｈｅｒｅｆｏｒｅ，ｗｅ　ｆｕｒｔｈｅｒ　ｔｅｓｔｅｄ
ＳＣ２　ｉｎ　ｉｎ　ｖｉｔｒｏ　ｃｅｌ　ｌｉｎｅ　ＰＡＮＣ－１　ｏｆ　ｐａｎｃｒｅａｔｉｃ
ｎａｔｕｒｅ　ｈａｖｉｎｇ　ｓｔｅｍ　ｃｅｌ－ｌｉｋｅ　ｐｒｏｐｅｒｔｙ　ｆｏｒ　ｉｎ　ｖｉｔｒｏ
ｉｓｌｅｔ　ｄｉｆｆｅｒｅｎｔｉａｔｉｏｎ．ＰＡＮＣ－１　ｃｅｌ　ｌｉｎｅ　ｗａｓ　ｃｈｏｓｅｎ
ａｓ　ａ　ｓｕｉｔａｂｌｅ　ｍｏｄｅｌ　ｓｙｓｔｅｍ　ｂｅｃａｕｓｅ　ｉｔ　ｗａｓ　ｒｅｐｏｒｔｅｄ
ｔｏ　ｓｈｏｗ　ｉｓｌｅｔ　ｄｉｆｆｅｒｅｎｔｉａｔｉｏｎ　ｗｉｔｈ　ａｃｔｉｖｅ　ｈｅｒｂａｌ
ｃｏｍｐｏｎｅｎｔｓ　ｗｉｔｈｏｕｔ　ａｎｙ　ｉｎｔｒｉｎｓｉｃ　ｆａｃｔｏｒｓ
［７］．Ｔｈｅ
ＰＡＮＣ－１　ｃｅｌｓ　ｉｎ　ｐｒｅｓｅｎｃｅ　ｏｆ　ＳＣ２ｌｅｄ　ｔｏ　ｔｈｅ　ｆｏｒｍａ－
ｔｉｏｎ　ｏｆ　ＩＣＡｓ（Ｆｉｇｕｒｅ　３Ａ）ｗｈｉｌｅ　ｔｈｅｒｅ　ｗａｓ　ｎｏ　ｃｅｌ
ａｇｇｒｅｇａｔｉｏｎ　ｏｂｓｅｒｖｅｄ　ｉｎ　ｔｈｅ　ｃｏｎｔｒｏｌ　ｗｅｌｓ，ｗｈｉｃｈ
ｃｏｎｆｉｒｍｓ　ｔｈａｔ　ｔｈｅ　ａｇｇｒｅｇａｔｉｏｎ　ａｎｄ　ｍａｔｕｒａｔｉｏｎ　ｏｆ
ｔｈｅ　ｉｓｌｅｔｓ　ｗａｓ　ｂｒｏｕｇｈｔ　ａｂｏｕｔ　ｂｙ　ＳＣ２．Ｔｈｅ　ｉｄｅｎｔｉｔｙ
ｏｆ　ｔｈｅｓｅ　ＩＣＡｓ　ｗａｓ　ｅｓｔａｂｌｉｓｈｅｄ　ｂｙ　ｔｈｅ　ｕｓｅ　ｏｆ　ｔｈｅ
ｉｎｓｕｌｉｎ－ｓｐｅｃｉｆｉｃ　ＤＴＺ　ｓｔａｉｎｉｎｇ．Ｔｈｅ　ｃａｐａｃｉｔｙ　ｏｆ
ｔｈｅｓｅ　ａｇｇｒｅｇａｔｅｓ　ｔｏ　ｐｒｏｄｕｃｅ　ｉｎｓｕｌｉｎ　ｗａｓ　ｆｕｒｔｈｅｒ
ｃｏｎｆｉｒｍｅｄ　ｂｙ　ｐｏｓｉｔｉｖｅ　ｒｅａｃｔｉｏｎ　ｔｏ　ＦＩＴＣ－ｌａｂｅｌｅｄ
ａｎｔｉ－ｉｎｓｕｌｉｎ　ａｎｔｉｂｏｄｉｅｓ　ｗｈｉｃｈ　ｉｎｄｉｃａｔｅｓ　ｔｈｅ　ｃｅｌｕｌａｒ
ａｇｇｒｅｇａｔｅｓ　ｔｏ　ｂｅ　ｎｅｗｌｙ　ｆｏｒｍｅｄ　ｉｓｌｅｔｓ　ｉ　ｎ　ｖｉｔｒｏ
（Ｆｉｇｕｒｅ　３Ｂ）．Ｔｈｉｓ　ｓｕｐｐｏｒｔｓ　ｔｈａｔ　ＳＣ２　ｈａｓ　ａ　ｐｏｔｅｎｔｉａｌ
ｔｏ　ｒｅｇｅｎｅｒａｔｅ　ｉｓｌｅｔｓ　ｗｉｔｈｏｕｔ　ａｎｙ　ｈｅｌｐ　ｆｒｏｍ　ｅｎｄｏｇｅｎｏｕｓ
ｆａｃｔｏｒｓ．
４　Ｃｏｎｃｌｕｓｉｏｎ
　Ｔｈｅ　ｐｒｅｓｅｎｔ　ｓｔｕｄｙ　ｄｅｍｏｎｓｔｒａｔｅｓ　ｆｏｒ　ｔｈｅ　ｆｉｒｓｔ
