全 文 ：·论著·
应用高效液相色谱法测定中药奇蒿中异泽兰黄素和奇蒿黄酮的含量
邱智泉ａ，曹青青ｂ，谭蔚锋ａ，周　瑾ｂ，吕　磊ｂ（第二军医大学附属东方肝胆外科医院　ａ．胆道一科，ｂ．药材科，上海
２００４３８）
［作者简介］　邱智泉，主治医师，讲师．研究方向：普外科疾病治疗．
Ｔｅｌ：（０２１）８１８７５５８２；Ｅ－ｍａｉｌ：ｑｚｈｑ４２３＠１２６．ｃｏｍ
［通讯作者］　吕　磊，硕士，主管药师．研究方向：中药质量标准研
究．Ｔｅｌ：（０２１）８１８７５５７８；Ｅ－ｍａｉｌ：ｋ＿ｏｗｅｎ２００２＠１２６．ｃｏｍ
　　［摘要］　目的　采用高效液相色谱（ＨＰＬＣ）法测定中药奇蒿中异泽兰黄素和奇蒿黄酮的含量。方法　奇蒿药材以１０倍
体积甲醇超声６０ｍｉｎ提取。色谱分离采用资生堂 ＭＧ－Ｃ１８色谱柱（３．０ｍｍ×１００ｍｍ，３μｍ），流动相为乙腈－０．１％甲酸
（４０∶６０，Ｖ／Ｖ），等度洗脱，流速０．５ｍｌ／ｍｉｎ，检测波长３５０ｎｍ，柱温２５℃，进样量５μｌ。结果　异泽兰黄素和奇蒿黄酮在
１５ｍｉｎ内基线分离，线性良好。方法学验证表明，日内、日间精密度，重复性和稳定性的范围均符合相关标准。异泽兰黄素的
低、中、高加样回收率分别为１００．２６％，９９．５８％和１０２．２４％；奇蒿黄酮的低、中、高加样回收率分别为９９．０９％，１０１．１２％和
１０１．４３％。结论　该方法快捷简单，稳定可靠，可用于对奇蒿药材进行质量控制。
　　［关键词］　奇蒿；异泽兰黄素；奇蒿黄酮；高效液相色谱；含量测定
［中图分类号］　Ｒ９３　　　［文献标志码］　Ａ　　　［文章编号］　１００６－０１１１（２０１６）０２－０１６３－０４
［ＤＯＩ］　１０．３９６９／ｊ．ｉｓｓｎ．１００６－０１１１．２０１６．０２．０１６
Ａｓｓａｙ　ｏｆ　ｅｕｐａｔｉｌｉｎ　ａｎｄ　ａｒｔｅａｎｏｆｌａｖｏｎｅ　ｉｎ　Ａｒｔｅｍｉｓｉａ　ａｎｏｍａｌａ　ｂｙ　ＨＰＬＣ
ＱＩＵ　Ｚｈｉｑｕａｎａ，ＣＡＯ　Ｑｉｎｇｑｉｎｇｂ，ＴＡＮ　Ｗｅｉｆｅｎｇａ，ＺＨＯＵ　Ｊｉｎｂ，ＬＬｅｉ　ｂ（ａ．Ｄｅｒｐａｒｔｍｅｎｔ　ｏｆ　Ｂｉｌｉａｒｙ　Ｔｒａｃｔ　Ｓｕｒｇｅｒｙ，ｂ．Ｄｅｒｐａｒｔ－
ｍｅｎｔ　ｏｆ　Ｐｈａｒｍａｃｙ，Ｅａｓｔｅｒｎ　Ｈｅｐａｔｏｂｉｌｉａｒｙ　Ｈｏｓｐｉｔａｌ　Ａｆｆｉｌｉａｔｅｄ　ｔｏ　Ｓｅｃｏｎｄ　Ｍｉｌｉｔａｒｙ　Ｍｅｄｉｃａｌ　Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｙ，Ｓｈａｎｇｈａｉ　２００４３８，Ｃｈｉｎａ）
［Ａｂｓｔｒａｃｔ］　Ｏｂｊｅｃｔｉｖｅ　Ｔｏ　ｄｅｔｅｒｍｉｎｅ　ｔｈｅ　ｃｏｎｃｅｎｔｒａｔｉｏｎ　ｏｆ　ｅｕｐａｔｉｌｉｎ　ａｎｄ　ａｒｔｅａｎｏｆｌａｖｏｎｅ　ｉｎ　Ａｒｔｅｍｉｓｉａ　ａｎｏｍａｌａ　ｂｙ　ｈｉｇｈ　ｐｅｒ－
ｆｏｒｍａｎｃｅ　ｌｉｑｕｉｄ　ｃｈｒｏｍａｔｏｇｒａｐｈｙ（ＨＰＬＣ）．Ｍｅｔｈｏｄｓ　Ａｒｔｅｍｉｓｉａ　ａｎｏｍａｌａ　ｗａｓ　ｅｘｔｒａｃｔｅｄ　ｂｙ　ｕｌｔｒａｓｏｎｉｃ　ｆｏｒ　６０ｍｉｎｕｔｅｓ　ｗｉｔｈ　１０
