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溪黄草多酚的超声提取及其抗氧化性的研究



全 文 :258
溪黄草多酚的超声提取及其抗氧化性的研究
李 臻,吴 晖,赖富饶* ,李晓凤
(华南理工大学轻工与食品学院,广东广州 510640)
摘 要:采用正交实验设计对溪黄草多酚的超声提取工艺条件进行优化。通过 Folin-Ciocalteu 法对提取液的总酚进
行测定。考查了乙醇浓度、料液比、提取温度、超声功率、提取时间等五个因素对溪黄草多酚超声提取率。结果表明:
溪黄草多酚超声提取的最佳工艺条件为:乙醇体积分数 60%,料液比(g∶mL)1∶10,提取温度 40℃,超声功率 250W,提
取时间 25min,在最佳工艺条件下多酚提取率达 6.81% ± 0.11%。DPPH 抗氧化实验结果显示溪黄草多酚具有明显的
DPPH自由基清除能力,其 IC50值为 38.47μg /mL。
关键词:溪黄草,多酚,超声提取,自由基清除能力
Study on ultrasonic extraction and antioxidant activity
of polyphenol from Rabdosia serra(Maxim.)Hara
LI Zhen,WU Hui,LAI Fu-rao* ,LI Xiao-feng
(College of Light Industry and Food Science,South China University of Technology,Guangzhou 510640,China)
Abstract:An orthogonal array design was used to optimize the ultrasonic extraction conditions of Rabdosia serra
(Maxim.)Hara.The total polyphenol content was determined by the Folin- Ciocalteu assay,and the influence of
ethanol concentration,solid - liquid ratio,temperature,ultrasonic power and time on the extraction efficiency were
studied.Results showed that the optimum extraction conditions were as follows:25min ultrasonic treatment at 250W
power for extracting the raw material with a 10- fold volume of 60% aqueous ethanol solution at 40℃.The yield of
polyphenol was 6.81% ±0.11% under the optimum condition.The DPPH radical scavenging capability assay showed
that the Rabdosia serra(Maxim.)Hara had strong radical scavenging capability,and its IC50 value was 38.47μg /mL.
Key words:Rabdosia serra(Maxim.)Hara;polyphenol;ultrasonic extraction;radical scavenging capability
中图分类号:TS201.1 文献标识码:B 文 章 编 号:1002-0306(2012)12-0258-04
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[5]郑玉芝,赵超艺,程江山,等 .速溶茶泡腾片的制备与配方
优化设计[J].食品工业科技,2006(5) :142-144.
[6]陈三宝 .夏桑菊泡腾片的制备工艺研究[J].陕西中医,
2011,32(5) :612-613.
[7]刘志刚,张宏康,刘双水,等 .苦瓜泡腾片固体饮料的研制
[J].食品工业,2011(2) :31-34.
[8]李次力,段善海,赵波 .南瓜玉米粉泡腾片固体饮料的研
制[J].应用科技,2001,28(10) :53-55.
溪黄草(Rabdosia serra(Maxim.)Hara) ,又名熊胆
草、血风草等,多年生草木,为唇形科香茶菜属植物
线纹香茶菜的全草,主产于长江以南的湖南、四川、
