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独角莲提取液体外抗宫颈癌Hela细胞增殖和诱导凋亡的研究



全 文 :收稿日期:2010-08-12; 修订日期:2011-01-05
基金项目:吉林省教育厅科研项目(No. 20050402 - 5)
作者简介:何秀霞(1975-) ,女(汉族) ,内蒙古乌海人,现任长春理工大学
生命科学技术学院副教授,硕士研究生导师,博士学位,主要从事生物化
学与分子生物学研究工作.
独角莲提取液体外抗宫颈癌 Hela细胞增殖
和诱导凋亡的研究
何秀霞,张春兰,何乃彦,于源华,张淑华,葛淑敏
(长春理工大学生命科学技术学院,吉林 长春 130022)
摘要:目的 探讨独角莲对宫颈癌的治疗作用,揭示其抑癌机理。方法 利用独角莲根茎水提物,作用宫颈癌 Hela 细胞
株,通过噻唑氮蓝比色实验(MTT)、流式细胞仪(FCM)和 Western blot 分析,研究独角莲对细胞增殖和细胞调亡的影响。
结果 独角莲对 Hela的增殖抑制率为 65. 08%。并能引起凋亡细胞的增加,成剂量依赖性,作用 72 h 后的凋亡率最高达
24. 5%。Western blot检测 Hela细胞经不同浓度的块茎提取液处理 48 h后,caspase - 3 蛋白表达逐渐增强。独角莲抗肿
瘤作用可能与上调 Hela细胞中 caspase - 3 蛋白的表达有关。结论 独角莲是一种在宫颈癌治疗上有前景的中草药。
关键词:独角莲; 宫颈癌; 细胞增殖; 细胞凋亡
DOI标识:doi:10. 3969 / j. issn. 1008-0805. 2011. 07. 032
中图分类号:R285. 5 文献标识码:B 文章编号:1008-0805(2011)07-1620-02
宫颈癌是妇科三大恶性肿瘤之一,在我国的发病率较高[1]。
其治疗手段较为单一,且副作用较大,受到一定限制,因此筛选和
研究更为有效的天然低毒治疗药物对宫颈癌的治疗具有重要意
义[2]。独角莲在我国传统中医治疗中广泛用于治疗多种恶性肿
瘤疾病[3],有较好的临床疗效,同时动物模型实验也显示独角莲
可明显抑制肿瘤生长[4]。近年来人们对独角莲的抑癌作用研究
逐步增多,但至今未能揭示其药效作用机制[5]。本实验采用噻
唑氮蓝比色法,并借助流式细胞仪及 Western blot分析手段,对独
角莲抑癌作用的细胞学机制作了初步的研究。
1 材料
人宫颈癌细胞(Hela)由本实验室保存。MTT、DMSO 等购自
美国 SIGMA公司;5FU(上海旭东海普药业有限公司) ;Annexin
V - FITC /PI凋亡检测试剂盒(Bender Medsystem 公司)。CO2 培
养箱(美国 Shellab) ,荧光倒置显微镜 Nikon ECLIPSE TE2000 -
E,酶标仪(DNM -9602 普朗新酶标仪)。
2 方法
2. 1 独角莲块茎提取液的制备 以独角莲块茎粗粉为原料,按照
10∶ 1 比例加入蒸馏水,超声波萃取 20 min 间隔 1 min 再重复 1
次,真空干燥后得干浸膏用蒸馏水稀释至 1 mg /ml备用。
2. 2 细胞培养 宫颈癌 Hela 细胞培养液 DMEM中加入含 10 %
热灭活小牛血清培养液,置 37 ℃、5 % CO2 及充分饱和湿度的培
养箱内进行培养,选对数生长期的细胞用于实验。
2. 3 药效的 MTT法测定 参考文献[6]的 MTT 方法略有改动。
调整细胞浓度至 4 ~ 6 × 104 /ml,接种于 96 孔板中,每孔 100 μl。
每组设 4 个复孔,分别设:调零组(培养液)、空白对照组(培养液
+药物)、正常对照组(培养液 +细胞)、实验组[细胞 +不同浓度
独角莲块茎提取液(62. 5,125,250,500,1 000,2 000,4 000 μg /
ml) ]和阳性对照组(5 Fu浓度为 20 μg /ml)。37℃培养 72 h,测
定 MTT溶解后的吸光度波长 492 nm。重复 3 次,计算细胞生长
