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Preparation and Analysis of Lyophilization Characterization of Human D-dimer

人D-二聚体的制备及其冻干性质的分析



全 文 :·研究报告·
生物技术通报
BIOTECHNOLOGY BULLETIN 2014年第11期
D-二聚体(D-dimer)是交联纤维蛋白发生纤溶
的特异性标志物,由纤维蛋白原逐步水解而成[1]。
纤维蛋白原是一种具有凝血功能的血浆球蛋白,主
要作为凝血因子 I 参与体内凝血过程[2]。经凝血酶、
Factor XIIIa 作用,纤维蛋白原被水解成交联纤维蛋
白;纤溶酶可使纤维蛋白(原)D-E 区互补结构裂解,
降解纤维蛋白原和纤维蛋白单体生成纤维蛋白原降
解产物,以及降解交联纤维蛋白生成纤维蛋白降解
产物,纤维蛋白降解产物中含有大量的 D-dimer[3, 4]。
D-dimer 分子量约为 180 kD[5],在健康人体内含量
收稿日期 :2014-05-12
基金项目 :国家高技术研究发展计划(“863”计划)(2011AA02A103),广东省战略新兴产业核心技术攻关项目(2012A080800007)
作者简介 :武建伟,男,硕士,研究方向 :免疫诊断 ;E-mail :Jarviswu@hotmail.com
通讯作者 :唐时幸,男,博士,研究方向 :免疫诊断 ;E-mail :tang.shixing@wondfo.com.cn
人 D-二聚体的制备及其冻干性质的分析
武建伟  才蕾  王继华  唐时幸
(广州万孚生物技术股份有限公司 自检型快速诊断国家地方联合工程实验室,广州 510663)
摘 要 : 以人源纤维蛋白原为原材料制备 D-二聚体,将其制成冻干品并分析其冻干性质。使用凝血酶、Factor XIIIa 酶解纤
维蛋白原,获得交联纤维蛋白。经纤溶酶降解交联纤维蛋白,生成纤维蛋白降解产物。超滤除去纤维蛋白降解产物中的小分子物质,
可获得较高纯度的 D-二聚体。通过筛选和优化冻干方案,将 D-二聚体制备成冻干品。经检测可知,D-二聚体冻干品可在 37℃稳定
保存 12 d ;复溶后在 25℃稳定保存 8 d ;复溶后在 4℃稳定保存 30 d ;复溶时,常用复溶溶剂对其复溶后的活性检测无明显影响。
关键词 : 纤维蛋白 纤维蛋白原 D-二聚体 血栓 冻干品
Preparation and Analysis of Lyophilization Characterization of
Human D-dimer
Wu Jianwei Cai Lei Wang Jihua Tang Shixing
(National Engineering Laboratory of Rapid Diagnostic Test, Guangzhou Wondfo Biotech Co.,Ltd.,Guangzhou 510663)
Abstract: D-dimer is formed by sequential action of 3 enzymes from fibrinogen. After producing D-dimer, we did the research on its
lyophilization process. To produce cross-linked fibrin, fibrinogen was digested by thrombin and Factor XIIa. Then, fibrin degradation products
(FDP)was prepared from cross-linked fibrin being degraded by plasmin. D-dimer was purified from FDP through ultrafiltration and prepared
into lyophilized powder. By optimizing the lyophilization program, lyophilized D-dimer was stable for at least 12 days at 37℃, stable for at
least 8 days at 25℃ and 30 days at 4℃ after reconstitution, and not different when being dissolved by different solvent.The preparation system
established in this research is feasible and efficient. Depend on its stability, lyophilized D-dimer could be provided as biological raw materials for
further research.
