全 文 ：不同保存方法对牡丹花瓣中花青素和黄酮含量的影响1
杨琴 1,2,3,4，袁涛 1,2.3,4,*，孙湘滨 5
（1 北京林业大学园林学院，北京 100083； 2 国家花卉工程技术研究中心，北京 100083；3 花卉种质创
新与分子育种北京市重点实验室，北京 100083； 4 城乡生态环境北京实验室，北京 100083；5 北京东方
园林股份有限公司，北京 100012）
摘要 采用高效液相色谱法（HPLC），对 3 个牡丹品种花瓣的花青素和黄酮组成及含量进行
测定，以比较四种不同处理方法对牡丹花瓣色素组成及含量的影响。最后采用紫外-可见分
光光度法进一步研究了干燥箱不同干燥温度对色素的影响。实验结果表明：4种方法的保存
效果差别明显，其中以干燥箱干燥后密封避光保存法对色素影响最小，且该方法成本低、运
输方便、操作简单，为保存牡丹花瓣的最优方法。建议干燥温度范围为 60~80℃。
关键词 牡丹；花青素；黄酮；保存方法
中图分类号： 文章编号： 文献标志码：
Effect of different preservation methods on content of pigments in tree peony
Yang Qin
1,2,3,4
, ,Yuan Tao
1,2,3,4,
*，Sun Xiang-bin5
( 1College of Landscape Architecture, Beijing Forestry University, Beijing 100083, China; 2National
Engineering Research Center for Floriculture, Beijing 100083,China; 3Beijing Key Laboratory of
Ornamental Plants Germplasm Innovation & Molecular Breeding, Beijing 100083, China; 4Beijing
Laboratory of urban and rural ecology environment, Beijing 100083, China; 5Beijing Orient
Landscape Co. Ltd，Beijing 100012，China )
Abstract: In this paper, the effects of four different preservation methods on the pigment in tree
peony petal were explored by determining the component and content of
flavonoids and anthocyanins using high performance liquid chromatography (HPLC) with three
tree peony cultivars. UV-visible spectra of total anthocyanins (TA) and total flavonols (TF) were
used to further examine the effects of different drying temperatures on pigment. The results
showed that there were noteworthy differences among the four methods in terms of preserving
pigment. Of these four methods, the hot-air-drying method was regarded as the optimal method to
preserve tree peony petal due to its advantages including minimum impact on pigments, low cost,
easy transportation and easy operation. Finally, it is suggested that the drying temperature should
range from 60℃ to 80℃.
Key words: tree peony; anthocyanins; flavonoids; preservation method
牡丹（Paeonia suffruticosa Andr.）为芍药科芍药属植物，素有“花中之王”的美誉，深
受国人喜爱，也是世界久负盛名的名贵花卉[1]。牡丹花瓣中的色素主要为花青素、黄酮和黄
酮醇的苷类[2]。其中花青素是红、粉、紫、蓝等花色的主体色素，同时具有重要的生物活性，
