全 文 ：黑龙江农业科学２０１６（９）：１１～１４
Ｈｅｉｌｏｎｇｊｉａｎｇ　Ａｇｒｉｃｕｌｔｕｒａｌ　Ｓｃｉｅｎｃｅｓ
野生湖北百合不定芽诱导及再生植株的建立
蒋　瑶１，陈文波１，周朝伟１，陈其兵２
（１．凯里学院 环境与生命科学学院，贵州 凯里５５６０１１；２．四川农业大学 风景园林学院，四川
成都６１１１３０）
摘要：为了加强野生湖北百合资源保存与利用，选用黔东南州野生湖北百合为材料，鳞茎及茎段为外植体，探
讨不同浓度激素配比对其不定芽诱导、增殖及生根的影响。结果表明：诱导不定芽的最佳培养基为 ＭＳ＋
１．０ｍｇ·Ｌ－１　６－ＢＡ＋０．５ｍｇ·Ｌ－１　ＮＡＡ，但茎段诱导不定芽高于鳞片，出芽率分别为６６．６７％和５９．６３％，单块
外植体出芽个数分别为２和１，且茎段污染率比鳞片的污染率低。茎段诱导最佳增殖培养基为 ＭＳ＋
０．１ｍｇ·Ｌ－１　６－ＢＡ＋１．０ｍｇ·Ｌ－１　ＮＡＡ，增殖率为８３．３３％，平均增殖系数为２．１１，其生长状况良好，为最佳增
殖培养基。茎段诱导最佳生根培养基为１／２ＭＳ＋０．３ｍｇ·Ｌ－１　ＮＡＡ，诱导生根率高达９３．３３％，平均生根数为
３．１８。
关键词：湖北百合；鳞片；茎段；组织培养
中图分类号：Ｓ６８２．２；Ｑ９４３．１　文献标识码：Ａ　文章编号：１００２－２７６７（２０１６）０９－００１１－０４　ＤＯＩ：１０．１１９４２／ｊ．ｉｓｓｎ１００２－２７６７．２０１６．０９．００１１
收稿日期：２０１６－０７－２８
基金项目：贵州省科技厅资助项目（黔科合Ｊ字［２０１４］２１５３
号）；凯里学院博士启动基金资助项目（ＢＳ２０１３３２）
第一作者简介：蒋瑶（１９８２－），女，四川省罗江县人，博士，副
教授，从事植物生物技术研究。Ｅ－ｍａｉｌ：ｊｉａｎｇｙａｏ０２２１＠
１６３．ｃｏｍ。
　　 湖北百合 （Ｌｉｌｉｕｍｈｅｎｒｙｉ　Ｂａｋｅｒ）为百合
科（Ｌｉｌｉａｃｅａｅ）百合属（Ｌｉｌｉｕｍ）多年生草本植物，
是黔东南特有的野生植物资源之一，同时也是园
艺上重要的育种材料。原产于中国湖北、贵州等
地，生长于山坡、石缝，海拔７００～１　０００ｍ。
湖北百合鳞茎近球形，鳞片矩圆形，茎紫色，
高１～２ｍ，叶为矩圆状披针状，可作为药用植
物［１］，也可食用，尤其是花极具观赏价值［２］。但也
出现常规的分球、分株芽、鳞片扦插、鳞片包埋等
过度的无性繁殖导致品种退化，如病害严重、产量
降低、品质下降等［３］。近年来，有关湖北百合研究
主要集中在对其资源调查与评价［４］、遗传多样性
研究［５］、抗病基因鉴定［６］、染色体细胞学［７］研究等