ｔｉｍｅ　Ｓ．ｃｕｍｉｎｉ　ＳＣ２　ｆｒａｃｔｉｏｎ　ｃａｒｒｉｅｓ　ｔｈｅ　ｐｏｔｅｎｔｉａｌ
ｔｏ　ｉｎｄｕｃｅ　ｉｓｌｅｔ　ｎｅｏｇｅｎｅｓｉｓ　ａｎｄ　ｉｓ　ｃａｐａｂｌｅ　ｏｆ　ｂｒｉｎｇｉｎｇ
·５８３１·中西医结合学报２０１１年１２月第９卷第１２期　Ｊｏｕｒｎａｌ　ｏｆ　Ｃｈｉｎｅｓｅ　Ｉｎｔｅｇｒａｔｉｖｅ　Ｍｅｄｉｃｉｎｅ，Ｄｅｃｅｍｂｅｒ　２０１１，Ｖｏｌ．９，Ｎｏ．１２
ａｂｏｕｔ　ｎｅｓｉｄｉｏｂｌａｓｔｏｓｉｓ　ｉｎ　ｖｉｖｏ　ａｓ　ｗｅｌ　ａｓ　ｉｎ　ｖｉｔｒｏ．
Ｏｎ　ｔｈｅ　ｂａｓｉｓ　ｏｆ　ｏｕｒ　ｆｉｎｄｉｎｇｓ，ｗｅ　ｈｙｐｏｔｈｅｓｉｚｅ　ｔｈａｔ
ｎｅｗｌｙ　ｆｏｒｍｅｄ　ｐａｎｃｒｅａｔｉｃ　ｉｓｌｅｔｓ　ｍａｙ　ｂｅ　ｔｈｅ　ｓｏｕｒｃｅ
ｏｆβｃｅｌｓ　ｆｏｒ　ｓｕｂｓｅｑｕｅｎｔβｃｅｌ　ｅｘｐａｎｓｉｏｎ　ａｎｄ　ｐｒｏ－
ｌｉｆｅｒａｔｉｏｎ．Ｓｕｃｈ　ｒｅｇｅｎｅｒａｔｉｖｅ　ａｐｐｒｏａｃｈｅｓ，ｉｎ　ｃｏｍ－
ｂｉｎａｔｉｏｎ　ｗｉｔｈ　ｏｔｈｅｒ　ｔｈｅｒａｐｅｕｔｉｃ　ｓｔｒａｔｅｇｉｅｓ　ｍａｙ
ｐｒｏｖｉｄｅ　ａ　ｂｅｔｔｅｒ　ｍｅａｎｓ　ｆｏｒ　ｔｈｅ　ｃｏｎｔｒｏｌ　ａｎｄ　ｍａｎ－
ａｇｅｍｅｎｔ　ｏｆ　ｄｉａｂｅｔｅｓ　ｉｎ　ｔｈｅ　ｆｕｔｕｒｅ．
５　Ａｃｋｎｏｗｌｅｄｇｅｍｅｎｔｓ
　Ｔｈｅ　ａｕｔｈｏｒｓ　ｗｏｕｌｄ　ｌｉｋｅ　ｔｏ　ａｃｋｎｏｗｌｅｄｇｅ　Ｄｅｐａｒｔ－
ｍｅｎｔ　ｏｆ　Ｚｏｏｌｏｇｙ，Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｙ　ｏｆ　Ｐｕｎｅ，Ｉｎｄｉａ　ｆｏｒ
ｐｒｏｖｉｄｉｎｇ　ａｎｉｍａｌ　ｈｏｕｓｅ　ｆａｃｉｌｉｔｉｅｓ　ａｎｄ　Ｃｏｕｎｃｉｌ　ｏｆ
Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ　ａｎｄ　Ｉｎｄｕｓｔｒｉａｌ　Ｒｅｓｅａｒｃｈ（ＣＳＩＲ，Ｇｏｖｅｒｎｍｅｎｔ
ｏｆ　Ｉｎｄｉａ）ｆｏｒ　ｆｉｎａｎｃｉａｌ　ｓｕｐｐｏｒｔ．Ｍｅｎａｋｓｈｉ　Ｂｈａｔ
Ｄｕｓａｎｅ　ａｌｓｏ　ｗｏｕｌｄ　ｌｉｋｅ　ｔｏ　ａｃｋｎｏｗｌｅｄｇｅ　ＣＳＩＲ，
Ｉｎｄｉａ　ｆｏｒ　Ｓｅｎｉｏｒ　Ｒｅｓｅａｒｃｈ　Ｆｅｌｏｗｓｈｉｐ．
６　Ｃｏｍｐｅｔｉｎｇ　ｉｎｔｅｒｅｓｔｓ
