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Expression, Purification and Identification of Zta-P54 Fusion Protein in Escherichia coli of Epstein-Barr Virus

EB病毒融合蛋白Zta-P54在大肠杆菌中的表达、纯化及鉴定



全 文 :·研究报告·
生物技术通报
BIOTECHNOLOGY BULLETIN 2014年第7期
EB 病毒(Epstein-Barr virus,EBV)属于人类疱
疹病毒 γ 亚科,具有较强传染性和潜伏感染的特点。
该病毒在裂解期主要表达立早蛋白、早期蛋白和晚
期蛋白 3 种蛋白[1]。有研究报道[2],鼻咽癌的发生
发展和 EB 病毒感染密切相关,在鼻咽癌病人血清
中可以检测到 EB 病毒相关抗体。由于不同感染状
态下 EBV 表达的抗原各不相同,因此研究者常通过
收稿日期 :2013-12-24
基金项目 :河南科技攻关资助项目(132201310001)
作者简介 :王云龙,男,教授,研究方向 :生物制药 ;E-mail :biowyl@126.com
EB 病毒融合蛋白 Zta-P54 在大肠杆菌中的表达、
纯化及鉴定
王云龙1,3  张春艳1  李玉林3  程蕾3  王继创3  邓黎黎2  米海3  白晓静2
(1. 郑州大学生物工程系,郑州 450001 ;2. 郑州职业技术学院,郑州 450046 ;3. 河南省生物工程技术研究中心,郑州 450001)
摘 要 : 为获得能用于检测试剂盒的高纯度具有活性的 EB 病毒融合蛋白,以 pGEX5T-BZLF1-BMRF1 质粒为模板进行 PCR
扩增得到 BZLF1-BMRF1 融合基因,将其插入 pET32a 中,构建表达质粒 pET32a/BZLF1-BMRF1。将该质粒转入大肠杆菌培养,经
IPTG 诱导获得 Zta-P54 融合蛋白。用 DEAE-Sepharose CL-6B 和 Ni-NTA 亲和层析纯化,并通过 SDS-PAGE 和 Western blot 对 Zta-P54
融合蛋白进行鉴定。双酶切鉴定和测序结果显示成功构建 pET32a/BZLF1-BMRF1 质粒,SDS-PAGE 显示该蛋白相对分子量约为 60
kD,与预期结果一致。纯化后获得纯度为 96.5 % 的 Zta-P54 融合蛋白。Western blot 检测该蛋白有良好的生物活性和反应特异性。因此,
成功构建 pET32a/BZLF1-BMRF1 质粒,在大肠杆菌中可溶性表达。最终获得纯度高、生物活性好的融合蛋白。
关键词 : EB 病毒 Zta-P54 融合蛋白 原核表达 蛋白纯化
Expression,Purification and Identification of Zta-P54 Fusion Protein in
Escherichia coli of Epstein-Barr Virus
Wang Yunlong1,3 Zhang Chunyan1 Li Yulin3 Cheng Lei3 Wang Jichuang3 Deng Lili2 Mi Hai3 Bai Xiaojing2
(1. Bioengineering Department,Zhengzhou University,Zhengzhou 450001 ;2. Zhengzhou Technical College,Zhengzhou 450046 ;
3. Henan Biotechnology Research Center,Zhengzhou 450001)
Abstract:  It was to obtain high purity and active epstein-barr virus fusion protein and use for detection kit. The fragments of BZLF1-
BMRF1 amplified by PCR from pGEX5T-BZLF1-BMRF1 was inserted into expression vector pET32a, and the recombinant plasmid pET32a-
BZLF1-BMRF1 was transformed into E. coli, which was induced to express by IPTG. The expression protein Zta-P54 was purificated by DEAE
Sepharose CL-6 B and Ni -NTA affinity chromatography then analysed by SDS-PAGE and immunoreactivity was proved by western blotting.
Double endonuclease digestion and DNA sequencing results showed that sequencing results constructed successfully. SDS-PAGE showed that
the protein was soluble expressing. The expression product Zta-P54 with the moleculor weight 60 kD was located in the cytoplasm and soluble.
Expression Protein, s purity was 96.5%. Western blotting showed that frusion protein Zta-P54 possessed a well bioactivity and specificity.
Therefore, It proved that the pET32a/BZLF1-BMRF1 plasmid can effectively express in E. coli.