方面，鲜见有关茎段组织培养的报道。
因此，利用组织培养技术，以黔东南州野生湖
北百合鳞片和茎段为外植体，探讨不同激素浓度
配比对其影响，以期为当地湖北百合的组培体系
建立积累相关的资料，从而有效解决其退化现象，
为种质资源保存提供依据。
１　材料与方法
１．１　材料
１．１．１　外植体　野生湖北百合采自凯里学院艺
术楼后山，选择生长健壮、无病虫害的湖北百合植
株的鳞茎和幼嫩的茎段，避光保湿带回实验室
备用。
１．１．２　试剂　７０％乙醇（ＡＲ，重庆川东化工），
０．１％ ＨｇＣｌ２，６－ＢＡ，ＮＡＡ，ＭＳ培养基，试剂均为
分析纯（ＡＲ），其产地为天津科密欧（乙醇除外）。
１．１．３　仪器与设备　立式压力蒸汽灭菌锅（ＸＱ－
ＬＳ－７５ｓⅡ，上海博讯）、电热鼓风干燥箱（１０１型，
北京科伟）、净化工作台（ＪＨ－１，北京科伟、电热蒸
馏 水 器 （ＹＮ－ＺＤ－２，上 海 博 讯 ）、电 子 天
平（ＢＳＡ１２４Ｓ，赛多利斯）等。
１．２　方法
１．２．１　外植体的消毒　选取鳞片的中外层，将其
泥土洗净，在流水条件下冲洗１ｈ，采用７５％乙醇
消毒３０ｓ，无菌水处理２～３次，再采用０．１％
ＨｇＣｌ２消毒１０ｍｉｎ，无菌水处理３～５次。茎段用
７５％乙醇消毒２０ｓ，无菌水洗３次，０．１％ＨｇＣｌ２
消毒８ｍｉｎ，用无菌水洗３～５次，备用。
１．２．２　不定芽的诱导培养　将消毒后的野生湖
北百合鳞片切成０．５ｃｍ×０．５ｃｍ的小块，且周围
都形成创口面；将其茎段切成１ｃｍ左右，接种到
４种不同的 ＭＳ培养基：（１）ＭＳ＋１．０ｍｇ·Ｌ－１　６－
ＢＡ＋０．５ｍｇ·Ｌ－１　ＮＡＡ；（２）ＭＳ＋２．０ｍｇ·Ｌ－１　６－
ＢＡ＋１．０ｍｇ·Ｌ－１　ＮＡＡ；（３）ＭＳ＋０．１ｍｇ·Ｌ－１６－
ＢＡ＋１．０ｍｇ·Ｌ－１　ＮＡＡ；（４）ＭＳ＋１．０ｍｇ·Ｌ－１　６－
ＢＡ＋１．０ｍｇ·Ｌ－１　ＮＡＡ，加入蔗糖３０ｇ·Ｌ－１，琼脂
粉７ｇ·Ｌ－１，ｐＨ５．８。暗培养３ｄ后，再进行光照培
养，其光照强度２　０００ｌｘ，培养温度为（２５±１）℃，
１１
　　　　　黑　龙　江　农　业　科　学 ９期
培养湿度为（８０±２）％，观察不同激素浓度组合对
不定芽的诱导情况，并计算污染率、诱导率。
１．２．３　不定芽的增殖培养　不定芽转入４种不
同的增殖培养基：（１）ＭＳ＋１．０ｍｇ·Ｌ－１　６－ＢＡ＋
０．５ｍｇ·Ｌ－１　ＮＡＡ；（２）ＭＳ＋１．０ｍｇ·Ｌ－１　６－ＢＡ＋
０．２ｍｇ·Ｌ－１　ＮＡＡ；（３）ＭＳ＋２．０ｍｇ·Ｌ－１　６－ＢＡ＋