ｔｉｍｅｓ　ｖｏｌｕｍｅ　ｏｆ　ｍｅｔｈａｎｏｌ．Ｔｈｅ　ＨＰＬＣ　ｗａｓ　ｐｅｒｆｏｒｍｅｄ　ｏｎ　ａ　ＳＨＩＳＥＩＤＯ　ＭＧ－Ｃ１８ｃｏｌｕｍｎ（３．０ｍｍ×１００ｍｍ，３μｍ）．Ｔｈｅ　ｍｏｂｉｌｅ
ｐｈａｓｅ　ｗａｓ　ａ　ｍｉｘｔｕｒｅ　ｏｆ　ａｃｅｔｏｎｉｔｒｉｌｅ（ＡＣＮ）ａｎｄ　０．１％ｆｏｒｍｉｃ　ａｃｉｄ（４０∶６０，Ｖ／Ｖ）．Ｔｈｅ　ｄｅｔｅｃｔｉｏｎ　ｗａｖｅｌｅｎｇｔｈ　ｗａｓ　３５０ｎｍ，ｔｈｅ
ｃｏｌｕｍｎ　ｔｅｍｐｅｒａｔｕｒｅ　ｗａｓ　２５℃ａｎｄ　ｔｈｅ　ｉｎｊｅｃｔｉｏｎ　ｖｏｌｕｍｎ　ｗａｓ　５μｌ．Ｒｅｓｕｌｔｓ　Ｅｕｐａｔｉｌｉｎ　ａｎｄ　ａｒｔｅａｎｏｆｌａｖｏｎｅ　ｗｅｒｅ　ｓｅｐａｒａｔｅｄ　ａｔ　ｂａｓｅ－
ｌｉｎｅ　ｗｉｔｈｉｎ　１５ｍｉｎ　ｗｉｔｈ　ｇｏｏｄ　ｌｉｎｅａｒｉｔｙ．Ｔｈｅ　ｍｅｔｈｏｄ　ｖａｌｉｄａｔｉｏｎ　ｒｅｓｕｌｔｓ　ｓｈｏｗ　ｔｈａｔ　ｔｈｅ　ｐｒｅｃｉｓｉｏｎｓ，ｒｅｐｅａｔａｂｉｌｉｔｙ　ａｎｄ　ｓｔａｂｉｌｉｔｙ　ｗｅｒｅ
ａｌ　ｉｎ　ｔｈｅ　ｎｏｒｍａｌ　ｒａｎｇｅ．Ｔｈｅ　ｌｏｗ，ｍｅｄｉｕｍ　ａｎｄ　ｈｉｇｈ　ｌｅｖｅｌ　ｒｅｃｏｖｅｒｉｅｓ　ｏｆ　ｅｕｐａｔｉｌｉｎ　ｗｅｒｅ　１００．２６％，９９．５８％，１０２．２４％，ａｎｄ　ｔｈｏｓｅ　ｏｆ
ａｒｔｅａｎｏｆｌａｖｏｎｅ　ｗｅｒｅ　９９．０９％，１０１．１２％，１０１．４３％，ｒｅｓｐｅｃｔｉｖｅｌｙ．Ｃｏｎｃｌｕｓｉｏｎ　Ｔｈｅ　ｍｅｔｈｏｄ　ｗａｓ　ｒａｐｉｄ，ｓｉｍｐｌｅ，ｒｅｐｒｏｄｕｃｔｉｖｅ　ａｎｄ
ａｃｃｕｒａｔｅ．Ｉｔ　ｃａｎ　ｂｅ　ｕｓｅｄ　ｔｏ　ｃｏｎｔｒｏｌ　ｔｈｅ　ｑｕａｌｉｔｙ　ｏｆ　Ａｒｔｅｍｉｓｉａ　ａｎｏｍａｌａ．
　　［Ｋｅｙ　ｗｏｒｄｓ］　Ａｒｔｅｍｉｓｉａ　ａｎｏｍａｌａ；ｅｕｐａｔｉｌｉｎ；ａｒｔｅａｎｏｆｌａｖｏｎｅ；ＨＰＬＣ；ｄｅｔｅｒｍｉｎａｔｉｏｎ
　　奇蒿又名南刘寄奴、六月霜、九牛草、野马兰头
等，为菊科多年生草本植物奇蒿（Ａｒｔｅｍｉｓｉａ　ａｎｏｍａ－
ｌａ　Ｓ．Ｍｏｏｒｅ）的全草［１］。主要分布于我国华东、中南
及西南各省区，主产于江苏、浙江、广西、湖南等地。
奇蒿始载于《雷公炮制论》，其性温味苦［２］。全草入
药有清热解暑、破血通经、散瘀止痛、消食化积的功
效，主治血漏经闭、产后阏阻腹痛、食积不化等症［３］。
现代药理学研究表明，奇蒿可以影响血液系统和内
分泌功能，亦具有抗菌、抗缺氧、抑制亚硝化反应、抗
氧化、镇痛、保肝等作用［４］。近期有学者研究发现，
奇蒿中的黄酮具有调节多靶点发挥抗血管炎症的功
效［５］，奇蒿的乙酸乙酯提取部位具有强大的抗炎活
性［６］。
　　奇蒿全草具有黄酮苷反应，经植物化学研究发
现，黄酮类化合物是奇蒿的重要成分之一［７］。因此，
研究奇蒿黄酮类化合物对奇蒿的药理活性机制探索
具有重要意义。据文献报道，异泽兰黄素主要存在
于艾科植物中［８］，奇蒿黄酮仅存在于蒿属奇蒿中，以
上两种特征性黄酮化合物可以作为奇蒿药材鉴定的
参考依据。目前，有关奇蒿中黄酮类化合物的研究
较少，尤其是特征黄酮类化合物的提取和含量测定
未见报道。因此，建立简单、高效的方法测定奇蒿中
特征化合物，对药材的开发应用具有重要意义。本
