全 文 ：·综述与专论· 2014年第11期
生物技术通报
BIOTECHNOLOGY BULLETIN
近几年可持续发展技术已成为社会日益关注的
焦点，充分利用自然资源实现其经济最大化和环境
可持续发展已成为经济发展必须考虑的问题。木质
纤维素是所有陆生植物细胞壁的主要成分，也是地
球上最丰富的生物质资源，其组分主要由纤维素、
半纤维素和木质素构成，其中木质素对于植物生长
和生存起着重要作用，是细胞壁强度的支持成分，
保护植物细胞免受微生物攻击和各种氧化作用［1］。
从化学结构来看，木质素是由对羟苯基、愈创木基
和紫丁香基三者所组成的异聚物，这三种单体通过
β-O-4、β-5、β-β、5-5、4-O-5 和 β-1 共 价 键 连 接 形
收稿日期 ：2014-03-20
作者简介 ：董秀芹，女，副教授，研究方向 ：木质素降解 ；E-mail ：wlcdxq@163.com
通讯作者 ：袁红莉，女，博士，教授，研究方向 ：生物降解及生物修复 ；E-mail ：hliyuan@cau.edu.cn
木质素降解酶及相关基因研究进展
董秀芹1  袁红莉2  高同国3
（1. 北京吉利学院，北京 102202 ；2. 中国农业大学生物学院 农业生物技术国家重点实验室，北京 100193 ；
3. 河北农业大学生命科学学院，保定 071000）
摘 要 ： 生物质的高效综合利用已成为全球关注的热点问题。生物质的主要成分是木质素、纤维素和半纤维素，其利用的
关键是如何去除木质素，从而提高纤维素和半纤维素的得率。其中利用真菌的生物预处理方法因条件温和、无二次污染等优点符
合全球经济可持续发展需要，受到研究者的普遍关注。综述了近年国内外真菌分泌的主要木质素降解酶，包括木质素过氧化物酶
（LiP）、锰过氧化物酶（MnP）、漆酶（laccase）和多功能过氧化物酶（VP）的主要特点，总结了木质素降解相关酶的基因工程、
基因组学的研究成果，并对其发展前景进行了展望。
关键词 ： 木质素 生物降解 过氧化物酶 漆酶 基因组学
Progress in Studies of Ligninolytic Enzymes and Genes
Dong Xiuqin1 Yuan Hongli2 Gao Tongguo3
（1. Beijing Jili University，Beijing 102202 ；2. State Key Lab for Agrobiotechnology，College of Biological Sciences，China Agricultural
University，Beijing 100193 ；3. College of Life Sciences，Agricultural University of Hebei，Baoding 071000）
Abstract: Efficient enzymatic conversion of renewable biomass becomes the focus of intensive research currently throughout the
world. Lignocellulose is comprised mainly of cellulose, hemicelluloses and lignin. Removal of lignin from the complex lignocellulosic matrix is
considered as the key process of comprehensive lignocellulose utilization, which renders recalcitrant lignocellulosic biomass more accessible
to the hydrolytic enzyme system. Biodegradation of lignin by fungi is more environment friendly and less energy intensive, compared to other
pretreatment methods. Its mechanism is based principally on the activity of different extracellular enzymes. Here we reviewed the recent progress
in characteristics of fungal lignin-degrading enzymes, including lignin peroxidase（LiP）, manganese peroxidase（MnP）, laccase and versatile
peroxidase（VP）, and also their applications in genetic engineering and genomics research.
