全 文 ：书基于血清药理学方法的头花蓼抗炎有效提取物筛选
徐丹1，2，赵菲菲1，3，杨馨1，3，李靖1，2，徐国波1，2，廖尚高1，2* (1．贵州医科大学药学院，贵州贵阳 550004;2．民族药
与中药开发应用教育部工程研究中心，贵州贵阳 550004 ;3．贵州省药物制剂重点实验室，贵州贵阳 550004)
摘要 ［目的］通过血清药理学方法，研究头花蓼不同提取物及热淋清颗粒含药血清对小鼠单核巨噬细胞(ＲAW264． 7细胞)释放炎症因
子的影响，筛选出头花蓼抗炎有效提取物。［方法］采用头花蓼血清药理学评价方法，10 ng /mL 脂多糖(LPS)建立 ＲAW264． 7细胞炎症
损伤模型，MTT法检测细胞存活率，Griess试剂法检测细胞上清液中 NO的释放量，酶联免疫吸附法(ELISA)检测细胞上清液中 TNF － α
和 IL －6的释放量，以考察头花蓼水提物、水提醇沉提取物、水提醇沉沉淀物及热淋清颗粒含药血清(WEPS、PCWEPS、DPCWEPS、ＲLQS)
对巨噬细胞释放炎症因子的影响。［结果］与模型组比较，WEPS、PCWEPS、DPCWEPS、ＲLQS均能显著抑制 LPS刺激的 ＲAW 264． 7 细胞
释放炎症因子 NO、TNF － α和 IL －6，PCWEPS组抑制细胞释放 NO、TNF － α和 IL －6的作用最强。［结论］头花蓼水提醇沉提取物为头
花蓼主要的抗炎有效提取物。
关键词 头花蓼;热淋清颗粒;血清药理学;ＲAW 264． 7细胞;炎症因子
中图分类号 S567． 23 + 9 文献标识码 A 文章编号 0517 －6611(2016)17 －134 －03
Screening of Effective Anti-inflammatory Extracts from Polygonum capitatum Based on Serum Pharmacological Method
XU Dan1，2，ZHAO Fei-fei1，3，YANG Xin1，3，LIAO Shang-gao1，2* et al (1． School of Pharmacy，Guizhou Medical University，Guiyang，
Guizhou 550004;2． Engineering Ｒesearch Center for the Development and Application of Ethnic Medicines and TCM，Ministry of Education，
Guiyang，Guizhou 550004;3． Guizhou Provincial Key Laboratory of Pharmaceutics，Guiyang，Guizhou 550004)
Abstract ［Objective］To research the effects of different extracts from Polygonum capitatum and drug-containing serum of Ｒelinqing granules
on releasing inflammatory factor of mouse monocyte-macrophage(ＲAW264． 7 cell)by serum pharmacological method，and to screen effective an-
ti-inflammatory extracts from P． capitatum． ［Method］Serum pharmacological evaluation method of P． capitatum was adopted． The inflammatory
cell model was produced by LPS (10 ng /mL)-treated ＲAW264． 7 cells． The cell viability was detected by MTT method． NO production was de-
tected by the Griess assay，TNF-α and IL-6 were quantitated by the enzyme-linked immunosorbent assay (ELISA)in the cell culture supernatant
to investigate the effect of drug-containing serum of Polygonum capitatum of its water extract (WEPS)，protein-free water extract (PCWEPS)，