实验采用正交设计法对奇蒿中异泽兰黄素和奇蒿黄
酮的提取条件进行优化，并采用高效液相色谱
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药学实践杂志　２０１６年３月２５日第３４卷第２期
Ｊｏｕｒｎａｌ　ｏｆ　Ｐｈａｒｍａｃｅｕｔｉｃａｌ　Ｐｒａｃｔｉｃｅ，Ｖｏｌ．３４，Ｎｏ．２，Ｍａｒｃｈ　２５，２０１６
（ＨＰＬＣ）法测定两者的含量，为奇蒿中特征化合物
的研究和质量控制提供依据。
１　仪器和试药
１．１　仪器　Ａｇｉｌｅｎｔ　１１００系列ＨＰＬＣ仪（美国安捷
伦公司），配有 Ｇ１３７９Ａ真空脱气机、Ｇ１３１１Ａ 四元
泵、Ｇ１３６７Ａ 自 动 进 样 器、Ｇ１３１６Ａ 柱 温 箱 和
Ｇ１３１５ＢＤＡＤ检测器；ＫＵＤＯＳ－ＳＫ２２００Ｈ 超声发生
器（上海科导超声仪器公司）；ＭＥＴＴＬＥＲ　ＡＥ２４０型
十万分之一电子天平（德国梅特勒公司）；ＤＪ－０４药
材粉碎机（上海淀久公司）。
１．２　药品和试剂　异泽兰黄素和奇蒿黄酮对照品
购自上海诗丹德生物技术有限公司（纯度＞９８％），
奇蒿药材购自亳州市中药材饮片公司，共５个批次，
产地分别为：浙江（批号：２０１４０５１７）、江西（批号：
２０１４０７１２）、广西（批号：２０１４０６２１）、湖北（批号：
２０１４０７０４）、江苏（批号：２０１４０８１３）。经第二军医大
学药学院生药学教研室黄宝康教授鉴定为菊科植物
奇蒿（Ａｒｔｅｍｉｓｉａ　ａｎｏｍａｌａ　Ｓ．Ｍｏｏｒｅ）的全草。乙腈
和甲酸为色谱纯，购自Ｆｉｓｈｅｒ公司；水为超纯水。
２　方法与结果
２．１　溶液的配制
２．１．１　对照品溶液　分别精密称取异泽兰黄素和
奇蒿黄酮对照品１０．４０、１０．３４ｍｇ，置１０ｍｌ量瓶
中，加甲醇溶解并定容至刻度，摇匀，即得浓度分别
为１．０４０、１．０３４ｍｇ／ｍｌ的母液。精密量取上述对
照品溶液１０、２０、５０、１００、２００μｌ，分别至１０ｍｌ量瓶
中，加甲醇至刻度，摇匀，即得系列浓度的混合对照
品溶液，置于４℃冰箱中保存。
２．１．２　样品溶液　精密称取奇蒿药材粉末约２．０ｇ
（过４０目筛），置具塞锥形瓶中，加甲醇２０ｍｌ，超声
提取１ｈ，降至室温，补足失重，摇匀，过０．４５μｍ微
孔滤膜，取续滤液，即得，置于４℃冰箱中保存。
２．２　色谱条件　色谱柱：资生堂 ＭＧ－Ｃ１８色谱柱
（３．０ｍｍ×１００ｍｍ，３．０μｍ）；流动相为乙腈－０．１％
甲酸（４０∶６０，Ｖ／Ｖ），等度洗脱；流速０．５ｍｌ／ｍｉｎ；
检测波长３５０ｎｍ，柱温２５℃；进样量５μｌ。
２．３　方法学验证
２．３．１　系统适用性　按出峰顺序，异泽兰黄素和奇
蒿黄酮的保留时间分别为６．１２９、７．７６２ｍｉｎ。根据
对照品溶液的色谱图中２个峰的相关参数，计算系
统适用性，其理论塔板数分别为８　８５２、８　３４５；分离
度为５．４３；拖尾因子分别为１．０１２、１．０３４。空白、奇
蒿对照品及样品溶液的色谱图见图１。
２．３．２　线性关系　分别将“２．１．１”项下制备的不同
浓度的混合对照品溶液按“２．２”项下色谱条件依次
连续进样，重复３次，以对照品溶液浓度（Ｘ，μｇ／ｍｌ）