抑制率:
细胞生长抑制率(%)=(1 -加药组平均 OD 值 /正常对照
组平均 OD值)× 100%。药效对照如表 1 所示。
表 1 MTT法测定药效对照
试剂
细胞
溶液 V /μl
不完全
培养液
V /μl
块茎提取
液溶液
V /μl
5Fu
注射液
V /μl
小牛
血清
V /μl
5 mg /ml
MTT
DMSO
V /μl
调零 0 200 0 0 20 20 150
空白对照 0 100 100 0 20 20 150
阴性对照 100 100 0 0 20 20 150
实验 100 0 100 0 20 20 150
阳性对照 100 0 0 100 20 20 150
绘制细胞对样品的药敏性曲线,以对数样品浓度为横坐标,
细胞生长抑制率为纵坐标,可求出细胞生长抑制率为 50%时的
药物浓度,即 IC50。
2. 4 细胞凋亡检测 参考《现代分子生物学实验技术》的 FCM[7]
略有改动,将生长良好的细胞分为正常细胞对照组和实验组。实
验组 a、b、c、d中分别加入质量浓度为 0. 5,1. 0,1. 5,2. 0 g /L的独
角莲块茎提取液,对照组不加。AnnexinV FITC /PI 双标染色,流
式细胞仪测定 Hela细胞的凋亡率。
2. 5 Western blot检测 caspase - 3 蛋白表达水平 取对数生长期
的 Hela细胞以 1 × 106 密度接种于 6 孔细胞培养板,加入不同浓
度块茎提取液(0,0. 5,1. 0,1. 5,2. 0 g /L)混合物,并设对照(普通
培养基) ,培养 48 h,用 Walterson 细胞裂解液提取细胞质及细胞
核蛋白。对蛋白样品进行 Western blot分析[8]。
2. 6 统计学方法 实验数据均采用 SPSS13. 0 统计软件分析,采
用单因素方差分析进行比较,以 珋x ± s来表示,组间采用 t检验,P
< 0. 05 为统计学差异有显著性意义。
3 结果
3. 1 独角莲块茎提取液体外抑癌作用 独角莲块茎提取液浓度
在 62. 5 ~ 4 000 μg /ml之间,对 Hela细胞的生长具有一定的抑制
作用,当浓度为 2 000 μg /ml,细胞的生长抑制率达到最高
65. 08%(图 1)。由图 1 可知当细胞生长抑制率为 50%时药效浓
度约为 500 μg /ml,即 IC50为 500 μg /ml。
图 1 独角莲块茎提取液对 Hela细胞的生长抑制率
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时珍国医国药 2011 年第 22 卷第 7 期 LISHIZHEN MEDICINE AND MATERIA MEDICA RESEARCH 2011 VOL. 22 NO. 7
3. 2 细胞凋亡检测 不同浓度的独角莲块茎提取液作用 HeLa
细胞 24,48,72 h 后,随独角莲块茎提取液浓度加大和作用时间
延长,凋亡率明显增高,与对照组相比具有显著差异性结果见图
2。
a -正常细胞 b -加入独角莲块茎提取液 72 h后
图 2 细胞仪检测的散点图
图 3 AnnexinV - FITC /PI双标法检测独角莲
块茎提取液对 HeLa细胞凋亡的影响
独角莲诱导人宫颈癌 HeLa 细胞凋亡具有明显的药物浓度
依赖性,在同一时间段,随药物浓度的增加细胞凋亡率增加,两者
呈正相关(P < 0. 01)。同一浓度不同时间段(24,48,72 h)细胞
的凋亡率逐渐增加。2 g /L 浓度独角莲作用 72 h 后的凋亡率为
24. 5%结果见图 3。
3. 3 Western blot 分析 caspase - 3 表达情况 Western blot结果显
示 HeLa细胞经不同浓度的独角莲块茎提取液处理 48 h,caspase
- 3 蛋白表达逐渐增强(图 4) ,提示 caspase - 3 作为细胞凋亡通
路的重要组成部分,其活化可能参与了独角莲诱导的 HeLa 细胞