deposition of protein-free water extract (DPCWEPS)and Ｒelinqing granules (ＲLQS)on inflammatory cytokines in macrophage cells． ［Ｒesult］
The drug-containing serums could significantly inhibit the release of NO，TNF-α and IL-6 in LPS-induced ＲAW264． 7 cells compared with the
model group (P ＜0． 05，P ＜0． 01)，in which PCWEPS had the best effect on NO，TNF-α and IL-6 inhibitory． ［Conclusion］Protein-free water
extract of Polygonum capitatum is the main extract for anti-inflammatory．
Key words Polygonum capitatum;Ｒelinqing granules;Serum pharmacology;ＲAW264． 7 cells;Inflammatory cytokines
基金项目 国家自然科学基金项目(81160516，81560570)。
作者简介 徐丹(1991 － ) ，女，江苏镇江人，硕士研究生，研究方向:药
物化学。* 通讯作者，教授，博士，硕士生导师，从事天然药
物的化学、药理和代谢研究。
收稿日期 2016-05-16
头花蓼为蓼科蓼属植物头花蓼的全草，是贵州地道药
材，收载于 2003版《贵州省中药、民族药质量标准》，对泌尿
系统感染类疾病有独特疗效。致病体长期侵袭尿路粘膜或
组织会产生炎症，造成尿路感染，持续的炎症反应还将加重
泌尿系统感染［1］。抑制炎症反应，防止泌尿系统感染的恶
化，对此类疾病的治疗具有重要意义。以头花蓼水提物为主
要原料的热淋清颗粒在临床上用于治疗泌尿系统感染，并收
载于 2010年版《中国药典》。研究表明，热淋清颗粒具有显
著的抗炎活性［2］，但临床中每天的服用量较大［3］。为研究头
花蓼水提物经醇沉后对其本身抗炎活性的影响，该研究采用
能较好地模拟药物在体内环境中产生药理效应真实过程的
血清药理学方法［4］，考察头花蓼不同提取物含药血清，即水
提物、水提醇沉提取物、水提醇沉沉淀物及热淋清颗粒含药
血清(WEPS、PCWEPS、ＲLQS)对脂多糖(lipopolysaccharide，
LPS)刺激的小鼠单核巨噬细胞(ＲAW264． 7 细胞)释放炎症
因子 NO、TNF － α和 IL － 6 的影响，从而筛选出头花蓼的抗
炎有效提取物。
1 材料与方法
1． 1 材料
1． 1． 1 细胞株与动物。小鼠单核巨噬细胞株购自中国科学
院上海生命科学研究院细胞资源中心;Wistar 大鼠，雌雄各
半，体重(200 ±20)g，SPF级，由贵州医科大学实验动物中心
提供，动物合格证号 CXK(黔)2012 －0001。
1． 1． 2 药材。头花蓼药材购于贵州省施秉县头花蓼 GAP种
植基地，由贵州医科大学生药学教研室龙庆德副教授鉴定为
蓼科蓼属植物头花蓼 Polygonum capitatum Buch － Ham． ex
D． Don的全草。
1． 1． 3 试剂。DMEM 高糖培养基(Gibco 公司) ，胎牛血清
(Hyclone公司) ，LPS(Sigma公司) ，MTT(Sigma公司) ;磺胺、
N －(1 －萘基)－乙二胺、二甲基亚砜(DMSO)均为国药集团
产品;小鼠 TNF － α ELISA试剂盒(ＲayBio公司) ，小鼠 IL － 6
ELISA试剂盒(ＲayBio公司)。醋酸地塞米松磷酸钠注射液
(贵州光正制药有限责任公司) ，热淋清颗粒(贵州威门药业
股份有限公司)。
1． 1． 4 仪器。CO2 培养箱(美国 Thermo scientific 公司) ，倒
置显微镜(日本 Nikon公司) ，低速台式离心机(上海安亭科
学仪器厂) ，水浴锅(天津市泰斯特仪器有限公司) ，超低温冰
箱(Thermo Fisher 公司) ，680 型酶标仪(上海伯乐生命医学
产品有限公司) ，数显立式压力蒸汽灭菌器(上海博讯实业有
限公司医疗仪器厂) ，超净工作台(北京东联哈尔仪器制造有
责任编辑 黄小燕 责任校对 况玲玲安徽农业科学，Journal of Anhui Agri． Sci． 2016，44(17):134 － 136，150
DOI:10.13989/j.cnki.0517-6611.2016.17.044
限公司) ，所用细胞培养瓶、培养板、离心管均为美国 Corning
