全 文 ：基金项目：贵州省科技厅＿２０１４年度贵州省科技厅与贵州师范大学
联合基金计划项目（编号：黔科合ＬＨ字【２０１４】７０６４号）
作者简介：李潇彬，女，贵州师范大学在读硕士研究生。
通信作者：廖莉玲（１９６３—），女，贵州师范大学教授。
Ｅ－ｍａｉｌ：ｌｌ６３８３＠１６３．ｃｏｍ
收稿日期：２０１６－０９－１３
第３２卷第１１期
２　０　１　６年１　１月 食 品 与 机 械
OOD&MACHINERY Ｖｏｌ．３２，Ｎｏ．１１
Ｎｏｖ．２　０　１　６
ＤＯＩ：１０．１３６５２／ｊ．ｉｓｓｎ．１００３－５７８８．２０１６．１１．０３７
利用大孔树脂吸附纯化头花蓼总多酚工艺的研究
Ｐｕｒｉｆｉｃａｔｉｏｎ　ｏｆ　ｔｏｔａｌ　ｐｏｌｙｐｈｅｎｏｌｓ　ｉｎ　ｐｏｌｙｇｏｎｕｍ　ｃａｐｉｔａｔｉｏｎ
ｂｙ　ｍａｃｒｏｐｏｒｏｕｓ　ａｄｓｏｒｐｔｉｏｎ　ｒｅｓｉｎｓ
李潇彬１
ＬＩ　Ｘｉａｏ－ｂｉｎ１
　
顾曼琦１
ＧＵ　Ｍａｎ－ｑｉ１
　
郑奎玲１
ＺＨＥＮＧ　Ｋｕｉ－ｌｉｎｇ１
　
卫　钢２
ＷＥＩ　Ｇａｎｇ２
　
廖莉玲１
ＬＩＡＯ　Ｌｉ－ｌｉｎｇ１
（１．贵州师范大学化学与材料科学学院，贵州 贵阳　５５０００１；
２．联邦科学与工业研究组织材料科学与工程分部，澳大利亚 新南威尔士州　２０７０）
（１．Ｓｃｈｏｏｌ　ｏｆ　Ｃｈｅｍｉｓｔｒｙ　ａｎｄ　Ｍａｔｅｒａｌ　Ｓｃｉｅｎｃｅ，Ｇｕｉｚｈｏｕ　Ｎｏｒｍａｌ　Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｙ，Ｇｕｉｙａｎｇ，Ｇｕｉｚｈｏｕ　５５０００１，Ｃｈｉｎａ；
２．Ｃｏｍｍｏｎｗｅａｌｔｈ　Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ　ａｎｄ　Ｉｎｄｕｓｔｒｉａｌ　Ｒｅｓｅａｒｃｈ　Ｏｒｇａｎｉｓａｔｉｏｎ，Ｍａｔｅｒｉａｌｓ
Ｓｃｉｅｎｃｅ　ａｎｄ　Ｅｎｇｉｎｅｅｒｉｎｇ，Ｎｅｗ　Ｓｏｕｔｈ　Ｗａｌｅｓ　２０７０，Ａｕｓｔｒａｌｉａ）
摘要：采用Ｆｏｌｉｎ－Ｃｉｏｃａｌｔｅｕ比色法测定多酚含量，研究１０种
大孔树脂对头花蓼总多酚的吸附和解吸效果，筛选出适合分
离纯化头花蓼总多酚的树脂，并以总多酚的吸附率和解吸率
为指标对 ＨＰＤ－７２２纯化头花蓼总多酚的工艺进行了研究。
结果表明：ＨＰＤ－７２２为纯化头花蓼总多酚的最佳树脂。确定
其最佳工艺条件为：上样浓度控制在２．０～４．５ｍｇ／ｍＬ，上样
流速２ＢＶ／ｈ，用体积为７．５ＢＶ的５０％乙醇溶液集中洗脱。
纯化后总多酚的含量可达到５９．０２％。
关键词：头花蓼；总多酚；大孔树脂；纯化
Ａｂｓｔｒａｃｔ：Ｔｈｅ　ｔｏｔａｌ　ｃｏｎｔｅｎｔ　ｏｆ　ｐｏｌｙｐｈｅｎｏｌｓ　ｉｎ　ｐｏｌｙｇｏｎｕｍ　ｃａｐｔｉｔａｔｕｍ
ｗａｓ　ｄｅｔｅｒｍｉｎｅｄ　ｂｙ　Ｆｏｌｉｎ－Ｃｉｏｃｕｌｔｅｕ　ｃｏｌｏｒｉｍｅｔｒｙ．１０ｔｙｐｅｓ　ｏｆ　ｍａｃｒｏ－