Key words: Lignin Biodegradation Peroxidase Laccase Genomics
成了自然界中各种各样的木质素。这些无规律的异
聚物不透水，也没有旋光性，所有这些特性使木质
素的降解非常困难［2］；同时木质素包裹在纤维素的
外层，阻碍纤维素和半纤维素的降解，因此在工业
生产中，如在纸浆的漂白、纤维素发酵生产乙醇和
饲料的发酵过程中，皆因木质素的存在而增加了工
业生产的成本。
近几十年来，对于木质素的预处理技术已经进
行了广泛的研究，主要分为非生物处理（物理方法、
化学方法、物理-化学联用方法）和生物处理方法，
科学家期望利用这些方法能够打断或破坏木质素网
2014年第11期 63董秀芹等：木质素降解酶及相关基因研究进展
络结构，使人类能够充分利用生物质中的纤维素和
半纤维素。非生物预处理方法虽然有许多优点，但
是总体而言效益低，污染重，而且形成对于后续发
酵或酶解过程有抑制作用的副产物，不符合当代社
会发展的需要。生物预处理主要利用真菌分泌的多
种木质素降解酶降解生物质中的木质素，具有无污
染、选择性好等优点。
国内外已有关于真菌漆酶性质和应用［3］、锰过
氧化物酶的性质和应用［4］、Trametes cervina 的木素
过氧化物酶性质［5］、利用现代化生产多种酶对不同
木质纤维素原料降解作用［6］以及黄孢原毛平革菌产
酶条件［7］等的文献综述。但是木质素降解是在自然
条件下多个酶共同作用的复杂过程。因此，本文系
统总结了近年发现与木质素降解有关的酶的种类和
酶学特性，以便使研究者更全面的了解木质素生物
降解过程中的多种酶的性质及该方面的研究进展。
1 微生物分泌木质素降解酶
生物预处理由于本身安全和无污染，受到越来
越多人重视。到目前为止，仅有少数微生物可以降
解木质素，其中绝大部分是白腐菌［8］，少数是细
菌［9］，但是后者仅有较弱的木质素降解能力。由于
白腐菌能高效地选择性降解木质素，因此被认为是
去除木质素最有应用前景的一大类真菌。生物预处
理木质纤维素原料的过程非常复杂，其中各种木质
素降解酶被认为在木质纤维素的降解过程中起关键
作用。已知白腐菌分泌木质素降解有关的几类主要
过氧化物酶 ：木素过氧化物酶（LiP ；EC 1.11.1.14），
锰过氧化物酶（MnP ；EC 1.11.1.13）（这两个酶首先
在黄孢原毛平革菌中发现），多功能过氧化物酶（在
杏鲍菇中首先发现）［10］，漆酶（Laccase；EC 1.10.3.2）
和多种辅助酶。由于木质素的结构复杂，因此推测
木质素降解过程是多个酶共同作用的结果。
1.1 木素过氧化物酶
木素过氧化物酶（LiP ；EC 1.11.1.14）是一个含
铁的糖蛋白，首先在黄孢原毛平革菌中发现，具有
独特的特点。例如，极高氧化还原电位和较低最适
pH 值。研究者证实自然界中主要是担子菌中木材降
解菌能够分泌多种 LiP。对黄孢原毛平革菌的研究
发现，其基因组中至少有 10 个不同基因编码 LiP 同
工酶，这些基因分别被命名为 lipA-J，但是仍有许
多问题科学家至今还没有研究清楚，如为什么这些
酶具有很高的氧化还原电位以及在不同生长条件下
产生的顺序。LiP 同工酶不是同时产生的，如 lipA、
lipD 和 lipE 编码的酶蛋白只有在碳饥饿的条件下才
表达，而 lipC 只有在限氮培养下才表达。最近几年，
多名研究者已经对木素过氧化物酶的催化机理和应
用进行大量研究，如研究了 LiP 的分子结构特点，
结合位点，翻译后修饰，基因重组、同源性分析［8］，
不同来源真菌 LiP 的异同点，LiP 在环境修复和纸浆
漂白工业中的应用［4］，LiP 的固定化工艺［11］和非水
相催化的机理［12］等。
表 1 是最近几年报道的能在液体或固体培养中
产生木素过氧化物酶的 9 种真菌，从表中能看到木
腐真菌能够分泌多种 LiP 同工酶，P. chrysosporium
分泌的同工酶多达 10 个，Trametes versicolor 甚至可
分泌 16 种同工酶。这些木素过氧化物酶具有共性，
分子量 38-50 kD，等电点大约 pI3.0-4.0。而来自放
线菌 Streptomyces viridosporus 的 Lip 分子量只有 13.5-
17.8 kD［13］，这两类菌产生木素过氧化物酶分子量相
差近 3 倍，具体原因可能是菌种不同引起的。
尽管有多名研究者指出 LiP 是木质素降解中重
要的酶［14］，但是至今还不清楚 LiP 对于自然界中木
质素的降解能力以及 LiP 对于不同底物的氧化作用
形式。目前 LiP 酶活大小是以黎芦醇作为底物进行
测定，在自然界中 LiP 降解木质素的过程是否与分
解藜芦醇具有完全相同形式尚不清楚。
1.2 锰过氧化物酶
锰 过 氧 化 物 酶（MnP ；EC 1.11.1.13） 是 P.