公司产品。
1． 2 方法
1． 2． 1 头花蓼提取物的制备。头花蓼全草粉末(一号筛)水
提取 4次，每次 2 h，合并滤液回收至浸膏得头花蓼水提物
(WEP) ，此为头花蓼单方制剂热淋清颗粒的主要成分;水提
物用水溶解后加入 3 倍量 95%乙醇沉淀 24 h，过滤，合并滤
液回收至浸膏得头花蓼水提醇沉提取物(PCWEP) ，滤渣则
为头花蓼水提醇沉沉淀物(DPCWEP)［5］。
1． 2． 2 空白血清和含药血清的制备。SD大鼠 50 只雌雄各
半，随机分为 5组，灌胃前 12 h禁食不禁水，分别灌胃给予超
纯水、头花蓼水提物、水提醇沉提取物、水提醇沉沉淀物以及
热淋清颗粒药液［生药量 6 g /(kg·d) ，头花蓼单方制剂热淋
清颗粒的临床剂量］，每天 2 次，连续 4 d［6］，末次给药后
90 min，尾静脉取血，以 2 000 r /min、4 ℃离心 10 min分离上
层血清，过滤除菌，分装，－20 ℃保存备用。
1． 2． 3 ＲAW264． 7 细胞的体外培养。ＲAW264． 7 细胞培养
于含 10%胎牛血清、100 μg /mL 青霉素及 100 μg /mL 链霉素
的 DMEM细胞培养液中，置于温度为 37 ℃、5% CO2 培养箱
中培养。取对数生长期细胞用于试验。
1． 2． 4 空白血清及含药血清对 ＲAW264． 7 细胞的影响。
ＲAW264． 7细胞用 0． 25%的胰蛋白酶消化，以 2 × 105个 /mL
的浓度接种于 96 孔培养板中，每孔 100 μL，细胞培养 24 h
后，弃去上清。试验分为:①正常对照组(CON 组) ，无大鼠
血清的培养基;②试验组，不同体积分数(0． 5%、1． 0%、
1． 5%、2． 0%)的空白血清或含药血清(WEPS、PCWEPS、
DPCWEPS、ＲLQS) ，培养 24 h后，每孔加入终浓度为 2． 5 g /L
的 MTT，继续孵育 4 h，弃上清液，加入 100 μL DMSO，振荡
10 min后，在 490 nm用酶联免疫检测仪测定各孔吸光度值
A，每组设 6个平行孔。按照公式:细胞存活率(%)= 试验
组 A /对照组 A平均值 × 100%，计算细胞存活率。
1． 2． 5 空白血清对 ＲAW264． 7 细胞释放 NO的影响。参照
“1． 2． 4”项，每孔体积 100 μL。试验分为:①对照组(CON －
1) ，无大鼠血清的培养基;②空白血清组(CON － 2) ，体积分
数为 1． 5%的空白血清培养液;③无血清模型组(LPS － 1) ，
终浓度为 10 ng /mL 的 LPS溶液;④空白血清模型组(LPS －
2) ，终浓度为 10 ng /mL的 LPS和空白血清体积分数为 1． 5%
的培养液。细胞培养 24 h后，吸取细胞培养液上清 50 μL至
酶标板中，加入等体积的 Griess 试剂(1%磷酸磺胺溶液与
0． 1% N －(1 －萘基)－乙二胺等体积混合液) ，室温反应
10 min后于 540 nm 处测定各孔吸光度 A，每组设 6 个平行
孔。用浓度为 1． 56、3． 12、6． 25、12． 50、25． 00、50． 00 μmol /L
NaNO2 溶液绘制标准曲线，根据 NaNO2 标准曲线计算细胞
培养液上清中 NO的释放量。
1． 2． 6 头花蓼及热淋清颗粒含药血清对细胞释放 NO的影
响。参照“1． 2． 5”项，试验分为①正常对照组(CON 组) ，无
大鼠血清的培养基;②模型组(LPS组) ，培养基中加入终浓
度为 10 ng /mL 的 LPS;③地塞米松组(DEXA组) ，培养基中
加入终浓度为 50 μg /mL 的地塞米松和 10 ng /mL 的 LPS共
培养;④头花蓼及热淋清颗粒含药血清组，培养基中分别加
入体积分数为 1． 5% 的含药血清(WEPS、PCWEPS、DPC-
WEPS、ＲLQS)和 10 ng /mL LPS共培养。每组设 6个平行孔。
根据 NaNO2 标准曲线计算细胞培养液上清中 NO的释放量。
1． 2． 7 头花蓼及热淋清颗粒含药血清对细胞释放 TNF － α
和 IL －6的影响的影响。参照“1． 2． 6”项，每组设 6 个平行
孔，收集细胞上清液，按照相应的 ELISA 试剂盒说明书方法
进行测定，根据试剂盒标准曲线计算各组细胞上清中 TNF －
α和 IL －6的释放量。
1． 3 数据处理 采用 SPSS19． 0 统计软件进行分析。结果
用珋x ± S表示。单因素方差分析(One － Way ANOVA)后，用
Dunnetts test分析方法比较组间差异。两组间比较采用 T －
test法。P ＜0． 05时具有统计学意义。
2 结果与分析
