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Autologous neural stem cells in treatment of brain aging

内源性神经干细胞与脑老化的治疗



全 文 :生命科学
Chinese Bulletin of Life Sciences
第 20卷 第 1期
2008年 2月
Vol. 20, No. 1
Feb., 2008
文章编号 :1004-0374(2008)01-0086-04
内源性神经干细胞与脑老化的治疗
李绪领1,2,王德生1*,孙曼霁2*
(1 哈尔滨医科大学第一临床医学院神经内科,哈尔滨 150001;2军事医学科学院毒物药物研究所,北京 100850)
摘 要:近十几年研究发现成年人脑神经元可以再生,使人们重新认识老年脑神经细胞的可塑性,它
为脑损伤的修复带来新的希望。最新研究表明,神经再生可被调控,是一种新的修复机制。这使得
利用内源性神经干细胞治疗老龄相关的神经退行性疾病成为可能。
关键词:神经干细胞;脑老化;治疗
中图分类号:Q813; R749.16  文献标识码:A
Autologous neural stem cells in treatment of brain aging
LI Xu-ling1,2, WANG De-sheng1*, SUN Man-ji2*
(1 Department of Neurology, the First Hospital, Harbin Medical University, Harbin 150001,China;
2 Institute of Pharmacology and Toxicology, Beijing 100850, China)
Abstract: It has been demonstrated that neurons in human adult brains can be somehow regenerated, thus it
provokes the reevaluation of neuronal plasticity of the aged brain, and holds out a hope of the possibility of
utilizing the autologous neural stem cells to treat age-related neurodegenerative diseases.
Key words: neural stem cell; aging brain; therapy
成年哺乳动物的神经细胞可以再生这一现象大
约在 40年前由Altman发现[1],却因为被认为没有机
能的关联性而未被重视。后来在研究鸟的学唱过程
中发现,要建立一种特殊的行为必然有新生神经元
的产生[2]。同时,在体内和体外实验中也发现了可
以分化成神经细胞和胶质细胞的神经前体细胞,从
而引起了人们对内源性神经干细胞的关注,并进行
了深入的研究,目前,内源性神经干细胞再生理论
已逐渐被应用于药理学研究领域,而且研究者们正
在寻找一种能够通过激活内源性神经干细胞,达到
治疗神经退行性疾病的途径。
1 内源性神经干细胞的分布及增殖、分化和迁移
在正常老化过程中,侧脑室周围的的广泛区域
都存在干细胞[3],它们不断地增殖,并分化出神经
祖细胞,进而分化成成神经细胞迁移至嗅球,成神
经细胞在这里最终分化为中间神经元。在海马齿状
回的亚颗粒区也分布着大量的神经干细胞[4],这些
细胞增殖并迁移至颗粒细胞层[5],新生的神经元可
将轴突投射到海马的 CA3区。另外,研究者们还
在成年脑内的其他部位发现了神经干细胞的存在,
例如在黑质内发现了新生的多巴胺能神经元[6],在
皮层和纹状体内发现了神经干细胞的存在,在脊髓
内发现了成胶质细胞。但由于这些细胞的更新速度
很慢或在某些特殊的条件下才出现,因而很难被检
测到。
在疾病条件下,包括 Alzheimer ’s 病(AD)、
Parkinson’s病(PD)、中风和外伤造成的脑部的神经
细胞死亡是人类脑功能障碍的重要原因。以前一直
认为这些神经细胞的丢失是不可替代的,但现代研
究发现,位于脑室下区的神经祖细胞主要分化成嗅
觉细胞,一部分可分化成皮层神经元,位于海马
收稿日期:2007-10-23;修回日期:2007-11-07
基金项目:国家自然科学基金项目(30670726) ;军队
“十一·五”科技攻关项目( 0 6 G 1 1 9 )
*通讯作者:E-mail: hydwds@hotmail.com; sunmj@nic.