云南、江西、广东、广西等省区。其性甘苦、凉,可清
热,利胆,退黄,治急性黄疸型肝炎,急性胆囊炎[1]。
溪黄草主要含萜类、黄酮类、酚类、氨基酸等多种化
学成分。多酚具有较强的清除自由基、抗氧化活性、
抗肿瘤、抗辐射以及保护心血管系统等重要的生物
活性功能[2],鉴于多种慢性病及退行性疾病与体内的
氧自由基过剩有关,因此从溪黄草中提取酚类化合
收稿日期:2011-10-25 * 通讯联系人
作者简介:李臻(1989-) ,女,在读硕士,研究方向:食品安全与天然产
物化学。
基金项目:中央高校基本科研业务费资助项目(2011ZB0012) ;国家自
然科学基金资助项目(20906031) ;教育部新世纪优秀人才
支持计划资助项目(NECT-06-0746)。
物,并评价其抗氧化性强弱就显得非常有必要[3]。超
声在 20 世纪 50 年代被应用于提高提取率[4],它也被
广泛应用于食品工业中的乳化、结晶化和冷冻[5]。超
声波在溶剂中的传播产生了一种空穴现象,空化气
泡不断产生并被压缩,使得溶剂更易渗透入植物原
材料并通过破碎细胞壁而释放细胞内产物,从而使
得有机化合物的提取率提高[6]。超声波已被多个研
究证明能够显著地减少提取时间、增加提取率从而
促进许多植物原材料活性成分的提取[7-10]。
1 材料与方法
1.1 材料与设备
溪黄草 广州万怡药房五山店;DPPH(2,2 -
Diphenyl - l - picrylhydrazyl)、福林酚试剂(Folin -
Ciocalteu) 美国 Sigma 公司;没食子酸、无水乙醇、
甲醇、乙酸乙酯、无水碳酸钠 均为分析纯。
DFY-300 型 300 克摇摆式高速中药粉碎机 温
岭市林大机械有限公司;SHZ-D(Ⅲ)型循环水式真
259
空泵 巩义市予华仪器有限公司;RE-52 型旋转蒸
发器 上海亚荣系列化仪器厂;TGL-16B 型台式离
心机 上海安亭科学仪器厂;LSHZ-300 型低温水浴
培养箱 常州诺基仪器有限公司;KQ-250DE 型数
控超声波清洗器 昆山市超声仪器有限公司;
Spectrumlab 752S型紫外可见分光光度计 上海棱光
技术有限公司。
1.2 实验方法
1.2.1 溪黄草多酚超声提取工艺[11] 10g 溪黄草→粉
碎→乙醇溶液超声提取→滤纸过滤→0.45μm 滤膜抽滤→旋
转蒸发除乙醇→加水补充溶液至 50mL→加入 50mL 乙酸乙
酯→室温振荡过夜→弃去水层→旋转蒸发至干→50%甲醇溶
解定容至 50mL→稀释后测定
1.2.2 单因素和正交实验 通过研究乙醇体积分
数、料液比、提取温度、超声功率、提取时间对溪黄草
多酚提取率的影响等单因素实验后,设计 4 因素 3 水
平正交实验[12],见表 1,优化溪黄草多酚提取工艺条
件。选取乙醇体积分数、超声温度、超声功率、提取
时间四个因素,设计 9 组不同组合实验,从中筛选出
最佳提取条件。
表 1 正交实验因素及水平
Tabel 1 Factors and levels in orthogonal array design
水平
因素
A乙醇体积
分数(%)
B提取温度
(℃)
C超声功率
(W)
D提取时间
(min)
1 50 30 200 15
2 60 40 225 20
3 70 50 250 25
1.2.3 总酚提取率测定 根据 Folin - Ciocalteu
法[13-14]对提取液的总酚含量进行测定。
标准曲线的绘制:称取 0.01g 没食子酸于 10mL
容量瓶,用 50%甲醇定容至刻度。分别取 60、120、
180、240、300、360μL于 6 个 10mL容量瓶,以 50%甲
醇定容到刻度,配制成浓度为 6、12、18、24、30、
36μg /mL的标准液。分别取 0.5mL 不同浓度的标准
液于试管中,加入 0.2mL Folin-Ciocalteu 试剂,混匀。
室温放置 10min后加入 2mL 质量浓度为 7%的碳酸
钠溶液,混匀,室温放置 15min。在波长 750nm 处测
量其吸光度。根据测量结果绘制标准曲线,得到回
归方程:Y =0.003X,R2 = 0.999。式中,Y 为待测样液
的吸光度;X为样液总酚含量(μg /mL)。
总酚含量测定:将提取液用 50%甲醇稀释适当
倍数,按上述方法测定各提取物中总酚含量,每组平
行测量 3 次,根据标准曲线以及稀释倍数,计算多酚
提取率,计算公式如下:
Z(%)= n × X × V ×10
-3
m × 100
式中,Z为多酚提取率(%) ;n 为稀释倍数;X 为
样液总酚含量(μg /mL) ;V 为提取液体积(mL) ;m
为溪黄草质量(g)。
1.2.4 DPPH自由基清除能力测定[15-16] 将已知总
