全 文 :生命科学
Chinese Bulletin of Life Sciences
第 17卷 第 5期
2005年 10月
Vol. 17, No. 5
Oct., 2005
IGF-2r的结构和功能及其在胚胎发育中的作用
龙健儿*,贺力强,蔡 霞
(上海交通大学附属儿童医院医学遗传研究所, 上海 200040)
摘 要:胰岛素样生长因子 -2受体(insulin-like growth factor-2 receptor, IGF-2r)和非阳离子依赖型甘露
糖 -6-磷酸受体(cation-independent mannose-6-phosphate receptor, CI-MPR)为同一分子,属多结构域跨
膜糖蛋白。IGF-2r与阳离子依赖型M6P受体(cation-dependent mannose-6-phosphotase receptor, CD-MPR)
共同介导溶酶体酶的分选和转运过程,对溶酶体的形成起重要作用。IGF-2/M6P受体除能与溶酶体酶、
TGF-β前体等M6P配体结合外,还能与非糖基化的 IGF-2、视黄酸等作用,调节蛋白质的转运和跨膜
信号传导等活动。IGF-2r为父源性印迹(paternal imprinted)基因,基因的印迹、表达受基因印迹控制区
(imprinting control region, ICR)的甲基化差异修饰所调控。IGF-2r基因表达缺失出现胎儿肥大、心脏和
胎盘发育不全、围产期死亡等异常现象,证明 IGF-2r在胚胎发育过程中起重要作用。
关键词:I G F- 2 r;M 6 P 受体;I G F;溶酶体酶;基因印迹;胚胎发育
中图分类号:Q513.2; R321; Q133 文献标识码:A
IGF-2r structure, function and its role in the embryonic development
LONG Jian-Er*, HE Li-Qiang, CAI Xia
(Shanghai Institute of Medical Genetics, Shanghai Children’s Hospital,
Shanghai Jiaotong University, Shanghai 200040, China)
Abstract: The insulin-like growth factor-II receptor is a multifunctional single transmembrane glycoprotein with
multi-domain, which is identical to the cation-independent mannose-6-phosphate (M6P) receptor. The IGF-II/
M6P receptor, along with the cation-dependent M6P (CD-M6P) receptor, mediates the intercellular sorting and
trafficking of M6P-containing lysosomal enzymes from the trans-Golgi network (TGN) to lysosomes. In addi-
tion to lysosomal enzymes, the IGF-II/M6P receptor also binds a diverse spectrum of other M6P containing
proteins, including transforming growth factor-β (TGF-β) precursor, as well as non-M6P-containing retinoic acid
and IGF-2, thereby regulates a myriad of biological processes, such as protein trafficking and transmembrane
signal transduction, to affect the developmental growth and metablism. IGF-2r gene is generally imprinted on
the paternally inherited allele and expressed from maternal allele depending on the imprinting control region
(ICR) differentially methylated. The IGF-II/M6P receptor plays a critical role in the embryonic development and
is supported by the phenotypes that the disruption of the gene resulted in disproportional overgrowth, particu-
larly of the heart and placenta during post-implantation, and perinatal lethality.
Key words: IGF-2 receptor; M6P receptor; IGF; lysosomal enzymes; gene imprinting; embryonic development
文章编号 :1004-0374(2005)05-0439-06
收稿日期:2005-05-30;修回日期:2005-06-20
基金项目:上海市卫生局自然科学发展基金(编号:044038); 上海交通大学优秀青年科学基金(2005~2007)
作者简介:龙健儿(1 97 3 —),男,助理研究员,博士,* 通讯作者; 贺力强(1 97 4 —),男,助理研究员,博士;
蔡 霞(1 98 0 —),女,在读硕士。
440 生命科学 第17卷
1 前言
IGF-1和 IGF-2 (insulin-like growth factor-1 and
-2)属于多功能促细胞分裂多肽,与胰岛素原结构同
源。IG F 通过自分泌或旁分泌途径,调节细胞分
裂、分化、程序性死亡、化学趋向性等活动,是
下丘脑 -垂体内分泌调节系统的重要组成部分。在
不同组织中,不同的 IGF结合蛋白(IGF binding
proteins, IGFBP)调节 IGF-1 和 IGF-2的转运及其与