ｐｏｒｏｕｓ　ｒｅｓｉｎｓ　ｗｅｒｅ　ｔｅｓｔｅｄ　ｂｙ　ｓｔａｔｉｃ　ａｄｓｏｒｐｔｉｏｎ　ａｎｄ　ｄｅｓｏｒｐｔｉｏｎ　ｅｘｐｅｒｉ－
ｍｅｎｔｓ　ｆｏｒ　ｐｕｒｉｆｙｉｎｇ　ｐｏｌｙｐｈｅｎｏｌｓ　ｉｎ　ｐｏｌｙｇｏｇｕｍ　ｃａｐｔｉｔａｔｕｍ　ａｎｄ　ｐｕｒｉｆ－
ｙｉｎｇ　ｃｏｎｄｉｔｉｏｎｓ　ｂｙ　ｔｈｅ　ｂｅｓｔ　ｒｅｓｉｎ　ｗｅｒｅ　ｉｎｖｅｓｔｉｇａｔｅｄ．Ｔｈｅ　ｒｅｓｕｌｔｓ
ｓｈｏｗｅｄ　ｔｈａｔ　ＨＰＤ－７２２ｗａｓ　ｔｈｅ　ｂｅｓｔ　ｒｅｓｉｎ．Ｐｕｒｉｆｙｉｎｇ　ｃｏｎｄｉｔｉｏｎｓ　ｗｅｒｅ
ａｓ　ｆｏｌｏｗｓ：ｃｏｎｃｅｎｔｒａｔｉｏｎ　ｏｆ　ａｄｃｏｒｐｔｉｏｎ　ｓａｍｐｌｅ　２．０～４．５ｍｇ／ｍＬ，
２ＢＶ／ｈ　ａｄｓｏｐｔｉｏｎ　ｖｅｌｏｃｉｔｙ，７．５ＢＶ　５０％ｅｔｈａｎｏｌ　ｓｏｌｕｔｉｏｎ　ａｓ　ｅｌｕｅｎｔ，
ｔｈｅ　ｃｏｎｔｅｎｔ　ｏｆ　ｔｈｅ　ｔｏｔａｌ　ｐｏｌｙｐｈｅｎｏｌ　ｓａｍｐｌｅ　ｗａｓ　ｕｐ　ｔｏ　５９．０２％．
Ｋｅｙｗｏｒｄｓ：ｐｏｌｙｇｏｎｕｍ　ｃａｐｉｔａｔｕｍ；ｔｏｔａｌ　ｐｏｌｙｐｈｅｎｏｌ；ｍａｃｒｏｐｏｒｏｕｓ
ｒｅｓｉｎ；ｐｕｒｉｆｉｃａｔｉｏｎ
头花蓼（Ｐｏｌｙｇｏｎｕｍ　ｃａｐｉｔａｔｕｍ）为蓼科蓼属植物头花蓼
（Ｐｏｌｙｇｏｎｕｍ　ｃａｐｉｔａｔｕｍ　Ｂｕｃｈ．－ｈａｎ．ｅｘ　Ｄ．Ｄｏｎ）干燥的全草或
者是地面上的部分，又名小红要、小红藤、骨虫草、沙滩子，
具有清热利湿、解毒止痛、活血散瘀、利尿通淋的功能，是著
名的苗药［１－２］。
众多研究表明头花蓼的主要成分为黄酮类和酚酸类，而
且多酚具有较强的抗氧化［３］及抑菌效果［４］，但是，已有的研
究主要集中于酚酸类的含量测定［５－６］，从头花蓼中分离纯化
多酚类鲜见报道。因此对头花蓼总多酚进行提取分离等进
一步的深入研究具有较高的研究价值。大孔树脂用于多酚
的分离纯化已有较多的文献报道［７－８］，该方法工艺简单，成
本较低。本试验拟通过静态试验和动态试验对头花蓼多酚
利用大孔树脂纯化的工艺条件进行研究，优化出最佳纯化条
件，以期为头花蓼的进一步研究提供科学依据。
１　材料与方法
１．１　材料、试剂与仪器
头花蓼：施秉三元威门公司ＧＡＰ种植基地；
ＦＣ试剂、Ｄ２９６、Ｄ３０１、ＳＡ－１、ＳＡ－２、ＬＳＡ－１０、ＨＰＤ－１００、
ＨＰＤ－６００、聚酰胺、ＡＢ－８、ＨＰＤ－７２２：沧州宝恩吸附材料科技
有限公司；
其余试剂均为分析纯；
试验所用水均为二次蒸馏水；
电热鼓风干燥箱：１０１－１Ａ 型，天津市泰斯特仪器有限
公司；
电子天平：Ａ　２００Ｓ型，德国科恩公司；
循环水式多用真空泵：ＳＨＢ－ＩＩＩＡ型，郑州长城科工贸有
限公司；
控温电热套：ＫＤＭ 型，山东鄄城华鲁电热仪器有限
公司；
３６１
分光光度计：Ｕ　Ｖ　２３００型，上海天美科学仪器有限
