全 文 ：１８９４－１８９８
１２／２０１２
草　业　科　学
ＰＲＡＴＡＣＵＬＴＵＲＡＬ　ＳＣＩＥＮＣＥ
２９卷１２期
Ｖｏｌ．２９，Ｎｏ．１２
垂花百合花器官离体培养
刘 芳１，２，王晓丽１，３，张彦妮１，杨青杰１，周蕴薇１
（１．东北林业大学园林学院，黑龙江 哈尔滨１５００４０；２．黑龙江八一农垦大学农学院，黑龙江 大庆１６３３１９；
３．呼伦贝尔市蚕业科学研究所，内蒙古 呼伦贝尔１６２６５０）
摘要：以垂花百合（Ｌｉｌｉｕｍ　ｃｅｒｎｕｍ）的花器官（花瓣、花托、子房）为外植体进行组织培养，结果表明，３种花器官外
植体的愈伤组织的诱导能力和分化能力各不相同，花瓣愈伤组织的诱导率及分化率最高，分别可达５７．６５％和
８１．１２％；诱导愈伤组织由易到难依次为花瓣＞花托＞子房；花瓣外植体诱导愈伤组织的最适培养基为 ＭＳ＋
６－ＢＡ　２．０ｍｇ·Ｌ－１＋ＮＡＡ　０．５ｍｇ·Ｌ－１，子房外植体诱导愈伤组织的最适培养基为 ＭＳ＋６－ＢＡ　１．０ｍｇ·Ｌ－１＋
ＮＡＡ　０．５ｍｇ·Ｌ－１，花托外植体诱导愈伤组织的最适培养基为 ＭＳ＋６－ＢＡ　１．０ｍｇ·Ｌ－１＋ＮＡＡ　０．２ｍｇ·Ｌ－１；
最适生根培养基为１／２ＭＳ＋ＩＢＡ　１．０ｍｇ·Ｌ－１＋ ＮＡＡ　０．３ｍｇ·Ｌ－１＋ＡＣ　０．５ｇ·Ｌ－１。
关键词：垂花百合；花瓣；子房；花托；组织培养
中图分类号：Ｑ９４３．１　　　文献标识码：Ａ　　　文章编号：１００１－０６２９（２０１２）１２－１８９４－０５
＊
　　百合（Ｌｉｌｉｕｍｓｐｐ．）是世界著名的球根花卉，观
赏价值较高，培育高品质的新品种百合来满足日益
增长的市场需求已迫在眉睫。而野生种百合则是品
种选育的重要资源，野生种百合的微繁研究对于野
生资源的驯化及新品种选育和遗传性状的改良等都
极为重要［１－２］。垂花百合（Ｌ．ｃｅｒｎｕｍ）在我国主要分
布于吉林省长白山地区，在百合属植物中属珍稀耐
寒野生种。利用组培再生的方法能够保证原种的优
良特性和较高的繁殖系数［３］。目前，百合离体培养
大部分以鳞片［４］作为外植体，也有以花丝［５］、花
药［６］、子房［７］、叶片［８］、胚等作为外植体取得成功的
报道。垂花百合具有良好的观赏性状，同时也是具
较强抗性的野生种，是百合抗性育种的重要亲本。
对垂花百合进行不定芽诱导及植株再生试验，发现
中部或内部鳞片基部再生频率较高，再生植株叶片
基部分化能力最强［９］；对其鳞茎进行诱导，发现鳞茎
诱导最适宜的培养基为Ｎ６＋０．０５ｍｇ·Ｌ－１　ＩＡＡ＋
０．５０ｍｇ·Ｌ－１　ＫＴ，鳞茎萌发为完整植株的最佳培
养基为Ｎ６＋０．０１ｍｇ·Ｌ－１ＩＡＡ＋０．００１ｍｇ·Ｌ－１