１．０ｍｇ·Ｌ－１　ＮＡＡ；（４）ＭＳ＋０．１ｍｇ·Ｌ－１　６－ＢＡ＋
１．０ｍｇ·Ｌ－１　ＮＡＡ，加入蔗糖３０ｇ·Ｌ－１，琼脂粉
７ｇ·Ｌ－１，ｐＨ　５．８。观察其不定芽增殖情况，培养
３０ｄ后，并计算增殖率和增殖系数。
１．２．４　生根培养　将增殖所得健壮的不定芽接种
于５种不同的生根培养基：（１）１／２ＭＳ＋０．２ｍｇ·Ｌ－１
ＮＡＡ；（２）１／２ＭＳ＋０．６ｍｇ·Ｌ－１　ＮＡＡ；（３）１／２ＭＳ＋
０．２ｍｇ·Ｌ－１　６－ＢＡ＋１．０ｍｇ·Ｌ－１　ＮＡＡ；（４）１／２ＭＳ＋
０．３ｍｇ·Ｌ－１　ＮＡＡ；（５）ＭＳ＋０．２ｍｇ·Ｌ－１　ＮＡＡ，加
入活性炭１．０ｍｇ·Ｌ－１，蔗糖３０ｇ·Ｌ－１，琼脂粉
７ｇ·Ｌ－１，ｐＨ　５．８。转接７ｄ后开始观察其生根情
况，在培养３０ｄ后统计生根数，在此过程中对其
进行拍照，计算其生根率。
１．２．５　数据统计及分析　利用ＳＰＳＳ１９．０进行
相关统计分析，每个处理重复３次，每个重复测定
３次。
污染率（％）＝
污染的外植体数
接种外植体总数×１００；
芽诱导率（％）＝
诱导出不定芽的外植体数
成活接种外植体总数 ×１００；
增殖率（％）＝
新诱导不定芽数
成活接种不定芽数×１００；
增殖系数＝
增殖后不定芽数
增殖前不定芽数
；
生根率（％）＝
生根幼苗数量
接种幼苗数量×１００
２　结果与分析
２．１　不同外植体对野生湖北百合形成不定芽的
影响
　　分别取鳞茎的中下端和茎段的上端，按照形
态学的上下端将不同的外植体分别接入诱导不定
芽的培养基中。培养一段时间后发现，鳞片和茎
段均能诱导出不定芽，但鳞片诱导的不定芽长势
一般，且不定芽相对较小（见图１Ａ），茎段诱导的
不定芽长势良好，不定芽较为粗壮且基部出现膨
大的现象（见图１Ｂ）。
由表１可看出，不同培养基对野生湖北百合
诱导不定芽的污染率存在差异，且污染率≤４０％，
选用茎段的污染率为１６．６７％～２５．００％，鳞茎的
图１　不同外植体诱导不定芽比较
Ｆｉｇ．１　Ａｄｖｅｎｔｉｔｉｏｕｓ　ｂｕｄｓ　ｉｎｄｕｃｔｉｏｎ　ｏｆ　ｔｈｅ　ｄｉｆｆｅｒｅｎｔ　ｅｘｐｌａｎｔｓ
污染率为２０％～４０％，且处理３污染率最低，由
此说明，同一培养基条件下，茎段均比鳞茎诱导的
污染率低，可能地上部分所带病原菌比地下部分
少，且采摘较为方便。处理１至处理４通过鳞茎
或茎段诱导均能产出不定芽，但诱导效果却不同，
依次为处理１＞处理３＞处理４＞处理２，鳞茎诱
导除处理１和处理３外，其余处理间达到５％水
平差异，而茎段诱导处理间均达到５％差异显著
水平，说明６－ＢＡ＜２．０ｍｇ·Ｌ－１，ＮＡＡ≤１．０ｍｇ·Ｌ－１
