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节节麦和黑麦杂种胚再生植株的分子细胞遗传学分析



全 文 :第42卷 第5期 河南大学学报(自然科学版) Vol.42 No.5
2012年9月 Journal of Henan University(Natural Science) Sep.2012
专 家 简 介
李锁平(1962-),男,博士,教授,博士生导师.河南省遗传学会副理事长,河南省学
术技术带头人.先后主持国家自然科学基金、河南省杰出青年科学基金等国家、省部级项
目10项,发表论文40余篇,出版专著5部.目前已经克隆了小麦品质相关的基因12个,
并在国际基因库注册;在黄河流域特色节节麦资源研究和利用、植物远缘杂种不减数配
子形成途径、远缘杂种无性系育性变异机理、小麦-节节麦染色体操作、植物分子进化等
方面作出了较具特色的研究工作.
节节麦和黑麦杂种胚再生植株的分子细胞遗传学分析
李锁平1,卢良峰2,张大乐1,王 伟1
(1.河南大学 生命科学学院,河南 开封475004;2.河南农业职业学院,郑州451450)
 收稿日期:2012-05-25
 基金项目:国家863计划(2012AA101105)和973计划(2012CB114304)基金联合资助
摘 要:利用杂种幼胚愈伤组织诱导和再生技术产生了节节麦和黑麦杂种幼胚无性系.胚拯救直接成苗植株、继代
培养60d的再生植株和继代培养420d的再生杂种植株PMCs减数分裂 MI染色体构型分别为10.82I+1.57II
+0.01III,9.96I+1.59II+0.25III+0.03IV,7.59Ⅰ+3.10Ⅱ+0.05Ⅲ +0.01IV.继代培养420d左右胚再
生无性系其减数分裂 MI染色体配对频率大幅度提高,利用原位杂交技术分析表明其染色体配对频率提高和染色
体结构和数量变异无关.提示体细胞无性系变异可能是增加部分同源染色体配对,增加属间种基因交流的一个新
途径.
关键词:节节麦;黑麦;属间杂种;基因组原位杂交;减数分裂配对;体细胞无性系变异
中图分类号:Q943   文献标志码:A 文章编号:1003-4978(2012)05-0620-06
Molecular Cytogenetics of the Embryo Regenerated Plants from
Hybrids between Aegilops tauschii and Secale cereale
LI Suo-ping 1,LU Liang-feng2,ZHANG Da-le1,WANG Wei 1
(1.College of Life Science,Henan University,Henan Kaifeng475004,China;
2.Henan Vocational College of Agriculture,Zhengzhou 451450,China)
Abstract:The somaclones of the hybrid between Aegilops tauschii(2 n=2x=14,DD)and Secale cereale(2n=
2x=14,RR )were produced by embryo calus induction and regeneration methods.The average chromosome
configuration of polen mother cels(PMCs)of the embryo-rescued hybrids,the embryo-calus-regenerated hybrid
plants from subculture for 60days,and embryo calus-regenerated hybrid plants from subculture for 420days were
10.82I+1.57II+0.01III,9.96I+1.59II+0.25III+0.03IV,and 7.59I+3.10II+0.05III+0.01IV,
respectively.The results from GISH of PMCs of these hybrids showed that the increasement of bivalents in embryo
calus-regenerated hybrid plants from subculture for 420days did not result from the change of their chromosomes.
The somaclone variations possibly was a method of inducement pairing of homoeologous chromosome and
increasement of genetic transfer between species in the intergeneric hybrids.
Key words:Aegilops tauschii;Secale cereale;intergeneric hybrids;genomic in situ hybridization(GISH);meiotic
pairing;somaclonal variation
DOI:10.15991/j.cnki.411100.2012.05.016
李锁平,等:节节麦和黑麦杂种胚再生植株的分子细胞遗传学分析 621 
  Larkin和Scowcroft于1981年首次提出用“体细胞无性系”一词来概括一切由植物体细胞再生的植株,
把再生植株中出现的变异叫做“体细胞无性系变异”[1].体细胞无性系变异是一种普遍现象,相关研究涉及小
麦、水稻、燕麦、大麦、玉米、马铃薯、油菜等作物.产生变异的性状包括细胞学上的不稳定性(染色体数目和结
构),频率高的质量和数量性状变异(株高、芒、分蘖力、育性、谷物产量、粒色、蛋白质含量、抗病性、抗逆性和