2． 1 空白血清及含药血清对 ＲAW264． 7细胞的影响 由表
1可知，当空白血清及含药血清的体积分数为 0． 5% ～ 1． 5%
时，作用细胞 24 h，与对照组(CON － 1)比较，细胞存活率无
显著性差异。表明在此体积范围内空白血清及含药血清对
于 ＲAW264． 7细胞本身的生长无显著影响。超过此添加量，
随着血清体积的增加，ＲAW264． 7 细胞的生长受到显著影
响。为有效反映药物的药效，在后续试验中，血清体积分数
设定为 1． 5%。
表 1 空白血清及含药血清对细胞存活率的影响(n =6)
Table 1 Effects of blank serum and drug-containing serum on the via-
bility of ＲAW264． 7 cells
组别
Group
体积分数
Volume
fraction∥%
细胞存活率
Cell viability
%
对照组 Control group(CON －1) — 100． 00 ±0． 50
空白血清组 0． 5 100． 76 ±0． 36
Blank serum group(CON －2) 1． 0 100． 93 ±0． 37
1． 5 99． 62 ±0． 25
2． 0 94． 32 ±0． 43＊＊
WEPS组WEPS group 0． 5 100． 35 ±0． 30
1． 0 100． 18 ±0． 43
1． 5 98． 83 ±0． 30
2． 0 95． 84 ±0． 27＊＊
PCWEPS组 PCWEPS group 0． 5 100． 38 ±0． 29
1． 0 100． 05 ±0． 27
1． 5 99． 24 ±0． 20
2． 0 95． 29 ±0． 25＊＊
DPCWEPS组 DPCWEPS group 0． 5 100． 74 ±0． 36
1． 0 100． 46 ±0． 24
1． 5 99． 83 ±0． 28
2． 0 94． 82 ±0． 54＊＊
ＲLQS组 ＲLQS group 0． 5 100． 46 ±0． 22
1． 0 100． 25 ±0． 18
1． 5 99． 04 ±0． 43
2． 0 95． 47 ±0． 50＊＊
注:＊＊表示与对照组比较 P ＜0． 01。
Note:Compared with control group，＊＊ was P ＜ 0． 01．
53144 卷 17 期 徐 丹等 基于血清药理学方法的头花蓼抗炎有效提取物筛选
2． 2 空白血清对 ＲAW264． 7细胞释放 NO的影响 由表 2
可知，采用 1． 5%体积的空白血清作用于 10 ng /mL LPS诱导
的 ＲAW264． 7细胞 24 h，与空白对照组比较，无血清模型组
(LPS －1，相对于 CON －1)和空白血清模型组(LPS － 2，相对
于 CON －2)均有显著性差异(P ＜ 0． 01) ，表明细胞炎症模型
建立成功;空白血清组(CON －2)与对照组(CON － 1)比较无
显著性差异，空白血清模型组(LPS － 2)与无血清模型组
(LPS － 1)比较也无显著性差异，表明当空白血清体积为
1. 5%时，既不影响 ＲAW264． 7细胞的生长，也不影响 LPS刺
激所产生的 NO释放的检测，以此确定试验中含药血清的添
加体积为 1． 5%。同时，采用无血清模型组(LPS － 1)作为后
续试验的模型组(LPS)。
表 2 空白血清对 ＲAW264． 7细胞释放 NO的影响(n =6)
Table 2 Effect of blank serum on NO production in ＲAW264． 7 cells
组别
Group
体积分数
Volume
fraction∥%
NO
μmol /L
对照组 Control group(CON －1) — 2． 12 ±0． 55
空白血清组 Blank serum group(CON
－2) 1． 5 1． 85 ±0． 56
无血清模型组 No serum model group
(LPS －1) — 18． 58 ±1． 34
##
空白血清模型组 Blank serum model
group(LPS －2) 1． 5 18． 13 ±1． 29
＊＊
注:##表示与 CON － 1 组比较 P ＜ 0． 01;＊＊表示与 CON － 2 组比较
P ＜0． 01。
Note:Compared with CON-1 group，## was P ＜ 0． 01． Compared with
CON －2 group，＊＊ was P ＜ 0． 01．
2． 3 头花蓼及热淋清颗粒含药血清对细胞释放 NO 的影
响 由表 3可知，与对照组比较，模型组(LPS 组)显著诱导