公司；
微型植物粉碎机：ＦＺ　１０２型，天津市泰斯特仪器有限
公司。
１．２　标准曲线的绘制
称取０．０５０　０ｇ的没食子酸配成０．０５０　０ｇ／Ｌ的标准没食
子酸溶液。分别取１，２，３，４，５ｍＬ标准没食子酸溶液，分别
加入２．５ｍＬ的ＦＣ试剂、７ｍＬ　１２％的碳酸钠溶液，以试剂空
白做参比，均定容在２５ｍＬ的棕色容量瓶中，反应温度为
３５℃，反应时间为４０ｍｉｎ，在波长为７６０ｎｍ处测定各溶液
的吸光度，绘制标准曲线（见图１）。
图１　没食子酸标准曲线图
Ｆｉｇｕｒｅ　１　Ｓｔａｎｄａｒｄ　ｃｕｒｖｅ　ｆｏｒ　ｔｈｅ　ｄｅｔｅｒｍｉｎａｔｉｏｎ　ｏｆ　ｇａｌｉｃ　ａｃｉｄ
１．３　大孔吸附树脂的预处理
将树脂放在水中浸泡２４ｈ后，用蒸馏水反复洗涤，再用
乙醇浸泡２４ｈ，除去醇溶物，用蒸馏水洗至无醇味；４％盐酸
浸泡３ｈ，用蒸馏水洗涤至中性，４％氢氧化钠浸泡３ｈ，用蒸
馏水洗至中性［９］。将处理好的树脂用蒸馏水浸泡备用。
１．４　头花蓼提取液的制备
将头花蓼用植物粉碎机粉碎过６０目筛，按料液比１２５
（ｇ／ｍＬ）用４０％乙醇回流提取２次，一次１．５ｈ，抽滤合并滤
液，滤液蒸发除去大部分乙醇后得到样液，测样液多酚的浓
度［１０－１２］，备用。
１．５　大孔树脂的筛选
１．５．１　静态吸附解析试验　分别在１０种处理好的树脂中称
取２ｇ置于干燥的锥形瓶中，加入１．１０６　６ｍｇ／ｍＬ头花蓼多
酚样液１００ｍＬ，静置２４ｈ，按ＦＣ比色法测定大孔树脂吸附
后各样液中头花蓼多酚含量，计算各树脂对头花蓼多酚的吸
附率。然后洗去树脂表面残余样液，加入１００ｍＬ　７０％乙醇
溶液浸泡洗脱，静置２４ｈ，使其充分解吸。测定各解吸溶液
中头花蓼多酚含量，计算各树脂的解吸率。
Ｒ１ ＝
ｍ０－ｍ１
ｍ０
×１００％ ， （１）
Ｒ２ ＝
ｍ２
ｍ０－ｍ１
×１００％ ， （２）
式中：
Ｒ１———吸附率，％；
Ｒ２———解吸率，％；
ｍ０———起始量，ｍｇ；
ｍ１———平衡量，ｇ；
ｍ２———解吸量，ｇ。
１．５．２　动态吸附解析试验　将处理好的 ＨＰＤ－７２２、ＡＢ－８、
ＳＡ－２、ＳＡ－１　４种大孔树脂装入层析柱中，装柱体积为３０ｃｍ３
（１ＢＶ）。用浓度为３．３７３　３ｍｇ／ｍＬ的头花蓼多酚试液以
２ＢＶ／ｈ的流速缓慢流过层析柱使其达到吸附饱和。收集过
滤液，测量头花蓼多酚含量并计算吸附率。用蒸馏水将层析
柱中树脂洗涤至流出液无色，用１５０ｍＬ　５０％的乙醇溶液以
２ＢＶ／ｈ的流速缓慢流过层析柱，收集树脂洗涤液并旋干称
重。计算解吸率和多酚含量。
Ｑ ＝
ｍ３
ｍ４
×１００％ ， （３）
式中：
Ｑ———多酚含量，ｍｇ；
ｍ３———纯化后旋干物的量，ｍｇ；
ｍ４———旋干物中头花蓼多酚的质量，ｍｇ。
１．６　ＨＰＤ－７２２大孔树脂纯化总多酚条件
１．６．１　上样浓度对动态吸附率的影响　将已处理好的
ＨＰＤ－７２２树脂等体积（３０ｃｍ３）分别装入５根规格相同的层