chrysosporium 和其他一些白腐真菌分泌到胞外的第
二大类过氧化物酶，研究发现许多担子菌在其生活
过程中都会分泌 MnP。表 2 列出 22 种真菌在代谢
过程中产生的 MnP。经研究证实，从其他白腐菌获
得的多种 MnP 的结构与 P.chrysosporium 分离到的同
工酶非常相似［4］。所有已知分泌 MnP 的真菌都能分
泌多种同工酶，等电点在 pI3-7，分子量大约 38-50
kD。Urzúa 等［21］研究发现 Ceriporiopsis subvermispora
可以分泌多达 11 种的 MnP 同工酶。但是研究者也
发现有些真菌产生的锰过氧化物酶具有某些特殊性，
生物技术通报 Biotechnology Bulletin 2014年第11期64
如 Tsukihara 等［22］研究发现 Pleurotus ostreatus MnP2
能够直接氧化一些高分子量的化合物，如 Poly R-478
和核酸酶 A。
P. chrysosporium 基因组含有 5 个 mnp 基因，分
别命名为 mnp1-5［18］，可以合成多种同工酶［10］。锰
过氧化物酶是过氧化氢依赖型的酶，在过氧化氢存
在的条件下能催化 Mn（II）形成 Mn（III），然后 Mn
（III）再氧化酚类的木质素化合物。P. chrysosporium
中锰过氧化物酶的催化循环形式在所有的木腐真
菌中都相似。研究证实 MnP 的分子结构与 LiP 结
构很相似，而且通过晶体 X-射线衍射技术发现 P.
chrysosporium 中 MnP 底物结合位点包括多个保守氨
基 酸， 如 MnP1 通 过 Glu35、Glu39 和 Asp179 结 合
一个 Mn2+［23］，而且这些氨基酸残基在几乎所有真
菌的锰过氧化物酶中都是保守的［14］。近年来，利用
固定化技术固定锰过氧化物酶可以去除纺织工业的
污水［24］。
1.3 漆酶
漆酶（benzenediol ：oxygen oxidoreductase ；EC
1.10.3.2）是一类含铜的蛋白质，能够以酚类化合物
作为氢供体还原分子氧生成水。在某些介质存在下，
非酚类化合物也能够被氧化，因此这类酶逐渐被应
用到纸浆漂白工艺上［37］。到目前为止，除了植物病
原菌和木腐真菌外，还有子囊菌属、曲霉属和弯孢
属等多种土壤有机物降解菌也能分泌漆酶，几乎所
有种类的白腐菌都能在一定程度上产生漆酶［3］。来
自不同真菌的漆酶，其性质差别较大，底物也是各
不相同［38］。类似于其他一些过氧化物酶，漆酶也是
由一个复杂的相互联系的基因簇所编码。到目前为
止，已有 17 株真菌的漆酶基因被克隆，其中部分菌
的漆酶基因已经得到表达，但是不同真菌漆酶基因
表达量差别较大。
表 3 列出了 44 株来自木材降解和土壤有机物
降解的真菌，这些真菌所分泌的漆酶同工酶的数
量、等电点和分子量等特性，从表中可以看出不同
真菌的最适 pH 都在酸性范围。不同真菌来源的漆
酶分子量差别较大。例如，来自 Agaricus bisporus 的
漆 酶 分 子 量 为 40 kD， 而 来 自 Rhizoctonia solani 的
分子量为 170 kD。根据漆酶分子量大小，Camarero
等［39］推断漆酶进行木质素降解时不能进入木材内
部，可能漆酶氧化某些化合物形成稳定的活跃小分
子，这些活跃的小分子充当氧化还原的媒介，从菌
丝表面渗透到酶分子而不能扩散到达木质纤维素内
部进行降解［38］。自然界中木腐真菌基本都分泌漆
酶，土壤有机物降解菌中只有部分子囊菌分泌漆酶。
例 如，Aspergillus nidulans，Melanocarpus albomyces，