Key words:  EB virus Zta-P54 fusion protein Prokaryotic expression Protein purification
基因工程或人工合成多肽等方法获得 EB 病毒抗原,
作为临床辅助诊断的依据[3]。
BZLF1 编码的 Zta 立早蛋白可促使 EB 病毒从
潜伏状态进入增殖状态,且 Zta 有较好的抗原性[4],
可用于鼻咽癌的诊断及预测。另外,有研究报道[5],
BMRF1 编码的 P54 蛋白是 EB 病毒的早期蛋白,以
EB 病毒早期抗原(包括 P54 蛋白)作为抗原基质建
生物技术通报 Biotechnology Bulletin 2014年第7期174
立 ELISA 法,检测血清中相应抗体,对鼻咽癌诊断
有好的特异性和敏感性。Dardari 等[6]和 Chan 等[7]
的报道及 Chan 等[8]在世界卫生组织肿瘤组织学分
类一书中的观点,均认为血清学方法诊断鼻咽癌,
采用几种抗原联合检测能显著提高特异性和敏感度。
为探讨可溶性多抗原联合检测在血清学诊断鼻
咽癌中的价值,本研究尝试用 pET32a 作为表达载体,
纯化 Zta-P54 融合蛋白作为诊断抗原,以期为后期
该蛋白的临床应用奠定基础。
1 材料与方法
1.1 材料
1.1.1 质 粒 和 宿 主 菌 pGEX5T-BZLF1-BMRF1 质
粒、表达菌 BL21(DE3)由河南省生物工程技术研
究中心提供,表达载体 pET32a 购自 Novagen 公司。
1.1.2 引物设计 根据 pGEX5T-BZLF1-BMRF1 测序
结果,应用 Primer 5.0 软件设计引物,引物由上海生
工生物工程技术服务有限公司合成。
上 游 :5-GGAATTCCATATGGATCCGAACTCTA
CTTCTG-3(下划线为 Nde Ⅰ酶切位点);
下游 :5-CCGCTCGAGGATCAGTGGATTAAATG
CCTGC-3(下划线为 Xho Ⅰ酶切位点)。
1.1.3 主要试剂 异丙基硫代 -β-D-半乳糖苷(IPTG)
购 自 Sigma 公 司 ;蛋 白 Marker、Taq 酶、dNTPs、
DNA Marker、T4 DNA 连接酶购自天根生化科技(北
京)有限公司 ;鼻咽癌患者的血清取自郑州大学
第一附属医院 ;限制性内切酶 Nde Ⅰ、Xho Ⅰ购自
New England Biolabs 公司 ;DNA 胶回收试剂盒购自
宝生物公司,Ecl 化学发光试剂盒购自 PIERCE 公司,
PVDF 转印膜购自 PALL 公司,其他试剂均为国产分
析纯产品。
1.2 方法
1.2.1 目的基因扩增及原核表达载体的构建 根
据所设计引物,建立 30 μL PCR 反应体系 :(5 ×
buffer,6 μL ;MgCl2,1 μL ;dNTP,0.3 μL ;上游引
物,0.2 μL ;下 游 引 物,0.2 μL ;Taq 酶,0.5 μL ;
模 板,0.5 μL ;ddH2O,21.3 μL), 反 应 条 件 :95℃
5 min ;95℃ 1 min ;60℃ 35 s ;72℃ 1.5 min ;40 个
循环,72℃ 5 min。将扩增产物与 pET32a 载体分别
经 Nde Ⅰ、Xho Ⅰ双酶切后,1.0 % 琼脂糖凝胶电
泳,切取目的基因条带,用 DNA 胶回收试剂盒分别
回收目的片段和载体片段。由 T4 DNA 连接酶 16℃
过夜连接双酶切产物,构建重组质粒 ;将重组质粒
转入宿主细胞 BL21(DE3)中,涂布于固体 LB 培
养基中(含 Amp),37℃过夜培养。挑取阳性克隆
菌落培养至 OD 值 0.6 左右,提取质粒,将提取质粒
经 Nde Ⅰ、Xho Ⅰ双酶切鉴定,酶切正确的产物送
至上海生工测序,将测序正确地质粒命名为 pET32a/
BZLF1-BMRF1。
1.2.2 重组蛋白诱导表达条件优化 挑取阳性菌落,
接种于 3.5 mL LB 液体培养基(含 Amp)中,37℃
条件下过夜培养,次日取菌液 100 μL 转接到含有氨
苄抗生素的 3.5 mL LB 培养基中。当培养至 OD600 约
为 0.5-0.6 时, 加 入 IPTG 诱 导, 以 空 载 体 pET32a