有利于不定芽的诱导。处理１诱导不定芽效果最
佳，且鳞茎和茎段诱导出芽率分别为５９．５７％和
６６．６７％。野生湖北百合鳞茎和茎段在 ＭＳ＋
１．０ｍｇ·Ｌ－１　６－ＢＡ＋０．５ｍｇ·Ｌ－１　ＮＡＡ培养基上的
诱导效果最好，为最佳诱导培养基。在同一诱导
不定芽培养基和培养条件下，不同外植体诱导不
定芽的能力不同，同种外植体在不同培养基中的
芽诱导能力也不同，不同培养基对湖北百合不同
外植体诱导不定芽的效果不同。
２．２　不同培养基对野生湖北百合不定芽增殖的
影响
　　将初代培养得到的不定芽切成单芽转入增殖
培养基中诱导小鳞茎，不同类型的不定芽生长状
况有所不同，鳞茎诱导的不定芽增殖相对较慢，分
化不定芽的数量较少，芽细弱翠绿色（见图２Ａ），
茎段诱导的不定芽增殖相对较快，芽增殖的数量
相对较多，芽粗壮绿色（见图２Ｂ）。
图２　野生湖北百合茎段诱导不定芽增殖情况
Ｆｉｇ．２　Ｔｈｅ　ｐｒｏｌｉｆｅｒａｔｉｏｎ　ｏｆ　ａｄｖｅｎｔｉｔｉｏｕｓ　ｂｕｄｓ
ｉｎｄｕｃｔｉｏｎ　ｆｒｏｍ　ｔｈｅ　ｓｔｅｍ　ｏｆ　ｗｉｌｄ　Ｌｉｌｉｕｍｈｅｎｒｙｉ　Ｂａｋｅｒ
由表２可知，处理１至处理４均能使不定芽
进行增殖，平均增殖率不低于６２．５％，平均增殖
系数高于１．５，各处理不定芽增殖率在６２．５０％～
８３．３３％，其中处理３增殖效果差，６－ＢＡ浓度高达
２１
９期 　　蒋　瑶等：野生湖北百合不定芽诱导及再生植株的建立
２ｍｇ·Ｌ－１，抑制不定芽的增殖；处理４增殖效果最
好，增殖率高达８３．３３％，且增殖系数为２．１１，茎
段诱导不定芽增殖率处理１和处理４差异不显
著，与处理２和３差异显著且达到１％水平；增殖
系数处理２和４无差异显著性，但与处理１和３
存在差异显著性且达到１％。说明高浓度的
ＮＡＡ，低浓度的６－ＢＡ更有利于不定芽的增殖，综
合考虑，湖北百合在 ＭＳ＋０．１ｍｇ·Ｌ－１　６－ＢＡ＋
１．０ｍｇ·Ｌ－１　ＮＡＡ培养基上为适宜的不定芽增殖
培养基。
表１　不同外植体对野生湖北百合诱导不定芽的影响
Ｔａｂｌｅ　１　Ｔｈｅ　ｅｆｆｅｃｔ　ｏｆ　ｔｈｅ　ｄｉｆｆｅｒｅｎｔ　ｅｘｐｌａｎｔｓ　ｏｎ　ａｄｖｅｎｔｉｔｉｏｕｓ　ｂｕｄｓ　ｉｎｄｕｃｔｉｏｎ　ｆｒｏｍ　ｗｉｌｄ
Ｌｉｌｉｕｍｈｅｎｒｙｉ　Ｂａｋｅｒ
处理
Ｔｒｅａｔｍｅｎｔｓ
６－ＢＡ／（ｍｇ·Ｌ－１） ＮＡＡ／（ｍｇ·Ｌ－１）
污染率／％
Ｔｈｅ　ｒａｔｅ　ｏｆ　ｃｏｎｔａｍｉｎａｔｉｏｎ
不定芽诱导率／％
Ｔｈｅ　ｉｎｄｕｃｔｉｏｎ　ｒａｔｅ　ｏｆ　ａｄｖｅｎｔｉｔｉｏｕｓ　ｂｕｄｓ