如抗氧化[3]、抗炎症[4]、抗有害微生物、抑制血小板凝聚、抗肿瘤活性、自由基清除能力和
改善胰岛素抵抗等[5]。黄酮和黄酮醇不仅作为助色素成分影响牡丹的花色，并且也具有重要
的生物活性和药用价值。如牡丹花中的槲皮素具有抗脑缺血、抗肿瘤、抗自由基、抗氧化、
镇痛等多种功能；异鼠李黄素和山萘黄素有抗心肌缺血的作用[6]。因此利用牡丹花色素开发
功能性食品、天然色素、保健品和药物等具有较好的应用前景。
目前，对于牡丹花色素的研究主要集中在色素与花色关系和色素理化性质的研究，对于

收稿日期：2014-00-00 * 通讯联系人
第一作者：杨琴（1988-），女，硕士，研究方向：牡丹花色遗传育种。
通讯作者：袁涛（1969-），女，副教授，研究方向：牡丹遗传育种。
基金项目：花卉产业技术创新战略联盟项目；牡丹花色及花香新品种选育(2014hhlm012); 国家林业局重点
科学研究项目（2008-10）:牡丹新优品种繁育及区试
网络出版时间：2015-01-28 13:09
网络出版地址：http://www.cnki.net/kcms/detail/11.1759.TS.20150128.1309.025.html
如何便捷有效地保存牡丹花瓣，最大程度减少色素的降解尚未见报道。目前用于植物材料色
素的处理、保存主要有：液氮浸泡后-80℃保存[7]，干燥剂包埋[8]，自然干燥[9]，干燥箱干燥
[10]。本实验利用高效液相色谱法（HPLC）对不同保存方法处理后花瓣内色素组成及含量的变
化进行了测定，分析各保存方法对色素的影响，进而评判各保存方法的优略，选出简便易行
且保存效果好的方法。并在此基础上利用紫外-可见分光光度法分析干燥箱不同干燥温度对
色素的影响，得到干燥箱保存法适宜的温度范围。本研究分析各种保存方法对牡丹花瓣内色
素的影响程度不仅有利于科研工作中保存花瓣材料，同时对牡丹花瓣的深加工、色素的保存
提取利用也具有重要意义。
1 材料与方法
1.1材料与仪器
‘日月锦’、‘山川飘香’、‘海黄’牡丹品种花瓣 采自河南栾川芍药科植物迁地保
护及新品种繁育中心；芍药花素-3-葡糖苷（Peonidin-3-o-glucoside，Pn3G）、芍药花素-3,5-
二葡糖苷（peonidin-3,5-dio- glucoside, Pn3G5G）、矢车菊素-3-葡糖苷（Cyanidin-3-o-glucoside，
Cy3G）、矢车菊-3,5-二葡糖苷（Cyanidin-3,5-dio- glucoside，Cy3G5G）、天竺葵素-3-葡糖
苷 （ Pelargonidin- 3-o-glucoside ， Pg3G ） 和 天 竺 葵 素 -3,5- 二 葡 糖 苷
（Pelargonidin-3,5-dio-glucoside，Pg3G5G）6种标准品购自法国extrasynthese公司；山奈黄素
（kaempferol，Km）、槲皮素（quercetin,Qu）、异鼠李素（isorhamnetin,Is）、芹黄素（Apigenin，
Ap）、木犀草素（Luteolin，Lu）、金圣草黄素（Chrysoeriol，Ch）6种标准品购自上海安
谱公司；甲醇、三氟乙酸、甲酸、乙酸、乙腈均为色谱纯；盐酸为分析纯；变色硅胶干燥剂。
Riomate 3S紫外-可见分光光度计 赛默飞世尔科技公司；安捷伦1200高效液相色谱仪
安捷伦科技有限公司；DHG-9420A型电热鼓风干燥箱 上海捷呈实验仪器有限公司；
Centrifuge5415R低温离心机 德国Eppendorf公司。
1.2方法
1.2.1花瓣处理
盛花期采摘牡丹花瓣，将花瓣清洗干净并擦干其表面水分。准确称取150g，充分混合均
匀后分为均等的5份，每份30g。1份不做任何处理的新鲜花瓣为对照，其余4份分别用下述方
法处理。为减小花瓣颜色差异造成的误差，实验重复3次。
方法一，液氮浸泡5s后立刻放入-80℃冰箱中保存[7]。
方法二，用变色硅胶干燥剂充分包埋，放于避光干燥处干燥，干燥后的花瓣密封放于常
温避光处保存[8]。
方法三，开水浸泡2s后放入冷水中冷却处理5s，放于干燥器内自然干燥一周，密封后放
于常温避光处保存[9]。
方法四，花瓣均匀铺于干燥箱内，设置干燥箱温度为50℃，每隔30min称量一次花瓣质
量，直至花瓣质量不再变化，密封后放于常温避光处保存[10]。
1.2.2不同温度干燥处理花瓣
在盛花期采摘‘日月锦’、‘山川飘香’和‘海黄’3种牡丹花瓣，每种花瓣取240g，
分为均等的8份，每份30g。干燥箱温度依次设置为40、50、60、70、80、90、100℃。分别
在不同温度下干燥处理牡丹花瓣，每隔30min称量一次花瓣质量，直至花瓣质量不再变化为
止，记录干燥所需时间。以未做任何处理的新鲜花瓣为对照。实验重复3次。
1.2.3色素的提取
参考朱满兰[11]所用方法提取处理后的花瓣色素，并对实验方法进行适当调整：从每份材
料中各取其总质量的2%（即0.6g鲜花瓣），加液氮研磨成粉末,加入10mL0.1%盐酸甲醇溶