　Ｔｈｅ　ａｕｔｈｏｒｓ　ｄｅｃｌａｒｅ　ｔｈａｔ　ｔｈｅｙ　ｈａｖｅ　ｎｏ　ｃｏｍｐｅｔｉｎｇ
ｉｎｔｅｒｅｓｔｓ．
ＲＥＦＥＲＥＮＣＥＳ
１　Ｃｈｏｐｒａ　ＲＮ，Ｃｈｏｐｒａ　ＩＣ， Ｈａｎｄａ　ＫＬ，Ｋａｐｕｒ　ＬＤ．
Ｃｈｏｐｒａ’ｓ　ｉｎｄｉｇｅｎｏｕｓ　ｄｒｕｇｓ　ｏｆ　Ｉｎｄｉａ．２ｎｄ　ｅｄ．Ｋｏｌｋａｔａ：
Ａｃａｄｅｍｉｃ　Ｐｕｂｌｉｓｈｅｒｓ．１９５８．
２　Ｍａｈａｐａｔｒａ　ＰＫ，Ｐａｌ　Ｍ，Ｃｈａｕｄｈｕｒｉ　ＡＫＮ，Ｃｈａｋｒａｂｏｒｔｙ
Ｄ，Ｂａｓｕ　Ａ．Ｐｒｅｌｉｍｉｎａｒｙ　ｓｔｕｄｉｅｓ　ｏｎ　ｇｌｙｃａｅｍｉｃ　ｅｆｆｅｃｔｓ　ｏｆ
Ｓｙｚｉｇｉｕｍ　ｃｕｍｉｎｉ　ｓｅｅｄｓ．ＩＲＣＳ　Ｍｅｄ　Ｓｃｉ　Ｂｉｏｃｈｅｍ．１９８５；
１３（７）：６３１－６３２．
３　Ｇｈｏｓｈ　Ｋ，Ｃｈａｋｒａｂｏｒｔｙ　Ｄ，Ｃｈａｔｔｅｒｊｅｅ　ＧＫ，Ｃｈａｕｄｈｕｒｉ
ＡＫＮ，Ｐａｌ　Ｍ．Ｓｔｕｄｉｅｓ　ｏｎ　ａｎｔｉ－ｉｎｆｌａｍｍａｔｏｒｙ　ａｎｄ　ａｎｔｉｐｙ－
ｒｅｔｉｃ　ａｃｔｉｖｉｔｉｅｓ　ｏｆ　Ｓｙｚｉｇｉｕｍ　ｃｕｍｍｉ　Ｌｉｎｎ．ｓｅｅｄｓ．ＩＲＣＳ
Ｍｅｄ　Ｓｃｉ　Ｂｉｏｃｈｅｍ．１９８５；１３：３４０－３４１．
４　Ｃｈａｕｄｈｕｒｉ　ＡＫＮ，Ｐａｌ　Ｓ，Ｇｏｍｅｓ　Ａ，Ｂｈａｔｔａｃｈａｒｙａ　Ｓ．
Ａｎｔｉ－ｉｎｆｌａｍｍａｔｏｒｙ　ａｎｄ　ｒｅｌａｔｅｄ　ａｃｔｉｏｎｓ　ｏｆ　Ｓｙｚｙｇｉｕｍ
ｃｕｍｉｎｉｉ　ｓｅｅｄ　ｅｘｔｒａｃｔ．Ｐｈｙｔｏｔｈｅｒ　Ｒｅｓ．１９９０；４（１）：５－
１０．
５　Ｒａｖｉ　Ｋ，Ｒａｍａｃｈａｎｄｒａｎ　Ｂ，Ｓｕｂｒａｍａｎｉａｎ　Ｓ．Ｅｆｆｅｃｔ　ｏｆ
Ｅｕｇｅｎｉａ　Ｊａｍｂｏｌａｎａ　ｓｅｅｄ　ｋｅｒｎｅｌ　ｏｎ　ａｎｔｉｏｘｉｄａｎｔ　ｄｅｆｅｎｓｅ
ｓｙｓｔｅｍ　ｉｎ　ｓｔｒｅｐｔｏｚｏｔｏｃｉｎ－ｉｎｄｕｃｅｄ　ｄｉａｂｅｔｅｓ　ｉｎ　ｒａｔｓ．Ｌｉｆｅ
Ｓｃｉ．２００４；７５（２２）：２７１７－２７３１．
６　Ｂａｎｅｒｊｅｅ　Ａ，Ｄａｓｇｕｐｔａ　Ｎ，Ｄｅ　Ｂ．Ｉｎ　ｖｉｔｒｏ　ｓｔｕｄｙ　ｏｆ
ａｎｔｉｏｘｉｄａｎｔ　ａｃｔｉｖｉｔｙ　ｏｆ　Ｓｙｚｙｇｉｕｍ　ｃｕｍｉｎｉ　ｆｒｕｉｔ．Ｆｏｏｄ
Ｃｈｅｍ．２００５；９０（４）：７２７－７３３．
７　Ｐｒｉｎｃｅ　ＰＳ，Ｍｅｎｏｎ　ＶＰ，Ｐａｒｉ　Ｌ．Ｈｙｐｏｇｌｙｃａｅｍｉｃ　ａｃｔｉｖｉｔｙ