bmi.ac.cn
8 7第 1期 李绪领,等:内源性神经干细胞与脑老化的治疗
齿状回的神经干细胞能够分化成神经细胞和胶质细
胞[7]。而这些新生细胞可迁移到脑损害部位,并与
周围神经元建立突触联系,从而补偿损伤神经元的
功能。
以上研究说明,无论是在自然老化过程中,还
是在疾病状态下,内源性神经干细胞总是在不断的
增殖分化,并迁徙到特定的区域或损伤部位,以取
代由于自然老化或病变造成的神经元的死亡。从而
可以最大限度地维护脑功能和结构的完整性。
2 神经干细胞增殖、分化的调控
Notch系统是 90多年以前被发现的,Notch是
一种前体蛋白,它以与受体结合的方式与周围建立
网络连接系统。迄今为止,已经发现了 4 种哺乳
动物的Notch受体亚型。对胚胎的器官发生以及出
生后组织的修复都具有调控作用[8-10]。在果蝇细胞
的神经系统发生过程中,Notch水平低的细胞分化
成神经元,而Notch水平高的细胞则分化为表皮细
胞[11]。多种干细胞亚型的增殖和分化都需要Notch
信号的传递[12],随着年龄增长,脑内干细胞的增殖
能力降低,可能就是由于包括Notch在内的修复特
异性分子信号改变造成的[13, 14]。Notch信号的传递
又受生长因子和细胞黏附分子信号通路的调控。哺
乳动物的胞浆内存在一种叫做Numb的蛋白能够拮
抗Notch的作用。在神经系统的发生过程中,Numb
在神经祖细胞的不对称分裂过程中起着关键性作
用,Numb不足的小鼠在胚胎早期即死于神经早熟
和颅骨不能闭合[15]。
端粒是同源染色体的末端,包括一个重复的
TTAGGG序列和伴随的非组蛋白。端粒末端转移酶
是一种逆转录酶,含有一个催化亚基和一个RNA模
板。端粒末端转移酶将TTAGGG序列连接于染色体
的末端,从而保证染色体的完整性,防止末端间的
融合。30多年前发现端粒和端粒末端转移酶后,端
粒一直被看作是增殖期细胞的分裂钟,尤其在肿瘤
和年龄老化相关性疾病当中[16],研究者发现,老年
痴呆患者神经细胞内端粒明显异常[17]。在小鼠的脑
部发生研究中发现,端粒效能的降低伴随神经母细
胞的增殖减少;而端粒末端转移酶催化亚基表达的
降低则伴随细胞的分化和神经细胞的死亡[18]。最新
的研究显示,端粒末端转移酶和端粒相关蛋白
TRF2在神经细胞再生过程中起着重要作用,并且
能够阻止分裂后细胞的凋亡。随着年龄的老化,各
种内在及外在的环境因素造成DNA的断裂,使端粒
功能异常,脑内细胞增殖减少而凋亡增加,从而导
致老年认知功能障碍[19]。
多种生长因子和细胞活素能够促进一种或几种
干细胞的增殖、分化和存活,如表皮生长因子
(EGF)和成纤维细胞生长因子 2 (FGF-2)能够使脑内
的神经干细胞处于增殖状态[20],而脑源性神经营养
因子能够促进神经前体细胞的存活和分化[21],另
外,胰岛素样生长因子 1 (IGF-1)、血管内皮生长
因子(VEGF)[22]、细胞死亡激活因子[23]及神经肽Y[24]
对神经干细胞的增殖和分化都具有明显的调节作
用。Gould等[25]研究发现,老年人糖皮质激素水平
的增高可抑制神经干细胞的增殖。
既然干细胞的增殖分化和存活都可以通过以上
途径来调控,这便为我们利用内源性神经干细胞治
疗神经系统损害性疾病提供了研究方向。
3 神经干细胞的数量及增殖、分化与年龄老化的
关系
研究发现,在大鼠的自然老化过程中,海马
内的神经祖细胞数量减少 [ 2 6 ];随着年龄的增长,
脑室下区的神经干细胞数量亦明显减少[27]。另有学
者认为,年龄老化并不能改变脑内神经干细胞的数
量:因为老年脑内直接注射 FGF-2、IGF-1[28]或者
NMDA受体拮抗剂[29]后,可见增殖期神经干细胞数
量增加,并且抑制老年糖皮质激素的水平同样可增
加脑内具有分裂增殖能力的神经干细胞的数量[30]。
随着年龄的老化,脑内环境改变引起神经干细胞增
殖能力和自我更新能力降低,造成新生细胞的减
少,而并非神经干细胞数量真正减少。
无论神经干细胞的数量是否真正减少,即使在
年龄非常老的动物脑内,干细胞仍然具有分裂增殖