对峰面积（Ｙ）进行线性回归，呈良好的线性关系，如
表１所示。
图１　奇蒿的ＨＰＬＣ图
Ａ．空白溶液；Ｂ．对照品溶液；Ｃ．样品溶液；１．异泽兰黄素；２．奇蒿黄酮
表１　异泽兰黄素、奇蒿黄酮的线性关系（ｎ＝３）
成分
浓度
（ρＢ／μｇ·
ｍｌ－１）
峰
面积
线性方程
线性范围
（ρＢ／μｇ·ｍｌ－１）
ｒ
异泽兰黄素 １．０４　 １８．５５
２．０８　 ３４．５９
５．２０　 ８９．７０
Ｙ＝１６．４１　Ｘ＋
２．３９４
１．０４～
２０．８０
０．９９９　５
１０．４０　 １７５．３８
２０．８０　 ３４２．３８
奇蒿黄酮　 １．０３４　 ７．７３
２．０６８　 １５．６６
５．１７０　 ３８．７７
Ｙ＝７．３６９　Ｘ＋
０．５８１
１．０３４～
２０．６８
０．９９９　５
１０．３４　 ７７．８３
２０．６８　 １５２．４７
２．３．３　定量限和检测限　将混合对照品溶液进行
逐级稀释，以信噪比１０∶１时，确定其最低定量限；以
信噪比３∶１时，确定其最低检测限。异泽兰黄素和
奇蒿黄酮的最低定量限分别为１．０４和１．０３μｇ／ｍｌ，
最低检测限分别为０．６４和０．８６μｇ／ｍｌ。
２．３．４　精密度试验　取“２．１．１”项下制备的不同浓
度的混合对照品溶液中的第２、３、５个点作为低、中、
高浓度点，在１ｄ以内连续进样３次，以及连续３ｄ
分别进样，根据所得峰面积分别考察日内精密度和
日间精密度（ｎ＝３）。结果异泽兰黄素和奇蒿黄酮的
日内精密度低浓度点 ＲＳＤ＜２．０％，中、高浓度点
ＲＳＤ＜１．５％，日间精密度低、中浓度点 ＲＳＤ＜
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药学实践杂志　２０１６年３月２５日第３４卷第２期
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２．０％，高浓度点ＲＳＤ＜１．５％，表明本方法的精密
度良好。
２．３．５　加样回收率试验　精密称取同一批次奇蒿
样品１ｇ（产地：浙江，批号：２０１４０５１７），共９份，每３
份为１组，按低、中、高３个浓度分别加入对照品一
定量（样品中各成分含量的５０％、１００％、１５０％）。
按“２．１．２”项下制备，进样分析，结果异泽兰黄素低、
中、高浓度的回收率 （ｎ＝３）分别为 １００．２６％
（ＲＳＤ＝１．８１％）、９９．５８％ （ＲＳＤ＝１．４５％）和
１０２．２４％（ＲＳＤ＝１．２６％）；奇蒿黄酮低、中、高浓度
的回收率（ｎ＝３）分别为９９．０９％（ＲＳＤ＝１．９１％）、
１０１．１２％（ＲＳＤ＝１．１２％）和 １０１．４３％（ＲＳＤ＝
１．４９％）。结果表明，以本法同时测定奇蒿中异泽兰
黄素和奇蒿黄酮的含量回收率结果良好。
２．３．６　重复性试验　精密称取同一批次奇蒿样品
２ｇ（批号：２０１４０５１７），共５份。按“２．１．２”项下方法
分别制成样品溶液，进样分析。结果显示，异泽兰黄
素和 奇 蒿 黄 酮 （ｎ＝５）的 平 均 含 量 分 别 为
７０．４９μｇ／ｇ（ＲＳＤ＝１．２５％）和５６．７０μｇ／ｇ（ＲＳＤ＝
１．７５％）。结果表明，本方法的重复性良好。