Key words: Fibrin Fibrinogen D-dimer Thrombus Lyophilized power
极 少, 一 般 认 定 0.5 mg/L(FEU) 为 cut-off 值[6]。
另有研究表明,D-dimer 的 cut-off 值与年龄呈正相关,
年龄愈大,cut-off 值愈高[7]。
机体内凝血和继发性纤溶系统的激活,均可使
D-dimer 水平升高[8]。临床诊断中,D-dimer 检测常
用 于 :静 脉 血 栓 栓 塞(Venous thrombus embolism,
VTE)、 深 静 脉 血 栓(Deep vein thrombosis,DVT)
和 肺 血 栓(Pulmonary embolism,PE) 的 排 除, 以
及 弥 漫 性 血 管 内 凝 血(Disseminated intravascular
coagulation,DIC)的诊断、溶栓治疗的监测[9-12];
生物技术通报 Biotechnology Bulletin 2014年第11期220
急 性 心 肌 梗 塞(Acute myocardial infarction,AMI)、
冠状动脉缺血(Coronary ischemia)、脑梗塞(Cerebral
infarction)[12-14]的诊断和预后判断 ;恶性肿瘤,如
肺癌(Lung cancer)、卵巢癌、结肠直肠癌(Colorectal
cancer)、乳腺癌(Breast cancer)[15-18],以及肝脏疾
病[19]、糖尿病[20]、妊娠高血压综合征高凝状态[21]
等的诊断和预后判断。
真空冷冻干燥(Vacuum Freeze-drying),简称“冻
干”,是在适宜的真空度下将物质中的水分析出的技
术,已广泛应用于生物制品、医药、食品、花卉产业、
标本制作和古书籍保护等领域[22]。生物制品通过真
空冷冻干燥制成冻干品后,具有稳定、易复溶等优
势,便于保存和运输。商品化的人源 D-dimer 蛋白
多以液体形式保存于血清中,对保存和运输条件要
求苛刻。以健康新生牛血清作为冻干基质对 D-dimer
蛋白进行冻干,制备的 D-dimer 冻干品具有良好的
稳定性和实用性。
近年来,D-dimer 研究多集中于生理意义的剖析
和医学价值的探讨,本研究着重介绍人源 D-dimer 的
制备及其冻干性质的分析。通过逐步酶解和真空冷
冻干燥获得稳定高效的 D-dimer 冻干品,旨在为人
源蛋白的制备和保存提供参考。
1 材料与方法
1.1 材料
人源纤维蛋白原、人源凝血酶、人源纤溶酶、
抑 肽 酶、Tris-base 购 自 Sigma 公 司 ;人 源 Factor
XIIIa 购 自 AssayPro 公 司 ;0.22 μm 滤 器、Amicon
Ultra-15(MWCO :100KDa) 购 自 Millipore 公 司 ;
健 康 新 生 牛 血 清、PageRuler Unstained High Range
Protein Ladder 购 自 Thermo Scientific 公 司 ;D-二 聚
体(D-dimer)定量检测试剂盒(免疫层析法)为广
州万孚生物技术股份有限公司(Wondfo)自主研发;
其它试剂均为国产分析纯。
蛋 白 电 泳 仪、Bio-Rad Gel Doc XR+ 凝 胶 成 像
系统购自 Bio-Rad 公司 ;医用冷藏箱购自中科美菱
公 司 ;AutoRep E 连 续 分 配 器 购 自 RAININ 公 司 ;
CHRIST ALPHA 1-2/ LD PLUS 冻 干 机 购 自 Martin
Christ 公司 ;-86℃立式医用低温保存箱购自 SANYO
公司。
1.2 方法
1.2.1 D-dimer 的制备
1.2.1.1 纤维蛋白原的酶解 称取适量纤维蛋白原
至 离 心 管 中, 溶 入 TBS(20 mmol/L Tris-HCl,0.15
mol/L NaCl,2 mmol/L KCl,pH7.4) 至 终 浓 度 为
5 mg/mL, 加 入 凝 血 酶( 终 浓 度 1 U/mL)、Factor
XIIIa(终浓度 5 μg/mL),37℃水浴 4-6 h,即得到
白色胶状交联纤维蛋白。
1.2.1.2 交联纤维蛋白的洗涤 取出交联纤维蛋白
至 50 mL 离心管中,使用 TBS 颠倒洗涤数次,放于
37℃恒温摇床中振荡洗涤约 2-3 h。
1.2.1.3 交联纤维蛋白的酶解 取出洗涤完毕的交
联纤维蛋白至干净的离心管,加入 TBS(交联纤维
蛋 白 湿 重 终 浓 度 200 mg/mL)、 纤 溶 酶( 终 浓 度 5
mU/mL),37℃水浴至溶液中不再有絮状交联纤维蛋
白。向反应体系中加入抑肽酶(终浓度 1 μg/mL),
充分混匀。
1.2.1.4 D-dimer 的 超 滤 使 用 0.22 μm 无 菌 滤 器