ＮＡＡ［１０］。但鳞茎作为地下贮藏器官，极易携带病
菌，表面消毒后仍会不同程度地带菌，不利于种质
长期保存和规模化生产；而花器官为幼嫩器官，污
染小，同时研究花器官的离体培养也是对垂花百
合生物学特性的有益补充。为此，本研究比较不
同的激素配比条件下垂花百合花瓣、花托、子房愈
伤组织的诱导和分化能力，筛选不同的愈伤组织
诱导和分化效果最佳的培养基，以期为垂花百合
的基因工程和细胞工程育种研究及百合产业发展
提供有益参考。
１　材料与方法
１．１实验材料　选择来源于长白山地区生长健
壮、无病虫害的垂花百合未开放的花作为外植体，进
行花器官离体培养。
１．２实验方法　将垂花百合未开放的花蕾在洗衣
粉水中漂洗１０ｍｉｎ后，在流水下冲洗３０ｍｉｎ，在超
净工作台上用７５％的无水乙醇消毒３０ｓ，然后用
２％ ＮａＣｌＯ消毒１０ｍｉｎ，再用无菌水冲洗４～５次。
用镊子和刀将花蕾分成花瓣、花托、子房３部分，接
种于添加不同浓度的６－苄基腺嘌呤（６－ＢＡ）和萘乙
酸（ＮＡＡ）ＭＳ培养基中。每处理３０个外植体，重复
３次。４５ｄ时统计愈伤组织诱导率，６５ｄ时统计愈
伤组织分化率。
诱导率＝（诱导愈伤组织外植体数／接种外植体
数）×１００％；
分化率＝（分化成苗外植体数／诱导愈伤组织外
植体数）×１００％［１１］。
＊收稿日期：２０１２－０４－１８　　接受日期：２０１２－０６－１９
基金项目：黑龙江省自然科学基金（Ｃ２０１１３７）；黑龙江省博士后科研启动金（ＬＢＨ－Ｑ０９１８８）
作者简介：刘芳（１９８０－），女，黑龙江双城人，实验师，硕士，研究方向为园林植物种质资源。Ｅ－ｍａｉｌ：ｂｙｎｄｙｌ１２３４５＠１６３．ｃｏｍ
通信作者：周蕴薇　Ｅ－ｍａｉｌ：ｙｕｎｗｅｉ＿ｚｈｏｕ＠ｙａｈｏｏ．ｃｏｍ．ｃｎ
１２／２０１２ 草　业　科　学 （第２９卷１２期）
　　将由花瓣诱导出的芽经增殖培养后，切成单株接
入添加不同生长激素的生根培养基中，生根培养基成
分为１／２ＭＳ＋ＡＣ　０．５ｇ·Ｌ－１附加不同浓度的吲哚丁
酸（ＩＢＡ）及ＮＡＡ。每处理３０个外植体，各处理３次重
复。３０ｄ后统计生根情况。培养条件为（２５±２）℃，光
强为３　０００ｌｘ，光周期为光培养１４ｈ，暗培养１０ｈ。
２　结果与分析
２．１不同激素配比条件下花瓣愈伤组织诱导
及分化情况　不同培养基对花瓣愈伤组织的诱导
效果存在显著差异（表 １）。在 ＭＳ＋６－ＢＡ　２．０
ｍｇ·Ｌ－１＋ＮＡＡ　０．５ｍｇ·Ｌ－１激素组合的培养基
上，愈伤组织诱导及分化效果最好，诱导率可达
５７．６５％，分化率可达８１．１２％。当ＮＡＡ浓度升高，