液，将所有萃取液超声波处理1h，放于4℃冰箱中避光静置24h，4℃离心5min，取上清液，
用0.45µm滤膜过滤。滤液保存于-20℃冰箱中备用。
1.2.4标准品配制
用0.1%盐酸甲醇溶液将花青素和黄酮标准品分别配制为100、50、20、10、5ppm5个浓
度，绘制标准曲线，用于高效液相色谱定性定量分析。
1.2.5高效液相色谱条件
花青素测定条件参考孙卫[11]所用方法，并对流动相及梯度洗脱程序进行适当调整。色谱
柱：Waters Sunfire C18（4.6 mm ×250 mm, 5μ m）；流动相 A 液为三氟乙酸：甲酸：水
=0.1:2:97.9；B 液为三氟乙酸：甲酸：乙腈：水=0.1:1:35:63.9。线性梯度洗脱，程序如下：
0min,30%B;12min,48%B,18min,100%B,20min,30%B。柱温 35℃，流速 0.8mL·min-1,进样体
积 10μL。DAD 检测器，检测波长为 525nm。
黄酮的检测参考钟培星[12]所用方法并做适当调整。流动相 A 液为乙酸：水=10:90；B
液为乙酸：乙腈：水=10:40:50。线性梯度洗脱，程序如下：0min,15%B;30min,45%B;50min,
57%B;55min,80%B;55.1min,15%B; 65min, 15% B。检测波长为 360nm，其他条件与花青素测
定条件相同。
1.2.6花青素和黄酮类色素吸光度测定——紫外分光光度计法
采用紫外-可见分光光度计测定干燥箱不同温度处理后花瓣萃取液在花青素特征吸收波
长（525nm）和黄酮类色素特征吸收波长（360nm）下的吸光度。
1.2.7数据分析
采用标准品半定量法分别计算花瓣中含有的相对于标准品的花青素和黄酮的含量
（µg·100mg-1）[11]。SPSS17.0进行数据处理，采用Duncan法进行平均数多重比较，数据结果
采用均值±标准差表示。
2 结果与分析
2.1花青素种类及含量测定结果
图 1 为高效液相色谱法测定 3 个牡丹品种中花青素色谱图，表 1 为花青素种类及含量变
化情况。从表 1 可见，方法一和方法四两种方法处理后，总花青素（TA）含量与对照组鲜
花瓣相比不存在显著性差异（p>0.05），即 TA 含量无明显降低。方法二和方法三处理后与
对照组相比，TA 含量明显降低，表明这两种保存方法对色素稳定性有一定影响。从各花青
素组分分析，方法二和方法三处理后各花青素组分相对于 TA 的含量变化不大，即这两种方
法对 6 种花青素均有影响且影响程度相近。实验结果表明，四种方法中方法一和方法四对牡
丹花瓣内花青素的保存效果最好。
表 1 不同保存方法对牡丹花瓣内花青素种类及含量的影响
Table 1 The effects of different preservation methods on composition and content of
anthocyanins in tree peony
名称
保存方
法
Cy/(µg·100mg-1) Pg/(µg·100mg-1) Pn/(µg·100mg-1) TA/(µg·100mg-1)
3G5G 3G 3G5G 3G 3G5G 3G
‘日月锦’ 鲜花瓣 — — 951.4138.2a 74.516.3a 283.022.0a 45.712.6a 1354.6129.9a
方法一 — — 836.0226.7a 70.011.3a 282.512.9a 40.812.2a 1206.4248.3a
方法二 — — 752.0218.7ab 52.017.3ab 171.035.6b 29.88.4b 1004.8227.7b
方法三 — — 578.577.8b 48.58.8b 162.232.7b 28.88.3b 818.0117.6b
方法四 — — 936.585.7a 71.320.1a 280.717.2a 40.116.6a 1348.6139.1a
‘山川飘香’ 鲜花瓣 379.630.4a
85.314.0
a
— — 456.215.8a 60.316.8a 964.752.2a
方法一 369.932.5a 65.16.0ab — — 449.224.6a 62.216.3a 959.76.5a
方法二 253.813.0b 45.36.0bc — — 369.516.7b 28.02.8b 716.444.7b
方法三 237.519.1b 29.78.2c — — 312.017.7b 20.59.9b 619.712.9b
方法四 363.831.9a
65.715.7
a
— — 453.311.0a 57.810.5a 947.252.3a
‘海黄’ 鲜花瓣 — — — — 55.312.7a 49.213.9a 107.716.2a
方法一 — — — — 50.015.7a 39.76.4ab 85.86.1b