将 新 制 的 D-dimer 溶 液 过 滤 至 超 滤 管(MWCO :
100KDa)中,超滤浓缩(2 000×g,20 min,4℃)。
向 浓 缩 液 中 加 入 适 量 TBS, 再 次 进 行 超 滤 浓 缩
(2 000×g,20 min,4℃),分装制得的 D-dimer 浓缩
液,保存于 -80℃冰箱中。
1.2.2 D-dimer 冻干性质的分析
1.2.2.1 D-dimer 的活性检测与冻干方案的筛选 使
用 D-二聚体(D-dimer)定量检测试剂盒(免疫层析
法,线性范围 :0.1-10 mg/L)检测制备的 D-dimer
活性。为提高 D-dimer 稳定性,将其制成 D-dimer 冻
干品。以 3 mL 棕色玻璃瓶为容器,每瓶加入 500 μL D-
dimer 冻干工作液。通过调节真空冷冻干燥时的真
空度及冻干时间、冻干稀释液组份及 pH,对冻干方
案进行筛选及优化。根据 D-dimer 冻干品的精密度
和系列稳定性,选定最佳冻干方案。
1.2.2.2 D-dimer 冻 干 品 的 稳 定 性 分 析 为 验 证
D-dimer 冻 干 品 的 稳 定 性, 使 用 Wondfo D-二 聚 体
(D-dimer)定量检测试剂盒监测 D-dimer 冻干品在
37℃稳定性、复溶后 4℃/25℃稳定性、不同溶剂复
溶冻干品对其活性检测的影响等。
2014年第11期 221武建伟等:人 D-二聚体的制备及其冻干性质的分析
2 结果
2.1 D-dimer的制备和超滤
将纤维蛋白原酶解体系置于 37℃水浴中,白色
交联纤维蛋白迅速生成,反应体系完全呈胶状。酶
解体系中的交联纤维蛋白在 37℃水浴中逐渐萎缩,
直至完全消失。新制的 D-dimer 溶液活性远超出 D-
二聚体(D-dimer)定量检测试剂盒的检测范围,需
适度稀释后用于定量检测。经 SDS-PAGE 凝胶电泳
和 Bio-Rad Gel Doc XR+ 凝胶成像系统分析,交联纤
维蛋白的降解产物中,D-dimer 纯度约为 60% ;超
滤后,小分子蛋白被大量除去,D-dimer 纯度升高至
90%(图 1)。使用 A280nm 紫外吸收法检测 D-dimer 溶
液浓度,发现 D-dimer 蛋白总量约为纤维蛋白原的
一半,即制备得率约为 50%。
Drying)/0.012 mbar(Final Drying),冻干时间由冻
干样品的总装液量而定。冻干后,从每个浓度的冻
干品中随机取出 10 支进行检测。稀释后的 D-dimer
冻干品活性值均位于检测试剂的检测范围内,3 个
浓度冻干品的批内精密度(C.V)均小于 15%(表 1)。
表 1 Wondfo 试剂检测 D-dimer 冻干品均值与精密度
浓度 H 浓度 M 浓度 L
x-(mg/L) 5.11 1.81 0.41
s(mg/L) 0.38 0.10 0.05
C.V 7.44% 5.52% 10.02%

2.3 D-dimer冻干性质的分析
随机选取 D-dimer 冻干品用于各项检测,参考
区间由检测精密度时的均值而定,即 :x
-
±25%。检
测发现,D-dimer 冻干品可在 37℃稳定保存 12 d(表
2),复溶后在 4℃稳定保存 30 d(表 3),复溶后在
25℃稳定保存 8 d(表 4)。
表 2 D-dimer 冻干品 37℃稳定性
浓度(mg/L)
保存时间
参考区间
1 d 6 d 8 d 10 d 12 d 14 d
H 4.6 4.7 4.9 4.8 4.5 4.3 6.5-3.9
M 1.7 1.6 2.1 2.2 1.7 1.4 2.3-1.4
L 0.4 0.4 0.5 0.4 0.3 0.2 0.5-0.3
检测不同溶剂复溶冻干品对其活性检测的影响
时,选用去离子水、三蒸水、生理盐水、瓶装矿泉水
(农夫山泉)和自来水复溶冻干品。经检测,选用的
5 种溶剂复溶冻干品时对其活性检测均无明显影响
(表 5)。
3 讨论
继 Ruckley 等[23]于 1970 年发现血清 FDP 对肺
栓塞具有重要的诊断价值之后,Gaffney 在 FDP 中
分离得到将近 200 kD 大小的“γ-γ dimers”,将其命
名为 D-dimer,并预言“D-dimer 检测可能会成为有
用的诊断依据”[24-26]。经过多年的研究和临床验
证,研究人员发现 D-dimer 分子量约为 180 kD,等
电点(pI)为 4.9-5.3,在健康人体内的半衰期约为
8 h[27],是交联纤维蛋白降解的特异性产物,对多
项疾病的诊断具有重要的检测意义。由于 D-dimer
不 存 在 疾 病 特 异 性, 在 临 床 诊 断 中,D-dimer 以
M :High Range Protein Ladder ;1 :交联纤维蛋白降解产物 ;
2 :超滤后制得的 D-dimer 蛋白溶液