愈伤组织的诱导率及分化率相应提高，在ＮＡＡ　０．１
ｍｇ·Ｌ－１水平上，花瓣未见愈伤组织形成，说明低浓
度ＮＡＡ不利于诱导愈伤组织。随着６－ＢＡ浓度的
升高，愈伤组织分化成苗的分化率相应升高，说明较
高浓度的６－ＢＡ有利于愈伤组织进行分化。
表１　不同激素配比条件下花瓣愈伤组织诱导及分化情况
Ｔａｂｌｅ　１　Ｐｅｔａｌｓ，ｏｖａｒｙ，ａｎｄ　ｒｅｃｅｐｔａｃｌｅ　ｅｘｐｌａｎｔｓ　ｃａｌｕｓ　ｉｎｄｕｃｔｉｏｎ　ａｎｄ　ｄｉｆｆｅｒｅｎｔｉａｔｉｏｎ　ｏｆ
Ｌｉｌｉｕｍ　ｃｅｒｎｕｍｕｎｄｅｒ　ｄｉｆｆｅｒｅｎｔ　ｈｏｒｍｏｎｅ　ｃｏｍｂｉｎａｔｉｏｎｓ
器官
Ｏｒｇａｎ
浓度
Ｃｏｎｃｅｎｔｉａｔｉｏｎ／
ｍｇ·Ｌ－１
６－ＢＡ　 ＮＡＡ
接种外植体数
Ｎｕｍｂｅｒ　ｏｆ
ｅｘｐｌａｎｔｓ
形成愈伤组织
的外植体数
Ｎｕｍｂｅｒ　ｏｆ　ｅｘｐｌａｎｔｓ
ｆｏｒｍｉｎｇ　ｃａｌｕｓ
诱导率
Ｃａｌｕｓ
ｉｎｄｕｃｔｉｏｎ　ｒａｔｅ／
％
分化成苗的
外植体数
Ｎｕｍｂｅｒ　ｏｆ　ｅｘｐｌａｎｔｓ
ｏｆ　ｄｉｆｆｅｒｅｎｔｉａｔｅｄ　ｓｅｅｄｉｎｇｓ
分化率
Ｄｉｆｆｅｒｅｎｔｉａｔｉｏｎ
ｒａｔｅ／％
花瓣
Ｐｅｔａｌ
０．５　 ０．１　 ３０　 ０ｄ ０ｄ ０ｄ ０ｃ
１．０　 ０．１　 ３０　 ０ｄ ０ｄ ０ｄ ０ｃ
２．０　 ０．１　 ３０　 ０ｄ ０ｄ ０ｄ ０ｃ
０．５　 ０．２　 ３０　 ３．２７±０．６１ｃ １０．３７±０．０２ｃ １．００±０．５９ｃ ３０．１９±０．１５ｂ
１．０　 ０．２　 ３０　 ５．７２±０．９６ｂｃ　 ２０．５１±０．０３ｂｃ　 ３．００±１．１６ｂｃ　 ４７．３６±０．１４ａｂ
２．０　 ０．２　 ３０　 ８．５１±１．０１ｂｃ　 ２７．８４±０．０４ｂｃ　 ６．５５±１．００ｂ ７６．６７±０．０４ａ
０．５　 ０．５　 ３０　 １０．８９±２．２１ｂ ３６．２７±０．０６ｂ ５．４６±１．５３ｂｃ　 ４９．４３±０．０７ａｂ
１．０　 ０．５　 ３０　 １１．７０±１．６１ｂ ３８．３９±０．０５ｂ ７．０６±２．４２ｂ　 ６１．３３±０．１４ａｂ
２．０　 ０．５　 ３０　 １６．９１±２．８０ａ ５７．６５±０．０９ａ １２．２０±１．５４ａ ８１．１２±０．０４ａ
子房
Ｏｖａｒｙ
０．５　 ０．１　 ３０　 ０ｅ ０ｅ ０ｄ ０ｂ
１．０　 ０．１　 ３０　 １．０４±０．６０ｄ ３．５４±０．０２ｄ ０ｄ ０ｂ
２．０　 ０．１　 ３０　 ０ｅ ０ｅ ０ｄ ０ｂ
０．５　 ０．２　 ３０　 １．００±０．６０ｄ ３．５０±０．０２ｄ ０ｄ ０ｂ