析柱中，将浓度分别为０．９９９　９，２．３７１　３，２．８３９　９，４．６３５　５，
５．３４５ｍｇ／ｍＬ的总多酚提取液以２ＢＶ／ｈ流速上样。吸附
饱和后收集流出液，并测定其流出液多酚含量，计算吸附率。
１．６．２　上样流速及吸附泄漏曲线的考察试验　取３份浓度
为２．８３９　９ｍｇ／ｍＬ的总多酚试液１００ｍＬ，分别以２，３，
４ＢＶ／ｈ的流速通过层析柱。每１０ｍＬ收集一瓶流出液，并
以积累上样溶液的体积与各瓶溶液的浓度为坐标绘制曲
线图。
１．６．３　洗脱剂浓度的选择　取２．８３９　９ｍｇ／ｍＬ的总多酚试
液１００ｍＬ以２ＢＶ／ｈ流速通过层析柱，充分吸附，然后依次
用１００ｍＬ蒸馏水、１０％乙醇、３０％乙醇、５０％乙醇、７０％乙
醇、９０％乙醇以２ＢＶ／ｈ流速进行梯度洗脱，每２５ｍＬ收集
一次洗脱液。收集洗脱液时需排尽树脂中原有的溶液即加
入洗脱剂流出２５ｍＬ溶液后开始收集第一瓶洗脱液。测定
每瓶洗脱液中总多酚的含量，并以瓶子编号和总多酚的含量
为坐标绘制曲线图。
１．６．４　洗脱剂用量的选择　４．０３５　５ｍｇ／ｍＬ的总多酚试液
１００ｍＬ以２ＢＶ／ｈ流速通过层析柱，充分吸附后，先用蒸馏
水冲洗层析柱至流出液为无色，再用５０％乙醇溶液对树脂进
行洗脱。流速同样控制在２ＢＶ／ｈ，每２５ｍＬ收集一次洗脱
液，测定每管洗脱液中总多酚的含量，并以累积洗脱体积和
总多酚的含量为坐标绘制曲线图。
２　结果与讨论
２．１　树脂静态吸附解析筛选试验结果
由表１可知，由于树脂的极性、孔径、比表面、孔容等不
同，不同类型树脂对头花蓼多酚的吸附程度不同。从吸附率
上看聚酰胺最大为７２％，但其解吸率为２２％，解吸率低。综
合吸附率和解吸率，吸附率比较接近的有ＳＡ－２、ＳＡ－１、ＡＢ－８、
ＨＰＤ－７２２这４种树脂，并有良好的解吸率，因此进一步做动
态吸附试验。
４６１
提取与活性 　 ２０１６年第１１期
表１　静态吸附解析筛选结果
Ｔａｂｌｅ　１　Ｒｅｓｕｌｔｓ　ｏｆ　ｓｔａｔｉｃ　ａｄｓｏｒｐｔｉｏｎ　ａｎｄ　ｄｅｓｏｐｔｉｏｎ ％
树脂种类 吸附率 解吸率 树脂种类 吸附率 解吸率
ＡＢ－８　 ５１　 ７１ ＨＰＤ－７２２　 ５４　 ８６
ＳＡ－１　 ５５　 ７５ Ｄ１０１　 ４５　 ７５
ＳＡ－２　 ５６　 ８４ Ｄ３０１　 １４　 １０
ＨＰＤ－１００　 ４６　 ８０ ＬＳＡ－１０　 ４５　 ７６
ＨＰＤ－６００　 ４５　 ６０ 聚酰胺 ７２　 ２２
２．２　动态吸附解析筛选结果
由表２可知，ＨＰＤ－７２２大孔树脂对头花蓼多酚的吸附率
和解吸率都比较高，经过 ＨＰＤ－７２２吸附解吸后，头花蓼多酚
含量最高。结合静态吸附和动态吸附结果，可以确定 ＨＰＤ－
７２２为适合纯化头花蓼总多酚的大孔吸附树脂。
表２　动态吸附解析筛选结果
Ｔａｂｌｅ　２　Ｒｅｓｕｌｔｓ　ｏｆ　ｄｙｎａｍｉｃ　ａｄｓｏｒｐｔｉｏｎ　ａｎｄ　ｄｅｓｏｐｔｉｏｎ％