Marasminus quercophilus 等。Kiiskinen 等［40］ 研 究
发现某些使植物致病的子囊菌中也分泌漆酶，如
Melanocarpus albomyces 和 Neurospora crassa。 表 3
显示，有几种真菌分泌多个漆酶同工酶，如白腐
菌 Flavodon（Irpex）flavus 至少分泌 13 种漆酶同工
酶，根据等电点不同分为两大类，一类是等电点在
pI4-6 的有 7 种 ；另一大类包涵至少 6 种 pI<3 的同
工酶［16］。表 3 中所列漆酶同工酶的分子量在 43-99
kD 之间，这些酶绝大多数是单体酶，但是也有部分
同工酶是二聚体，可能漆酶酶活需要两个相同亚基
结合在一起才有活性，因此，表 3 中看到两个同工
酶分子量大小相差约两倍。例如，担子菌 Pleurotus
表 1 木腐菌（W）和土壤有机物降解菌（SL）在液体（L）和 / 或固体（S）培养中产生木素过氧化物酶（LiP）
微生物名称 生态生理群 科名 * 培养方式 Lip 同工酶 分子量（kD） pI 参考文献
曲霉菌（Aspergillus sclerotiorum） 土腐菌 发菌科 L ND ND ND ［15］
烟管菌（Bjerkandera adusta） 木腐菌 革菌科 L 2 48 3.0-3.1 ［10］
芽枝状枝胞霉（Cladosporium cladosporioides） 土腐菌 丛梗孢科 L ND ND ND ［15］
黄曲霉［Flavodon（Irpex）flavus］ 木腐菌 齿耳菌科 L 4 40-42 3.4-4.3 ［16］
总状毛霉（Mucor racemosus） 土腐菌 毛霉科 L ND ND ND ［15］
Nematoloma frowardii 木腐菌 球盖菇科 S 2 ND ND ［17］
黄孢原毛平革菌（Phanerochaete chrysosporium） 木腐菌 皱孔菌科 L 10 38-46 3.2-4.7 ［18］
白腐烂皮菌（Phanerochaete sordida） 木腐菌 皱孔菌科 L 2 45-50 ND ［19］
射脉菌（Phlebia radiata） 木腐菌 伏革菌科 L，S 3 45-46 3.8-4.0 ［20］
* 白腐菌根据科类“Ainsworth & Bisby’s Dictionary of fungi”；ND ：没有确定 ；下同
2014年第11期 65董秀芹等：木质素降解酶及相关基因研究进展
pulmonarius［41］ 和 子 囊 菌 Rhizoctonia solani［42］。 漆
酶利用各种各样的酚类化合物而不是酪氨酸作为
氢供体把 O2 还原生成水
［3］。最近研究发现，漆酶
在螯合剂存在的情况下，除了能氧化酚类化合物，
还 能 氧 化 Mn2+ 形 成 Mn3+。Schlosser & Höfer［35］ 从
Stropharia rugosoannulata 获得漆酶并在草酸和苹果
酸作为螯合剂的情况下，能够氧化土壤中的有机物。
此外，真菌 T. versicolor 漆酶的作用方式与 Stropharia
rugosoannulata 类似［4］。Schlosser & Höfer 研究证实，
在 Mn2+ 和苹果酸存在的情况下，漆酶能产生 Mn3+-
苹果酸复合物，这个复合物启动随后的一系列反应
产生 H2O2，然后 H2O2 激活过氧化物酶所催化的各
种反应进行降解。
1.4 多功能过氧化物酶
多 功 能 过 氧 化 物 酶（VPs） 首 先 在 Pleurotus
eryngii［10］ 中被发现，随后在其他种类的 Pleurotus
和 Bjerkandera 中都发现该酶的存在，并且研究了多