ＲAW264． 7细胞释放 NO(P ＜ 0． 01) ;与模型组比较，WEPS、
PCWEPS、ＲLQS均能不同程度地抑制 ＲAW264． 7 细胞释放
NO(P ＜0． 05或 P ＜ 0． 01) ;与 PCWEPS 组比较，WEPS 组和
ＲLQS组 NO 的释放量具有显著性差异(P ＜ 0． 01)。因此，
PCWEPS具有较强地抑制细胞释放 NO的作用。
表 3 含药血清对 ＲAW264． 7细胞释放 NO的影响(n =6)
Table 3 Effect of drug-containing serum on NO production in
ＲAW264． 7 cells
组别
Group
体积分数
Volume
fraction∥%
NO
μmol /L
对照组(CON)Control group — 2． 08 ±0． 26
模型组(LPS)Model group — 16． 93 ±0． 45##
DEXA组 DEXA group — 5． 57 ±0． 30＊＊
WEPS组WEPS group 1． 5 15． 61 ±0． 26＊△△
PCWEPS组 PCWEPS group 1． 5 13． 95 ±0． 18＊＊
DPCWEPS组 DPCWEPS group 1． 5 16． 37 ±0． 33
ＲLQS组 ＲLQS group 1． 5 15． 41 ±0． 31＊＊△△
注:##表示与对照组比较 P ＜ 0． 01;* 、＊＊分别表示与模型组比较
P ＜0． 05、P ＜0． 01;△△表示与 PCWEPS组比较 P ＜0． 01。
Note:Compared with control group，## were P ＜ 0． 01． Compared with
model group，* and ＊＊ was P ＜0． 05 and P ＜0． 01，respectively．
Compared with PCWEPS group，△△ indicated P ＜0． 01．
2． 4 头花蓼及热淋清颗粒含药血清对细胞释放 TNF －α和
IL －6的影响 由表 4可知，与对照组比较，模型组显著诱导
ＲAW264． 7细胞释放 TNF － α和 IL － 6(P ＜ 0． 01) ;与模型组
比较，WEPS、PCWEPS、DPCWEPS、ＲLQS 均能不同程度地抑
制 ＲAW264． 7细胞释放 TNF － α和 IL － 6(P ＜ 0． 01) ;与 PC-
WEPS组比较，WEPS、DPCWEPS、ＲLQS 组 TNF － α 和 IL － 6
的释放量具有显著性差异(P ＜0． 05或 P ＜0． 01)。因此，PC-
WEPS具有较强地抑制细胞释放 TNF － α和 IL －6的作用。
表 4 含药血清对 ＲAW264． 7细胞释放 TNF －α和 IL －6的影响 (n =6)
Table 4 Effect of drug － containing serum on TNF-α and IL-6 production in ＲAW264． 7 cells
组别
Group
体积分数
Volume fraction∥%
TNF － α
pg /mL
IL －6
pg /mL
对照组(CON)Control group — 1 296． 01 ±38． 24 97． 34 ±0． 95
模型组(LPS)Model group — 11 413． 77 ±37． 80## 963． 26 ±1． 43##
DEXA组 DEXA group — 2 759． 78 ±62． 31＊＊ 174． 33 ±1． 09＊＊
WEPS组WEPS group 1． 5 9 227． 17 ±64． 79＊＊△△ 861． 70 ±1． 93＊＊△△
PCWEPS组 PCWEPS group 1． 5 8 000． 73 ±42． 69＊＊ 772． 77 ±1． 32＊＊
DPCWEPS组 DPCWEPS group 1． 5 10 933． 70 ±76． 71＊＊△△ 930． 52 ±1． 37＊＊△△
ＲLQS组 ＲLQS group 1． 5 8 256． 16 ±51． 50＊＊△ 824． 23 ±1． 23＊＊△△
注:##表示与对照组比较 P ＜0． 01;＊＊表示与模型组比较 P ＜0． 01;△、△△分别表示与 PCWEPS组比较 P ＜0． 05、P ＜0． 01。
Note:Compared with control group，## were P ＜0． 01． Compared with model group，＊＊ were P ＜0． 01． Compared with PCWEPS group，△ and△△ indica-