树脂种类 吸附率 解吸率 含量
ＡＢ－８　 ６５．８０　 ７７．３７　 ４１．７７
ＳＡ－１　 ３３．３６　 ６６．５８　 ３３．３７
ＳＡ－２　 ３４．３５　 ６２．０２　 ３１．３９
ＨＰＤ－７２２　 ８２．５５　 ７６．０３　 ５５．１４
２．３　ＨＰＤ－７２２大孔树脂动态工艺参数的确定
２．３．１　上样浓度对树脂吸附率的影响　由图２可知，上样浓度
对头花蓼总多酚的吸附率影响较为明显，浓度为０．９９ｍｇ／ｍＬ左
右时，吸附效果最好，但是达到吸附饱和的时间较长，耗工耗
时。浓度在２．０～４．５ｍｇ／ｍＬ时，吸附效果较好且相差不大。
浓度大于４．６４ｍｇ／ｍＬ后吸附率下降较快。综合考虑，上样
浓度应控制在２．０～４．５ｍｇ／ｍＬ。
图２　上样浓度对总多酚吸附率的影响
Ｆｉｇｕｒｅ　２　Ｔｈｅ　ｅｆｆｅｃｔ　ｏｆ　ｃｏｎｃｅｎｔｒａｔｉｏｎ　ｏｆ　ｔｏｔａｌ　ｐｏｌｙｐｈｅｎｏｌｓ
ｏｎ　ｔｈｅ　ａｂｓｏｒｐｔｉｏｎ　ｒａｔｅ
２．３．２　上样流速及吸附泄漏曲线的考察试验　由图３可知，
当流速为２，３，４ＢＶ／ｈ且上样量为８０ｍＬ时，开始有１０％上
样液总多酚量泄漏，吸附达到饱和；可以看出流速对吸附的
影响不大，考虑到流速过快树脂吸附不完全，因此将进样流
速定为２ＢＶ／ｈ。
２．３．３　洗脱剂浓度的选择　由图４可知，总多酚的洗脱量主
要集中在５０％的乙醇洗脱的部分，其中水洗脱量较少，考虑
到水洗可将部分水溶性杂质除去。因此，可推出洗脱条件
图３　不同上样流速对吸附的影响
Ｆｉｇｕｒｅ　３　Ｔｈｅ　ｉｎｆｌｕｅｎｃｅ　ｏｆ　ｔｈｅ　ｖｅｌｏｃｉｔｙ　ｏｆ　ｓａｍｐｌｅ　ｏｎ　ａｄｓｏｒｐｔｉｏｎ
１～４号为水洗脱液；５～８号为１０％乙醇洗脱液；９～１２号为３０％乙
醇洗脱液；１３～１６号为５０％乙醇洗脱液；１７～２０号为７０％乙醇洗脱
液；２１～２４为９０％乙醇洗脱液
图４　不同浓度乙醇的总多酚洗脱量曲线图
Ｆｉｇｕｒｅ　４　Ｄｉｆｆｅｒｅｎｔ　ｃｏｎｃｅｎｔｒａｔｉｏｎｓ　ｏｆ　ｅｔｈａｎｏｌ　ｅｌｕｔｉｏｎ　ｖｏｌｕｍｅ
ｃｕｒｖｅ　ｏｆ　ｔｏｔａｌ　ｐｏｌｙｐｈｅｎｏｌｓ
为：先将水溶性杂质用蒸馏水洗去，然后用５０％的乙醇溶液
进行洗脱，收集５０％的乙醇洗脱部分。
２．３．４　洗脱剂用量的选择　由图５可知，当５０％乙醇洗脱用
量超过７．５ＢＶ时，洗脱下来的总多酚的量可以忽略，因此从
实际工业生产上考虑，洗脱剂用量保持在７．５ＢＶ 为最佳
选择。
图５　洗脱剂用量的考察曲线图
Ｆｉｇｕｒｅ　５　Ｔｈｅ　ｄｏｓａｇｅ　ｏｆ　ｅｌｕｅｎｔ　ｇｒａｐｈ
２．３．５　 验证实验 　 取浓度为 ２．３５５ ｍｇ／ｍＬ 提取原液
１００ｍＬ，上样流速２ＢＶ／ｈ，洗脱剂为７．５ＢＶ　５０％乙醇，对头
花蓼总多酚进行分离纯化，测定纯化后总多酚的质量分数，
结果表明样品中总多酚的含量最高可达５９．０２％。
３　结论