ｏｆ　Ｓｙｚｉｇｉｕｍ　ｃｕｍｉｎｉ　ｓｅｅｄｓ：ｅｆｆｅｃｔ　ｏｎ　ｌｉｐｉｄ　ｐｅｒｏｘｉｄａｔｉｏｎ
ｉｎ　ａｌｏｘａｎ　ｄｉａｂｅｔｉｃ　ｒａｔｓ．Ｊ　Ｅｔｈｎｏｐｈａｒｍａｃｏｌ．１９９８；６１
（１）：１－７．
８　Ｈｅｌｍｓｔｄｔｅｒ　Ａ．Ｓｙｚｙｇｉｕｍ　ｃｕｍｉｎｉ （Ｌ．）ＳＫＥＥＬＳ
（Ｍｙｒｔａｃｅａｅ）ａｇａｉｎｓｔ　ｄｉａｂｅｔｅｓ—１２５ｙｅａｒｓ　ｏｆ　ｒｅｓｅａｒｃｈ．
Ｐｈａｒｍａｚｉｅ．２００８；６３（２）：９１－１０１．
９　Ｂｈａｔ　Ｍ，Ｚｉｎｊａｒｄｅ　ＳＳ，Ｂｈａｒｇａｖａ　ＳＹ，Ｋｕｍａｒ　ＡＲ，Ｊｏｓｈｉ
ＢＮ．Ａｎｔｉｄｉａｂｅｔｉｃ　Ｉｎｄｉａｎ　ｐｌａｎｔｓ：ａｇｏｏｄ　ｓｏｕｒｃｅ　ｏｆ　ｐｏｔｅｎｔ
ａｍｙｌａｓｅ　ｉｎｈｉｂｉｔｏｒｓ．Ｅｖｉｄ　Ｂａｓｅｄ　Ｃｏｍｐｌｅｍｅｎｔ　Ａｌｔｅｒｎａｔ
Ｍｅｄ．２００８Ｊｕｎ　２７．［Ｅｐｕｂ　ａｈｅａｄ　ｏｆ　ｐｒｉｎｔ］
１０　Ｏ’Ｂｒｉｅｎ　ＲＭ，Ｇｒａｎｎｅｒ　ＤＫ．Ｒｅｇｕｌａｔｉｏｎ　ｏｆ　ｇｅｎｅ　ｅｘｐｒｅｓ－
ｓｉｏｎ　ｂｙ　ｉｎｓｕｌｉｎ．Ｐｈｙｓｉｏｌ　Ｒｅｖ．１９９６；７６（４）：１１０９－１１６１．
１１　Ｒｅａｖｅｎ　ＧＭ．Ｂａｎｔｉｎｇ　ｌｅｃｔｕｒｅ　１９８８．Ｒｏｌｅ　ｏｆ　ｉｎｓｕｌｉｎ　ｒｅｓｉｓｔａｎｃｅ
ｉｎ　ｈｕｍａｎ　ｄｉｓｅａｓｅ．Ｄｉａｂｅｔｅｓ．１９８８；３７（１２）：１５９５－１６０７．
１２　Ｈａｒｒｏｗｅｒ　ＡＤ．Ｃｏｍｐａｒｉｓｏｎ　ｏｆ　ｅｆｆｉｃａｃｙ，ｓｅｃｏｎｄａｒｙ　ｆａｉｌｕｒｅ
ｒａｔｅ，ａｎｄ　ｃｏｍｐｌｉｃａｔｉｏｎｓ　ｏｆ　ｓｕｌｆｏｎｙｌｕｒｅａｓ．Ｊ　Ｄｉａｂｅｔｅｓ
Ｃｏｍｐｌｉｃａｔｉｏｎｓ．１９９４；８（４）：２０１－２０３．
１３　Ｒｅｕｓｅｒ　ＡＪ，Ｗｉｓｓｅｌａａｒ　ＨＡ．Ａｎ　ｅｖａｌｕａｔｉｏｎ　ｏｆ　ｔｈｅ　ｐｏｔｅｎｔｉａｌ
ｓｉｄｅ－ｅｆｆｅｃｔｓ　ｏｆα－ｇｌｕｃｏｓｉｄａｓｅ　ｉｎｈｉｂｉｔｏｒｓ　ｕｓｅｄ　ｆｏｒ　ｔｈｅ
ｍａｎａｇｅｍｅｎｔ　ｏｆ　ｄｉａｂｅｔｅｓ　ｍｅｌｉｔｕｓ．Ｅｕｒ　Ｊ　Ｃｌｉｎ　Ｉｎｖｅｓｔ．
１９９４；２４（３）：１９－２４．
１４　Ｃａｍｐｂｅｌ　ＲＫ，Ｗｈｉｔｅ　ＪＲ　Ｊｒ，Ｓａｕｌｉｅ　ＢＡ．Ｍｅｔｆｏｒｍｉｎ：ａ
ｎｅｗ　ｏｒａｌ　ｂｉｇｕａｎｉｄｅ．Ｃｌｉｎ　Ｔｈｅｒ．１９９６；１８（３）：３６０－３７１．
