全 文 :中国农学通报 第22卷 第 12期 2006年 12月
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水分亏缺是限制干旱和半干旱地区小麦(Triticum
durumDesf)产量的的最重要因子之一。许多研究指
出,干旱胁迫破坏了植物体自由基的产生与清除间的
平衡,降低了自由基清除系统的清除能力;自由基在体
内积累,使蛋白质氧化和生物膜受到伤害,导致植物损
伤[1~3]。因此,如何降低水分亏缺引起的氧化胁迫成了
目前提高农作物抗旱性的重要问题。已有研究表明,乙
酰水杨酸(ASA)可抑制小麦叶片中超氧阴离子(O2-)增
加 [4],并且大于150mg/LASA可完全清除体系内的
O2-[5]。进一步研究发现,ASA在植物中有类似于水杨酸
(SA)的作用,在植物体内可很快转化为SA,而SA可
明显提高超氧化物歧化酶(SOD)活性,进而提高了植
物抗逆性 [6]。除SOD外,植物中还存在过氧化氢酶
(CAT)、抗坏血酸过氧化物酶(APX)和谷胱甘肽还原酶
(GR)等抗氧化保护酶类,它们可将植物体内SOD歧化
O2-所生成的H2O2还原为水,降低体内的ROS,使植物
体内自由基的生成与清除处于平衡状态而得以维持正
常的生理功能[7]。先前的研究主要集中在SA对水分亏
缺引起的膜脂过氧化、SOD的活性和O2-的含量变化
方面,而SA对水分亏缺引起的H2O2含量及GR、CAT
水杨酸对节节麦根在水分亏缺下氧化
与抗氧化反应的影响
崔香环,郝福顺,赵瑞光
(河南大学生命科学院农业生物技术研究所,河南开封475001)
摘 要:研究分析了水杨酸(SA)对 20%聚乙二醇 6000(PEG6000)引起节节麦幼苗根中活性氧(ROS)水
平和抗氧化酶活性的影响,结果发现,PEG能够显著提高节节麦根中超氧阴离子 (O2-)、过氧化氢
(H2O2)和丙二醛(MDA)的含量,明显降低超氧化物歧化酶(SOD)、抗坏血酸过氧化物酶(APX)、过氧化
氢酶(CAT)和谷胱甘肽还原酶(GR)的活性;SA能明显抑制 PEG诱导的 MDA和 O2-的积累,缓解
PEG对SOD、GR和CAT活性的抑制作用,但对 APX的活性没有明显影响。这表明 SA可能主要通
过影响SOD、GR和CAT的活性缓解了水分亏缺对节节麦造成的伤害。
关键词:节节麦;PEG6000;水杨酸;活性氧;抗氧化酶
中图分类号:Q945.17 文献标识码:A
TheEfectofSalicylicAcidonOxidantiveandAntioxidativeResponseof
AegilopsTauschiRootsunderWaterDeficit
CuiXianghuan,HaoFushun,ZhaoRuiguang
(InstituteofAgriculturalBiotechnology,ColegeofLifeScience,HenanUniversity,Kaifeng475001)
Abstract:Theefectsofsalicylicacid(SA)onthelevelofreactiveoxygenspecies(ROS)andactivitiesof
antioxidativeenzymesinAegilopstauschirootsby20%PEG6000wereinvestigated.20% PEG6000re-
sultedinsignificantincreaseinthecontentsofO2,H2O2andMDAanddecreaseintheactivitiesofsuper-
oxidedismutase (SOD),glutathionereductase (GR),catalase (CAT)andascorbateperoxidase (APX)in
Aegilopstauschiroots.However,SAobviouslyinhibitedtheincreaseinthelevelofMDAandO2-induced
byPEG6000andrelievedtheefectsofPEG6000ontheactivitiesofSOD,GRandCAT.Theactivitiesof
APXwerenotobviouslychangedbySAaftertreatmentPEG.TheseresultssuggestthatSAmayrelieve
thedamagetoAegilopstauschibyalteringtheactivitiesofSOD,GRandCATunderwaterdeficit.