酚含量的溪黄草提取液稀释至 200μg /mL,再依次用
50%甲醇溶液梯度稀释,配成总酚浓度分别为 100、
50、25、12.5、6.25μg /mL 的溶液,按照下述步骤,对 6
组不同总酚浓度提取液分别进行 DPPH 自由基清除
实验。
以 50%甲醇为空白对照组,分别吸取 1mL 50%
甲醇和 1mL 提取液于不同试管中,各加入 1mL
50μg /mL的 DPPH甲醇溶液,混匀,避光放置 20min。
以蒸馏水调零,于 517nm测量吸光度。DPPH自由基
清除率按如下公式计算:
RSA(%)=(X - Yx )× 100
式中,X为空白对照组的吸光度;Y 为样品溶液
的吸光度。
2 结果与分析
2.1 提取条件的单因素实验
2.1.1 乙醇体积分数对多酚提取效果的影响 固定
料液比 1∶10,提取温度 40℃,超声功率 250W,提取时
间 15min,分别选取乙醇体积分数 50%、60%、70%、
80%、90%进行超声提取实验,结果见图 1。由图 1 可
知,乙醇浓度不同,提取液极性不同,从而浸提酚类物
质的能力也不相同[17]。当乙醇体积分数为 60%时,多
酚提取率达最大值;当乙醇浓度继续增加时,溶液极性
增强,导致多酚类物质的溶解度下降,多酚提取率呈减
小趋势。因此,乙醇体积分数 60%最为适宜。
图 1 不同乙醇体积分数对溪黄草多酚提取效果的影响
Fig.1 Effect of ethanol concentrations on extraction efficiency
of polyphenols from Rabdosia serra(Maxim.)Hara
2.1.2 料液比对多酚提取效果的影响 固定乙醇体
积分数 60%,提取温度 40℃,超声功率 250W,提取
时间 15min,分别选取料液比 1 ∶5、1 ∶10、1 ∶15、1 ∶20、
1∶25进行超声提取实验,结果见图 2。由图 2 可知,
浸提液用量增加,传质推动力增加,有利于提取。但
当料液比超过 1∶10 后,多酚提取率增加不明显,且用
量过大会增加后续工艺的难度,能耗较高,也会加大
多酚的损失[18]。因此从经济角度考虑,1 ∶10 为最适
料液比,后续实验均采用该比例。
2.1.3 提取温度对多酚提取效果的影响 固定乙醇
体积分数 60%,料液比 1∶10,超声功率 250W,提取时
间 15min,分别选取超声温度 20、30、40、50、60℃进行
超声提取实验,结果见图 3。由图 3 可知,在 20~40℃
范围内,温度的升高增加了溶剂分子和溶质分子的
运动,促进了扩散作用,故多酚提取率增大;而当温
度继续升高时多酚,提取率则呈下降趋势,这主要是
由于多酚是热敏性物质,易受热而发生氧化,导致提
取率下降。当提取温度为 40℃时,多酚提取率达最
大值。因此,40℃为最佳提取温度。
2.1.4 超声功率对多酚提取效果的影响 固定乙醇
260
图 2 不同料液比对溪黄草多酚提取效果的影响
Fig.2 Effect of solid-liquid ratios on extraction efficiency
of polyphenols from Rabdosia serra(Maxim.)Hara
图 3 不同提取温度对溪黄草多酚提取效果的影响
Fig.3 Effect of extraction temperatures on extraction efficiency
of polyphenols from Rabdosia serra(Maxim.)Hara
体积分数 60%,料液比 1∶10,提取温度 40℃,提取时
间 15min,分别选取超声功率 150、175、200、225、
250W进行超声提取实验,结果见图 4。由图 4 可知,
随着功率的增大,超声波对细胞壁的破碎作用增强,
胞内多酚溶出速率增加,故其提取率逐渐增大[17],当
超声功率为 225W 时,多酚提取率达最大值;当功率
继续增大到一定程度时,会造成局部温度过高,多酚
类物质易在高温条件下发生降解和氧化[19],使多酚
提取率反而降低。故 225W为最适超声功率。
图 4 不同超声功率对溪黄草多酚提取效果的影响
Fig.4 Effect of ultrasonic power on extraction efficiency
of polyphenols from Rabdosia serra(Maxim.)Hara
2.1.5 提取时间对多酚提取效果的影响 固定乙醇
体积分数 60%,料液比 1∶10,提取温度 40℃,超声功
率 225W,分别选取提取时间 5、10、15、20、25min 进