通过大孔树脂多头花蓼多酚的静态和动态吸附研究对
比得出，大孔树脂静态吸附交换能力以ＳＡ－２、ＳＡ－１、ＡＢ－８、
（下转第２１６页）
５６１
第３２卷第１１期 李潇彬等：利用大孔树脂吸附纯化头花蓼总多酚工艺的研究 　
［４３］朱俊玲，卢智．超临界ＣＯ２萃取芦荟多糖工艺的优化［Ｊ］．安徽
农业科学，２０１１，３９（１０）：５　７９４－５　７９５．
［４４］李亚辉，马艳弘，黄开红，等．响应面法优化复合酶提取芦荟多
糖工艺及其抗氧化活性分析［Ｊ］．食品科学，２０１４，３５（１８）：
６３－６８．
［４５］安胜欣，王纪纪，唐小琼，等．微波辅助提取芦荟多糖的研究
［Ｊ］．安徽理工大学学报：自然科学版，２０１２，３２（３）：３７－４０．
［４６］刘胜利，刘晓露，黄锁义，等．桑葚多糖提取方法的比较［Ｊ］．安
徽农业科学，２０１２，４０（５）：２　６９９－２　７００，２　７０５．
［４７］丘丹萍，邹勇芳，黄锁义，等．白茅根多糖提取方法的比较研究
［Ｊ］．中国酿造，２０１０（１）：１０８－１１０．
［４８］ＰＡＮ　Ｌｉ－ｈｕａ，ＷＡＮＧ　Ｊｉａｎ，ＹＥ　Ｘｉｎｇ－ｑｉａｎ，ｅｔ　ａｌ．Ｅｎｚｙｍｅ－ａｓｓｉｓ－
ｔｅｄ　ｅｘｔｒａｃｔｉｏｎ　ｏｆ　ｐｏｌ－ｙｓａｃｃｈａｒｉｄｅｓ　ｆｒｏｍ　Ｄｅｎｄｒｏｂｉｕｍ　ｃｈｒｙｓｏｔｏｘ－
ｕｍ　ａｎｄ　ｉｔｓ　ｆｕｎｃｔｉｏｎａｌ　ｐｒｏｐｅｒｔｉｅｓ　ａｎｄ　ｉｍｍｕｎｏｍｏｄｕｌａｔｏｒｙ
ａｃｔｉｖｉｔｙ［Ｊ］．ＬＷＴ－Ｆｏｏｄ　Ｓｃｉｅｎｃｅ　ａｎｄ　Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ，２０１５，６０（２）：
１　１４９－１　１５４．
［４９］翁梁，温鲁，杨芳，等．不同提取方法对蛹虫草多糖抗氧化性的
影响［Ｊ］．食品科技，２００８，３３（１１）：１８０－１８２．
［５０］范巧宁，赵珮，高晓梅，等．不同提取方法对槐米多糖抗氧化活
性的影响［Ｊ］．食品工业科技，２０１４，３５（２１）：２７３－２７７．
［５１］赵晨淏，刘钧发，冯梦莹，等．不同提取方法对龙眼多糖性质的
影响［Ｊ］．现代食品科技，２０１２，２８（１０）：１　２９８－１　３０１，１　３０５．
［５２］陈卫云，张名位，魏振承，等．不同方法提取荔枝多糖抗氧化活
性的比较［Ｊ］．食品工业科技，２０１２（４）：１９２－１９４，１９９．
［５３］ＱＩ　Ｈｕｉ－ｍｉｎ，ＺＨＡＯ　Ｔｉｎｇ－ｔｉｎｇ，ＺＨＡＮＧ　Ｑｕａｎ－ｂｉｎ，ｅｔ　ａｌ．Ａｎ－
ｔｉｏｘｉｄａｎｔ　ａｃｔｉｖｉｔｙ　ｏｆ　ｄｉｆｆｅｒｅｎｔ　ｍｏｌｅｃｕｌａｒ　ｗｅｉｇｈｔ　ｓｕｌｆａｔｅｄ　ｐｏｌｙｓａｃ－
ｃｈａｒｉｄｅｓ　ｆｒｏｍ　Ｕｌｖａ　ｐｅｒｔｕｓａ　Ｋｊｅｌｍ （Ｃｈｌｏｒｏｐｈｙｔａ）［Ｊ］．Ｊｏｕｒｎａｌ
ｏｆ　Ａｐｐｌｉｅｄ　Ｐｈｙｃｏｌｏｇｙ，２００５，１７（６）：５２７－５３４．