Keywords:Aegilopstauschi,PEG6000,SA,Reactiveoxygenspecies,Antioxidases
第一作者简介:崔香环,女,1970年出生,河南濮阳人,博士,副教授。主要从事植物逆境信号转导机制的研究。通信地址:475001河南省开封市明伦街85号
河南大学生命科学学院,Tel:0378-2865799,E-mail:cuixh01@126.com。
收稿日期:2006-09-05,修回日期:2006-09-26。
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和APX活性变化研究较少。
根系是小麦吸收水分和养分的主要器官,也是最
早感受土壤干旱的器官。因此为了详细了解SA缓解
水分亏缺危害作物的生理和生化机制以及提高作物的
抗旱性,笔者以节节麦幼苗的根为材料,分析了SA对
水分亏缺引起的ROS水平和抗氧化酶活性的影响,结
果发现,SA可能主要通过影响SOD、GR和CAT的活
性缓解水分亏缺对节节麦造成的伤害。
1材料和方法
1.1实验材料
节节麦(Aegilopstauschi)种子由河南大学李锁平
教授提供。用2%次氯酸钠将节节麦种子消毒15min
后,去离子水冲洗干净,30℃催芽约24h,将种子播于
放在浅盘上钢丝网中的湿纱布上,用1/10Hoagland溶
液培养,培养液中通气并每d更换培养液。培养条件:
自然光照,温度25℃。
1.2实验方法
1.2.1试剂处理 分别用PEG6000和PEG6000(20%)
+SA(500μmol/l)处理生长2周的节节麦幼苗0、6、12、
24h,处理后将根剪下,立即用于其后的研究;用同样体
积的1/10Hoagland溶液处理作对照。
1.2.2丙二醛(MDA)、ROS和抗氧化酶活性的测定
MDA含量按照Du和Bramlage的方法[8]测定。
H2O2含量按照Brennan和Frenkel的方法[9]测定。
O2-含量按照Elster和Heupel的方法[10]测定。
按 Jiang和 Zhang的方法[11]制备粗酶液,并测定
SOD、CAT、APX、GR的活性。
所有操作均在 4℃下进行.蛋白质含量根据
Bradford的方法[12]测定。
1.3统计分析
以上实验至少重复 3次,用 Student’st检验在
0.05概率水平计算处理和对照的显著性差异。
2结果与分析
2.1SA对PEG诱导节节麦根中H2O2和O2-含量的影
响
研究发现,PEG单独处理6h时,O2-在节节麦根中
快速积累,与对照相比,增加了23倍,而加入SA后,
6h的O2-含量仅为对照的3.7倍(图1A),这表明SA显
著降低了PEG诱导节节麦根中O2-含量;对H2O2来
说,PEG处理12h时根中H2O2积累虽达到最大,但与
对照相比,增加的不足3倍,而加入SA6h后,H2O2开
始快速积累,12h时达到最大,此时H2O2含量增加为
对照的8.8倍(图1B),这表明SA显著增加了PEG诱
导节节麦根中H2O2的含量。
2.2SA对PEG诱导节节麦根中MDA含量的影响
图2显示,PEG单独处理后,MDA含量在节节麦
根中快速积累,至12h时,MDA含量增加为对照的14
倍;而加入SA后,12h的MDA含量仅为对照的2.7
倍(图2),这表明SA基本逆转了 PEG诱导节节麦根
中MDA含量的增加。
2.3SA对PEG诱导节节麦根中抗氧化酶活性的影响
研究发现,PEG单独处理6h就能显著降低节节
麦根中SOD、GR、CAT和APX的活性(图3)。与对照
相比,SOD的活性降低了4.79倍 (图3A),GR降低了
2.75倍(图3B),CAT降低了6.15倍(图3C),APX降低
了4.6倍(图3D)。加入SA后,基本逆转了PEG引起
的的SOD、GR和CAT活性的降低,并且SA处理6h
后,SOD活性呈上升趋势,至24h时,SOD活性增加为