个白腐菌中多功能过氧化酶的底物结合位点保守氨
基酸和作用［72］。国内浙江大学陈敏等［73］从食用菌
杏鲍菇中得到多功能过氧化物酶，并研究该酶性质。
多功能过氧化物酶和漆酶被认为在木质素的解聚中
起作用。多功能过氧化物酶的起源和分布至今不是
很清楚，只在少数几种 Agaricales 和 Polyporales 中发
现，经过研究发现来自 Agaricales 和 Polyporales 的
多功能过氧化物酶似乎独立进化，它们之间并没有
表现出比较近的亲缘关系［14］。多功能过氧化物酶代
表真菌所分泌的既具有部分木质素过氧化物酶特性，
又具有某些锰过氧化物酶特性的一类独特的过氧化
物酶，但是对于多功能过氧化物酶的作用机理尚不
清楚。Busse 等［74］研究发现，如果在反应体系中缺
乏木质素过氧化物酶常见的作用底物黎芦醇和锰过
氧化酶的作用底物 Mn2+ 情况下，该酶又具有一些不
同于木素过氧化物酶和锰过氧化物酶的特点，降解
过程与 H2O2 浓度有直接关系。Bernini 等
［75］利用氨
基酸的定点突变技术研究 P. eryngii 的 VPs 的分子结
构和催化特性。Morgenstern 等［14］研究结果表明多
功能过氧化物酶的分布可能比现在已知的范围更加
广泛。研究者推断多功能过氧化物可能与其他一些
表 2 木腐菌（W）和土壤有机物降解菌（SL）在液体和 / 或固体培养基中产生锰过氧化物酶（MnP）
微生物名称 生态生理群 科名 * 培养方式 MnP 同工酶 分子量（kD） pI 参考文献
双胞蘑菇（Agaricus bisporus） 土腐菌 伞菌科 S 2 40 3.2-3.3 ［25］
田头菇（Agrocybe praecox） 土腐菌 粪锈伞科 L 2 41-42 6.3-7.0 ［26］
曲霉菌（Aspergillus sclerotiorum） 土腐菌 发菌科 L ND ND ND ［15］
烟管菌（Bjerkandera adusta） 木腐菌 革菌科 L 2 44 3.35-3.45 ［10］
虫拟蜡菌（Ceriporiopsis subvermispora） 木腐菌 革菌科 L，S 11 52.5-62.5 3.2-4.6 ［21］
芽枝状枝胞霉（Cladosporium cladosporioides） 土腐菌 丛梗孢科 L ND ND ND ［15］
Clitocybula dusenii 木腐菌 口蘑科 L 2 42-43 3.8-4.5 ［27］
黄囊耙齿菌（Flavodon（Irpex）flavus） 木腐菌 齿耳菌科 L 4 43-99 3.1-4.0 ［16］
白囊耙齿菌 Irpex lacteus 木腐菌 齿耳菌科 L 3 37，41-44 3.5-6.1 ［28］
香菇菌（Lentinula（Lentinus）edodes） 木腐菌 口蘑科 L，S 2 37-49 3.2-5.6 ［29］
Nematoloma frowardii 木腐菌 球盖菇科 L，S 2 42-53 2.8-3.4 ［17］
总状毛霉（Mucor racemosus） 土腐菌 毛霉科 L ND ND ND ［15］
虎皮香菇菌（Panus tigrinus） 土腐菌 多孔菌科 L 2 50.5 4.07 ［30］
Phanerochaete flavido-alba 木腐菌 皱孔菌科 L 2 45-55.6 2.8-5.6 ［31］
射脉菌（Phlebia radiata） 木腐菌 伏革菌科 L，S 3 44-50 3.6-5.1 ［20］
Physisporinus rivulosus 木腐菌 革菌科 S 3 47-52 3.4-3.9 ［32］