一些生理生化特性),序列改变,基因激活、寂默等[2-3].人们利用这种无性系变异进行育种也在小麦、大麦、玉
米自交系和油菜等作物上开展.
属间杂种的无性系变异和利用研究在小麦族属间杂种上也有一些报导,研究表明,一些属间杂种无性系
发生了形态、育性、染色体数目和结构变异[2].人们对属间杂种无性系变异进行研究的兴趣主要是发现一些
不育的属间杂种F1,其无性系育性的提高,可以克服杂种的不育性;其次,可以利用无性系的染色体加倍现
象获得双倍体.属间杂种体细胞无性系变异的一个重要目的是利用这种变异向栽培种导入外源染色体片断,
这种途径较其他途径相比有高效、时间短等优点[2].目前,已利用这种途径将黑麦的抗谷物孢囊线虫基因[4]
和中间偃麦草的抗大麦黄矮病基因[4-5]导入了小麦.利用小麦和黑麦杂种无性系加倍得到了新的易位小黑
麦[6].利用体细胞无性系变异导入外缘基因是利用无性系中的结构变异或高配对变异体,而高配对变异导致
交换是产生同源平衡易位的基础,是一种有重要研究价值和应用前景的变异类型.已发现一些再生个体其染
色体配对频率大幅度提高,但这种高配对变异体和染色体结构变异的关系目前还缺乏详细的细胞学分析.在
前期工作中,作者课题组获得了节节麦和黑麦杂种胚无性系,发现培养420d左右的再生杂种,染色体配对
频率大幅度提高.本研究利用原位杂交技术对其减数分裂配对构型进行分析,探讨其配对频率提高和染色体
结构和数目变异的关系.
1 材料和方法
1.1 实验材料
节节麦(Aegilops tauschii)(85A-34)原采自西安,荆州黑麦(Secale cereale c.v.Jingzhou heimai)为南
京农业大学细胞遗传研究所保存材料.以节节麦作为母本,黑麦为父本进行杂交.取授粉后14d或16d未成
熟种子,分别用70%酒精浸泡1min,0.1%升汞溶液表面灭菌8min,无菌水冲洗4~5次,于超净工作台上
在解剖镜下剥出幼胚,放在同龄的大麦胚乳上,移植于(MS[7]+天冬素150mg/L,蔗糖3%,pH5.8)培养基
上;先在黑暗中培养,出苗后放在光照条件下培养,培养温度为22~25℃.节节麦为母本的杂种胚部分放在
诱导培养基上(MS+2,4-D 2mg/L+天冬素150mg/L,蔗糖3%,pH 5.8),进行愈伤组织诱导培养,当幼胚
产生的愈伤组织直径为4~5mm时,转移到 MS继代培养基上(MS+2,4-D 0.5mg/L+天冬素150mg/L,
pH 5.8).继代两次后(继代培养60d左右),将带有绿色芽点的团块转移到分化培养基上(上述成分中去掉
2,4-D),分化出的幼苗转移到生根壮苗培养基上(1/2MS+0.5mg/L IAA+天冬素150mg/L,蔗糖1.5%,
pH 5.8),九月下旬后炼苗移栽.部分愈伤组织每一个月继代一次,保存至次年七月转移到分化培养基上(继
代培养420d左右).次年九月下旬练苗移栽.
1.2 实验方法
常规的醋酸洋红压片方法进行体细胞染色体计数和花粉母细胞减数分裂中期I染色体配对分析.按照
庄丽芳等[8]程序进行原位杂交分析.
2 结果和分析
2.1 杂种胚愈伤组织再生无性系杂种的形态特征
以节节麦为母本,黑麦为父本杂交共授粉254朵小花,结实,获得幼胚,在授粉14~16d进行幼胚培养,
共培养61个胚,产生35个杂种.选择了以节节麦作母本得到的20个杂种胚进行胚愈伤组织诱导培养,培养
三周后,形成8块带有绿点的全能性组织,经过继代、分化培养至7月份(继代培养60d),共分化产生了285
株再生植株.将部分愈伤组织进行继代保存,第二年7月(继代培养420d左右),又获得198株杂种植株.来
源于胚愈伤组织再生的无性系植株(继代60d)的形态和胚培养直接成苗的杂种植株形态像似,表现分蘖力
强,穗较长等.而继代420d左右的再生植株的生活力降低,株高和穗长、小穗数等均减少.
622  河南大学学报(自然科学版),2012年,第42卷第5期
2.2 胚愈伤组织再生无性系杂种的细胞学分析
对胚培养杂种植株根尖染色体数目计数表明为14.10株杂种花粉母细胞染色体平均构型为10.82I+
1.57II+0.01III.对继代培养60d的杂种胚再生植株根尖染色体记数表明,在观察的35株中,有2株染色
体数自然加倍(2 n=28),加倍植株的茎杆粗壮,叶片和穗子较大,但分蘖数减少;其余33株染色体数2 n=
14,其中的10株花粉母细胞染色体配对结果见表1,它们平均的染色体配对构型为9.96I+1.59II+0.25
III+0.03IV,和胚培养杂种植株的构型相比,出现一定的三价体和四价体.
选择继代420d左右的再生植株45株进行染色体计数,染色体数目为14的37株,8株染色体数目加倍
为28.随机选出2 n=14的植株进行花粉母细胞分析,结果总结于表2,它们平均表现为7.59I+3.10II+
0.05III+0.01IV,和胚培养直接成苗的植株和继代60d再生植株相比,二价体的比例明显提高.为了探明
再生植株染色体配对频率的提高是否和染色体结构改变有关,对一配对频率高(7.08I+3.35II+0.08III)
的植株的花粉母细胞进行了原位杂交(图1,图2,表3),结果显示,其有7个节节麦、7个黑麦完整的染色体,
从而证明,其染色体结构没有发生变化.
表1 继代60d胚愈伤组织再生植株杂种F1的PMC MI的染色体配对情况
Tab.1 Chromosome configuration of PMCs at MI of embryo calus regenerated plants
(subculture for 60days)
杂种株号
Hybrid
Number
观察细胞数
No.of Cel
Scored
染色体数
No.of
Chromosome
染色体配对Chromosome Pairing
I    RodII   RingII  TotalII   III   IV
1  100  14
10.45
(5-14)
1.4
(0-3)
 