１５　Ｐａｔｗａｒｄｈａｎ　Ｂ，Ｖａｉｄｙａ　ＡＤＢ，Ｃｈｏｒｇｈａｄｅ　Ｍ．Ａｙｕｒｖｅｄａ
ａｎｄ　ｎａｔｕｒａｌ　ｐｒｏｄｕｃｔｓ　ｄｒｕｇ　ｄｉｓｃｏｖｅｒｙ．Ｃｕｒｒ　Ｓｃｉ．２００４；
８６（６）：７８９－７９９．
１６　Ｓａｉｄ　Ｏ，Ｆｕｌｄｅｒ　Ｓ，Ｋｈａｌｉｌ　Ｋ，Ａｚａｉｚｅｈ　Ｈ，Ｋａｓｓｉｓ　Ｅ，
Ｓａａｄ　Ｂ．Ｍａｉｎｔａｉｎｉｎｇ　ａｐｈｙｓｉｏｌｏｇｉｃａｌ　ｂｌｏｏｄ　ｇｌｕｃｏｓｅ　ｌｅｖｅｌ
ｗｉｔｈ“ｇｌｕｃｏｌｅｖｅｌ”，ａ　ｃｏｍｂｉｎａｔｉｏｎ　ｏｆ　ｆｏｕｒ　ａｎｔｉ－ｄｉａｂｅｔｅｓ
ｐｌａｎｔｓ　ｕｓｅｄ　ｉｎ　ｔｈｅ　ｔｒａｄｉｔｉｏｎａｌ　Ａｒａｂ　ｈｅｒｂａｌ　ｍｅｄｉｃｉｎｅ．
Ｅｖｉｄ　Ｂａｓｅｄ　Ｃｏｍｐｌｅｍｅｎｔ　Ａｌｔｅｒｎａｔ　Ｍｅｄ．２００８；５（４）：
４２１－４２８．
１７　Ｈａｒｄｉｋａｒ　ＡＡ．Ｇｅｎｅｒａｔｉｎｇ　ｎｅｗ　ｐａｎｃｒｅａｓ　ｆｒｏｍ　ｏｌｄ．
Ｔｒｅｎｄｓ　Ｅｎｄｏｃｒｉｎｏｌ　Ｍｅｔａｂ．２００４；１５（５）：１９８－２０３．
１８　Ｂａｎｅｒｊｅｅ　Ｍ，Ｂｈｏｎｄｅ　ＲＲ．Ｉｓｌｅｔ　ｇｅｎｅｒａｔｉｏｎ　ｆｒｏｍ　ｉｎｔｒａ
ｉｓｌｅｔ　ｐｒｅｃｕｒｓｏｒ　ｃｅｌｓ　ｏｆ　ｄｉａｂｅｔｉｃ　ｐａｎｃｒｅａｓ：ｉｎ　ｖｉｔｒｏ　ｓｔｕｄｉｅｓ
ｄｅｐｉｃｔｉｎｇ　ｉｎ　ｖｉｖｏ　ｄｉｆｆｅｒｅｎｔｉａｔｉｏｎ．ＪＯＰ．２００３；４（４）：
１３７－１４５．
１９　Ｇｒａｙ　ＡＭ，Ｆｌａｔｔ　ＰＲ．Ｎａｔｕｒｅ’ｓ　ｏｗｎ　ｐｈａｒｍａｃｙ：ｔｈｅ　ｄｉａｂｅｔｅｓ
ｐｅｒｓｐｅｃｔｉｖｅ．Ｐｒｏｃ　Ｎｕｔｒ　Ｓｏｃ．１９９７；５６（１Ｂ）：５０７－５１７．
２０　Ｇｕｐｔａ　Ｓ，Ｄａｄｈｅｅｃｈ　Ｎ，Ｓｉｎｇｈ　Ａ，Ｓｏｎｉ　Ｓ，Ｂｈｏｎｄｅ　ＲＲ．
Ｅｎｉｃｏｓｔｅｍｍａ　ｌｉｔｔｏｒａｌｅ：ａ　ｎｅｗ　ｔｈｅｒａｐｅｕｔｉｃ　ｔａｒｇｅｔ　ｆｏｒ　ｉｓｌｅｔ
ｎｅｏｇｅｎｅｓｉｓ．Ｉｎｔ　Ｊ　Ｉｎｔｅｇｒ　Ｂｉｏｌ．２０１０；９（１）：４９－５３．
２１　Ｍｏｒｉｓｓｅｔ　Ｊ．Ｉｎｔｅｒｖｅｎｔｉｏｎ　ｏｆ　ＧＩ　ｎｅｕｒｏｐｅｐｔｉｄｅｓ　ｉｎ　ｐａｎｃｒｅａｔｉｃ
ｇｒｏｗｔｈ　ａｎｄ　ｒｅｇｅｎｅｒａｔｉｏｎ：ｃｏｍｐａｒｉｓｏｎ　ｗｉｔｈ　ｃｈｏｌｅｃｙｓｔｏｋｉｎｉｎ．