的凋亡。也证明了独角莲具有抑制癌细胞增殖的能力。
1 ~ 5 分别为:对照组 0 g /L,实验组 a 0. 5 g /L,
实验组 b 1. 0 g /L,实验组 c 1. 5 g /L,实验组 d 2. 0 g /L
图 4 不同浓度独角莲块茎提取液作用于
HeLa细胞 48 h的 caspase - 3 蛋白表达
4 讨论
HeLa细胞体外培养每 3 天可以传代 1 次。细胞生长时间过
长或过短都不能使大部分细胞处于对数生长期,影响细胞的实验
效果。本研究表明细胞密度为 6 × 104 /ml 时,独角莲浓度为
2 000 μg /ml,对 Hela细胞的增殖抑制率 72 h达 65. 08%,说明独
角莲对 Hela细胞增殖具有显著抑制作用,是一种极具开发潜力
的抗癌中药。Hela细胞在相同药物浓度下(2. 0 g /L) ,随作用时
间延长,细胞凋亡率逐步加强,72 h后凋亡率为 24. 5%。细胞具
有极其复杂的生命活动,细胞凋亡途径是一个涉及细胞生长增殖
和受到外界刺激后死亡一个重要的组成部分[9]。独角莲能引起
凋亡细胞的增加,并成剂量依赖性。
目前发现,细胞凋亡有 3 条不同的通路(线粒体通路、死亡受
体通路和内质网通路) ,但其最终主要通过活化半胱氨酸蛋白酶
(caspase)导致细胞凋亡,其中 caspase - 3 是各条凋亡通路的枢
纽,各种凋亡刺激激活 caspase后,最终激活 caspase - 3 而诱导细
胞凋亡。正常情况下,胞质中的 caspase - 3 以无活性的酶原(pro
- caspase - 3)形式存在,当细胞发生凋亡时酶原将裂解而被活
化。活化的 caspase - 3 能够降解多种底物,导致染色质凝聚、核
酸激活和细胞骨架断裂崩解等一系列的级联分子反应,最终导致
细胞凋亡[10]。Western blot 结果显示独角莲抗肿瘤作用可能与
上调 Hela细胞中 caspase - 3 蛋白的表达有关。
本实验从细胞生物学水平证实了独角莲块茎提取液对宫颈
癌 HeLa细胞系的体外杀伤作用,其影响细胞凋亡的机制还有待
进一步深入研究。
参考文献:
[1] 廖秦平. 宫颈癌病因学研究新进展[J]. 中国妇产科临床杂志,
2003,4:243.
[2] 朱建平,蔡国友,沈子威,等.化学治疗药物对肝癌细胞增殖抑制作
用的观察[J].中华普通外科杂志,2001,1:28.
[3] 尹建元,朴春姬,杨建增,等.禹白附抗肿瘤活性研究[J].长春中医
学院学报,2000,2:52.
[4] 胡长效,朱 静,孙晓静,等.独角莲的化学成分及药理作用研究进
展[J].农业与技术,2007,2 :50.
[5] 段玉敏,刘书鑫,张洪娟,等.独角莲乙醇提取物体外抗肿瘤实验研
究[J].中医药学报,2010,3:20.
[6] Foongladda S,Roengsanthia D,et al. Rapid and simple MTT method for
rifampicin and isoniazid susceptibility testing of Mycobacterium tubercu-
losis[J]. Int J Tuberc Lung Dis,2002(12) :1118.
[7] 卢圣栋.现代分子生物学实验技术,第 2 版[M].中国协和医科大
学出版社,北京:1999:656.
[8] 张俊峰,陆敏强,蔡常洁,等. Caspase - 3 在雷帕霉素诱导肝癌细胞
BEL - 7402 凋亡中的作用[J].癌症,2006,12:1508.
[9] 王林美,叶 博,赵振军,等.独角莲抑制乳腺癌 MCF - 7 细胞增殖
和诱导凋亡的作用研究[J].沈阳农业大学学报,2009,2:174.
[10] 梁清清,石 英,李卫国,等. 绿茶多酚诱导肝癌细胞凋亡时
Caspase - 3 蛋白活性与 mRNA 的变化[J]. 安徽农业科学,2008,
23:9907.
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