１．０　 ０．２　 ３０　 ３．００±０．６３ｃｄ　 １０．５０±０．０２ｂｃｄ　 １．０６±０．００ｃ ３６．１１±０．０８ａ
２．０　 ０．２　 ３０　 ２．１６±０．５８ｄ ６．９８±０．０２ｃｄ　 １．０６±０．００ｃ ６０．２８±０．０１ａ
０．５　 ０．５　 ３０　 ５．４１±１．１０ｂｃ　 １７．５０±０．０４ｂｃ　 ２．１１±０．５９ｂｃ　 ４２．８６±０．１７ａ
１．０　 ０．５　 ３０　 １０．６８±１．１８ａ ３５．２２±０．０４ａ ６．２９±０．６１ａ　 ６１．１１±０．２１ａ
２．０　 ０．５　 ３０　 ６．５７±１．６８ｂ ２１．００±０．０５ａ ３．２９±１．０２ｂ ４６．８３±０．０７ａ
花托
Ｒｅｃｅｐｔａｃｌｅ
０．５　 ０．１　 ３０　 ０ｅ ０ｅ ０ｃ ０ｂ
１．０　 ０．１　 ３０　 ２．１２±０．６０ｃｄ　 ６．６７±０．０２ｃｄ　 ０ｃ ０ｂ
２．０　 ０．１　 ３０　 １．０６±０．００ｄ ３．３３±０．００ｄ ０ｃ ０ｂ
０．５　 ０．２　 ３０　 ３．０６±０．６０ｃｄ　 １０．００±０．０２ｃｄ　 １．０４±０．００ｂ ３６．１１±０．０８ａ
１．０　 ０．２　 ３０　 １１．９２±１．６２ａ ３６．６７±０．０５ａ ５．３１±１．２３ａ　 ４４．３４±０．０５ａ
２．０　 ０．２　 ３０　 ４．１０±１．１８ｃ １３．３３±０．０４ｃ １．０４±０．６１ｂ １９．４４±０．１１ａ
０．５　 ０．５　 ３０　 ２．０５±０．６０ｃｄ　 ６．６７±０．０２ｃｄ　 １．０６±０．６１ｂ　 ３８．８９±０．２２ａ
１．０　 ０．５　 ３０　 ７．０６±１．２４ｂ ２３．３３±０．０３ｂ ３．２０±０．６１ａｂ　 ４２．４３±０．０２ａ
２．０　 ０．５　 ３０　 １．０２±０．００ｄ ３．３３±０．００ｄ ０ｃ ０ｂ
注：同一列不同小写字母代表０．０５水平上存在显著差异。
Ｎｏｔｅ：Ｄｉｆｆｅｒｅｎｔ　ｌｏｗｅｒ　ｃａｓｅ　ｌｅｔｔｅｒｓ　ｗｉｔｈｉｎ　ｔｈｅ　ｓａｍｅ　ｃｏｌｕｍｎ　ｆｏｒ　ｔｈｅ　ｓａｍｅ　ｏｒｇａｎ　ｍｅａｎ　ｓｉｇｎｉｆｉｃａｎｔ　ｄｉｆｆｅｒｅｎｃｅ　ａｔ　０．０５ｌｅｖｅｌｓ．
５９８１
ＰＲＡＴＡＣＵＬＴＵＲＡＬ　ＳＣＩＥＮＣＥ（Ｖｏｌ．２９，Ｎｏ．１２） １２／２０１２
２．２不同激素配比条件下子房愈伤组织诱导
及分化情况　在 ＭＳ＋６－ＢＡ　１．０ｍｇ·Ｌ－１＋
ＮＡＡ　０．５ｍｇ·Ｌ－１激素组合的培养基上，子房愈伤
组织诱导及分化效果最好，诱导率可达３５．２２％，分