Ｊ　Ｐｈｙｓｉｏｌ　Ｐｈａｒｍａｃｏｌ．２００３；５４：１２７－１４１．
２２　Ｎａｇａｐｐａ　ＡＮ，Ｔｈａｋｕｒｄｅｓａｉ　ＰＡ，Ｖｅｎｋａｔ　Ｒａｏ　Ｎ，Ｓｉｎｇｈ
Ｊ．Ａｎｔｉｄｉａｂｅｔｉｃ　ａｃｔｉｖｉｔｙ　ｏｆ　Ｔｅｒｍｉｎａｌｉａ　ｃａｔａｐｐａ Ｌｉｎｎ
ｆｒｕｉｔｓ．Ｊ　Ｅｔｈｎｏｐｈａｒｍａｃｏｌ．２００３；８８（１）：４５－５０．
２３　Ｋｏｊｉｍａ　Ｉ，Ｕｍｅｚａｗａ　Ｋ．Ｃｏｎｏｐｈｙｌｉｎｅ：ａ　ｎｏｖｅｌ　ｄｉｆｆｅｒｅｎ－
ｔｉａｔｉｏｎ　ｉｎｄｕｃｅｒ　ｆｏｒ　ｐａｎｃｒｅａｔｉｃβｃｅｌｓ．Ｉｎｔ　Ｊ　Ｂｉｏｃｈｅｍ　Ｃｅｌ
Ｂｉｏｌ．２００６；３８（５－６）：９２３－９３０．
２４　Ａｈｍｅｄ　ＡＢ，Ｒａｏ　ＡＳ，Ｒａｏ　ＭＶ．Ｉｎ　ｖｉｔｒｏ　ｃａｌｕｓ　ａｎｄ　ｉｎ
ｖｉｖｏ　ｌｅａｆ　ｅｘｔｒａｃｔ　ｏｆ　Ｇｙｍｎｅｍａ　ｓｙｌｖｅｓｔｒｅ　ｓｔｉｍｕｌａｔｅβ－ｃｅｌｓ
ｒｅｇｅｎｅｒａｔｉｏｎ　ａｎｄ　ａｎｔｉ－ｄｉａｂｅｔｉｃ　ａｃｔｉｖｉｔｙ　ｉｎ　Ｗｉｓｔａｒ　ｒａｔｓ．
Ｐｈｙｔｏｍｅｄｉｃｉｎｅ．２０１０；１７（１３）：１０３３－１０３９．
２５　Ｓｈａｎｍｕｇａｓｕｎｄａｒａｍ　ＥＲ，Ｇｏｐｉｎａｔｈ　ＫＬ，Ｒａｄｈａ　Ｓｈａｎｍｕ－
ｇａｓｕｎｄａｒａｍ　Ｋ，Ｒａｊｅｎｄｒａｎ　ＶＭ．Ｐｏｓｓｉｂｌｅ　ｒｅｇｅｎｅｒａｔｉｏｎ　ｏｆ
ｔｈｅ　ｉｓｌｅｔｓ　ｏｆ　Ｌａｎｇｅｒｈａｎｓ　ｉｎ　ｓｔｒｅｐｔｏｚｏｔｏｃｉｎ－ｄｉａｂｅｔｉｃ　ｒａｔｓ
ｇｉｖｅｎ　Ｇｙｍｎｅｍａ　ｓｙｌｖｅｓｔｒｅ　ｌｅａｆ　ｅｘｔｒａｃｔｓ．Ｊ　Ｅｔｈｎｏｐｈａｒｍａｃｏｌ．
１９９０；３０（３）：２６５－２７９．
２６　Ｄａｓ　ＡＶ，Ｐａｄａｙａｔｔｉ　ＰＳ，Ｐａｕｌｏｓｅ　ＣＳ．Ｅｆｆｅｃｔ　ｏｆ　ｌｅａｆ
ｅｘｔｒａｃｔ　ｏｆ　Ａｅｇｌｅ　ｍａｒｍｅｌｏｓｅ （Ｌ．）Ｃｏｒｒｅａ　ｅｘ　Ｒｏｘｂ．ｏｎ
ｈｉｓｔｏｌｏｇｉｃａｌ　ａｎｄ　ｕｌｔｒａｓｔｒｕｃｔｕｒａｌ　ｃｈａｎｇｅｓ　ｉｎ　ｔｉｓｓｕｅｓ　ｏｆ
ｓｔｒｅｐｔｏｚｏｔｏｃｉｎ　ｉｎｄｕｃｅｄ　ｄｉａｂｅｔｉｃ　ｒａｔｓ．Ｉｎｄｉａｎ　Ｊ　Ｅｘｐ　Ｂｉｏｌ．
·６８３１· 中西医结合学报２０１１年１２月第９卷第１２期　Ｊｏｕｒｎａｌ　ｏｆ　Ｃｈｉｎｅｓｅ　Ｉｎｔｅｇｒａｔｉｖｅ　Ｍｅｄｉｃｉｎｅ，Ｄｅｃｅｍｂｅｒ　２０１１，Ｖｏｌ．９，Ｎｏ．１２