杏鲍菇（Pleurotus enryngii） 木腐菌 柔韧菇科 L，S 2 43 3.7-3.8 ［33］
糙皮侧耳（Pleurotus ostreatus） 木腐菌 柔韧菇科 L，S 3 42-45 3.5-4.3 ［34］
裂褶菌（Schizophyllum）sp. F17 木腐菌 裂褶菌科 S 1 48.7 3.6 ［11］
冠状球盖菇（Stropharia coronilla） 土腐菌 球盖菇科 L 3 41-43 3.5-7.1 ［26］
皱环球盖菇（Stropharia rugosoannulata） 土腐菌 球盖菇科 L，S 2 40-41 ND ［35］
红色毛癣菌（Trichophyton rubrum） 木腐菌 裸囊菌科 L ND 42 8.2 ［36］
生物技术通报 Biotechnology Bulletin 2014年第11期66
表 3 木腐菌（W）和土壤有机物降解菌（SL）在液体和 / 或固体培养基中产生漆酶（Laccase）
微生物名称 生态生理群 科名 * 培养方式 Laccase 同工酶 分子量（kD） pI 参考文献
田头菇（Agrocybe praecox） 土腐菌 粪锈伞科 L ND 66 4.0 ［26］
Cerrena maxima 木腐菌 黑伞科 L，S 3 57 3.5 ［43］
虫拟蜡菌（Ceriporiopsis subvermispora） 木腐菌 革菌科 L，S 5 63-79 3.4-4.9 ［44］
齿毛菌（Cerrena unicolor）VKMF-3196 木腐菌 L 2 67-75 3.8-4.1 ［45］
灰盖鬼伞（Coprinus cinereus） 木腐菌 黑伞科 L 2 63 3.7-4.0 ［46］
绒毛革盖菌（Coriolopsis rigida） 木腐菌 革菌科 L 2 55-69 3.9 ［47］
毛云芝菌（Coriolus hirsutus） 木腐菌 革菌科 L，S 2 55-78 4.0-4.2 ［38］
采绒革盖菌（Coriolus versicolor） 木腐菌 多孔菌科 L 4 50 4.2-6.7 ［48］
芽枝状枝胞霉（Cladosporium cladosporioides） 土腐菌 丛梗孢科 L ND ND ND ［15］
大杯伞（Clitocybe maxima） 木腐菌 口蘑科 ND 1 62 ND ［49］
栎米孔菌（Daedalea quercina） 木腐菌 地舌菌科 L 1 69-71.3 3.0-3.1 ［38］
污叉丝孔菌（Dichomitus squalens） 木腐菌 多孔菌科 L 2 66 3.5-3.6 ［50］
黄囊耙齿菌（Flavodon（Irpex）flavus） 木腐菌 齿耳菌科 L 13 43-99 2.0-6.0 ［16］
茄病镰刀菌（Fusarium solani）MAS2 木腐菌 S 1 72 ND ［51］
灵芝（Ganoderma lucidum） 木腐菌 地舌菌科 L 2 44-66 3.0-5.1 ［52］
香菇菌（Lentinula edodes） 木腐菌 口蘑科 L，S 3 58.5 ND ［53］
稻瘟病菌（Magnaporthe grisea） 木腐菌 囊菌门巨座壳科 1 71 ND ［54］
小皮伞属（Marasmius sp.） 木腐菌 L 1 53 3.8 ［55］
Melanocarpus albomyces 土腐菌 L 1 80 4.0 ［40］
Marasmius quercophilus 土腐菌 口蘑科 L 3 62-63 3.1-3.6 ［56］
无孢菌类（Mycelia Sterilia）YY-5 木腐菌 L 1 45 4.7 ［57］