化率可达６１．１１％（表１）。并且随 ＮＡＡ浓度的升
高，愈伤组织的诱导率及分化率也相应提高，高浓度
ＮＡＡ与低浓度 ＮＡＡ的培养基对子房诱导愈伤组
织的效果存在显著差异；随着６－ＢＡ浓度升高，愈伤
组织的诱导率先上升后下降。
２．３不同激素配比条件下花托愈伤组织诱导
及分化情况　在 ＭＳ＋６－ＢＡ　１．０ｍｇ·Ｌ－１＋
ＮＡＡ　０．２ｍｇ·Ｌ－１的激素组合的培养基上花托愈
伤组织诱导及分化情况最好，诱导率可达３６．６７％，
分化率可达４４．３４％。在 ＮＡＡ　０．２ｍｇ·Ｌ－１与不
同浓度的６－ＢＡ的培养基中，花托愈伤组织诱导效
果差异明显（表１）。当ＮＡＡ浓度增加时，愈伤组织
诱导率及分化率先增加后减少；随着６－ＢＡ浓度的
升高，愈伤组织的诱导率先上升后下降。由此可知，
花托诱导愈伤组织时，６－ＢＡ和ＮＡＡ的浓度均不宜
过高也不宜过低。
２．４百合花器官愈伤组织诱导及分化的比较
２．４．１不同花器官外植体愈伤组织诱导及分化的比
较　垂花百合的花器官在离体培养过程中愈伤组织
的诱导及分化的时间较长，外植体诱导愈伤组织由
易到难依次为花瓣＞花托＞子房（图１）。
花瓣的分化率明显高于其他部位，且分化所需
时间最短。接种３ｄ后花瓣颜色明显变深呈粉色
（图１Ａ）；２０ｄ后部分花瓣切口处开始膨大，沟壑变
明显，花瓣颜色变浅，３５ｄ后开始形成绿色愈伤组
织，４０ｄ开始形成不定芽（图２Ｂ）；５５ｄ后每个外植
体上平均分化出芽４．８个，最多达１４个（图１Ｃ）。
　　子房的诱导率和分化率次之，且时间较花瓣长。
接种２ｄ后子房明显膨大，颜色变成黄绿色（图
１Ｄ）；４０ｄ时继续膨大，颜色变为绿色，部分子房切
口处产生带有绒毛的白色根状物（图１Ｅ）；６０ｄ后开
始形成愈伤组织，６５ｄ后开始形成不定芽（图１Ｆ）。
花托的愈伤组织诱导和分化的能力介于花瓣和
子房之间，所需时间较花瓣长，较子房短。接种３ｄ
后，花托明显膨大，表面变粗糙，颜色变为淡黄绿色
（图１Ｇ）；４５ｄ后开始形成愈伤组织，并且产生带有
绒毛的白色根状物（图１Ｈ）；６０ｄ后白色根状物也
形成愈伤组织并产生不定芽（图１Ｉ）。
２．４．２不同激素组合对花器官愈伤组织诱导及分化
的比较　在百合组培苗诱导过程中，适量添加ＮＡＡ
对愈伤组织诱导及分化有明显的促进作用。６－ＢＡ
能诱导不定芽的产生，使其大量增殖，如果６－ＢＡ浓
度过高，同样也会诱导部分外植体产生大量的不定
根，从而抑制不定芽的形成，抽叶多，植株不能健壮
生长和发育［１２］。本研究中，花瓣、子房、花托３种外
植体对低浓度的６－ＢＡ、ＮＡＡ都不敏感，诱导花瓣愈