作为对照。根据实验室的经验,同时对菌体进行温度、
诱导剂浓度、诱导时间等条件的优化,对不同表
达条件的菌体进行 SDS-PAGE 鉴定,选取最优表达
条件。
1.2.3 表达菌体的纯化前期处理 取稳定表达的菌
种 1 mL 接种到 1 L 的 LB 液体培养基(含 Amp)中,
在最佳条件下诱导表达,离心收集菌体。用 pH7.8
6 mol/L 尿素重悬菌体,冰浴条件下超声破碎。离心,
取上清进行饱和硫酸铵沉淀,离心,取沉淀透析出
去硫酸铵,用 pH 7.8 6 mol/L 尿素溶解沉淀。将处理
过的菌液进行 DEAE-Sepharose CL-6B 和 Ni-NTA 亲
和层析纯化。采用紫外分光光度计测定纯化蛋白的
含量,按以下公式计算蛋白浓度 :
蛋白浓度(mg/mL)= A 280×1. 45-2 A260×0. 74。
1.2.4 融合蛋白 Zta-P54 的 DEAE-Sepharose CL-6B 纯
化 柱床体积 40 mL(3.5 × 4 cm)pH8.8 50 mmol/L
的 Tris-HCl,4 mol/L 的尿素平衡柱子,用 5 倍柱体积
的 0.1、0.5、1.0、2.0 mol/L NaCl,pH8.8 50 mmol/L
的 Tris-HCl,4 mol/L 的尿素进行线性梯度洗脱,流
速 1.5 mL/min,收集样品进行 SDS-PAGE 检测。并
通过 Photoshop 分析蛋白灰度并计算蛋白纯度。
1.2.5 融合蛋白 Zta-P54 的 Ni-NTA 亲和柱纯化 将
DEAE-Sepharose CL-6B 柱 纯 化 的 最 佳 洗 脱 蛋 白 经
AKTAPrime plus 纯 化 仪 泵 入 Ni-NTA 亲 和 柱 纯 化,
柱 床 体 积 25 mL(2.5×5 cm)pH8.8 50 mmol/L 的
Tris-HCl,4 mol/L 的尿素平衡柱子,用 5 倍柱体积
2014年第7期 175王云龙等 :EB 病毒融合蛋白 Zta-P54 在大肠杆菌中的表达、纯化及鉴定
的 20、50、100、200 mmol/L 咪唑,pH8.8 50 mmol/L
的 Tris-HCl,4 mol/L 的尿素进行线性梯度洗脱,流
速 1.5 mL/min,收集样品进行 SDS-PAGE 检测。分
析蛋白灰度并计算蛋白纯度。
1.2.6 Western blot 检测蛋白特性 相同上样量的前
期试验纯化的包涵体融合蛋白 Zta-P54 和本试验纯
化后融合蛋白 Zta-P54,经 SDS-PAGE,切胶转膜处
理, 用 10 mg/L 的 BSA 封 闭 2 h。PBST 洗 涤 4 次。
加入鼻咽癌患者阳性血清为一抗阳性对照,空质粒
为阴性对照,37℃温浴 1.5 h,PBST 洗膜 4 次。加
入 HRP 标记的鼠抗人 -IgG 作为二抗,37℃温浴 2 h,
PBST 清洗后,再用蒸馏水清洗,然后加入 Ecl 化学
发光显色液显色 5 min,暗室曝光 1 min,显影 1 min
定影 6 min,最后结果分析并拍照记录。
2 结果
2.1 重组基因的核酸电泳鉴定
将扩增产物 BZLF1-BMRF1 和重组质粒 pET32a/
BZLF1-BMRF1 酶切产物进行 1 % 琼脂糖电泳分析,
结果见图 1,图2。
由图 1 可以发现约在 1 600 bp 处的目的条带,
其大小与预期结果相符合 ;图 2 显示 NdeⅠ、XhoⅠ
双酶切前有一较亮的质粒条带,质粒双酶切后可以
看出约 1 600 bp 处目的条带,与预期结果相符。
2.2 融合蛋白Zta-P54诱导表达条件优化
对菌体进行温度、诱导剂浓度、诱导时间等表
达条件的优化,并进行 SDS-PAGE 鉴定。
重组的质粒经不同 IPTG 浓度诱导,电泳检测
诱导表达结果,通过灰度分析,显示在 IPTG 浓度为
0.2 mmol/L 时蛋白表达量最高,见图 3,图 4。
M21
bp
2000
1000
750
500
250
100
1,2 :PCR 产物 BZLF1-BMRF1 扩增 ;M :DNA Marker DL2000
图 1 BZLF1-BMRF1 PCR 扩增
M 21
bp
2000
1000
750
500