鳞茎Ｂｕｌｂ 茎段Ｓｔｅｍ 鳞茎Ｂｕｌｂ 茎段Ｓｔｅｍ
１　 １．０　 ０．５　 ３３．８０ｂｃＢＣ　 ２５．００ａＡ　 ５９．５７ａＡ　 ６６．６７ａＡ
２　 ２．０　 １．０　 ３４．２９ｂＢ　 ２２．２２ａＡＢ　 ４７．８３ｃＣ　 ４２．８６ｄＢ
３　 ０．１　 １．０　 ２０．００ｄＤ　 １６．６７ｂＢ　 ５８．３３ａＡＢ　 ６３．３３ｂＡ
４　 １．０　 １．０　 ４０．００ａＡ　 ２５．００ａＡ　 ５５．５６ｂＢ　 ４８．１５ｃＣ
　　同列数据后不同大、小写字母表示１％、５％水平差异显著。下同。
Ｄｉｆｆｅｒｅｎｔ　ｃａｐｉｔａｌ　ｌｅｔｔｅｒｓ　ａｎｄ　ｌｏｗｅｒｃａｓｅｓ　ａｆｔｅｒ　ｃｏｌｕｍｎ　ｄａｔａ　ｍｅａｎ　ｓｉｇｎｉｆｉｃａｎｔ　ｄｉｆｆｅｒｅｎｃｅ　ａｔ　０．０１ａｎｄ　０．０５ｌｅｖｅｌ．Ｔｈｅ　ｓａｍｅ　ｂｅｌｏｗ．
表２　不同激素对野生湖北百合茎段诱导不定芽增殖的影响
Ｔａｂｌｅ　２　Ｔｈｅ　ｅｆｆｅｃｔ　ｏｆ　ｄｉｆｆｅｒｅｎｔ　ｈｏｒｍｏｎｅ　ｏｎ　ｐｒｏｌｉｆｅｒａｔｉｏｎ　ｏｆ　ａｄｖｅｎｔｉｔｉｏｕｓ　ｂｕｄｓ　ｉｎｄｕｃｔｉｏｎ
ｆｒｏｍ　ｓｔｅｍ　ｏｆ　ｗｉｌｄ　Ｌｉｌｉｕｍｈｅｎｒｙｉ　Ｂａｋｅｒ
处理
Ｔｒｅａｔｍｅｎｔｓ
６－ＢＡ／（ｍｇ·Ｌ－１） ＮＡＡ／（ｍｇ·Ｌ－１）
增殖率／％
Ｔｈｅ　ｒａｔｅ　ｏｆ　ｐｒｏｌｉｆｅｒａｔｉｏｎ
增殖系数
Ｔｈｅ　ｃｏｅｆｆｉｃｉｅｎｔ　ｏｆ　ｐｒｏｌｉｆｅｒａｔｉｏｎ
１　 １．０　 ０．５　 ８０．５６ａＡ　 １．６０ｂＢ
２　 １．０　 ０．２　 ６６．６７ｂＢ　 １．９５ａＡ
３　 ２．０　 １．０　 ６２．５０ｃＢＣ　 １．５３ｂＢ
４　 ０．１　 １．０　 ８３．３３ａＡ　 ２．１１ａＡ
２．３　不同培养基对野生湖北百合生根培养的
影响
　　将分成单株的小苗转入含有活性炭的５种生
根培养基中，转接３０ｄ后观察生根情况，从正面
可看出长势良好（见图３Ａ），瓶底可以看出根数量
较多，根系较为发达（见图３Ｂ）。
由表３表明，当基本培养基为１／２ＭＳ，添加
图３　野生湖北百合生根培养
Ｆｉｇ．３　Ｔｈｅ　ｒｏｏｔｉｎｇ　ｏｆｗｉｌｄ　Ｌｉｌｉｕｍ　ｈｅｎｒｙｉ　Ｂａｋｅｒ
表３　不同培养基对野生湖北百合生根培养的影响
Ｔａｂｌｅ　３　Ｔｈｅ　ｅｆｆｅｃｔ　ｏｆ　ｔｈｅ　ｄｉｆｆｅｒｅｎｔ　ｃｕｌｔｕｒｅｓ　ｏｎ　ｒｏｏｔｉｎｇ　ｏｆ　ｗｉｌｄ　Ｌｉｌｉｕｍｈｅｎｒｙｉ　Ｂａｋｅｒ
处理序号
Ｃｏｄｅ
培养基
Ｃｕｌｔｕｒｅ