行超声提取实验,结果见图 5。由图 5 可知,当超声
时间为 20min时,多酚提取率达最大值;随着时间增
大,多酚提取率有逐渐减小趋势,这可能是因为超声
波具有较强的剪切作用,长时间的作用使得多酚的
分子结构被破坏,从而提取率降低[17]。故最佳超声
时间为 20min。
图 5 不同提取时间对溪黄草多酚提取效果的影响
Fig.5 Effect of extraction time on extraction efficiency
of polyphenols from Rabdosia serra(Maxim.)Hara
2.2 正交法优化提取条件的实验
按照表 1 中数据进行 L9(3
4)正交实验,所得结
果见表 2、表 3。
分析正交实验结果可知,最佳条件为 A2B2C3D3,
即乙醇体积分数 60%,料液比 1∶10,提取温度 40℃,
超声功率 250W,提取时间 25min 时,溪黄草超声提
取的多酚得率最高。其中,乙醇体积分数和提取温
度对提取得率影响最为显著,超声功率和提取时间
差异不显著。
表 2 L9(3
4)正交实验设计及结果
Table 2 Orthogonal array design matrix
and experimental results
实验号 A B C D 多酚得率
(%)
1 1 1 1 1 3.30
2 1 2 2 2 4.27
3 1 3 3 3 3.76
4 2 1 2 3 5.24
5 2 2 3 1 6.68
6 2 3 1 2 4.84
7 3 1 3 2 4.46
8 3 2 1 3 5.21
9 3 3 2 1 4.07
k1 3.78 4.33 4.45 4.69
k2 5.59 5.39 4.53 4.52
k3 4.59 4.23 4.97 4.73
R 1.81 1.17 0.52 0.21
表 3 方差分析表
Table 3 Analysis of variance of orthogonal
array design experimental results
方差来源 离差平方和 自由度 F值 F临界 显著性
A 4.94 2 68.57 19.00 *
B 2.48 2 34.50 19.00 *
C 0.47 2 6.53 19.00
D 0.07 2 1.00 19.00
误差 0.07 2
在正交实验表中并没有用到 A2B2C3D3 组合,因
此需要在此条件下进行验证。在最佳提取条件下,
反复提取 3 次以验证提取效果,测得多酚得率为
6.81% ±0.11%。
2.3 DPPH自由基清除能力测定
DPPH(2,2-Diphenyl-l-picrylhydrazyl)自由基是
一种稳定的有机自由基,通过检测样液对 DPPH自由
261
基的清除能力可以表示其抗氧化性的强弱[20]。由图
6 可知,溪黄草多酚能够清除 DPPH 自由基,具有很
好的抗氧化性能。随着总酚浓度的增大,自由基清
除率相应增大,当总酚浓度大于 100μg /mL时,DPPH
自由基趋近于完全被清除,且在一定浓度范围内,总
酚浓度与 DPPH 自由基清除能力呈一定的效量关
系,其线性关系为 Y = 1.395X-3.670,R2 = 0.999,其
中,Y为 DPPH自由基清除率(%) ,X 为样液总酚含
量(μg /mL)。根据线性关系,可知溪黄草多酚提取液
的 IC50 = 38.47μg /mL。
图 6 溪黄草多酚对 DPPH自由基的清除能力
Fig.6 DPPH radical scavenging capability of polyphenol
extracted from the Rabdosia serra(Maxim.)Hara
3 结论
3.1 溪黄草多酚的超声提取受众多因素影响,根据
对实验结果的分析表明,提取的最佳工艺条件为:乙
醇体积分数 60%,料液比 1 ∶ 10(g ∶ mL) ,提取温度
40℃,超声功率 250W,提取时间 25min。该条件下,
多酚提取率可达 6.81% ± 0.11%。超声波法的多酚
提取率较高,可节省大量的时间和资源,是一种快
捷、简便、有效的提取方法,为进一步利用溪黄草多
酚提供了有益的参考。
3.2 自由基是机体正常代谢过程中的产物,具有强
氧化性,机体内自由基过剩时可引起脂质过氧化及
生物膜损坏等,导致肿瘤及心脑血管等疾病[21]。实
验表明,溪黄草多酚具有抗氧化作用,能够有效地清
除 DPPH自由基,其 IC50值为 38.47μg /mL。因此,溪
黄草多酚有着很大的开发潜力,在食品、制药工业以
及保健品行业都具有良好的应用前景。
参考文献
[1]广州部队后勤部卫生部 .常用中草药手册[M].人民卫生
出版社,1970.