250
100
M :DNA Marker DL2000 ;1 :pET32a/BZLF1-BMRF1 质粒 ;
2 :pET32a/BZLF1-BMRF1 酶切产物经 Nde Ⅰ、Xho Ⅰ双酶双酶切
图 2 重组质粒酶切鉴定
kD
97.2
66.4
44.3
29.0
1 2 3 4 5 6 7 M
1-5:pET32a/BZLF1-BMRF1 IPTG 浓度(0.1,0.2,0.5,1.0,1.5 mmol/L)优化;
6 :pET32a/BZLF1-BMRF1 未诱导 ;7 :pET-32a 未诱导 ;M :蛋白质 Marker
图 3 IPTG 优化电泳检测
0.1
IPTG⎃ᓖ mmol/L 050001000015000㳻ⲭᶑᓖ⚠ᓖ٬ 0.2 0.5 1.0 1.5
图 4 IPTG 灰度分析图
重 组 的 质 粒 在 37℃ 条 件 下,IPTG 浓 度 为 0.2
mmol/L 时,改变诱导时间,经电泳检测并对电泳结
果进行灰度分析,结果发现诱导 6 h 时蛋白表达量
最高见,图 5,图 6。
IPTG 浓度为 0.2 mmol/L 时,通过改变诱导温度
发现 37℃条件下诱导 6 h 时蛋白表达量最高见图 7,
图 8。
综上所述,条件优化后,最终得到最佳诱导表
达条件为 37℃,0.2 mmol/L IPTG 诱导 6 h 蛋白表达
量最高,蛋白分子量约为 60 kD,与预期结果一致。
2.3 融合蛋白的可溶性分析及蛋白纯化
将重组质粒在最佳条件下诱导表达、收集菌液、
离心菌体、破菌、分上清和沉淀电泳分析蛋白可溶
性,发现该蛋白在大肠杆菌中可溶性表达(图 9)通
生物技术通报 Biotechnology Bulletin 2014年第7期176
kD
97.2
66.4
44.3
29.0
M 1 2 3 4 5
M :蛋白质 Marker ;1 :pET32a/BZLF1-BMRF1 未诱导 ;2-5 :pET32a/
BZLF1-BMRF1 不同时间诱导(2 h,4 h,6 h,8 h)优化
图 5 诱导时间优化电泳检测
2 ᰦ䰤 h 0200040006000800010000㳻ⲭᶑᓖ⚠ᓖ٬ 4 6 8
图 6 时间灰度分析
kD
97.2
66.4
44.3
29.0
M 1 2 3 4 5 6
M :蛋白质 Marker ;1 :pET32a 未诱导 ;2 :pET32a/BZLF1-BMRF1 未诱导 ;
3-6 :pET32a/BZLF1-BMRF1 不同温度诱导(25、30、37、40℃)优化
图 7 诱导温度梯度优化电泳检测
25 ⑙ᓖ ć 02000400060008000㳻ⲭᶑᓖ⚠ᓖ٬ 30 37 40
图 8 温度灰度分析
过 DEAE-Sepharose CL-6B 和 Ni-NTA 亲和层析纯化,
经 SDS-PAGE 和 Photoshop 进行灰度分析(图 10)。
由图 9 显示目的蛋白 Zta-P54 主要以可溶性的
形式存在 ;经 SDS-PAGE 和 Photoshop 软件灰度分
析发现(图 10)通过 DEAE 柱纯化后 Zta-P54 蛋白
的总灰度为 9 730,总条带灰度为 12 139,计算得出
kD
97.2
66.4
44.3
29.0
M1 2
kD
97.2
66.4
44.3
29.0
M 1 2 3
1 :pET32a/BZLF1-BMRF1 沉淀 ;2 :pET32a/BZLF1-BMRF1
上清 ;M :蛋白质 Marker
图 9 重组蛋白 Zta-P54 可溶性表达电泳
M :蛋白质 Marker ;1 :pET32a/BZLF1-BMRF1 ;2 :pET32a/
BZLF1-BMRF1 DEAE 柱纯化 ;3 :Ni-NTA 亲和柱纯化
图 10 重组蛋白 Zta-P54 的纯化
蛋白纯度 80 % ;经 Ni-NTA 亲和柱纯化后蛋白的总
灰度为 27 435,总条带灰度为 28 441,计算得出蛋
白纯度 96.5 %,采用紫外分光光度计法测定纯化后
蛋白总量为 18 mg,即 1 L 菌液可以纯化得到 18 mg
Zta-P54 融合蛋白。
2.4 Western blot结果分析
通过 Western blot 检测融合蛋白 Zta-P54 免疫原