对照的1.52倍,而PEG单独处理的仅为对照的0.69
倍 (图3A);而从CAT的活性来说,SA在加入6h之
内,基本与对照无明显差别,随后活性降低,至12h
时,活性达到最小,此时为对照的0.32倍,然后活性开
图1 SA对PEG诱导节节麦根中活性氧 O2-(A)和 H2O2(B)含量的影响
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始增加,至24h时,恢复为对照的1.47倍(图3C);而加
入SA后,APX的活性与PEG单独处理的无显著差异
(图3D)。上述结果表明,SA影响了PEG引起的SOD、
GR和CAT活性的变化,而对APX基本没有影响。
3讨论
许多研究表明,水分亏缺可引起植物体内SOD活
性的下降[2,3]、ROS增加[2,3,13,14]、膜脂过氧化加强和膜透
性增加[2,3]。在笔者的研究中也观察到PEG处理后引起
节节麦根中O2-和H2O2水平的上升,其中O2-积累更
快,MDA的含量也快速增加,而且四种清除ROS的抗
氧化酶(SOD、GR、CAT和APX)的活性也都受到明显
的抑制。笔者的结果进一步证明胁迫降低了ROS清除
系统的清除能力,导致了节节麦根中O2-和H2O2水平
上升,加剧了膜脂过氧化作用。这与以前用其它材料报
道的过多的 O2-可导致膜脂过氧化作用的结果类
似[2,3,13,15]。此外,还发现除APX外,SOD、GR和CAT的
活性在处理6h后都开始回升,至12h时基本恢复到对
照水平,这可能是水分亏缺激活了这些酶的基因表达,
增加了酶的含量或(和)活性,进而提高了ROS的清除
图2 SA对PEG诱导节节麦根中 MDA含量的影响
图 3 SA对PEG诱导节节麦根中 SOD(A)、GR(B)、CAT(C)和APX(D)活性的影响
能力,最终导致O2-、H2O2和MDA水平下降(图1,2)。
水杨酸是一种植物内源激素,它可通过提高SOD
活性,加速O2-歧化为H2O2,提高植物的抗逆性[6],在减
弱或消除胁迫引起的氧自由基及脂质过氧化的过程中
起着重要作用[16,17]。笔者的研究发现,500μmol/lSA基
本逆转了水分亏缺引起节节麦根中的 O2-的积累、
SOD活性的降低和膜脂过氧化作用的增加。这些结果
表明SA可通过减少水分亏缺引起的O2-积累来降低
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膜脂过氧化作用,最终使节节麦免受伤害,这与姜晶和
张宪政以小麦为材料报道的乙酰水杨酸可直接清除小
麦叶片中的O2-,同时还可提高SOD活性间接清除O2-
的结果是一致的 [5]。研究还发现H2O2水平却在加入
SA6h后明显上升,这可能主要是由于SA提高了超氧
化物歧化酶(superoxidedismutase,SOD)的活性,导致
H2O2浓度升高[18];此外SA可以与CAT(catalase,CAT)
特异结合,抑制其活性,也使H2O2积累[19],因此减弱或
消除了 O2-启动的脂质过氧化对植物体造成的伤
害[16,17]。SA的加入虽然清除了O2-,但是却使节节麦根
中H2O2大量积累。植物体内的CAT、APX和GR可将
H2O2还原为水,降低体内的ROS[7]。在这几种清除
H2O2的酶中,SA分别在6h和12h之内明显逆转了水
分亏缺引起的CAT和GR酶活的降低;而SA对APX
活性无显著影响。上述结果说明,SA在缓解水分亏缺
过程中,一方面可直接清除体内积累的O2-,另一方面
可通过提高SOD活性间接清除O2-,同时通过提高GR
和CAT活性来清除由O2-歧化生成的H2O2,来降低节
节麦根中的ROS水平,最终减少胁迫带来的伤害;而
APX可能没有参与SA对此过程的调节。
参考文献
[1] 蒋明义,郭绍川.水分亏缺诱导的氧化胁迫和植物的抗氧化作用.