1.4
(0-3)
0.25
(0-1)
2  100  14
8.89
(5-14)
1.55
(0-3)
 
1.55
(0-3)
0.55
(0-2)
0.09
(0-1)
3  100  14
9.59
(5-12)
1.71
(0-4)
 
1.71
(0-4)
0.33
(0-2)
4  100  14
11.14
(8-14)
1.27
(0-3)
0.04
(0-1)
1.31
(0-3)
0.08
(0-1)
5  100  14
10.67
(6-14)
1.56
(0-4)
 
1.56
(0-4)
0.07
(0-1)
6  100  14
10.76
(8-14)
1.42
(0-3)
0.08
(0-1)
1.5
(0-3)
0.08
(0-1)
7  100  14
9.58
(6-14)
1.84
(0-4)
 
1.84
(0-4)
0.11
(0-1)
0.11
(0-1)
8  100  14
9.35
(5-12)
1.73
(0-4)
0.01
(0-1)
1.74
(0-4)
0.27
(0-2)
0.09
(0-1)
9  100  14
10.11
(6-14)
1.75
(0-4)
 
1.75
(0-4)
0.13
(0-1)
10  100  14
9.05
(6-12)
1.59
(0-4)
 
1.59
(0-4)
0.59
(0-3)
平均 Mean  100  14  9.96  1.58  0.01  1.59  0.25  0.03
李锁平,等:节节麦和黑麦杂种胚再生植株的分子细胞遗传学分析 623 
表2 继代420d左右胚愈伤组织再生植株杂种F1的PMC MI的染色体配对情况
Tab.2 Chromosome configuration of PMCs at MI of embryo calus regenerated plants(subculture for 420days)
杂种株号
Hybrid number
观察细胞数
No.of Cel
Scored
染色体数
No.of Chromosome
染色体配对Chromosome Pairing
I   RodII   RingII   TotalII   III   Ⅳ
1  100  14
6.58
(0-12)
3.23
(1-7)
0.35
(0-1)
3.58
0.04
(0-1)
0.04
(0-1)
2  100  14
8.46
(0-14)
2.62
(0-7)
0.15
(0-2)
2.77  
3  100  14
7.73
(4-12)
2.93
(1-5)
  2.93  
4  100  14
6.19
(0-12)
3.43
(1-7)
0.19
(0-2)
3.62
0.19
(0-1)
 