性及反应特异性,表达产物 Zta-P54 为阳性对照,空质
粒为阴性对照,加入鼻咽癌患者阳性血清反应,结
果见图 11,图 12。由图 11,图 12 可知,融合蛋白
Zta-P54 与鼻咽癌患者阳性血清混合反应后,在 60
kD 出现特异性反应带 ;而空载质粒 pET32a 相应位
置没有条带出现,且可溶性 Zta-P54 融合蛋白较包
涵体 Zta-P54 融合蛋白有更好的反应特异性。
3 讨论
EB 病毒作为一种嗜 B 淋巴细胞的人类疱疹病
毒,它与鼻咽癌、Burkitt 淋巴瘤、单核细胞增多症
等疾病的发生密切相关。目前广东地区鼻咽癌的发
病率较高,且已经成为一种较典型的地方性恶性肿
瘤疾病,所以鼻咽癌的早期诊断尤为必要,其中用
EB 病毒抗原检测病人血清中的抗 EB 病毒的抗体用
2014年第7期 177王云龙等 :EB 病毒融合蛋白 Zta-P54 在大肠杆菌中的表达、纯化及鉴定
0
40000
30000
20000
10000
50000
W
es
te
m
b
lo
tᶑᑖ⚠ᓖ٬ व⏥փZta-P54㳻ⲭ ਟⓦᙗZta-P54㳻ⲭ
来筛查鼻咽癌这一疾病的研究备受关注[9]。目前,
随着分子生物学与免疫学技术的发展,已经有多种
EB 病毒抗原通过基因工程表达和人工合成的方式被
纯化出来,并且用作诊断抗原进行了 ELISA 法、化
学发光免疫分析法等方法的研究[10,11],这些单个诊
断抗原虽然提高了特异性,但敏感度还不够。因此,
可以应用多种 EB 病毒抗原联合检测,不但可拓宽
了抗体反应谱,还可以提高 ELISA 法的敏感度[12]。
目前,张毅等[13]报道所表达的 EB 病毒融合
抗原多以包涵体形式表达。为提高蛋白活性,本研
究选择抗原性较好的立即早期蛋白 Zta 和早期蛋白
P54 融合表达。由于前期研究发现 pGEX5T-BZLF1-
BMRF1 载体所表达的 Zta-P54 蛋白为包涵体[14],所
以更换 pET32a 作为表达载体,该载体带有的 Trx 标
签是高度可溶性多肽,增强了目的蛋白的可溶性。
同时,本研究所选序列引入有一段 24 bp 的连接肽,
它编码的氨基酸为 GGGGSGGG,其中甘氨酸没有手
性碳原子,柔性较好,在融合蛋白之间不会影响两
边蛋白各自的构象和功能 ;而丝氨酸是亲水性最强
的氨基酸,可以提高融合蛋白的亲水性。将两种氨
基酸串联起来作为连接肽可以保持两蛋白原有的生
物活性。通过优化诱导温度、时间、诱导剂浓度等
条件,实现了 Zta-P54 的可溶性表达。Western blot
检测发现可溶性蛋白较包涵体蛋白反应特异性性强,
克服了包涵体蛋白活性低的缺点。试验发现在温度
为 37℃、诱导时间 6 h、IPTG 浓度 0.2 mmol/L 的条
件下目的蛋白表达量最高。试验过程发现该蛋白较
易降解,所以纯化前用 6 mol/L 尿素处理菌体及饱和
硫酸铵沉淀目的蛋白。这一过程既除去了部分杂蛋
白又有效的减缓了融合蛋白 Zta-P54 的降解。最后,
通过 DEAE-Sepharose CL-6B 和 Ni-NTA 亲和层析纯
化,得到纯度高达 96.5% 的 Zta-P54 融合蛋白,收
率可达到 18 mg/L。Western blot 检测表明该蛋白可
与鼻咽癌患者血清中相应抗体发生特异性结合,有
良好的免疫原性及反应特异性。Zta-P54 蛋白是我们
表达的一种全新的两抗原融合蛋白,将该蛋白应用
到鼻咽癌早期诊断和筛查中将会有更好的敏感度和
特异性,可降低鼻咽癌的漏诊率,且可利用原核表
达方法快速、大量生产该蛋白。
4 结论
本试验成功纯化得到可溶性、高纯度的融合蛋
白 Zta-P54,且该蛋白有较好的免疫原性,Zta-P54
融合蛋白在 EB 病毒相关疾病的诊断上将具有良好
的临床应用前景。
参 考 文 献
[1]Feederle R, Kost M, Baumann M, et al. The Epstein-Barr virus
lytic program is controlled by the co-operative functions of two
transactivators[J]. EMBO J, 2000, 19(12):3080-3089.