伤组织及分化的培养基中６－ＢＡ、ＮＡＡ浓度都很高，
不同外植体诱导愈伤组织对激素配比浓度需求不
同，诱导愈伤组织及分化效果也有差异。这种差异
可能是由于百合品种及外植体的不同导致的。
２．５生根与移栽　将分成单株的小苗接于含有
０．５ｇ·Ｌ－１活性炭，附加不同生长激素浓度的１／２
ＭＳ生根培养基中。结果表明，由花瓣诱导的小苗
在１／２ ＭＳ＋ＩＢＡ　１．０ ｍｇ·Ｌ－１ ＋ ＮＡＡ　０．３
ｍｇ·Ｌ－１＋ＡＣ　０．５ｇ·Ｌ－１的生根培养基中生根率
最高达７１．１１％，平均根长达２．０３ｃｍ（表２）。随着
ＩＢＡ浓度的增加，垂花百合的生根率也升高。在本
研究中，活性炭的加入有利于垂花百合的生根，使根
的长度增加，长势变壮（图１Ｊ）。将根长２～４ｃｍ的
小苗炼苗３ｄ，然后移栽至已灭菌的蛭石中，浸透水
后放入人工气候箱内缓苗，１５ｄ后移到温室。移栽
后的小苗生长良好，成活率可达８０％（图１Ｋ）。方
差分析表明，不同浓度激素组合的培养基对百合生
根率及根长的影响均有不同程度的差异。
３　讨论
在百合的组织培养研究中，许多器官、组织都可
以用作外植体，其中以鳞片作外植体的频率最高，但
鳞片取材对母本伤害大，且消毒处理难度大、易污
染［４，１０］，未授粉的花器官培养和人工授粉后的花器
官培养对培育百合新品种和保持母本优良特性有重
大研究意义。
　　本研究对垂花百合花器官（花瓣、花丝、花药、花
柱、子房、花托、花梗）进行了离体培养，其中花丝、花
柱、花梗开始时膨大，形成愈伤组织，但后期大量褐
化死亡，只有花丝在 ＭＳ＋６－ＢＡ　２．０ｍｇ·Ｌ－１＋
ＮＡＡ　０．５ｍｇ·Ｌ－１培养基上有两个分化不定芽，花
药在培养期间未能形成愈伤组织及分化，表明垂花
百合诱导愈伤组织由易到难依次为花瓣＞花托＞子
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１２／２０１２ 草　业　科　学 （第２９卷１２期）
图１　垂花百合花器官外植体愈伤组织诱导及分化
Ｆｉｇ．１　Ｆｌｏｒａｌ　ｏｒｇａｎ　ｅｘｐｌａｎｔ　ｃａｌｕｓ　ｉｎｄｕｃｔｉｏｎ　ａｎｄ　ｄｉｆｆｅｒｅｎｔｉａｔｉｏｎ　ｏｆ　Ｌｉｌｉｕｍ　ｃｅｒｎｕｍ
表２　不同激素组合对垂花百合生根的影响
Ｔａｂｌｅ　２　Ｅｆｆｅｃｔｓ　ｏｆ　ｄｉｆｆｅｒｅｎｔ　ｈｏｒｍｏｎｅ　ｃｏｍｂｉｎａｔｉｏｎｓ　ｏｎ　ｒｏｏｔｉｎｇ　ｏｆ　Ｌｉｌｉｕｍ　ｃｅｒｎｕｍ
浓度Ｃｏｎｃｅｎｔｉａｔｉｏｎ／ｍｇ·Ｌ－１
６－ＢＡ　 ＮＡＡ
转接苗／株
Ｎｕｍｂｅｒ　ｏｆ　ｓｈｏｏｔ
生根苗数／株
Ｎｕｍｂｅｒ　ｏｆ　ｒｏｏｔ
生根率