方法二 — — — — 21.63.5b 19.26.1c 50.17.2c
方法三 — — — — 27.410.0b 28.74.8bc 48.612.8c
方法四 — — — — 50.016.1a 44.49.6ab 96.06.0ab
注：Cy.矢车菊色素；Pg.天竺葵色素；Pn.芍药色素；3G5G.3,5-O-二葡萄糖苷；3G.3-O-葡萄糖苷；TA.总花
青素含量；—.未检测到；a-c表示同一列之间的比较，肩标字母有相同的数据表示无显著性差异(p>0.05)，
字母完全不同表示差异显著(p<0.05)。





























图 1 花青素 HPLC 色谱图
Fig1 HPLC chromatograms of anthocyanins
注：A 日月锦；B 山川飘香；C 海黄；D 标准品。
2.2黄酮种类及含量

A

B

C

D
D
保留时间(min)
色
谱
吸
收
峰
(m
A
U
)
图2为高效液相色谱法测定3个牡丹品种中黄酮类色素色谱图。分析3个样品色谱图中每
个峰的全波长扫描结果，其中14个峰在240nm-280nm和300nm-400nm范围内有特征吸收峰，
因此初步确定这14个组分为黄酮类色素[13]。通过与6个黄酮标准品的保留时间进行对比，将
14个峰中的6个峰进行了定性：a8为木犀草素（Lu）、a9为槲皮素（Qu）、a11为芹黄素（Ap）、
a12为山奈酚（Km）、a13为金圣草黄素（Ch）、a14为异鼠李素（Is）。其余8个组分未做
进一步的定性分析。a8、a9、a11-a14分别用其标准品进行定量分析，其余8个组分用槲皮素
（Qu）标准品进行定量分析。




























保留时间(min)
图 2 黄酮类色素 HPLC 色谱图
Fig 2 HPLC chromatograms of flavonoids
注：A 日月锦；B 山川飘香；C 海黄；D 标准品。
不同方法处理后三个牡丹品种的色素种类没有发生变化，但色素含量变化明显，表 2、
3 和 4 分别为三个品种的黄酮种类及含量变化情况。从表中可见，黄酮类色素的含量变化情
况与花青素变化规律相近，方法一、四处理后与对照组相比 TF 含量无明显变化，方法二、
三处理后与对照组相比，TF 含量明显降低。各种方法处理后 14 种黄酮的含量相对于 TF 无
明显变化。由此可见，方法一和方法四对牡丹花瓣内黄酮类色素的影响最小，为保存牡丹花
色
谱
吸
收
峰
(m
A
U
)
A
B
C
D
瓣内黄酮类色素最好的方法。

表 2 不同保存方法对‘日月锦’花瓣内黄酮类色素种类及含量的影响
Table 2 The effects of different preservation methods on composition and content of flavonoids in
‘Ri Yue Jin’
组分
鲜花瓣
(µg·100mg-1)
方法一
(µg·100mg-1)
方法二
(µg·100mg-1)
方法三
(µg·100mg-1)
方法四
(µg·100mg-1)
a1 36.505.12a 34.067.82a 22.643.72b 24.034.72b 34.563.04a
a2 23.224.02a 22.673.72a 12.742.03b 10.744.92b 20.446.93a
a3 26.095.05a 23.408.03a 16.933.22b 12.046.93b 25.657.37a
a4 44.228.83a 43.8311.83a 26.944.90b 23.026.05b 43.6811.73a
a5 — — — — —
a6 — — — — —
a7 — — — — —
a8(Lu) — — — — —
a9(Qu) — — — — —
a10 4.660.76a 3.830.83a — — 4.020.93a
a11(Ap) — — — — —
a12(Km) 6.460.31a 6.020.93a 3.850.82b 3.910.72b 5.411.03a
a13(Ch) — — — — —
a14(Is) — — — — —
TF 139.0412.93a 130.9410.83a 75.949.63b 69.527.83b 131.3710.83a
注：Lu.木犀草素；Qu.槲皮素；Ap.芹黄素；Km.山萘黄素；Ch.金圣草黄素；Is.异鼠李素；TF.总黄酮含量；
—.未检测到；a-b表示同一行之间的比较，肩标字母有相同的数据表示无显著性差异(p>0.05)，字母完全不
同表示差异显著(p<0.05)。
表 3 不同保存方法对‘山川飘香’花瓣内黄酮类色素种类及含量的影响