６－ＢＡ／（ｍｇ·Ｌ－１） ＮＡＡ／（ｍｇ·Ｌ－１）
生根率／％
Ｔｈｅ　ｒｏｏｔｉｎｇ　ｐｅｒｃｅｎｔａｇｅ
生根数
Ｔｈｅ　ｎｕｍｂｅｒ　ｏｆ　ｒｏｏｔｉｎｇ
１　 １／２ＭＳ　 ０．０　 ０．５　 ８８．８９ｂＡ　 ２．３８ｂＢ
２　 １／２ＭＳ　 ０．０　 ０．２　 ７９．１７ｄＣ　 １．６８ｃＣ
３　 １／２ＭＳ　 ０．２　 １．０　 ７７．７８ｄＣ　 ２．１４ｂＢ
４　 １／２ＭＳ　 ０．０　 ０．３　 ９３．３３ａＡ　 ３．１８ａＡ
５ ＭＳ　 ０．０　 ０．２　 ８３．３３ｃＢ　 ２．０８ｂＢＣ
３１
　　　　　黑　龙　江　农　业　科　学 ９期
ＮＡＡ浓度为０．３ｍｇ·Ｌ－１，生根率高达９３．３３％，
单株生根数达到３以上，生根效果最好，当 ＮＡＡ
浓度高达１．０ｍｇ·Ｌ－１，生根率为７７．７８％，与处理
２差异不显著，其它生根率不同处理间达到５％差
异显著性，生根数处理１、处理３、处理５差异不显
著，与其它处理间均达到５％水平差异显著性。
由此看出，１／２ＭＳ＋０．３ｍｇ·Ｌ－１　ＮＡＡ为最佳生
根培养基。１／２ＭＳ培养基对生根培养有一定的
促进作用，添加低浓度的 ＮＡＡ对生根有促进作
用，高浓度的ＮＡＡ对生根有抑制作用。
３　结论与讨论
湖北百合不定芽诱导选用的外植体多为鳞片
和花器官，但本试验采用鳞片和茎段为材料，对其
不定芽的诱导、增殖和生根进行研究，而茎段取材
方便、消毒容易，且易切割，可满足生产上种苗的
需要，也为其组织培养研究奠定技术基础，并完善
了湖北百合组培体系。不定芽诱导所采用的激素
多为６－ＢＡ和 ＮＡＡ，６－ＢＡ主要是促进细胞的分
裂与扩大，使细胞数目增多，同时促进芽的分化，
抑制衰老。适量６－ＢＡ 促进不定芽的分化和生
长，但超过一定浓度时，促进效果减弱。在培养过
程中，发现６－ＢＡ在湖北百合组培的各个环节中
都有一定的影响，低浓度诱导效果不佳，较高的浓
度可促进组织分化和生长，但浓度过高则会抑制
生长，６－ＢＡ对湖北百合不定芽诱导过程的最佳浓
度都为１．０ｍｇ·Ｌ－１；ＮＡＡ促进细胞伸长和生长，
促进植物产生愈伤组织，适合生根。
ＮＡＡ对小鳞茎增殖效果明显，随着其浓度
的不断增大其增殖系数不断升高，但超过一定浓
度时趋于不变，因此，要根据材料选择添加适当的
浓度，根据前人研究结果，ＮＡＡ 浓度一般在
０．２～１．５ｍｇ·Ｌ－１，ＮＡＡ对湖北百合的小鳞茎增
殖的最佳浓度为１．０ｍｇ·Ｌ－１；鳞茎增殖系数随６－
ＢＡ浓度的增加而减小，说明在０．１～１．０ｍｇ·Ｌ－１的
６－ＢＡ有利于促进小鳞茎的增殖。