［５４］ＣＨＥＮ　Ｈｕａ－ｇｕｏ，ＺＨＯＵ　Ｘｉｎ，ＺＨＡＮＧ　Ｊｕｎ－ｚｅｎｇ．Ｏｐｔｉｍｉｚａｔｉｏｎ
ｏｆ　ｅｎｚｙｍｅ　ａｓｓｉｓｔｅｄ　ｅｘｔｒａｃｔｉｏｎ　ｏｆ　ｐｏｌｙｓａｃｃｈａｒｉｄｅｓ　ｆｒｏｍ
Ａｓｔｒａｇａｌｕｓ　ｍｅｍｂｒａｎａｃｅｕｓ［Ｊ］．Ｃａｒｂｏｈｙｄｒａｔｅ　Ｐｏｌｙｍｅｒｓ，２０１４，
１１１（５）：５６７－５７５．
［５５］邢东旭，廖森泰，刘吉平，等．热水浸提和微波萃取桑叶多糖的
药效比较及降血糖机制初探［Ｊ］．蚕业科学，２００８，３４（３）：
５２９－５３３．
［５６］吴建中，郭开平，陈静，等．番石榴多糖的降血糖作用研究［Ｊ］．
食品与机械，２００６，２２（６）：８０－８２．
［５７］王元凤，金征宇．不同溶剂分级提取的茶多糖的组成及降血糖
活性［Ｊ］．天然产物研究与开发，２００６，１８（５）：８１３－８１７．
［５８］杨少波，张其安，王娟．降血糖天然食品资源及其降血糖机理
研究进展［Ｊ］．食品研究与开发，２０１２，３３（４）：２１１－２１５．
［５９］宫春宇，张劲松，唐庆九，等．室温下龙须菜多糖提取工艺及免
疫活性研究［Ｊ］．食品科学，２００９，３０（１０）：３８－４１．
［６０］朱地琴，潘迎捷，唐庆九，等．不同提取水温对龙须菜多糖的得
率、组成和免疫活性的影响［Ｊ］．浙江海洋学院学报：自然科学
版，２０１２，３１（５）：３９５－４０１．
［６１］姜玥，潘利华，罗建平．超声辅助提取对茯苓多糖免疫活性的
影响［Ｊ］．食用菌学报，２０１２，１９（４）：７９－８２．
［６２］翟蓉，吕丽爽，金邦荃．何首乌多糖降血脂作用的研究［Ｊ］．食
品与机械，２０１０，２６（５）：８７－９０，１０１．
［６３］彭梅，唐健波，肖雄，等．提取方法对仙茅多糖提取率及抗肿瘤
活性的影响［Ｊ］．中成药，２０１４，３６（９）：１　９８５－１　９８８．
［６４］张雅利，梁花香，曹娜．提取方法对柿多糖提取率及生物活性
的影响［Ｊ］．食品与生物技术学报，２００８，２７（６）：１８－２２．
［６５］陈丽华．龙眼壳多糖的提取、分离纯化与性质研究［Ｄ］．重庆：
西南大学，２００９：１．
［６６］ＷＡＮＧ　Ｙｕａｎ－ｆｅｎｇ，ＬＩ　Ｙｏｎｇ－ｆｕ，ＬＩＵ　Ｙａｎｇ－ｙａｎｇ，ｅｔ　ａｌ．Ｅｘｔｒａｃ－
ｔｉｏｎ，ｃｈａｒａｃｔｅｒｉｚａｔｉｏｎ　ａｎｄ　ａｎｔｉｏｘｉｄａｎｔ　ａｃｔｉｖｉｔｉｅｓ　ｏｆ　Ｓｅ－ｅｎｒｉｃｈｅｄ
ｔｅａ　ｐｏｌｙｓａｃｃｈａｒｉｄｅｓ［Ｊ］．Ｉｎｔｅｒｎａｔｉｏｎａｌ　Ｊｏｕｒｎａｌ　ｏｆ　Ｂｉｏｌｏｇｉｃａｌ　Ｍａｃ－
ｒｏｍｏｌｅｃｕｌｅｓ，２０１５，７７（２）：７６－８４．
［６７］ＣＨＥＮ　Ｙｉ，ＺＨＡＮＧ　Ｈｕｉ，ＷＡＮＧ　Ｙｕａｎ－ｘｉｎｇ，ｅｔ　ａｌ．Ｓｕｌｆａｔｅｄ
ｍｏｄｉｆｉｃａｔｉｏｎ　ｏｆ　ｔｈｅ　ｐｏｌｙｓａｃｃｈａｒｉｄｅｓ　ｆｒｏｍ　Ｇａｎｏｄｅｒｍａ　ａｔｒｕｍ　ａｎｄ