[2]王晓阳,唐琳,赵垒 .响应面法优化刺槐花多酚的超声提
取工艺[J].食品科学,2011,32(2) :66-70.
[3]温玲蓉,林恋竹,赵谋明 .溪黄草常压回流提取物与减压
回流提取物抗氧化性的比较[J].现代食品科技,2010,26(1) :
71-75.
[4]VINATORU M. An overview of the ultrasonically assisted
extraction of bioactive principles from herbs [J]. Ultrasonic
Sonochemistry,2001,8(3) :303-313.
[5]MASON T J,PANIWNYK L,LORIMER J P. The uses of
ultrasound in food technology [J]. Ultrasonics Sonochemistry,
1996,3(3) :2253-2260.
[6]ROMDHANE M,GOURDON C.Investigation in solid- liquid
extraction:influence of untrasound [J]. Chemical Engineering
Journal,2002,87(1) :11-19.
[7]ALBU S,JOYCE E,PANIWNYK L,et al.Potential for the use
of ultrasound in the extraction of antioxidants from Rosmarinus
officinalis for the food and pharmaceutical industry [J] .
Ultrasonics Sonochemistry,2004,11(3-4) :261-265.
[8]ROSTAGNO M A,PALMA M,BARROSO C G.Ultrasound-
assisted extraction of soy isoflavones [J] . Journal of
Chromatography A,2003,1012(2) :119-128.
[9]VALACHOVIC P,PECHOVA A,MASON T J. Towards the
industrial production of medicinal tincture by
ultrasound assisted extraction [J]. Ultrasonics Sonochemistry,
2001,8(2) :111-117.
[10]WU J,LIN L,CHAU,F T.Ultrasound-assisted extraction of
ginseng saponins from ginseng roots and cultured ginseng cells
[J].Ultrasonics Sonochemistry,2001,8(4) :347-352.
[11]Haiyan Wang,Mouming Zhao,Bao Yang,et al.Identification
of polyphenols in tobacco leaf and their antioxidant and
antimicrobial activities[J].Food Chemistry,2008,107(4) :1399
-1406.
[12]张娜,陈锦屏,严静,等 .和田玉枣总皂甙超声提取工艺
[J].食品科学,2011,32(2) :108-110.
[13]EMMONS C L,PETERSON D M. Antioxidant activity and
phenolic content of oat as affected by cultivar and location[J].
Crop Science,2001,41(6) :1676-1681.
[14]Varsha Viswanath,Asna Urooj,N G Malleshi.Evaluation of
antioxidant and antimicrobial properties of finger millet
polyphenols(Eleusine coracana) [J]. Food Chemistry,2009,114
(1) :340-346.
[15]KUSKOSKI E M,ASUERO A G,MORALES M T,et al.
Frutos tropicais silvestres epolpas de frutas congeladas:atividade
antioxidante,polifenáis e antocianinas[J]. Ciência Rural,2006,
36(4) :1283-1287.
[16]A L K Faller,E Fialho.Polyphenol content and antioxidant
capacity in organic and conventional plant foods[J]. Journal of
Food Composition and Analysis,2010,23(6) :561-568.
[17]胡明明,张国文,何力 .响应面法优化超声提取花生壳多
酚[J].南昌大学学报,2011,35(3) :241-246.
[18]刘小丽,张伟,符毅文 .虎杖中白藜芦醇的超声提取及其
抗氧化性研究[J].中成药,2011,33(1) :150-153.
[19]楠极,李远志,李婷,等 .微波辅助提取番石榴叶中多酚
物质的工艺研究[J].食品工业科技,2010,31(5) :229-231.
[20]彭长连,陈少薇,林植芳,等 .用清除有机自由基 DPPH法
评价植物抗氧化能力[J].生物化学与生物物理进展,2000,27
(6) :658-661.
[21]李淑娟 .茶多酚的保健和药理作用[J].甘肃农业,2009
(12) :47-48.