１／２ＭＳ培养基更适宜生根，ＭＳ反而会抑制
根的生长。因材料和生长时期的不同，功效有所
差异。ＮＡＡ对湖北百合的生根有促进作用，本
试验 设 计 了 ３ 个 浓 度 梯 度 ０．２、０．３ 和
０．５ｍｇ·Ｌ－１，结果显示，小鳞茎的生根数随 ＮＡＡ
浓度的升高而增多，但达到一定浓度则对生根起
抑制作用，由此看来，０．３ｍｇ·Ｌ－１　ＮＡＡ为促进生
根效果最佳的浓度。
试验表明，适合湖北百合鳞茎和茎段不定芽
诱导的最佳培养基为 ＭＳ＋１．０ｍｇ·Ｌ－１　６－ＢＡ＋
０．５ｍｇ·Ｌ－１　ＮＡＡ，但不同外植体对不定芽诱导能
力不同，茎段诱导不定芽成功率高于鳞片，出芽率
分别为６６．６７％和５９．６３％，且出芽个数分别为２
和１，茎段诱导污染率低于鳞片诱导污染率，茎段
诱导不定芽最适增殖培养基为 ＭＳ＋０．１ｍｇ·Ｌ－１
６－ＢＡ＋１．０ｍｇ·Ｌ－１　ＮＡＡ，最适生根培养基为１／２
ＭＳ＋０．３ｍｇ·Ｌ－１　ＮＡＡ。
参考文献：
［１］　阮瑶瑶，丁健，杨懋勋．药用、食用、观赏用百合组培快繁研
究进展［Ｊ］．深圳职业技术学院学报，２０１１（１）：７１－７５．
［２］　杜英祥，吉海军，商万有．百合的开发价值研究［Ｊ］．吉林农
业，２０１１（５）：３１６．
［３］　丰先红．大百合鳞片组织培养细胞分化及生理机制研
究［Ｄ］．雅安：四川农业大学，２０１０．
［４］　吴学尉，李树发，熊丽，等．云南野生百合资源分布现状及保
护利用［Ｊ］．植物遗传资源学报，２００６（３）：３３２７－３３３０．
［５］　杨敏．长江中游地区百合属种质资源遗传多样性的ＳＳＲ分
析［Ｄ］．武汉：华中农业大学，２０１３．
［６］　杜运鹏．我国百合属植物资源评价及抗病基因同源序
列（ＲＧＡ）的研究［Ｄ］．北京：北京林业大学，２０１４．
［７］　王斐，胡凤荣．百合染色体细胞学研究进展［Ｊ］．分子植物育
种，２０１２（５）：６２０－６２７．
Ｓｔｕｄｙ　ｏｎ　Ａｄｖｅｎｔｉｔｉｏｕｓ　Ｂｕｄｓ　Ｉｎｄｕｃｔｉｏｎ　ａｎｄ　Ｐｌａｎｔ
Ｒｅｇｅｎｅｒａｔｉｏｎ　ｏｆ　Ｗｉｌｄ　Ｌｉｌｉｕｍｈｅｎｒｙｉ
ＪＩＡＮＧ　Ｙａｏ１，ＣＨＥＮ　Ｗｅｎ－ｂｏ１，ＺＨＯＵ　Ｃｈａｏ－ｗｅｉ　１，ＣＨＥＮ　Ｑｉ－ｂｉｎｇ２
（１．Ｃｏｌｅｇｅ　ｏｆ　Ｅｎｖｉｒｏｎｍｅｎｔ　ａｎｄ　Ｌｉｆｅ　Ｓｃｉｅｎｃｅ，Ｋａｉｌｉ　Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｙ，Ｋａｉｌｉ，Ｇｕｉｚｈｏｕ　５５６０１１；２．Ｃｏｌ－