5  100  14
7.04
(2-10)
3.16
(1-6)
0.16
(0-2)
3.32  
6  100  14
8.78
(5-12)
2.36
(1-4)
  2.36
0.07
(0-1)
0.07
(0-1)
7  100  14
8.96
(3-14)
2.20
(0-5)
0.08
(0-1)
2.28
0.16
(0-1)
8  100  14  7.68  2.85  0.16  3.00  0.08  0.02
9  100  14
8.70
(6-12)
2.48
(1-4)
0.17
(0-1)
2.65
10  100  14
8.26
(4-14)
2.63
(0-5)
0.19
(0-2)
2.81
0.04
(0-1)
11  100  14
6.48
(2-10)
3.59
(1-6)
0.11
(0-1)
3.7
0.04
(0-1)
12  100  14
8.35
(4-12)
2.82
(1-5)
  2.82  
13  100  14
6.10
(2-10)
3.52
(2-6)
0.19
(0-2)
3.71
0.10
(0-1)
14  100  14
6.58
(0-12)
3.31
(1-6)
0.35
(0-2)
3.66
0.04
(0-1)
15  100  14
7.08
(2-12)
3.31
(1-6)
0.04
(0-1)
3.35
0.08
(0-1)
平均 Mean  100  14  7.59  2.96  0.14  3.10  0.05  0.01
表3 杂种胚愈伤组织再生植株的染色体配对的原位杂交分析
Tab.3 Chromosome configuration at MI of PMCs observed by GISH in the embryo-calus-regenerated F1
hybrids of Ae.tauschii×S.cereale
 