ted P ＜0． 05 and P ＜0． 01，respectively．
3 讨论与结论
LPS诱导 ＲAW264． 7 细胞的体外炎症模型被广泛用于
抗炎药物的评价［7］。当机体发生炎症时致炎物质和炎症介
质会增加 NO的合成和释放，过量的 NO 及其稳定性衍生物
过氧亚硝基阴离子对细胞具有毒性作用，因此限制 NO的过
量释放可以预防和治疗炎症［8］;TNF － α 作为一个重要的早
期炎症因子可诱发 IL － 6 以及继发性炎症介质 NO 的释
放［9］，因此抑制 TNF － α 的释放在治疗炎症的过程中也显得
尤为重要;现有研究表明在多种炎症相关疾病中均伴有明显
的 IL －6水平升高，因此 IL － 6 表达水平也是常用的抗炎检
测指标［10］。该研究发现，头花蓼各提取物及热淋清颗粒含
药血清均能够抑制 ＲAW264． 7 细胞释放炎症因子 NO、
TNF － α及 IL － 6，其中头花蓼水提醇沉提取物含药血清抑制
细胞释放炎症因子的作用最强，因此其为头花蓼主要的抗炎
有效物质。
(下转第 150页)
631 安徽农业科学 2016年
3 结论与讨论
通过 NaNO2 － Al(NO3)3 － NaOH 法，以芦丁为对照品，
在 510 nm处用紫外可见分光光度计测定了假蒟不同部位总
黄酮的含量，发现总黄酮含量在假蒟叶中最高(1． 18%) ，其
次是茎(0． 33%) ，根中最低(0． 25%)。
通过溴甲酚绿酸性染料比色法，以盐酸小檗碱为对照
品，在 420 nm处用紫外可见分光光度计测定了假蒟不同部
位总生物碱的含量，发现总生物碱含量在假蒟叶中最高
(0. 19%) ，其次是茎(0． 03%) ，根中最低(0． 01%)。
通过香草醛 －冰醋酸酸性染料比色法，以人参皂苷 Ｒe
为对照品，在 544 nm处用紫外可见分光光度计测定了假蒟
不同部位总皂苷的含量，发现总皂苷含量在假蒟叶中最高
(4． 33%) ，其次是根(4． 13%) ，茎中最低(1． 71%)。
通过 Folin － Ciocalteu比色法，以没食子酸为对照品，在
765 nm处用紫外可见分光光度计测定了假蒟不同部位总酚
的含量，发现总酚含量在假蒟叶中最高(2． 42%) ，其次是茎
(1． 08%) ，根中最低(0． 68%)。
通过磷钼钨酸 －干酪素比色法，以没食子酸为对照品，
在 765 nm处用紫外可见分光光度计测定了假蒟不同部位总
鞣质的含量，发现总鞣质含量在假蒟叶中最高(1. 69%) ，其
次是茎(1． 21%) ，根中最低(0． 72%)。
综上所述，假蒟不同部位总黄酮、总生物碱、总皂苷、总酚、
总鞣质含量具有显著的差异性。试验结果表明，5种方法均具
有精密度高、稳定性好、重现性好、操作简便、效率高、测定结果
可靠的优点，适用于假蒟中总黄酮、总生物碱、总皂苷、总酚、总
鞣质的定量分析，可为假蒟药用质量评价提供参考依据，也为
假蒟次生代谢产物的进一步开发利用提供基础资料。
参考文献
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社，1985:551．
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995 －999．
(上接第 136 页)
4组含药血清抑制 LPS 刺激 ＲAW264． 7 细胞释放 NO、
TNF － α、IL －6的作用强度从强到弱依次为 PCWEPS、ＲLQS、
WEPS、DPCWEPS。头花蓼水提醇沉沉淀物中主要为多糖和
蛋白类化合物，其抗炎活性较弱。热淋清颗粒以头花蓼水提
物为主要原料，可能是由于热淋清颗粒的制备工艺较为成熟
使其更易于吸收，导致其含药血清的抗炎活性略优于头花蓼
水提物含药血清的抗炎活性。PCWEPS的抗炎活性最强，可
能是由于乙醇沉淀法有效除去蛋白质、多糖、鞣质等杂质，有
效成分得到富集［3］，其中富含槲皮素、没食子酸、山奈酚、儿
茶素以及多种酚酸类等化合物［11］，使其含药血清的抗炎活
性得到较大程度的提高，这为改善热淋清颗粒临床用量较大
提供了理论依据。
综上所述，头花蓼水提物、水提醇沉提取物、水提醇沉
沉淀物及热淋清颗粒含药血清均能不同程度地通过抑制炎
症因子 NO、TNF － α和 IL － 6的释放而发挥抗炎作用，其中
头花蓼水提醇沉提取物为头花蓼主要的抗炎有效物质，因
此采用水提后醇沉的方法能够提高头花蓼的抗炎活性，这
为从细胞水平上深入探讨头花蓼在治疗泌尿系统感染中的
作用奠定了基础，也为头花蓼的进一步开发应用提供了理
论依据。
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051 安徽农业科学 2016年