能力[31],尽管脑室下区和海马齿状回部位[23,27]神经
干细胞的增殖能力随着年龄的增长有所降低。脑内
环境的变化、营养因子类物质缺乏及端粒末端转移
酶水平的明显降低[32],才是中年以后神经细胞再生
速度明显减慢的原因[33]。加上神经细胞凋亡的逐渐
加快,从而出现老年的认知功能障碍,或其他神经
退行性疾病。因此,促进内源性神经干细胞的增殖
分化,可能达到改善认知功能障碍、治疗老年神经
退行性疾病的目的。
4 神经干细胞的增殖、分化与老年神经退行性疾
病的关系
老年人最常见的脑部疾病是AD、PD和中风。
海马、皮质和杏仁核的神经蜕变,导致AD相关的
8 8 生命科学 第 20卷
认知功能障碍;黑质多巴胺神经元的减少引起 PD
的运动机能障碍;脑部血管病变,导致其供血部位
神经细胞的变性坏死,出现运动、感觉或语言等功
能障碍。根据这些疾病的病变特点,研究者们建立
了多种相关动物模型来观察内源性干细胞在病理环
境下的反应。
曾经有研究发现,12—14月龄AD模型小鼠脑
内大量 β淀粉样肽(Aβ),与正常对照组比较,海马
齿状回部位 BrdU+ 细胞减少了 55%,并且 BrdU+ 细
胞不能够与神经细胞标志物共染,这说明Aβ的沉
积阻碍了神经干细胞的增殖及分化为成熟的神经细
胞[34]。但最新的研究发现,AD患者海马内神经细
胞标志物增多,这说明神经干细胞的增殖分化能力
在AD的病理条件下反而增强[35]。在 PD模型脑内,
损毁部位同侧的脑室下区神经干细胞增殖能力增
强,并且在脑内注射 TGF-1的条件下可以迁移到损
害部位,并与周围神经元重新建立突触联系[36]。成
年大鼠的短暂性脑缺血模型的脑室下区及海马齿状
回干细胞分裂增加[37]。这些研究结果说明,在病理
条件下,神经细胞的死亡会产生某些刺激因子,诱
导神经干细胞的分裂增殖。
5 内源性神经再生理论的应用及前景
内源性神经干细胞的存在及其增殖、分化的可
调控性,使得除干细胞移植以外,另一种通过神经
再生来改善由于神经细胞死亡造成的神经功能缺损
成为可能,但由于血脑屏障的存在,使得大分子物
质很难通过并到达其作用部位。因此,目前只能通
过侧脑室直接给药的方式达到促进神经细胞增殖、
分化的效果,但因为可能出现较多并发症而很难推
广。蛋白转导域(PTD)的发现和不断的开发利用,
为大分子药物跨越血脑屏障治疗疾病提供了新的途
径。我们可以将生物大分子用重组技术或化学偶联
等方法连接到 PTD上,例如 PTD-ChAT、 PTD-
EGF、 PTD-BDNF等等,通过非侵入性给药方式使
之穿过血脑屏障到达靶细胞,从而对各阶段干细胞
的增殖、分化及新生细胞的迁徙存活起到促进作
用,达到治疗神经退行性疾病的效果。
[参 考 文 献]
[1] Alvarez-Buylla A, Theelen M, Nottebohm F. Birth of pro-
jection neurons in the higher vocal center of the canary fore-
brain before, during, and after song learning. Proc Natl Acad
Sci USA, 1988, 85(22): 8722-6
[2] Alvarez-Buylla A, Ling CY, Nottebohm F. High vocal cen-
ter growth and its relation to neurogenesis, neuronal replace-
ment and song acquisition in juvenile canaries. J Neurobiol,
1992, 23(4): 396-406
[3] Lois C, Alvarez-Buylla A. Long-distance neuronal migration
in the adult mammalian brain. Science, 1994, 264(5162):
1145-8
[4] Eriksson PS, Perfilieva E, Bjork-Eriksson T, et al.