ｌｅｇｅ　ｏｆ　Ｌａｎｄｓｃａｐｅ　Ａｒｃｈｉｔｅｃｔｕｒｅ，Ｓｉｃｈｕａｎ　Ａｇｒｉｃｕｌｔｕｒｅ　Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｙ，Ｃｈｅｎｇｄｕ，Ｓｉｃｈｕａｎ　６１１１３０）
Ａｂｓｔｒａｃｔ：Ｉｎ　ｏｒｄｅｒ　ｔｏ　ｓｔｒｅｎｇｔｈｅｎ　ｔｈｅ　ｐｒｅｓｅｒｖａｔｉｏｎ　ａｎｄ　ｕｔｉｌｉｚａｔｉｏｎ　ｏｆ　ｗｉｌｄ　ｌｉｌｙｒｅｓｏｕｒｃｅｓ　ｉｎ　Ｈｕｂｅｉ　ｐｒｏｖｉｎｃｅ，ｕｓｉｎｇ
ｂｕｌｂ　ａｎｄ　ｓｔｅｍ　ｏｆ　ｗｉｌｄ　Ｌｉｌｉｕｍｈｅｎｒｙｉａｓ　ｅｘｐｌａｎｔ，ｔｈｅ　ｅｆｆｅｃｔ　ｏｆ　ｄｉｆｆｅｒｅｎｔ　ｈｏｒｍｏｎｅ　ｃｏｍｂｉｎａｔｉｏｎ　ｏｎ　ａｄｖｅｎｔｉｔｉｏｕｓ　ｂｕｄｓ
ｉｎｄｕｃｔｉｏｎ，ｂｕｄ　ｐｒｏｌｉｆｅｒａｔｉｏｎ　ａｎｄ　ｒｏｏｔｉｎｇ　ｗｅｒｅ　ｓｔｕｄｉｅｄ．Ｔｈｅ　ｒｅｓｕｌｔｓ　ｓｈｏｗｅｄ　ｔｈａｔ　ｔｈｅ　ｏｐｔｉｍａｌ　ｍｅｄｉｕｍ　ｆｏｒ　ａｄｖｅｎｔｉ－
ｔｉｏｕｓ　ｂｕｄｓ　ｉｎｄｕｃｔｉｏｎ　ｗａｓ　ＭＳ＋１．０ｍｇ·Ｌ－１　６－ＢＡ＋０．５ｍｇ·Ｌ－１　ＮＡＡ．Ｔｈｅ　ｉｎｄｕｃｔｉｏｎ　ｒａｔｅ　ｏｆ　ｓｔｅｍ　ｗａｓ　ｈｉｇｈｅｒ
ｔｈａｎ　ｂｕｌｂｓ．Ｔｈｅ　ｒａｔｅ　ｏｆ　ｉｎｄｕｃｔｉｏｎ　ｗａｓ　６６．６７％ａｎｄ　５９．６３％．Ｔｈｅ　ｂｕｄ　ｆｒｏｍ　ｓｉｎｇｌｅ　ｅｘｐｌａｎｔ　ｗａｓ　２ａｎｄ　１，ｔｈｅ　ｒａｔｅ
ｏｆ　ｃｏｎｔａｍｉｎａｔｉｏｎ　ｆｒｏｍ　ｓｔｅｍ　ｗａｓ　ｌｏｗｅｒ　ｔｈａｎ　ｂｕｌｂ．Ｔｈｅ　ｂｅｓｔ　ｐｒｏｌｉｆｅｒａｔｉｏｎ　ｍｅｄｉｕｍ　ｗａｓ　ＭＳ ＋０．１ｍｇ·Ｌ－１
６－ＢＡ＋１．０ｍｇ·Ｌ－１　ＮＡＡ．Ｔｈｅ　ｒａｔｅ　ｏｆ　ｐｒｏｌｉｆｅｒａｔｉｏｎ　ｗａｓ　８３．３３％，ｔｈｅ　ａｖｅｒａｇｅ　ｏｆ　ｃｏｅｆｆｉｃｉｅｎｔ　ｏｆ　ｐｒｏｌｉｆｅｒａｔｉｏｎ　ｗａｓ
２．１１ａｎｄ　ｔｈｅ　ｇｒｏｗｔｈ　ｗａｓ　ｔｈｅ　ｂｅｔｔｅｒ．Ｔｈｅ　ｍｅｄｉｕｍ　ｆｏｒ　ｒｏｏｔｉｎｇ　ｗａｓ　１／２ＭＳ＋０．３ｍｇ·Ｌ－１　ＮＡＡ．Ｔｈｅ　ｒａｔｅ　ｏｆ　ｒｏｏ－
ｔｉｎｇ　ｗａｓ　ａｓ　ｈｉｇｈ　ａｓ　９３．３３％，ｔｈｅ　ａｖｅｒａｇｅ　ｎｕｍｂｅｒ　ｏｆ　ｒｏｏｔｉｎｇ　ｗａｓ　３．１８．
Ｋｅｙｗｏｒｄｓ：Ｌｉｌｉｕｍｈｅｎｒｙｉ；ｂｕｌｂ；ｓｔｅｍ；ｔｉｓｓｕｅ　ｃｕｌｔｕｒｅ
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