２．３．７　稳定性试验　同法制备奇蒿药材样品提取
溶液（批号：２０１４０５１７），分别在０、２、４、８、１２、２４ｈ测
定２种奇蒿黄酮类化合物的峰面积，考察其稳定性。
异泽兰黄素和奇蒿黄酮的峰面积ＲＳＤ（ｎ＝６）分别
为１．７４％、１．４５％，表明供试品溶液在２４ｈ内稳定。
２．４　样品测定　按“２．１．２”项下方法制备５个不同
产地（浙江、江西、广西、湖北、江苏）的奇蒿药材样品
溶液，各样品溶液按“２．２”项下色谱条件分析，计算
样品含量，结果见表２。
表２　各产地奇蒿药材中异泽兰黄素和
奇蒿黄酮的含量测定结果（ｎ＝３）
产地 异泽兰黄素（μｇ／ｇ） 奇蒿黄酮 （μｇ／ｇ）
浙江 ７０．６３　 ５６．４３
江西 ７９．９８　 ６９．６４
广西 ４４．８５　 ３４．３１
湖北 １１７．１９　 ８５．８４
江苏 ８０．９０　 ５７．７７
３　讨论
３．１　提取方法的优化　对于奇蒿中黄酮类化合物
的含量测定方法，文献［９］报道了采用索氏回流法提
取总黄酮化合物，因操作过程烦琐，提取时间较长，
本实验采用正交设计法制订超声提取方案。以３因
素、３水平考察了对超声提取有影响的因素：物料
比、提取溶剂和提取时间。物料比（ｍ／Ｖ）为１∶１０、
１∶２０、１∶３０；提取时间为３０、４５、６０ｍｉｎ；提取溶
剂为７０％乙醇、５０％甲醇、甲醇，正交试验结果见表
３。根据表中２种黄酮总含量由高到低的顺序可判
断，以甲醇为提取溶剂，物料比１∶１０，超声时间
６０ｍｉｎ时，异泽兰黄素和奇蒿黄酮的综合提取效率
最高，故采用２ｇ奇蒿药材加入２０ｍｌ甲醇溶剂，超
声６０ｍｉｎ作为最佳前处理条件。
表３　正交试验结果
Ｎｏ．
溶剂体积
（Ｖ／ｍｌ）
溶剂种类
超声时间
（ｔ／ｍｉｎ）
异泽兰黄
素含量
（μｇ／ｇ）
奇蒿黄
酮含量
（μｇ／ｇ）
２种黄酮
总含量
（μｇ／ｇ）
１　 ２０ 甲醇 ６０　 ７１．２２　 ５７．９３　 １２８．９８
２　 ２０　 ７０％乙醇 ３０　 ８３．３９　 ３７．００　 １２０．２１
３　 ４０ 甲醇 ３０　 ６６．５９　 ４４．１２　 １１０．５４
４　 ６０　 ７０％乙醇 ６０　 ７８．７３　 １０．４７　 ８８．９８
５　 ６０ 甲醇 ４５　 ４３．４４　 ３３．６７　 ７６．９２
６　 ２０　 ５０％甲醇 ４５　 ４１．３２　 ３３．７２　 ７４．８５
７　 ４０　 ５０％甲醇 ６０　 ４３．７７　 ３０．５４　 ７４．１１
８　 ４０　 ７０％乙醇 ４５　 ２２．８９　 ３９．７９　 ６２．５０
９　 ６０　 ５０％甲醇 ３０　 ４２．１６　 ８．２２　 ５０．１５
３．２　液相条件的选择
３．２．１　色谱柱　色谱柱的选择对能否形成良好分
离度具有重要影响，我们考察了２５０ｍｍ×４．６ｍｍ
（粒径５μｍ）、１５０ｍｍ×４．６ｍｍ（粒径５μｍ）以及
１００ｍｍ×３．０ｍｍ（粒径３μｍ）３种规格的柱子。经
比较发现，长柱的分离度高，但分析时间较长；短柱
的粒径小，柱效高，分析时间短，故选用１００ｍｍ×
３．０ｍｍ（粒径３μｍ）柱进行分析。
３．２．２　检测波长和流动相　异泽兰黄素是艾科艾
属植物艾叶中的有效成分之一，前期相关学者对艾