１９９６；３４（４）：３４１－３４５．
２７　Ｓｈａｒｍａ　ＳＢ，Ｎａｓｉｒ　Ａ，Ｐｒａｂｈｕ　ＫＭ，Ｍｕｒｔｈｙ　ＰＳ．Ａｎｔｉ－
ｈｙｐｅｒｇｌｙｃｅｍｉｃ　ｅｆｅｃｔ　ｏｆ　ｔｈｅ　ｆｒｕｉｔ－ｐｕｌｐ　ｏｆ　Ｅｕｇｅｎｉａ　ｊａｍｂｏｌａｎａ
ｉｎ　ｅｘｐｅｒｉｍｅｎｔａｌ　ｄｉａｂｅｔｅｓ　ｍｅｌｉｔｕｓ．Ｊ　Ｅｔｈｎｏｐｈａｒｍａｃｏｌ．
２００６；１０４（３）：３６７－３７３．
２８　Ｇｈｏｓｈ　Ｓ，Ｓｕｒｙａｗａｎｓｈｉ　ＳＡ．Ｅｆｆｅｃｔ　ｏｆ　Ｖｉｎｃａ　ｒｏｓｅａ　ｅｘｔｒａｃｔｓ
ｉｎ　ｔｒｅａｔｍｅｎｔ　ｏｆ　ａｌｏｘａｎ　ｄｉａｂｅｔｅｓ　ｉｎ　ｍａｌｅ　ａｌｂｉｎｏ　ｒａｔｓ．
Ｉｎｄｉａｎ　Ｊ　Ｅｘｐ　Ｂｉｏｌ．２００１；３９（８）：７４８－７５９．
２９　Ｘｉｕ　ＬＭ，Ｍｉｕｒａ　ＡＢ，Ｙａｍａｍｏｔｏ　Ｋ，Ｋｏｂａｙａｓｈｉ　Ｔ，Ｓｏｎｇ
ＱＨ，Ｋｉｔａｍｕｒａ　Ｈ，Ｃｙｏｎｇ　ＪＣ．Ｐａｎｃｒｅａｔｉｃ　ｉｓｌｅｔ　ｒｅｇｅｎｅｒａ－
ｔｉｏｎ　ｂｙ　ｅｐｈｅｄｒｉｎｅ　ｉｎ　ｍｉｃｅ　ｗｉｔｈ　ｓｔｒｅｐｔｏｚｏｔｏｃｉｎ－ｉｎｄｕｃｅｄ
ｄｉａｂｅｔｅｓ．Ａｍ　Ｊ　Ｃｈｉｎ　Ｍｅｄ．２００１；２９（３－４）：４９３－５００．
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２００９Ａｐｒ　２３．［Ｅｐｕｂ　ａｈｅａｄ　ｏｆ　ｐｒｉｎｔ］
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ａｎｄ　ｇａｓｔｒｉｎ　ｉｎｄｕｃｅｓ　ｎｅｏｇｅｎｅｓｉｓ　ｏｆ　ｈｕｍａｎ　ｉｓｌｅｔβ－ｃｅｌｓ
ｆｒｏｍ　ｐａｎｃｒｅａｔｉｃ　ｄｕｃｔ　ｃｅｌｓ　ａｎｄ　ａｎ　ｉｎｃｒｅａｓｅ　ｉｎ　ｆｕｎｃｔｉｏｎａｌ
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ｏｆ　ｐｌａｔｅｌｅｔ－ｄｅｒｉｖｅｄ　ｇｒｏｗｔｈ　ｆａｃｔｏｒ　ａｎｄ　ｓｏｍａｔｏｍｅｄｉｎ－Ｃ／
ｉｎｓｕｌｉｎ－ｌｉｋｅ　ｇｒｏｗｔｈ　ｆａｃｔｏｒ Ⅰ ｏｎ　ｔｈｅ　ｄｅｏｘｙｒｉｂｏｎｕｃｌｅｉｃ
ａｃｉｄ　ｒｅｐｌｉｃａｔｉｏｎ　ｏｆ　ｆｅｔａｌ　ｒａｔ　ｉｓｌｅｔｓ　ｏｆ　Ｌａｎｇｅｒｈａｎｓ　ｉｎ　ｔｉｓｓｕｅ