Ｒｏｏｔｉｎｇ　ｒａｔｅ／％
平均根长
Ｒｏｏｔ　ｌｅｎｇｔｈ／ｃｍ
０．３　 ０．３　 ３０　 ７．３１±１．０３ｃ ２３．３３±０．０４ｃ ０．９８±０．１０ｃ
０．５　 ０．５　 ３０　 １８．０７±２．７ａｂ　 ５６．６７±０．０９ａｂ　 １．００±０．１１ｃ
１．０　 ０．３　 ３０　 ２２．７８±１．４５ａ ７１．１１±０．０５ａ ２．０３±０．０５ａ
０．３　 ０．５　 ３０　 １１．８７±０．５９ｃ ３６．６７±０．０２ｃ １．９４±０．１７ａ
０．５　 ０．３　 ３０　 １０．８３±０．７１ｃ ３３．３３±０．０２ｃ １．４７±０．１１ｂ
１．０　 ０．５　 ３０　 １６．５８±１．５９ｂ ５３．３３±０．０５ｂ １．７４±０．１３ａｂ
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ＰＲＡＴＡＣＵＬＴＵＲＡＬ　ＳＣＩＥＮＣＥ（Ｖｏｌ．２９，Ｎｏ．１２） １２／２０１２
房，但亚洲百合‘米丽拉’花器官组织培养再生植株
不同部位的分化率从高到低依次为花丝、花柱、子
房、花托、花瓣、花药［１３］，这可能是由供试品种的差
异性导致的。
植物生长调节剂在组织培养中发挥着重要的作
用，在含量极低时就可以影响植物细胞的分裂、分
化，以及植物体的生长、发育、形态建成等许多生理
生化过程。研究表明，ＮＡＡ对外植体愈伤组织诱
导与分化起到一定的作用，较低浓度的 ＮＡＡ不利
于诱导愈伤组织。这一结果与刘丽敏等［１４］在百合
花器官的组织培养中的结果一致，适宜浓度的ＮＡＡ
有利于百合花器官的初代诱导。
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Ｉｎ　ｖｉｔｒｏ　ｃｕｌｔｕｒｅ　ｏｆ　ｆｌｏｒａｌ　ｏｒｇａｎ　ｏｆ　Ｌｉｌｉｕｍ　ｃｅｒｎｕｍ
ＬＩＵ　Ｆａｎｇ１，２，ＷＡＮＧ　Ｘｉａｏ－ｌｉ　１，３，ＺＨＡＮＧ　Ｙａｎ－ｎｉ　１，ＹＡＮＧ　Ｑｉｎｇ－ｊｉｅ１，ＺＨＯＵ　Ｙｕｎ－ｗｅｉ　１
（１．Ｃｏｌｅｇｅ　ｏｆ　Ｌａｎｄｓｃａｐｅ　Ａｒｃｈｉｔｅｃｔｕｒｅ，Ｎｏｒｔｈｅａｓｔ　Ｆｏｒｅｓｔｒｙ　Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｙ，Ｈａｒｂｉｎ　１５００４０，Ｃｈｉｎａ，
２．Ｃｏｌｅｇｅ　ｏｆ　Ａｇｒｉｃｕｌｔｕｒｅ，Ｈｅｉｌｏｎｇｊｉａｎｇ　Ｂａｙｉ　Ａｇｒｉｃｕｌｔｕｒａｌ　Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｙ，Ｄａｑｉｎｇ　１６３３１９，Ｃｈｉｎａ，