叶中异泽兰黄素的含量进行了研究［１０，１１］。在异泽
兰黄素含量测定研究条件的基础上，我们选择２４０、
２７５、３５０ｎｍ　３个吸收波长比较了异泽兰黄素和奇
蒿黄酮的吸收强弱，流动相比例设为乙腈－０．１％甲
酸溶液（４０∶６０，Ｖ／Ｖ），等度洗脱，结果表明，异泽兰
黄素和奇蒿黄酮在波长为３５０ｎｍ处吸收最强，且
在该流动相条件下，两者基线分离。本实验所选检
测波长和流动相条件能够准确测定奇蒿中异泽兰黄
素和奇蒿黄酮的含量。
３．２．３　温度和流速　温度和流速对样品的检测有
重要影响，降低温度能够提高样品的分离度，但会增
加流动相在柱子中的黏度，从而增加检测系统的压
力。一般情况下，柱温设为２５℃。流速过高会降低
分离度，且出峰时间会过早。对于短柱，我们控制的
流速是０．５ｍｌ／ｍｉｎ，该流速条件下，样品的分离度
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药学实践杂志　２０１６年３月２５日第３４卷第２期
Ｊｏｕｒｎａｌ　ｏｆ　Ｐｈａｒｍａｃｅｕｔｉｃａｌ　Ｐｒａｃｔｉｃｅ，Ｖｏｌ．３４，Ｎｏ．２，Ｍａｒｃｈ　２５，２０１６
良好，且出峰时间合适，故选为分析条件。
３．３　测定结果分析　本实验对５个产地奇蒿药材
中的异泽兰黄素和奇蒿黄酮进行了含量测定。实验
结果表明，异泽兰黄素的含量依次为：湖北＞江苏＞
江西＞浙江＞广西；奇蒿黄酮的含量依次为：湖北＞
江西＞江苏＞浙江＞广西。其中，产地为湖北的药
材其目标成分的含量达到广西产的２倍。出现以上
含量差异的原因可能与药材生长的土壤成分、日照
时间、光照强弱等因素有关。此研究进一步确定了
各产地奇蒿中的特征黄酮成分的含量，通过后期系
统的统计学分析，可对不同产地的奇蒿药材质量进
行评价，也可为道地药材的鉴别提供依据。
４　小结
　　本实验采用 ＨＰＬＣ法对奇蒿药材中的异泽兰
黄素和奇蒿黄酮进行含量测定，方法学验证表明，日
内及日间精密度、重复性、稳定性、加样回收率的范
围均符合相关标准，该方法成功运用于５个产地奇
蒿药材的含量测定。本实验建立的方法简单快速、
稳定可靠，可为奇蒿药材的质量控制提供依据。
【参考文献】
［１］　吴巧凤，张光霁．南刘寄奴中总黄酮的提取工艺优选［Ｊ］．中
国医药学报，２０００，１５（５）：６３－６３．
［２］　谭蔚峰，王　靖，邢　新．中药奇蒿提取物体外抗菌活性的实
验研究［Ｊ］．药学实践杂志，２０１０，２８（２）：１０１－１０４．
［３］　杜华洲，罗集鹏．刘寄奴的本草考证及紫外光谱法鉴别［Ｊ］．
中药材，２００４，２７（９）：６３８－６４１．
［４］　年　华，郑汉臣．奇蒿的研究进展［Ｊ］．药学实践杂志，２００２，
２０（５）：３０５－３０９．
［５］　潘一峰，章丹丹，凌　霜，等．南刘寄奴总黄酮体外抗血管
炎症的机制分析［Ｊ］．中国中药杂志，２０１２，３７（１７）：２５９７－
２６０２．
［６］　Ｔａｎ　Ｘ，Ｗａｎｇ　ＹＬ，Ｙａｎｇ　ＸＬ，ｅｔ　ａｌ．Ｅｔｈｙｌ　Ａｃｅｔａｔｅ　ｅｘｔｒａｃｔ　ｏｆ
Ａｒｔｅｍｉｓｉａ　ａｎｏｍａｌａ　Ｓ．Ｍｏｏｒｅ　ｄｉｓｐｌａｙｓ　ｐｏｔｅｎｔ　ａｎｔｉ－ｉｎｆｌａｍｍａ－