图 1 D-dimer 的 SDS-PAGE 凝胶电泳纯度分析
250
kD kD
M 1 2
200 190
150
120
100
85
70
60
2.2 D-dimer的活性检测与冻干方案的筛选
经 过 多 次 摸 索 和 验 证, 按 照 一 定 的 比 例 将
D-dimer 蛋白溶液稀释成位于 D-二聚体(D-dimer)
定量检测试剂盒检测范围内的 3 个不同的浓度(高
浓度 H、中浓度 M、低浓度 L)。鉴于临床检测的
D-dimer 样品多以全血或血浆为基质,本研究拟以健
康新生牛血清作为 D-dimer 蛋白的冻干保护剂。冻
干 前, 使 用 冻 干 稀 释 液(50 mmol/L Tris-HCl,0.1
mol/L NaCl,0.5 mmol/L EDTA,pH8.0)调节新生牛
血清比例(冻干稀释液组份及 pH 经多次正交试验
筛选和优化而得,详细步骤略)。根据冻干品的系
列稳定性检测结果,将冻干保护剂定为 12% 新生
牛血清,真空冷冻干燥真空度 :0.025 mbar(Main
生物技术通报 Biotechnology Bulletin 2014年第11期222
其高度的敏感性和阴性预示能力时常用于筛查项
目 和 辅 助 诊 断。 据 世 界 卫 生 组 织(World Health
Organization,WHO)发布的《Global status report on
noncommunicable diseases(2010)》报告称,心脑血
管疾病已成为全球头号死因,每年死于心脑血管疾
病的人数约占全球死亡人数的 30%[28]。鉴于 D-dimer
可作为血栓形成性疾病诊断和溶栓药物疗效监测的
特异性标志物,D-dimer 检测对血栓导致的心脑血管
疾病的及早诊断和治疗,便显得尤为重要。
目前,国内多采用进口 D-dimer 抗原进行相关
研究或制备单克隆抗体。进口抗原纯度虽高,但价
格昂贵,且多以液体形式保存,严重制约了 D-dimer
的研究及其运输和保存。本研究采用逐步酶解法和
超滤即获得高纯度高活性的 D-dimer 蛋白,并通过
真空冷冻干燥将其制成稳定的 D-dimer 冻干品。选
用健康新生牛血清为冻干基质,冻干品复溶后几乎
可作为天然 D-dimer 抗原使用。制备的 D-dimer 蛋
白浓度约为 5.6 mg/mL,使用 Wondfo D-二聚体(D-
dimer)定量检测试剂盒检测 1 000 倍稀释后的蛋白
溶液冻干前的活性约为 5.0 mg/L,冻干后的活性约
为 4.5-5.0 mg/L,检测时的活性收率和冻干时的活性
收率均超过 90%。
笔 者 曾 在 D-dimer 超 滤 浓 缩 前, 使 用 HiPrep
16/60 Sephacryl S-300 HR(GE) 对 其 进 行 多 次 纯
化, 纯 化 效 率 均 不 理 想。D-dimer 经 HiPrep 16/60
Sephacryl S-300 HR 纯化后,蛋白纯度未能明显提
高,蛋白浓度却因被稀释而明显降低。鉴于超滤后
的 D-dimer 纯度约为 90%,可满足 D-dimer 常规研究
使用,如用作室内质控品/物、阳性对照、免疫或初
筛单克隆抗体。
Shackell[29]于 1909 年使用真空干燥技术将补体、
抗毒素、狂犬病毒及其它生物制品进行冻干,制成
可以稳定保存的冻干品。随着冻干原理的深入研究
和冻干设备的改良,真空冷冻干燥技术现已发展成
为集多门学科于一体的综合技术工艺。在冻干过程
中,预冻过的物料置于真空条件下进行升华干燥,
除去冰晶(约占全部水分的 90%),升华干燥完成后
进入解析干燥,除去未冻结水,至物料中水分含量
<3%[30]。制成的 D-dimer 冻干品呈多孔饼状,对温
度、浓度或蛋白酶都具备较高的耐受程度,且易复
溶和恢复活性。为使制备的 D-dimer 冻干品更接近
于 D-dimer 天然抗原,以符合临床检测标准,本研
究使用新生牛血清作为冻干基质对 D-dimer 进行冻
干。D-dimer 冻干品在 37℃稳定保存 12 d ;复溶后
表 3 D-dimer 冻干品复溶后 4℃稳定性
浓度(mg/L)
保存时间
参考区间
0 h 24 h 5 d 10 d 15 d 20 d 25 d 30 d 35 d
H 4.5 4.4 4.8 5.2 4.7 5.3 4.6 4.4 4.4 6.5-3.9
M 1.8 1.6 1.6 1.7 1.7 1.9 1.6 1.7 1.3 2.3-1.4
L 0.3 0.4 0.4 0.4 0.3 0.5 0.3 0.5 0.3 0.5-0.3
表 4 D-dimer 冻干品复溶后 25℃稳定性
浓度(mg/L)
保存时间
参考区间
0 h 4 h 8 h 24 h 2 d 4 d 6 d 8 d 10 d
H 5.0 4.8 4.8 4.9 4.8 4.6 4.4 4.7 4.6 6.5-3.9