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ＸＪ，Ｌｅａｈｙ　ＪＬ．Ｅｎｈａｎｃｅｄ　ｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎ　ｏｆ　ｉｎｓｕｌｉｎ　ｒｅｃｅｐｔｏｒ
ｓｕｂｓｔｒａｔｅ－２ａｎｄ　ａｃｔｉｖａｔｉｏｎ　ｏｆ　ｐｒｏｔｅｉｎ　ｋｉｎａｓｅ　Ｂ／Ａｋｔ　ｉｎ
ｒｅｇｅｎｅｒａｔｉｎｇ　ｐａｎｃｒｅａｔｉｃ　ｄｕｃｔ　ｅｐｉｔｈｅｌｉｕｍ　ｏｆ　６０％－ｐａｒｔｉａｌ
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１９９６；４６（４）：３５７－３６１．
海南蒲桃种子促进实验性糖尿病胰岛细胞再生的研究
Ｍｅｎａｋｓｈｉ　Ｂｈａｔ　Ｄｕｓａｎｅ，Ｂｉｍｂａ　Ｎ．Ｊｏｓｈｉ
Ｂｉｏｍｅｔｒｙ　ａｎｄ　Ｎｕｔｒｉｔｉｏｎ　Ｇｒｏｕｐ，Ａｎｉｍａｌ　Ｓｃｉｅｎｃｅ　Ｄｉｖｉｓｉｏｎ，Ａｇｈａｒｋａｒ　Ｒｅｓｅａｒｃｈ　Ｉｎｓｔｉｔｕｔｅ，Ｐｕｎｅ　４１１００４，Ｉｎｄｉａ
目的：研究海南蒲桃（Ｓｙｚｙｇｉｕｍ　ｃｕｍｉｎｉ）种子提取物ＳＣ２对链脲霉素诱导的实验性糖尿病小鼠胰岛细胞再
生的作用。
方法：瑞士小鼠腹膜内注射链脲霉素诱导实验性糖尿病。治疗组给予口服海南蒲桃种子提取物ＳＣ２（２ｇ／Ｌ）
共２１ｄ，期间有规律地测量小鼠血糖和体质量。第２０天进行口服葡萄糖耐量实验。实验结束后处死小鼠并
分离组织。测量肝组织内葡萄糖－６－磷酸脱氢酶活性、肝糖元和肌糖元含量、血浆胰岛素及血浆Ｃ肽水平。
结果：经ＳＣ２治疗的实验性糖尿病小鼠血糖水平恢复正常，肝组织内葡萄糖－６－磷酸脱氢酶活性升高，肝糖元
和肌糖元含量升高，血浆胰岛素和Ｃ肽水平升高。组织学结果显示，ＳＣ２治疗组出现新生胰岛细胞，提示
ＳＣ２具有促进胰岛细胞生成的作用。这些新生胰岛细胞可以在实验性糖尿病小鼠体内产生胰岛素。
结论：本研究结果证明了海南蒲桃种子提取物ＳＣ２在胰岛再生和胰岛素分泌中的作用。这种作用结合其他
的治疗策略可能在将来为临床控制糖尿病提供一个更理想的途径。
关键词：糖尿病，实验性；蒲桃属；植物提取物；降血糖药；胰岛；小鼠
·７８３１·中西医结合学报２０１１年１２月第９卷第１２期　Ｊｏｕｒｎａｌ　ｏｆ　Ｃｈｉｎｅｓｅ　Ｉｎｔｅｇｒａｔｉｖｅ　Ｍｅｄｉｃｉｎｅ，Ｄｅｃｅｍｂｅｒ　２０１１，Ｖｏｌ．９，Ｎｏ．１２