ｔｏｒｙ　ｅｆｆｅｃｔ［Ｊ］．Ｅｖｉｄ　Ｂａｓｅｄ　Ｃｏｍｐｌ　Ａｌｔｅｒｎａｔ　Ｍｅｄ，２０１４，２０１４
（６８）：１３５２－１３６２．
［７］　温　晶，史海明，刘艳芳，等．刘寄奴黄酮类成分研究［Ｊ］．
中国中药杂志，２０１０，３５（１４）：１８２７－１８３０．
［８］　Ｓｏｎ　ＪＥ，Ｌｅｅ　Ｅ，Ｓｅｏ　ＳＧ，ｅｔ　ａｌ．Ｅｕｐａｔｉｌｉｎ，ａ　ｍａｊｏｒ　ｆｌａｖｏｎｏｉｄ
ｏｆ　Ａｒｔｅｍｉｓｉａ，ａｔｔｅｎｕａｔｅｓ　ａｏｒｔｉｃ　ｓｍｏｏｔｈ　ｍｕｓｃｌｅ　ｃｅｌ　ｐｒｏｌｉｆｅｒａ－
ｔｉｏｎ　ａｎｄ　ｍｉｇｒａｔｉｏｎ　ｂｙ　ｉｎｈｉｂｉｔｉｎｇ　ＰＩ３Ｋ，ＭＫＫ３／６，ａｎｄ　ＭＫＫ４
ａｃｔｉｖｉｔｉｅｓ．Ｐｌａｎｔａ　Ｍｅｄ，２０１３，７９（１２）：１００９－１０１６．
［９］　黄雅萍，王鸿燕，叶陈奎，等．正交试验优化六月霜中总黄酮
的提取工艺［Ｊ］．天津药学，２０１０，２２（５）：３－５．
［１０］　Ｌｅｅ　ＹＷ，Ｊｉｎ　ＹＺ，Ｒｏｗ　ＫＨ，ｅｔ　ａｌ．Ｅｘｔｒａｃｔｉｏｎ　ａｎｄ　ｐｕｒｉｆｉｃａ－
ｔｉｏｎ　ｏｆ　ｅｕｐａｔｉｌｉｎ　ｆｒｏｍ　Ａｒｔｅｍｉｓｉａ　ｐｒｉｎｃｅｐｓ　ＰＡＭＰＡＮ　ｒｅｃｙｃｌｉｎｇ
ｐｒｅｐａｒａｔｉｖｅ　ＨＰＬＣ［Ｊ］．Ｋｏｒｅａｎ　Ｊ　Ｃｈｅｍ　Ｅｎｇ，２００６，２３（２）：
２７９－２８２．
［１１］　龙　澜，李亚杰，程新华，等．艾叶中异泽兰黄素的含量测定
［Ｊ］．湖北民族学院学报（自然科学版），２０１０，２８（４）：３９５－
３９６．
［收稿日期］　２０１５－０２－１０　［修回日期］　２０１５－０６－０８
［本文编辑］　李睿旻
（上接第１４１页）
［８］　Ｏｋｉｎｏ　Ｔ，Ｙｏｓｈｉｍｕｒａ　Ｅ，Ｈｉｒｏｔａ　Ｈ，ｅｔ　ａｌ．Ａｎｔｉｆｏｕｌｉｎｇ　ｋａｌｉ－
ｈｉｎｅｎｅｓ　ｆｒｏｍ　ｔｈｅ　ｍａｒｉｎｅ　ｓｐｏｎｇｅ　Ａｃａｎｔｈｅｌｌａ　ｃａｖｅｒｎｏｓａ［Ｊ］．
Ｔｅｔｒａｈｅｄｒｏｎ　Ｌｅｔｔ，１９９５，３６（４７）：８６３７－８６４０．
［９］　Ｈｉｒｏｔａ　Ｈ，Ｔｏｍｏｎｏ　Ｙ，Ｆｕｓｅｔａｎｉ　Ｎ．Ｔｅｒｐｅｎｏｉｄｓ　ｗｉｔｈ　ａｎｔｉｆｏｕｌ－
ｉｎｇ　ａｃｔｉｖｉｔｙ　ａｇａｉｎｓｔ　ｂａｒｎａｃｌｅ　ｌａｒｖａｅ　ｆｒｏｍ　ｔｈｅ　ｍａｒｉｎｅ　ｓｐｏｎｇｅ
Ａｃａｎｔｈｅｌｌａ　ｃａｖｅｒｎｏｓａ［Ｊ］．Ｔｅｔｒａｈｅｄｒｏｎ，１９９６，５２（７）：２３５９－
２３６８．
［１０］　Ｏｋｉｎｏ　Ｔ，Ｙｏｓｈｉｍｕｒａ　Ｅ，Ｈｉｒｏｔａ　Ｈ，ｅｔ　ａｌ．Ｎｅｗ　ａｎｔｉｆｏｕｌｉｎｇ　ｋａｌｉ－
ｈｉｐｙｒａｎｓ　ｆｒｏｍ　ｔｈｅ　ｍａｒｉｎｅ　ｓｐｏｎｇｅ　Ａｃａｎｔｈｅｌｌａ　ｃａｖｅｒｎｏｓａ［Ｊ］．Ｊ
Ｎａｔ　Ｐｒｏｄ，１９９６，５９（１１）：１０８１－１０８３．
［１１］　Ｘｕ　Ｙ，Ｌｉ　Ｎ，Ｊｉａｏ　ＷＨ，ｅｔ　ａｌ．Ａｎｔｉｆｏｕｌｉｎｇ　ａｎｄ　ｃｙｔｏｔｏｘｉｃ　ｃｏｎｓｔｉｔ－
ｕｅｎｔｓ　ｆｒｏｍ　ｔｈｅ　Ｓｏｕｔｈ　Ｃｈｉｎａ　Ｓｅａ　ｓｐｏｎｇｅ　Ａｃａｎｔｈｅｌｌａ　ｃａｖｅｒｎｏｓａ
［Ｊ］．Ｔｅｔｒａｈｅｄｒｏｎ，２０１２，６８（１３）：２８７６－２８８３．