虎皮香菇菌（Panus tigrinus） 木腐菌 多孔菌科 L，S 2 63-64 2.9-3.0 ［38］
黄孢原毛平革菌（Phanerochaete chrysosporium） 木腐菌 皱孔菌科 L，S ND 64-68.5 3.15 ［58］
射脉菌（Phlebia radiata） 木腐菌 伏革菌科 L，S 2 64 3.4-3.5 ［20］
Physisporinus rivulosus 木腐菌 革菌科 S 4 66-68 3.1-3.3 ［32］
佛罗里达侧耳（Pleurotus florida） 木腐菌 S 2 ND ND ［59］
肺形侧耳（Pleurotuspulmonarius） 木腐菌 柔韧菇科 L ND 46 ND ［38］
糙皮侧耳（Pleurotus ostreatus） 木腐菌 柔韧菇科 L 4 40-65，80-82 3-4.7 ［60］
漏斗状侧耳（Pleurotus sajor-caju） 木腐菌 柔韧菇科 L ND 55 3.6 ［38］
Pseudomonas desmolyticum 木腐菌 微杆菌科 L 1 43 ND ［61］
朱红栓菌（Pycnoporus cinnibarinus） 木腐菌 多孔菌科 L 1 61.5 3.7 ［62］
血红密孔菌（Pycnoporus sanguineus） 土腐菌 多孔菌科 L 4 58-68 4.5-7.1 ［63］
冬青栎菌（Quercus ilex） 土腐菌 壳斗科 S 6 ND 4.8-5.5 ［64］
纹枯病菌（Rhizoctonia solani） 土腐菌 无孢子菌科 ND 1 170 ND ［38］
捺木硬孔菌（Rigidoporus lignosus） 木腐菌 革菌科 L 2 55-65 3.2-3.3 ［65］
冠状球盖菇（Stropharia coronilla） 土腐菌 球盖菇科 L ND 66-67 4.0-4.4 ［26］
皱环球盖菇（Stropharia rugosoannulata） 土腐菌 球盖菇科 L 1 66 ND ［35］
粗毛拴菌（Trametes gallica） 木腐菌 多孔菌科 L 2 60 3.0-3.1 ［38］
杨柳粗毛菌（Trametes hirsuta） 木腐菌 多孔菌科 L ND 68-72 4.1-4.3 ［66］
绒毛栓菌（Trametes pubescens） 木腐菌 多孔菌科 L 8 65 2.6-6.0 ［67］
红色毛癣菌（Trichophyton rubrum） 木腐菌 裸囊菌科 L 1 65 4.0 ［68］
深绿木霉（Trichoderma atroviride） 土腐菌 丛梗孢科 L 1 80 3.5 ［69］
哈茨木霉（Trichoderma harzianum） 木腐菌 丛梗孢科 W 1 79 ND ［70］
多形炭角菌（Xylaria polymorpha） 木腐菌 炭角菌科 1 67 3.1 ［71］
2014年第11期 67董秀芹等：木质素降解酶及相关基因研究进展
含亚铁血红素的过氧化物酶具有相似的催化机理。
到目前为止，已发现的多功能过氧化物比较少，也
没有进行系统的研究，因此对于其相关基因和基因
组鲜有报道。
上述的几种酶是木质素降解过程中比较重要的
酶，至于对不同菌种、特别是来源于不同自然环境
的真菌降解过程究竟哪类酶起主要作用，还没有定
论［6］。科学家还需要探索在复杂的自然环境中不同
酶催化木质素降解的先后顺序，只有这样才可能在
工业生产中充分利用木质纤维素原料。
2 木质素降解酶的基因表达和基因组学
2.1 木质素降解酶的基因表达
生物质预处理的主要目的是破坏木质素的包裹
作用，使纤维素和半纤维素暴露出来，利于后面的
酶水解能形成发酵糖类［76］，然而当前生物预处理