３．Ｔｈｅ　ｈｕｌｕｎｂｕｉｒ　ｓｅｒｉｃｕｌｔｕｒａｌ　ｓｃｉｅｎｃｅ　ｒｅｓｅａｒｃｈ　ｉｎｓｔｉｔｕｔｅ，Ｈｕｌｕｎｂｕｉｒ　１６２６５０，Ｃｈｉｎａ）
Ａｂｓｔｒａｃｔ：Ｔｈｅ　ｐｅｔａｌ，ｏｖａｒｙ　ａｎｄ　ｒｅｃｅｐｔａｃｌｅ　ｏｆ　Ｌｉｌｉｕｍ　ｃｅｒｎｕｍｗｅｒｅ　ｕｓｅｄ　ａｓ　ｅｘｐｌａｎｔｓ　ｆｏｒ　ｉｎ　ｖｉｔｒｏ　ｃｕｌｔｕｒｅ．Ｔｈｅ
ｒｅｓｕｌｔｓ　ｓｈｏｗｅｄ　ｔｈａｔ　ｔｈｅ　ｒａｔｅｓ　ｏｆ　ｃａｌｕｓ　ｉｎｄｕｃｔｉｏｎ　ａｎｄ　ｄｉｆｆｅｒｅｎｔｉａｔｉｏｎ　ｏｆ　ｔｈｒｅｅ　ｋｉｎｄｓ　ｏｆ　ｆｌｏｒａｌ　ｏｒｇａｎ　ｅｘｐｌａｎｔｓ
ｗｅｒｅ　ｄｉｆｆｅｒｅｎｔ．Ｔｈｅ　ｐｅｔａｌｓ　ｈａｄ　ｔｈｅ　ｈｉｇｈｅｓｔ　ｃａｌｕｓ　ｉｎｄｕｃｔｉｏｎ　ａｎｄ　ｄｉｆｆｅｒｅｎｔｉａｔｉｏｎ　ｒａｔｅｓ，ｗｉｔｈ　５７．６５％ａｎｄ
８１．１２％，ｒｅｓｐｅｃｔｉｖｅｌｙ．Ｔｈｅ　ｏｒｄｅｒ　ｆｒｏｍ　ｅａｓｙ　ｔｏ　ｄｉｆｆｉｃｕｌｔ　ｏｆ　ｃａｌｕｓ　ｉｎｄｕｃｔｉｏｎ　ｗａｓ　ｐｅｔａｌ＞ｒｅｃｅｐｔａｃｌｅ＞ｏｖａｒｙ．
Ｔｈｅ　ｏｐｔｉｍｕｍ　ｍｅｄｉｕｍ　ｆｏｒ　ｐｅｔａｌ　ｅｘｐｌａｎｔｓ　ｃａｌｕｓ　ｉｎｄｕｃｔｉｏｎ　ａｎｄ　ｄｉｆｅｒｅｎｔｉａｔｉｏｎ　ｗａｓ　ＭＳ＋６－ＢＡ　２．０ｍｇ·Ｌ－１＋ＮＡＡ
０．５ｍｇ·Ｌ－１．Ｔｈｅ　ｏｐｔｉｍｕｍ　ｍｅｄｉｕｍ　ｆｏｒ　ｏｖａｒｙ　ｅｘｐｌａｎｔｓ　ｃａｌｕｓ　ｉｎｄｕｃｔｉｏｎ　ａｎｄ　ｄｉｆｆｅｒｅｎｔｉａｔｉｏｎ　ｗａｓ　ＭＳ＋６－ＢＡ
１．０ｍｇ·Ｌ－１＋ＮＡＡ　０．５ｍｇ·Ｌ－１．Ｔｈｅ　ｏｐｔｉｍｕｍ　ｍｅｄｉｕｍ　ｆｏｒ　ｒｅｃｅｐｔｑａｃｌｅ　ｅｘｐｌａｎｔｓ　ｃａｌｕｓ　ｉｎｄｕｃｔｉｏｎ　ａｎｄ
ｄｉｆｆｅｒｅｎｔｉａｔｉｏｎ　ｗａｓ　ＭＳ＋６－ＢＡ　１．０ｍｇ·Ｌ－１＋ＮＡＡ　０．２ｍｇ·Ｌ－１．Ｔｈｅ　ｏｐｔｉｍｕｍ　ｍｅｄｉｕｍ　ｆｏｒ　ｒｏｏｔｉｎｇ　ｗａｓ
１／２ＭＳ＋ＩＢＡ　１．０ｍｇ·Ｌ－１＋ＮＡＡ　０．３ｍｇ·Ｌ－１＋ＡＣ　０．５ｇ·Ｌ－１．
Ｋｅｙ　ｗｏｒｄｓ：Ｌｉｌｉｕｍ　ｃｅｒｎｕｍ；ｐｅｔａｌ；ｏｖａｒｙ；ｒｅｃｅｐｔａｃｌｅ；ｔｉｓｓｕｅ　ｃｕｌｔｕｒｅ
Ｃｏｒｒｅｓｐｏｎｄｉｎｇ　ａｕｔｈｏｒ：ＺＨＯＵ　Ｙｕｎ－ｗｅｉ　Ｅ－ｍａｉｌ：ｙｕｎｗｅｉ＿ｚｈｏｕ＠ｙａｈｏｏ．ｃｏｍ．ｃｎ
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