［１２］　Ｘｕ　Ｙ，Ｌａｎｇ　ＪＨ，Ｊｉａｏ　ＷＨ，ｅｔ　ａｌ．Ｆｏｒｍａｍｉｄｏ－ｄｉｔｅｒｐｅｎｅｓ　ｆｒｏｍ
ｔｈｅ　Ｓｏｕｔｈ　Ｃｈｉｎａ　Ｓｅａ　Ｓｐｏｎｇｅ　Ａｃａｎｔｈｅｌｌａ　ｃａｖｅｒｎｏｓａ．Ｍａｒｉｎｅ
ｄｒｕｇｓ，２０１２，１０（１２）：１４４５－１４５８．
［１３］　Ｓｕｎ　ＪＺ，Ｃｈｅｎ　ＫＳ，Ｙａｏ　ＬＧ，ｅｔ　ａｌ．Ａ　ｎｅｗ　ｋａｌｉｈｉｎｏｌ　ｄｉｔｅｒｐｅｎｅ
ｆｒｏｍ　ｔｈｅ　Ｈａｉｎａｎ　ｓｐｏｎｇｅ　Ａｃａｎｔｈｅｌｌａｓｐ［Ｊ］．Ａｒｃｈ　Ｐｈａｒｍ　Ｒｅｓ，
２００９，３２（１１）：１５８１－１５８４．
［１４］　Ｙａｎ　ＸＨ，Ｚｈｕ　ＸＺ，Ｙｕ　ＪＬ，ｅｔ　ａｌ．３－Ｏｘｏ－ａｘｉｓｏｎｉｔｒｉｌｅ－３，ａ　ｎｅｗ
ｓｅｓｑｕｉｔｅｒｐｅｎｅ　ｉｓｏｃｙａｎｉｄｅ　ｆｒｏｍ　ｔｈｅ　Ｃｈｉｎｅｓｅ　ｍａｒｉｎｅ　ｓｐｏｎｇｅ
Ａｃａｎｔｈｅｌｌａｓｐ［Ｊ］．Ｊ　Ａｓｉａｎ　Ｎａｔ　Ｐｒｏｄ　Ｒｅｓ，２００６，８（６）：５７９－
５８４．
［１５］　Ｑｉｕ　Ｙ，Ｄｅｎｇ　Ｚ　Ｗ，Ｘｕ　Ｍ，ｅｔ　ａｌ．Ｎｅｗ　Ａ－ｎｏｒ　ｓｔｅｒｏｉｄｓ　ａｎｄ　ｔｈｅｉｒ
ａｎｔｉｆｏｕｌｉｎｇ　ａｃｔｉｖｉｔｙ　ｆｒｏｍ　ｔｈｅ　Ｃｈｉｎｅｓｅ　ｍａｒｉｎｅ　ｓｐｏｎｇｅ　Ａｃａｎ－
ｔｈｅｌｌａｃａｖｅｒｎｏｓａ［Ｊ］．Ｓｔｅｒｉｏｄｓ，２００８，７３（１４）：１５００－１５０４．
［１６］　许　磊，吴　迪，吴立军，等．辽细辛地上部分化学成分的分
离与鉴定（２）［Ｊ］．沈阳药科大学学报，２００９，２６（１２）：９６４－
９６７．
［１７］　Ｗａｎｇ　ＲＰ，Ｌｉｎ　ＨＷ，Ｓｏｎｇ　ＳＪ，ｅｔ　ａｌ．Ｍｏｎｏｉｎｄｏｌｅ　ａｌｋａｌｏｉｄｓ　ｆｒｏｍ
ａ　ｍａｒｉｎｅ　ｓｐｏｎｇｅ　Ｍｙｃａｌｅ　ｆｉｂｒｅｘｉｌｉｓ［Ｊ］．Ｂｉｏｃｈｅｍ　Ｓｙｓｔ　Ｅｃｏｌ，
２０１２，４３（８）：２１０－２１３．
［１８］　Ｄｉｌｍａｎ　ＲＬ，Ｃａｒｄｅｌｉｎａ　ＪＨ．Ａｒｏｍａｔｉｃ　ｓｅｃｏｎｄａｒｙ　ｍｅｔａｂｏｌｉｔｅｓ
ｆｒｏｍ　ｔｈｅ　ｓｐｏｎｇｅ　Ｔｅｄａｎｉａ　Ｉｇｎｉｓ［Ｊ］．Ｊ　Ｎａｔ　Ｐｒｏｄ，１９９１，５４
（４）：１０５６－１０６１．
［１９］　Ｈａｒｒｉｇａｎ　ＧＧ，Ａｈｍａｄ　Ａ，Ｂａｊ　Ｎ，ｅｔ　ａｌ．Ｂｉｏａｃｔｉｖｅ　ａｎｄ　ｏｔｈｅｒ　ｓｅｓ－
ｑｕｉｔｅｒｐｅｎｏｉｄｓ　ｆｒｏｍ　Ｐｏｒｅｌｌａ　ｃｏｒｄｅａｎａ［Ｊ］．Ｊ　Ｎａｔ　Ｐｒｏｄ，１９９３，
５６（６）：９２１－９２５．
［２０］　王茹萍，吴　迪，高慧媛，等．天女木兰叶中甾类化合物的分
离与鉴定［Ｊ］．沈阳药科大学学报，２００９，（１１）：８７４－８７７．
［收稿日期］　２０１５－０８－１１　［修回日期］　２０１６－０１－０５
［本文编辑］　李睿旻
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药学实践杂志　２０１６年３月２５日第３４卷第２期
Ｊｏｕｒｎａｌ　ｏｆ　Ｐｈａｒｍａｃｅｕｔｉｃａｌ　Ｐｒａｃｔｉｃｅ，Ｖｏｌ．３４，Ｎｏ．２，Ｍａｒｃｈ　２５，２０１６