效率比较低，不能满足现代化工业生产的需要，同
时上述的 4 种过氧化物酶即使在菌丝存在情况下也
很快失活。许多研究者希望利用基因工程技术提高
过氧化物酶的产量，因此对白腐菌的多个过氧化物
酶基因进行克隆、同源［77］和异源宿主的过量表达。
在蛋白质表达体系中，异源宿主表达高效更能满足
工业化生产的需要。P. chrysosporium 的木素过氧化
物酶基因在杆状病毒中得到有活性的表达［78］，随
后在大肠杆菌［79］、米曲霉［80］、黑曲霉［81］、构巢
曲霉［82］和毕赤酵母［83］中都得到表达。另外来自
Bjerkandera adusta 多功能过氧化物酶也在大肠杆菌
中以可溶形式得到过量表达［84］。虽然多株真菌中木
质素降解酶基因在细菌和真菌等多个表达体系中得
到表达，但是木质素降解酶基因的表达量和酶活都
不高，其中对于基因启动子序列、基因转录水平的
调控因子等理解不够深入［85］，因此今后研究中还需
要寻找新的高效表达体系。
2.2 木质素降解酶的基因组学
近年基因组学发展迅速，出现了宏基因组学、比
较基因组学、功能基因组学、结构基因组学和蛋白
质相互作用组学等。木质素在自然界的降解是一个
非常复杂的过程，至今人类还没有完全清楚。通过
基因组学研究，人类期待可以更好理解木质素降解
过程。对于真菌基因组学研究已经取得了一些进步，
如 P. chrysosporium 基因组信息和基因模式于 2002 年
公布［18］，随后又公布了转基因组学信息［86］，所有
的研究成果随时公布在 www.jgi.doe.gov/whiterot 上。
Kotik 等［87］利用基因组步移技术，结合兼并引物设
计法和宏基因组学等技术，已经从环境样品中获得
几个公认的木聚糖酶基因 ；Xu 等［88］利用宏基因组
库的方法已经从深海沉积物环境 DNA 样品中获得两
个独特的碱性羟化酶基因，在恶臭假单胞菌和荧光
假单胞菌中成功表达。利用比较基因组学，Fernán-
dez-Fueyo 等［89］研究 P. chrysosporium 和 C. subvermi-
spora 基因组差异，希望寻找到这两株真菌降解能力
差异的根本原因。借助基因组学的研究成果可以从
自然界中寻找新的微生物或在已知微生物中寻找新
的木质素降解基因而避免使用传统的活力筛选方法，
为将来木质纤维素降解基因的研究提供一个新的思
路，也可以利用宏基因组学建立某个环境下的木质
素降解的微生物群落种类。预期在不久的将来可以
利用上述研究手段发现木质素降解过程中的关键基
因或关键酶，或借助基因组学进一步寻找新的启动
子、调控元件来获得更多有活性的重组蛋白［85］。
3 展望
降低木质纤维素预处理的成本，提高木质素
降解酶的产量是解决这个问题的关键。一方面可以
把木质素降解酶进行联合固定化降解木质素降低生
物预处理费用［90］，或者利用多种微生物混合培养，
提高生物处理的速度。例如，Trametes versicolor 和
Candida sp. HSD07A 在液体培养基中混合培养可以
显著提高前者的漆酶酶活［91］；另一方面在已有的基
因工程和基因组学研究成果的基础上，结合转录组
学［92］和蛋白质分泌组学［93］的研究成果，研究者才
能更好的理解木质素降解真菌的遗传学和生理学的
调控机理。也可以考虑把木质素降解酶的基因转入
生物燃料植物，在植物收获后直接进行原位降解，
减少运输和酶的生产许多环节，或者利用木质素合
成基因在生物燃料类植物中合成有规律的、较容易
被单一木质素降解酶分解的人工定向木质素新植株。
参 考 文 献
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（责任编辑 狄艳红）