植物生理学通讯.1996,32(2):144-150.
[2] 吕庆,郑荣梁.干旱及活性氧引起小麦膜脂过氧化与脱酯化.中国
科学.1996,26(1):26-30.
[3] 孙国荣,彭永臻,姜丽芬,等.干旱胁迫对白桦实生苗保护酶活性及
脂质过氧化作用的影响.林业科学.2003,39(1):165-167.
[4] 汪晓峰,张宪政.ASA提高小麦抗旱性生理效应的研究.植物学通
报.1998,15(3):48-50.
[5] 姜晶,张宪政.水分亏缺下乙酰水杨酸清除小麦幼苗中O2-的研究.
植物生理学通讯.2000,36(1):33-35.
[6] Pena-CortesH,AlberechtT,PartsS,etal.Aspirinprevents
wounding-inducedgeneexpressionintomatoleavesbyblock-ing
jasmonicacidbilsynthesis.Planta.1993,191:123-128.
[7] MitlerR.Oxidativestress,antioxidantsandstresstolerance.Trends
inPlantScience.2002,7:405-410.
[8] DuZ,BramlageWJ.Modifiedthiobarbituricacidassayfor
measuringlipidoxidationinsugar-richplanttissueextracts.JAgri
FoodChem.1992,40:1566-1570.
[9] BrennanT,FrenkelC.Involvementofhydrogenperoxideinthe
regulationofsenescenceinpear.PlantPhysiol.1977,59:411-416.
[10] ElsterEF,HeupelA.Inhibitionofnitritefromehydroxylammonium
chloride:asimpleassyforsuperoxidediamutase.Analytical
Biochemistry.1976,70:616-620.
[11] JiangM,ZhangJ.Efectofabscisicacidonactiveoxygenspecies,
antioxidativedefencesystem andoxidativedamageinleavesof
maizeseedlings.PlantandCelPhysiology.2001,42:1265-1273.
[12] BradfordMM.Arapidandsensitivemethodforthequantitationof
microgramquantityofproteinutilizingtheprincipleofprotein-dye
binding.AnnalsofBiochemistry.1976,72:248-254.
[13] PriceA,AthertonN,HendryG.Plantsunderdrought-stressgenerate
activatedoxygen.FreeRadicResCommun,19898:61-66.
[14] QuartacciMF,Navari-LzzoF.Waterstressanfreeradicalmediated
changesinsunflowerseedlings.JPlantPhysiol,1992,142:621-625.
[15] 林植芳,李双顺,林桂珠,等.水稻叶片的衰老与超氧物歧化酶活性
的关系及脂质过氧化作用的关系.植物学报,1984,26(6):605-615.
[16] 余迪求,岑川,杨明兰,eta1.Studiesonthesalicylicacidinducedlipid
peroxidationanddefencegeneexpressionintobaccocelculture.
ActaBotSin(植物学报),1999,41(9):977-983.
[17] 柯德森,王爱国,罗广华.Efectofactivatedoxygenduringthe
productionofendogenousethyleneinduecdbyexogenousethylene.
ActaPhytophysiolSin(植物生理学报),1997,23(1):67-72.
[18] RaoMV,PalivathG,OrmrodD,etal.Influenceofsalicylicacidon
H2O2production,oxidativestress,andH2O2-metabolizingenzymes.
PlantPhysiol,1997,115:137-149.
[19] Sánchez-CasasP,KlessigDF.Asalicylicacid-bindingactivityand
asalicylicacid-inhibitablecatalaseactivityarepresentinavarietyof
plantspecies.PlantPhysiol,1994,106:1675-1679.
(责任编辑:张铁锋)
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