Table 3 The effects of different preservation methods on composition and content of flavonoids in
‘Shanchuan Piaoxiang’
组分
鲜花瓣
(µg·100mg-1)
方法一
(µg·100mg-1)
方法二
(µg·100mg-1)
方法三
(µg·100mg-1)
方法四
(µg·100mg-1)
a1 8.921.02a 7.940.93a 4.840.83b 5.940.93b 8.391.78a
a2 10.832.72a 9.030.82a 5.951.31b 4.041.93b 9.862.82a
a3 8.922.81a 8.231.83a 4.830.62b 3.180.63b 7.871.03a
a4 9.722.93a 8.032.73a 3.031.02b 4.020.96b 8.752.43a
a5 12.034.83a 11.471.03a 7.032.78b 7.921.13b 10.863.93a
a6 8.031.93a 6.930.69a 4.121.73b 2.930.75c 6.760.82a
a7 7.211.83a 6.921.52a 2.030.83c 3.990.92b 6.341.03a
a8(Lu) 9.931.03a 8.731.93a 3.930.59b 4.380.84b 9.061.93a
a9(Qu) 4.990.63a 3.840.23a — — 4.760.38a
a10 10.811.36a 9.431.53a 6.730.38b 5.381.73b 9.421.73a
a11(Ap) — — — — —
a12(Km) 6.990.73a 6.130.52a 2.210.27b 2.050.38b 5.60a
a13(Ch) — — — — —
a14(Is) 6.260.28a 5.890.53a 2.840.19b 3.820.51b 5.830.84a
TF 107.9712.73a 98.2611.37a 50.838.62b 42.936.03b 90.6411.03a
注：Lu.木犀草素；Qu.槲皮素；Ap.芹黄素；Km.山萘黄素；Ch.金圣草黄素；Is.异鼠李素；TF.总黄酮含量；
—.未检测到；a-c表示同一行之间的比较，肩标字母有相同的数据表示无显著性差异(p>0.05)，字母完全不
同表示差异显著(p<0.05)。
表 4 不同保存方法下‘海黄’黄酮类色素种类及含量
Table 4 The effects of different preservation methods on composition and content of flavonoids in
‘High Noon’
组分
鲜花瓣
(µg·100mg-1)
方法一
(µg·100mg-1)
方法二
(µg·100mg-1)
方法三
(µg·100mg-1)
方法四
(µg·100mg-1)
a1 9.032.83a 8.931.03a 5.290.92b 5.931.28b 7.801.59a
a2 13.033.82a 11.862.48a 4.602.73b 6.031.84b 12.793.73a
a3 12.933.92a 11.034.93a 8.052.84b 6.931.03b 11.153.62a
a4 6.230.72a 5.711.33a — — 5.110.62a
a5 6.030.39a 5.030.71a 3.070.03b 2.840.27b 5.550.39a
a6 6.861.73a 5.930.72a 2.790.49b 3.520.62b 5.140.37a
a7 15.857.83a 13.846.03a 5.091.85c 8.364.62b 13.365.83a
a8(Lu) 6.140.93a 5.930.38a 3.280.42b 3.820.53b 5.151.57a
a9(Qu) — — — — —
a10 23.846.92a 20.866.91a 12.474.02b 11.386.03b 21.364.39a
a11(Ap) 5.930.37a 4.821.44a — — 4.450.49a
a12(Km) 6.721.03a 5.031.33a — — 5.921.28a
a13(Ch) — — — — —
a14(Is) — — — — —
TF 112.9316.73a 99.0513.96a 52.068.02b 48.939.02b 103.3912.72a
注：Lu.木犀草素；Qu.槲皮素；Ap.芹黄素；Km.山萘黄素；Ch.金圣草黄素；Is.异鼠李素；TF.总黄酮含量；
—.未检测到；a-b表示同一行之间的比较，肩标字母有相同的数据表示无显著性差异(p>0.05)，字母完全不
同表示差异显著(p<0.05)。
2.3 紫外-可见分光光度法测定结果