Neurogenesis in the adult human hippocampus. Nat Med,
1998, 4: 1313-7
[5] Kuhn HG, Dickinson-Anson H, Gage FH. Neurogenesis in
the dentate gyrus of the adult rat: age-related decrease of
neuronal progenitor proliferation. J Neurosci, 1996, 16(6):
2027-33
[6] Zhao M, Momma S, Delfani K, et al. Evidence for
neurogenesis in the adult mammalian substantia nigra. Proc
Natl Acad Sci USA, 2003, 100(13): 7925-30
[7] Gage FH. Mammalian neural stem cells. Science, 2000, 287
(5457): 1433-8
[8] Artavanis-Tsakonas S, Rand MD, Lake RJ. Notch signaling:
cell fate control and signal integration in development.
Science, 1999, 284(5415): 770-6
[9] Kadesch T. Notch signaling: the demise of elegant simplicity.
Curr Opin Genet Dev, 2004, 14(5): 506-12
[10] Bray SJ. Notch signalling: a simple pathway becomes
complex. Nat Rev Mol Cell Biol, 2006, 7(9): 678-89
[11] Heitzler P, Simpson P. The choice of cell fate in the epider-
mis of Drosophila. Cell, 1991, 64(6): 1083-91
[12] Chiba S. Notch signaling in stem cell systems. Stem Cells,
2006, 24(41): 2437-47
[13] Conboy IM, Conboy MJ, Smythe GM, et al. Notch-medi-
ated restoration of regenerative potential to aged muscle.
Science, 2003, 302(5650): 1575-7
[14] Janzen V, Forkert R, Fleming HE, et al. Stem-cell ageing
modified by the cyclindependent kinase inhibitor p16INK4a.
Nature, 2006, 443(7110): 421-6
[15] Zhong WM, Jiang MM, Schonemann MD, et al. Mouse
numb is an essential gene involved in cortical neurogenesis.
Proc Natl Acad Sci USA, 2000, 97(12): 6844-9
[16] Blackburn EH, Greider CW, Szostak JW. Telomeres and
telomerase: the path from maize, Tetrahymena and yeast to
human cancer and aging. Nat Med, 2006, 12(10): 1133-8
[17] Honig LS, Schupf N, Lee JH, et al. Shorter telomeres are
associated with mortality in those with APOE ε4 and dementia.
Ann Neurol, 2006, 60(2): 181-7
[18] Klapper W, Parwaresch R, Krupp G. Telomere biology in
human aging and aging syndromes. Mech Aging Dev, 2001,
122(7): 695-712
[19] Zhang P, Dilley C, Mattson MP. DNA damage responses in
neural cells: focus on the telomere. Neuroscience, 2007, 145
(4): 1439-48
[20] Gritti A, Frolichsthal-Schoeller P, Galli R, et al. Epidermal
and fibroblast growth factors behave as mitogenic regulators
for a single multipotent stem cell-like population from the
subventricular region of the adult mouse forebrain. J Neurosci,
1999, 19(9): 3287-97
[21] Eaton MJ, Whittemore SR. Autocrine BDNF secretion en-
hances the survival and serotonergic differentiation of raphe
8 9第 1期 李绪领,等:内源性神经干细胞与脑老化的治疗
neuronal precursor cells grafted into the adult rat CNS. Exp
Neurol, 1996, 140(2): 105-14
[22] Shetty AK, Hattiangady B, Shetty GA. Stem/progenitor
cell proliferation factors FGF-2, IGF-1, and VEGF exhibit
early decline during the course of aging in the hippocampus:
role of astrocytes. Glia, 2005, 51(3): 173-86
[23] Heine VM, Maslam S, Joels M, et al. Prominent decline of
newborn cell proliferation, differentiation, and apoptosis in
the aging dentate gyrus, in absence of an age-related hypo-
thalamus-pituitary-adrenal axis activation. Neurobiol Aging,