M 1.9 1.8 1.7 1.6 1.6 1.6 1.5 1.5 1.4 2.3-1.4
L 0.5 0.5 0.5 0.4 0.4 0.3 0.4 0.3 0.2 0.5-0.3
表 5 不同溶剂复溶 D-dimer 冻干品对其活性检测的影响
浓度(mg/L) 去离子水 三蒸水 生理盐水 瓶装矿泉水(农夫山泉) 自来水 参考区间
H 4.9 4.7 4.8 4.7 4.7 6.5-3.9
M 1.7 1.6 1.8 1.5 1.8 2.3-1.4
L 0.3 0.3 0.4 0.4 0.4 0.5-0.3
2014年第11期 223武建伟等:人 D-二聚体的制备及其冻干性质的分析
在 4℃稳定保存 30 d ;复溶后在 25℃稳定保存 8 d ;
使用常规溶剂复溶对活性检测无明显影响。
4 结论
本研究阐述了一项简捷高效的人源 D-dimer 制
备方案,以人源纤维蛋白原为原材料,先后经过凝
血酶、Factor XIIIa、纤溶酶等酶解和超滤即制得高
纯度的人源 D-dimer 蛋白,适于临床研究的 D-dimer
冻干品具备较好的稳定性。
参 考 文 献
[1]Soheir SA, Nigel SK, Charles SG. D-dimer antigen :current concepts
and future prospects[J]. Blood, 2009, 113(13):2878-2887.
[2]Michael WM, Kevin RS, David AM. The structure and biological
features of fibrinogen and fibrin[J]. Annals of the New York
Academy of Sciences, 2001, 936(1):11-30.
[3]Dempfle CE, Mosesson MW. Theme issue :fibrinogen and fibrin-
-structure, function, interactions and clinical applications[J].
Thrombosis and Haemostasis, 2003, 89(4):599-600.
[4]Reganon E, Aznar J, Vila V. Degradation of human fibrinogen by
plasmin:A kinetic study[J]. Thrombosis Research, 1977, 10(3):
411-419.
[5]Francis CW, Marder VJ, Martin SE. Plasmic degradation of
crosslinked fibrin. I. Structural analysis of the particulate clot and
identification of new macromolecular-soluble complexes[J].
Blood, 1980, 56(3):456-464.
[6]Tsuneaki S, Motoaki S, Satoshi O. Evidence that D-dimer levels
predict subsequent thromboembolic and cardiovascular events
in patients with atrial fibrillation during ora anticoagulant
therapy[J]. J Am Coll Cardiol, 2010, 55(20):2225-2231.
[7]Renee AD, Melanie T, Roger EG, et al. Using an age-dependent
D-dimer cut-off value increases the number of older patients in whom
deep vein thrombosis can be safely excluded[J]. Haematol, 2012,
97(10):1507-1513.
[8]Bastos RD, Bogutchi T, Rezende SM, et al. Duration of symptoms and
D-dimer testing in the ruling-out of venous thromboembolism[J].
J Thrombosis and Haemostasis, 2006, 4(9):2079-2080.
[9]Wells PS. Integrated strategies for the diagnosis of venous
thromboembolism[J]. J Thrombosis and Haemostasis, 2007, 5(1):
41-50.