花粉
母细
胞数
No.of
PMCs
染色体联会
  

D   R  Total
   
II
D-D   D-R   R-R  Total
   
III
R-D-R  D-R-D  Total
平均
Mean
50
3.48
(0-5)
3.34
(0-6)
6.82
(2-12)
0.32
(0-1)
2.82
(1-6)
0.38
(0-2)
3.52
(1-6)
0.04
(0-1)
0.02
(0-1)
0.06
(0-1)
624  河南大学学报(自然科学版),2012年,第42卷第5期
图1 杂种PMC(MI)染色体原位杂交:6I+4II(R-D);
红色为节节麦染色体,黄色为黑麦染色体
Fig.1 Fluoresecnt micrographs of Metaphase I in the
polen mother cel (PMC)from hybrid F1amphidiploid
after Genomic in situ hybridization:A PMC showing
6I+4II(R-D).Rye chromosomes are shown yelow
while the Ae.tauschii chromosomes appear red
图2 杂种PMC(MI)染色体原位杂交:8I+3II(R-D),
红色为节节麦染色体,黄色为黑麦染色体
Fig.2 Fluoresecnt micrographs of Metaphase I in the
polen mother cel (PMC)from hybrid F1amphidiploid
after Genomic in situ hybridization.Rye chromosomes are
shown yelow while the Ae.tauschii chromosomes
appear red;A,A PMC showing 8I+3II(R-D)
3 讨论
本文在节节麦-黑麦杂种幼胚无性系继代一年后的再生杂种中发现,和幼胚拯救杂种及继代早期再生
杂种相比,其配对频率大幅度提高主要是D-R配对,并有一定频率的多价体出现,其配对频率的提高不是染
色体结构发生变化形成的.
植物体细胞无性系变异的机理,一直是无性系变异研究的热点问题.近20年来,在细胞学和分子生物学
两个水平上对无性系变异作了不少研究,为认识无性系变异的机理奠定了基础.最近的一些研究表明,DNA
甲基化状态的改变导致基因活性、染色质的结构变化而影响许多基因的表达;组织培养所诱发的基因组胁迫
导致甲基化状态的改变激活转座子和反转座子等表观遗传学因素可能是无性系变异的原因[3].
在小麦中,两个主要抑制基因5BL上的Ph1[9-10]和3DS上的Ph2[11],以及一些具有微弱抑制或促进作
用的基因[12]共同组成一个遗传系统,严格控制着六倍体普通小麦的二倍体化减数分裂行为.位于3DS的
Ph2基因可能在小麦的野生二倍体供物种节节麦中就已经存在[11].Ph基因的缺失体:5B缺体、N5BT5D、
N5BT5A[12],Ph基因的隐性突变体:ph1b[13]、ph2a[14]、ph2b[15]和携带Ph基因的抑制基因Ph [16]都能消除
Ph1,Ph2的抑制作用,使部分同源染色体产生配对,促进普通小麦和近缘物种之间发生基因交流.由于Ph
材料能定向诱导具部分同源关系的染色体进行配对,创造的易位系补偿性较好,因此部分同源重组已成为育
种工作者用来转移外源基因的主要方法之一[17].
本实验结果表明,节节麦和黑麦杂种幼胚无性系一些植株出现的染色体配对频率大幅度提高和染色体
结构和数量变异无关.其机理可能涉及到表观遗传学修饰或者影响部分同源配对的基因(如3DS的Ph2)基
因突变有关.其确实的机制还有待于更加深入的遗传分析.本研究的结果提示体细胞无性系变异可能是增加
部分同源染色体配对,增加属间种基因交流的一个新途径.
参考文献:
[1]Larkin P J,Scowcroft W R.Somaclonal variation:a novel source of variability from cel cultures for plant improvement
[J].Theoretical Applied Genetics,1981,60:197-214.
[2]李立会,董玉琛.在组织培养中属间杂种的体细胞变异研究[J].中国农业科学,1995,28:9-19.
李锁平,等:节节麦和黑麦杂种胚再生植株的分子细胞遗传学分析 625 
[3]Kaeppler S M,Heidi F,Rhee Y.Epigenetic aspects of somaclonal variation in plants[J].Plant Molecular Biology,2000,
43:179-188.
[4]Larkin P J.Progress in plant celular and molecular biology[M]//International Congress on Plant Tissue and Cel Cul-
ture.H.J.Nijkanp.Amsterdam:The Netherlands,1990:163-168.
[5]辛志勇,徐惠君,陈孝,等.应用生物技术向小麦导入黄矮病抗性的研究[J].中国科学(B辑),1991,1:36-42.
[6]Lapitan P J.Translocations and other karyotypic structural changes in wheat×rey hybrids regenerated from tissue culture
[J].Theoretical Applied Genetics,1984,68:546-554.
[7]Murashige T,Skoog F.A revised medium for rapid growth and bioassays with tobacco tissue cultures[J].Physiology
Plant,1962,15:473-497.
[8]庄丽芳,亓增军,英加,等.普通小麦———百萨偃麦草(Thinopyrum bessarabicum )二体异附加系的选育与鉴定[J].遗
传学报,2003,30:919-925.
[9]Sears E R,Okamoto M.Intergenomic chromosome relationship in hexaploid wheat[J].Proceeding 10th International
Conger Genetics,1958,2:258-259.
[10]Riley R,Chapman V.Genetic control of the cytologicaly diploid behavior of hexaploid wheat[J].Nature,1958,182:
713-715.
[11]Attia T.Origin of 3Dsuppressor of homoeologous pairing in hexaplioid wheat[J].Pflanzenzuecht,1979,83:121-126.
[12]Sears E R.Chromosome engineering in wheat[J].Stadler Symposium,1972,4:23-38.
[13]Sears E R.An induce mutant with homoeologous pairing in wheat[J].Canidian Journal Genetics Cytoloy,1977,19:585
-593.
[14]Sears E R.A wheat mutant conditioning anintermediate level of homoeologous chromosome pairing[J].Canidian Journal
Genetics Cytoloy,1982,24:715-719.
[15]Wal A M,Riley R,Chapman V.Wheat mutant on chromosome of Triticum aestivumaffecting homoelogous meiotic
chromosome pairing[J].Genetic Research,1971,18:311-319.
[16]Chen P D,Tsujimoto H,Gil B.Transfer of Ph gene promoting homoeologous pairing fromT.speltoides to common
wheat[J].Theoretical Applied Genetics,1994,88:97-101.
[17]刘朝晖,陈佩度.小麦染色体配对遗传控制系统的作用研究[J].南京农业大学学报,1999,22:1-5.
责任编辑:康燕丽