[2]顾耀亮 , 张昌卿 , 吴子柏 , 等.抗重组 EB 病毒双重抗体鼻咽癌
血清学研究[J].癌症 , 2003, 22(9):903-906.
[3]Islam MS, Anoop P, Gordon-Smith EC, et al. Epstein-Barr virus
infections after allogeneic stem cell transplantation A comparison
between nonmalignant and malignant hematological disorder[J].
Hematology, 2010, 15(5):344-350.
[4]Chan KH, Gu YL, Ng F, et al. EBV specific antibody-based and
DNA-based assays in serologic diagnosis of nasopharyngeal
carcinoma[J]. Cancer, 2003, 105(5):706-709.
[5] Paramita DK, Fachiroh J, Artama WT, et al. Native early antigen
of Epstein-Barr virus a promissing antigen for diagnosis of
nasopharyngeal carcinoma[J]. J Med Virol, 2007, 79(11):
1 2 3
图 12 Western blot 灰度分析
1 :阴性对照(pET32a);2 :包涵体 Zta-P54 蛋白 ;3 :可溶性 Zta-P54 蛋白
图 11 Western blot 检测
生物技术通报 Biotechnology Bulletin 2014年第7期178
1710-1721.
[6] Dardari R, Hinderer W, Lang D, et al. Antibody responses to
recombinant Epstein-Barr virus antigens in nasopharyngeal
carcinoma patients :Complementary test of ZEBRA protein and
early antigens p54 and p138[J]. J Clin Micro, 2001, 39(9):
3164-3169.
[7] Chan KH, Gu YL, Ng F, et al. EBV specific antibody-based and
DNA-based assays in serologic diagnosis of nasopharyngeal
carcinoma[J]. Int J Cancer, 2003, 105(4):706-709.
[8] Chan JKC, Pilch BZ, Bray F, et al. Nasopharyngeal carcinoma[M]//
Barnes L, Eveson JW, Reichart P, Sidransky D. World Health Orga-
nization Classification of Tumours. Pathology&Genetics. Head and
Neck Tumours. Lyon France :IARC-Press, 2005 :85-97.
[9] Allen MD, Young LS, Dawson CW. The Epstein-virus encoded
LMP2A and LMP2B proteins promote epithelial cell spreading and
motility[J]. Virol, 2005, 79(6):1789-1802.
[10] 伊强 , 王文华 , 陈丹 , 等.以合成肽为抗原建立 ELISA 试验检
测鼻咽癌患者 EB 病毒抗体的研究[J].中华肿瘤防治杂志 ,
2008, 15(8):610-611.
[11] Hoebe EK, hutajulu SH, VanBeek J, et al. Purified hexameric
Epstein-virus encoded BARF1 protein for measuring anti-BARF1
antibody responses in nasopharyngeal carcinoma patients[J].
Clin Vaccine Immunol, 2011, 18(2):298-304.
[12] Fachiroh J, Stevens SJ, Haryana SM, et al. Combination of
Epstein-virus scaffold(BDRF1/VCA-p40)and small capsid
protein(BFRF3/VCA-p18)into a single molecule for imprived
serodiagnosis of acute and malignant EBV-driven disease[J]. J
Virol Methods, 2010, 169(1), 79-86.
[13] 张毅 , 周淑艳 , 孙业红 , 等.EB 病毒融合蛋白 ztaN-p23 在大
肠杆菌中的表达、纯化及活性鉴定[J].细胞与分子免疫学
杂志 , 2012, 28(2):120-123.
[14] 伊强 . 以原核表达的 EB 病毒融合蛋白 p54-ztaN 为抗原建立
ELISA 方法及其在鼻咽癌诊断中的应用[D]. 福建 :福建医
科大学 , 2008.
(责任编辑 李楠)