表 5 为干燥箱不同温度干燥处理后花瓣萃取液的吸光度值，从表中可见，在不同温度处
理后花瓣在 525nm 和 360nm 波长下吸光度值均不存在显著性差异，表明 TA 和 TF 含量均
无明显变化。因此，在 40℃至 100℃温度范围内干燥牡丹花瓣未对其色素造成明显影响。
表 6 为不同温度干燥所需时间，干燥箱温度越高时干燥花瓣所需时间越短，当温度达到
80℃以上之后干燥所需时间差别较小，约为 1.3 小时。因此，综合考虑效率和成本等因素，
干燥温度选择在 60℃-80℃范围内较适宜。
表 5 不同温度处理后牡丹品种吸光度值
Table 5 The absorbance of tree peony cultivars after different treating temperature
材料名称 处理温度（oC） 360nm 525nm
‘日月锦’ 40 4.730.11a 3.830.7a
50 4.720.13
a 3.820.05
a
60 4.710.18
a 3.800.04
a
70 4.710.02
a 3.880.08
a
80 4.800.08
a 3.920.01
a
90 4.820.16
a 3.850.06
a
100 4.840.06a 3.910.01a
‘山川飘香’ 40 4.670.11a 3.300.25a
50 4.750.24
a 3.530.32
a
60 4.400.23
a 3.630.22
a
70 4.480.41
a 3.310.24
a
80 4.580.49
a 3.530.45
a
90 4.520.33
a 3.690.07
a
100 4.630.39
a 3.750.15
a
‘海黄’ 40 4.260.17a 0.230.04a
50 4.310.19
a 0.230.05
a
60 4.380.26
a 0.240.05
a
70 4.400.25
a 0.270.06
a
80 4.290.26
a 0.300.02
a
90 4.400.27
a 0.290.07
a
100 4.350.31
a 0.280.04
a
表 6 不同温度干燥花瓣所需时间
Table 6 Drying time of different treating temperature
干燥箱干燥温度（℃） 40 50 60 70 80 90 100
干燥所需时间（h） 10 8 5 2 1.5 1.3 1.3
3 讨论
3.1不同保存方法讨论
实验结果证明，四种保存牡丹花瓣的方法中，方法一和方法四对花青素和黄酮类色素影
响最小。因此从保存效果方面分析，这两种方法同为最好的保存方法。方法二和方法三处理
后花瓣内花青素和黄酮类色素含量均明显降低，与另外两种方法相比，方法二和方法三的保
存效果稍差些。
分析方法二和方法三对色素造成影响的原因，作者认为主要原因为两种方法干燥处理时
间较长，干燥过程中花瓣内水分丧失缓慢，花瓣内酶对色素的分解作用虽逐渐降低，但仍造
成部分色素的分解。方法三将花瓣在热水中浸泡2秒后冷却,王亮生等人认为该方法可以抑制
酶对色素的分解作用[9]，但本文实验结果表明该方法的保存效果并不理想。作者认为一方面
可能由于热水处理时间较短，未能使酶完全失活；另一方面影响花色素稳定性的因素还有很
多，包括花瓣内pH值的变化，空气中氧的作用，光照，温度，微生物等因素[16]，这些因素也
可能是造成色素分解的原因之一。这些因素在色素保存过程中的影响作用有待进一步研究。
从简便性和成本方面分析，方法一液氮浸泡后低温保存法所需设备多且价格较高，大规
模处理花瓣时需要大量的液氮，成本高，且处理后的花瓣必须冷藏，运输成本高。方法二干
燥剂包埋法生产成本较低，不需要过多设备，干燥剂吸水后可烘干继续使用。但由于处理时
间较长，处理过程中若干燥剂未能均匀包埋花瓣或未及时更换干燥剂，易造成花瓣的局部腐
烂现象。方法三自然干燥法为最简便方法，对实验技术和设备要求最低。但该方法所需时间
最长，且大量干燥花瓣时需要场地较大，因此该方法不适合大规模工厂化生产。方法四干燥
箱干燥法处理时间较短，对外界环境没有特殊要求，生产成本较低并且克服了方法一的运输
不便的缺点。因此综合考虑保存效果、操作简便性和成本问题，方法四干燥箱干燥法为最适
宜的保存牡丹花瓣的方法。
3.2干燥箱干燥温度的确定
有资料表明,花青素分解的最高温度是 110℃左右, 建议在花色素加工中, 温度应低于
60℃[14]。但本实验干燥箱干燥法的结果表明，在 40℃至 100℃温度范围内，干燥温度对色素
没有造成明显的影响，且干燥温度越高，所需时间越短，当温度到达 80℃以后，干燥时间
接近于不变，约为 1.3h。因此，综合考虑效率和成本等因素，作者建议干燥温度选择在 60℃
~80℃范围内。
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