2004, 25(3): 361-75
[24] Hattiangady B, Rao MS, Shetty GA, et al. Brain-derived
neurotrophic factor, phosphorylated cyclic AMP response
element binding protein and neuropeptide Y decline as early
as middle age in the dentate gyrus and CA1 and CA3 sub-
fields of the hippocampus. Exp Neurol, 2005, 195(7): 353-
71
[25] Gould E, Tanapat P, McEwen BS, et al. Proliferation of
granule cell precursors in the dentate gyrus of adult mon-
keys is diminished by stress. Proc Natl Acad Sci USA, 1998,
95(6): 3168-71
[26] Kuhn HG, Dickinson-Anson H, Gage FH. Neurogenesis in
the dentate gyrus of the adult rat: age-related decrease of
neuronal progenitor proliferation. J Neurosci, 1996, 16(6):
2027-33
[27] Luo J, Daniels SB, Lennington JB, et al. The aging neuro-
genic subventricular zone. Aging Cell, 2006, 5(2): 139-52
[28] Jin K, Sun Y, Xie L, et al. Neurogenesis and aging: FGF-2
and HB-EGF restore neurogenesis in hippocampus and
subventricular zone of aged mice. Aging Cell, 2003, 2(3): 175-
83
[29] Nacher J, Alonso-Llosa G, Rosell DR, et al. NMDA recep-
tor antagonist treatment increases the production of new
neurons in the aged rat hippocampus. Neurobiol Aging, 2003,
24(2): 273-84
[30] Cameron HA, McKay RD. Restoring production of hip-
pocampal neurons in old age. Nat Neurosci, 1999, 2(10): 894-
7
[31] Montaron MF, Petry KG, Rodriguez JJ, et al. Adrenalec-
tomy increases neurogenesis but not PSA-NCAM expres-
sion in aged dentate gyrus. Eur J Neurosci, 1999, 11(4): 1479-
85
[32] Brazel CY, Limke TL, Osborne JK, et al. Sox2 expression
defines a heterogeneous population of neurosphere-forming
cells in the adult murine brain. Aging Cell, 2005, 4(4): 197-207
[33] Rao MS, Hattiangady B, Abdel-Rahman A, et al. Newly
born cells in the ageing dentate gyrus display normal migration,
survival and neuronal fate choice but endure retarded early
maturation. Eur J Neurosci, 2005, 21(2): 464-76
[34] Haughey NJ, Nath A, Chan SL, et al. Disruption of
neurogenesis by amyloid β-peptide, and perturbed neural
progenitor cell homeostasis, in models of Alzheimer’s disease.
J Neurochem, 2002, 83(6): 1509-24
[35] Jin K, Peel AL, Mao XO, et al. Increased hippocampal
neurogenesis in Alzheimer’s disease. Proc Natl Acad Sci
USA, 2004, 101(1): 343-7
[36] Fallon J, Reid S, Kinyamu R, et al. In vivo induction of
massive proliferation, directed migration, and differentia-
tion of neural cells in the adult mammalian brain. Proc Natl
Acad Sci USA, 2000, 97(26): 14686-91
[37] Arvidsson A, Collin T, Kirik D, et al. Neuronal replacement
fromendogenous precursors in the adult brain after stroke.
Nat Med, 2002, 8(9): 963-70
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唐希灿院士获2007年度中国药学发展奖天士力创新药物奖特别贡献奖
上海药物所唐希灿院士荣获 2007年度中国药学发展奖天士力创新药物奖特别贡献奖。
唐希灿研究员与植物化学家合作,从事中草药内作用于神经系统活性物质的开发研究近 50年,先后
开发活性成分加兰他敏、高乌甲素、草乌甲素及石杉碱甲用于治疗重症肌无力、慢性疼痛及早老性痴呆
症(AD)。特别是对石杉碱甲的研究,迄今已在国内外学术期刊上发表系列研究论文 70余篇,应国际著名
期刊主编邀请撰写石杉碱甲研究综述 5篇,研究成果受到国际同行关注。石杉碱甲分别于 1996年和 2003
年获得国家新药证书。通过构 - 效研究,发现了石杉碱甲衍生物“ZT-1”,已获中国、美国、欧共体
及日本等国家专利,并已在欧洲完成治疗AD的Ⅱ期临床研究。他及他的团队的研究工作共获得国家级科
技奖励 7 项;在国内外 SCI期刊上发表学术论文 160余篇。
摘自 http: //www.sibs.ac.cn