ｔｈｅｉｒ　ａｎｔｉｏｘｉｄａｎｔ　ａｎｄ　ｉｍｍｕｎｏｍｏｄｕｌａｔｉｎｇ　ａｃｔｉｖｉｔｉｅｓ［Ｊ］．Ｆｏｏｄ
Ｃｈｅｍｉｓｔｒｙ，２０１５，１８６（１）：２３１－２３８．
（上接第１６５页）
ＨＰＤ－７２２　４种树脂吸附能力最强。通过动态吸附试验比较
这４种树脂可得出，ＨＰＤ－７２２树脂对头花蓼多酚有较高的吸
附量，而且易于解吸，其产物总多酚含量高，ＨＰＤ－７２２树脂更
适合于头花蓼总多酚的分离提纯。通过对 ＨＰＤ－７２２大孔吸
附树脂进行动态工艺参数研究，可得出体系最佳优化条件
为：上样浓度控制在２．０～４．５ｍｇ／ｍＬ，上样流速为２ＢＶ／ｈ，
用体积为７．５ＢＶ树脂体积的５０％乙醇溶液集中洗脱。本研
究仅纯化头花蓼总多酚，其总多酚中所含的成分等有待进一
步的检测鉴定。
参考文献
［１］贵州省食品药品监督管理局．贵州省中药材民族药材质量标准
［Ｓ］．贵阳：贵州科技出版社，２００３：１４７．
［２］王洪平，曹芳，杨秀伟．头花蓼地上部分的化学成分研究［Ｊ］．中
草药，２０１３，４４（１）：２４－３０．
［３］张丽娟，廖尚高，詹哲浩，等．头花蓼酚酸类化学成分研究［Ｊ］．
时珍国医国药，２０１０，２１（８）：１　９４６－１　９４７．
［４］刘瑜新，宋晓勇，康文艺，等．头花蓼对多重耐药金黄色葡萄球
菌抗菌作用研究［Ｊ］．中成药，２０１４，３６（９）：１　８１７－１　８２１．
［５］曹芳，谭辉，邓先扩．头花蓼化学成分及其黄酮类化合物含量的
研究进展［Ｊ］．黔南民族医专学报，２０１２，２５（２）：１２１－１２５．
［６］李占彬，杨鸿波，谭红，等．贵州特色中药头花蓼中六种酚酸类
有效成分的 ＨＰＬＣ－ＭＳ／ＭＳ同时测定［Ｊ］．时珍国医国药，
２０１５，２６（４）：８５０－８５２．
［７］熊建华，汤凯洁，罗秋水，等．大孔吸附树脂纯化金银花叶总多
酚的工艺优化［Ｊ］．食品与机械，２０１１，２７（３）：５２－５５，６７．
［８］唐丽丽，刘邻渭，孙丽芳，等．大孔树脂对石榴皮中多酚物质的
吸附研究［Ｊ］．食品与机械，２０１１，３２（５）：４８－５１．
［９］封帆，张永萍，宋信莉，等．大孔吸附树脂纯化丹参总酚酸的工
艺研究［Ｊ］．中南药学，２０１１，１（１）：２７－３０．
［１０］崔紫姣，张彩云，刘彬彬，等．Ｆｏｌｉｎ－Ｃｉｏｃａｌｔｅｕ比色法测定甜茶
总多酚含量［Ｊ］．贵州农业科学，２０１４，４２（３）：１５８－１６０．
［１１］居正英，赵慧芳，吴文龙．Ｆｏｌｉｎ－Ｃｉｏｃａｌｔｅｕ比色法测定测定核桃
青皮中多酚含量条件的优化［Ｊ］．食品与机械，２０１４，３０（４）：
１２２－１２５．
［１２］牛广财，闫公昕，朱丹，等．Ｆｏｌｉｎ－Ｃｉｏｃａｌｔｅｕ比色法测定沙棘酒
中总多酚含量的工艺优化［Ｊ］．食品与机械，２０１６，３２（４）：８０－
８３，１４２．
６１２
第３２卷第１１期 黄仁贵等：提取方法对植物多糖生物活性的影响研究进展