[10]Wells PS, Anderson DR, Rodger M, et al. Evaluation of D-dimer in
the diagnosis of suspected deep-vein thrombosis[J]. N Engl J
Med, 2003, 349(13):1227-1235.
[11]Carr JM, McKinney M, McDonagh J. Diagnosis of disseminated
intravascular coagulation. Role of D-dimer[J]. American Journal
of Clinical Pathology, 1989, 91(3):280-287.
[12]Lawler CM, Bovill EG, Collen DJ, et al. Fibrin fragment D-dimer
and fibrinogen B beta peptides in plasma as markers of clot lysis
during thrombolytic therapy in acute myocardial infarction[J].
Blood, 1990, 76(7):1341-1348.
[13]Bayes-Genis A, Mateo J, Santalo M, et al. D-Dimer is an early
diagnostic marker of coronary ischemia in patients with chest
pain[J]. American Heart Journal, 2000, 140(3):379-384.
[14]Dougu N, Takashima S, Sasahara E, et al. Differential diagnosis of
cerebral infarction using an algorithm combining atrial fibrillation
and D-dimer level[J]. European Journal of Neurology, 2008, 15
(3):295-300.
[15]Antoniou D, Pavlakou G, Stathopoulos GP, et al. Predictive value
of D-dimer plasma levels in response and progressive disease in
patients with lung cancer[J]. Lung Cancer, 2006, 53(2):205-
210.
[16]Mirshahi SS, Pujade-Lauraine E, Soria C, et al. D-dimer and CA
125 levels in patients with ovarian cancer during antineoplastic
therapy prognostic significance for the success of anti-cancer
treatment[J]. Cancer, 1992, 69(9):2289-2292.
[17]Oya M, Akiyama Y, Yanagida T, et al. Plasma D-dimer level in
patients with colorectal cancer :Its role as a tumor marker[J].
Surg Today, 1998, 28(4):373-378.
[18]Sutherland DE, Weitz IC, Liebman HA. Thromboembolic
complications of cancer :epidemiology, pathogenesis, diagnosis,
and treatment[J]. American Journal of Hematology, 2003, 72(1):
43-52.
[19]Roberts LN, Patal RK, Arya R. Haemostasis and thrombosis in liver
disease[J]. British Journal of Haematology, 2009, 148(4):
507-521.
[20]Ceriello A, Taboga C, Giacomello R, et al. Fibrinogen plasma levels
as a marker of thrombin activation in diabetes[J]. Diabetes,
1994, 43(3):430-432.
[21]Zhou HY, Chen R, Liu XP, et al. Determination of plasma D dimer
in patients with pregnancy induced hypertension[J]. Chinese
生物技术通报 Biotechnology Bulletin 2014年第11期224
Journal of Obstetrics and Gynecology, 1997, 32(6):347-
349.
[22]Przic DS, Ruzic NL, Petrovic SD. Lyophilization-the process and
industrial use[J]. Hemijska Industrija, 2004, 58(12):552-
562.
[23]Ruckley CV, Das PC, Leitch AG, et al. Serum fibrin/fibrinogen
degradation products associated with postoperative pulmonary
embolus and venous thrombosis[J]. Br Med J, 1970, 4(5732):
395-398.
[24]Gaffney PJ, Brasher M. Subunit structure of the plasmin-induced
degradation products of crosslinked fibrin[J]. Biochimica et
Biophysica Acta, 1973, 295(1):308-313.
[25]Gaffney PJ. Distinction between fibrinogen and fibrin degradation
products in plasma[J]. Clinica Chimica Acta, 1975, 65(1):
109-115.
[26]Gaffney PJ. D-dimer. History of the discovery, characterization and
utility of this and other fibrin fragments[J]. Fibrinolysis, 1993, 7
(2):2-8.
[27]Franks JJ, Kirsch RE, Kao B, et al. Fibrinogen and fibrinogen-
related peptides in cancer[J]. Pathophysiology of Plasma Protein
Metabolism, 1984 :265-278.
[28]Alwan A. Global status report on noncommunicable diseases
2010[R]. World Health Organization, 2011.
[29]Shackell LF. An improved method of desiccation, with some
applications to biological problems[J]. American Journal of
Physiology, 1909, 24(3):325-340.
[30]Wang W. Lyophilization and development of solid protein
pharmaceuticals[J]. International Journal of Pharmaceutics,
2000, 203(1):1-60.
(责任编辑 马鑫)