靶蛋白的结合。而特异性蛋白酶调节 IGFBP的降
解,从而调节 IGF与 IGFBP的相互作用[1]。
IGF的功能主要由细胞膜上特异性跨膜受体介
导,包括 IGF-1受体(IGF-1r)、IGF-2受体(IGF-2r)
和胰岛素受体(insulin receptor, IR)[2]。IGF-1r属于
酪氨酸激酶受体家族,是介导 IGF效应的主要受
体,但 IR也能结合 IGF,介导 IGF-1和 IGF-2的
部分生物学效应[2]。检测表明,在某些组织中还存
在由 IGF-1r αβ半分子和 IR αβ半分子组成的杂合
受体分子[3],但其作用有待进一步确认。
IGF-2r结构与 IGF-1r和 IR不同,无酪氨酸激
酶活性,结合 IGF-2的能力远比 IGF-1强,而与胰
岛素不结合。1987年,Morgan等[4]发现,IGF-2r
与非阳离子依赖型甘露糖 -6-磷酸受体(cation-inde-
pendent mannose-6-phosphate receptor, CI-MPR)为同
一分子,因此,可能介导两种完全不同的生物学过
程,即蛋白质的转运和跨膜信号传导。过去十多年
的研究表明,IGF-2/M6P受体对溶酶体酶的运输、
某些生长因子的清除或激活、IGF-2水平的调节等
有重要作用。目前也有证据表明,IGF-2r介导 IGF-
2跨膜信号传导。最近对 IGF-2r基因结构、基因印
迹形成和调控的研究,以及基因条件敲除动物模型
的建立为理解 IGF-2r在胚胎发育过程中的作用奠定
了基础。因此,本文主要讨论 IGF-2r最近有关其
结构、功能方面的研究概况,特别是基因印迹、表
达调控和在胚胎发育中的作用。
2 IGF-2/M6P受体特性
2.1 结构特性 IGF-2/M6P受体属于 I型跨膜糖蛋
白受体,主要由 4部分构成:N- 端信号肽、胞外
区、单一跨膜区以及 C-端胞内区。胞外区由 15个
部分重复的结构域构成,每一结构域约 147个氨基
酸,相互间同源性 14%~38%。胞内区能与许多蛋
白激酶作用,如蛋白激酶 C (protein kinase C)、环
磷酸腺苷依赖性蛋白激酶(cAMP-dependent protein
kinase)、酪蛋白激酶 1和 2 (casein kinase 1 and 2)等[5]。
体内外实验证实,IGF-2/M6P受体易形成二聚体。
在牛、大鼠与人的体液中曾发现缺少跨膜区及胞内
区的可溶性 IGF-2/M6P受体也能与配体结合,说明
配体与受体的特异结合很可能是受体启动的机制之
一。然而,这种可溶性的 IGF-2/M6P受体也可能
起转运载体的作用,灭活过量的 IGF-2分子[6]。
2.2 与配体结合特性 IGF-2/M6P受体有多个结合
位点,分别与M 6P 配体(含M 6P 结构的配体)和
IGF-2结合。M6P配体结合区位于胞外区结构域
1~3、结构域 5和结构域 9[7~8]。IGF-2/M6P受体可
结合多种M6P配体,如 TGF-β前体、白血病抑制
因子( leukemia inhibitory factor , LIF)、增殖素
(proliferin)、甲状腺蛋白(thyroglobulin)以及不含
M6P的 IGF-2、视黄酸(retinoic acid)等。IGF-2/M6P
受体不仅可同时结合 IGF-2和M6P配体,而且相互
影响。
研究表明,结构域 13对 IGF-2r与 IGF-2结合
起重要作用,可使亲和力提高 5~10倍[9~10]; 结构域
11由两个反向的 β-折叠片形成桶状,内部凹陷为
IGF-2结合区,桶底部为 β-发夹。由于结构域 13
含有粘连蛋白 -II型结合区相似的插入结构,和结构
域 11毗邻排列,因而增强了 IGF-2与结构域 11结
合的能力。在负鼠(opossum)[11]与袋鼠(kangaroo)[12]
等有袋类动物中,IGF-2r与 IGF-2亲和力小,而
鸡和蛙 IGF-2r与 IGF-2基本上不结合[13],这很可能
是由于其结构域11的N-末端氨基酸序列明显改变。
IGF-2r与 IGF-2的结合虽限于胎生哺乳动物,但其
糖基识别功能在哺乳动物及非哺乳动物中都存在。
在鱼类中发现 IGF-2r能与 IGF-2结合[14],提示关于
IGF-2r与 IGF-2的结合还有待进一步阐述。
3 IGF-2/M6P受体的功能
3.1 IGF-2/M6P受体和胞内溶酶体酶的分选 溶酶
体酶的转运对溶酶体的形成至关重要,通过泡状转
运体,新合成的溶酶体酶从内质网、高尔基复合
物、内含体到达溶酶体。最初的转运过程与分泌蛋
白相同,并不需要特殊的信号。在高尔基复合体反
面(trans-Golgi networks, TGN),通过M6P识别信
号,溶酶体酶与M6P受体结合,随后被笼型小体
(clathrin-coated vesicle)转运至前溶酶体,最后至溶
酶体内,而M6P受体锚定于细胞膜或重新返回高尔
基复合体。溶酶体酶的聚集和转运由两类M6P受体
完成,它们的作用部分重叠但明显不同,IGF-2 /
M6P受体对细胞内新合成的溶酶体酶的分选和转运
比 CD-M6P受体更有效[15]。
溶酶体酶的转运机制并不清楚,研究表明,笼
441龙健儿,等:IGF-2 r的结构和功能及其在胚胎发育中的作用第5期
型蛋白调节蛋白(clathrin adaptor protein-1, AP1)、
M6P受体二亮氨酸分选信号以及ADP-核糖化因子
(ADP-ribosylation factor)介导笼型蛋白集结于笼型小
体并从高尔基复合体产芽泌出[12,16~18]。M6P受体从
内含体到TGN的再循环并不由笼型蛋白介导,而与
受体胞内端相互作用的两种C-末端结合蛋白PACS-1
(phosphofurin acidic cluster sorting protein 1)和 TIP47
(MPR tail interacting protein)有关[19]。资料表明,
PACS-1/AP-1很可能介导M6P受体从早期内含体到
TGN,TIP47/ Rab9 (一种后期GTPase, 增强 TIP47
和M6P受体的亲和力)则介导受体从后期内含体到
TGN 的转移[16]。
3.2 IGF-2/M6P受体对M6P配体的内吞作用 细胞
表面 IGF-2/M6P受体介导许多M6P配体的内吞,并
随后将其激活或降解。对于那些新合成的溶酶体
酶,由于不能被 CD-M6P受体分选或激活后输出,
在 TGN内被 IGF-2/M6P受体重新捕获。IGF-2/M6P
受体在介导溶酶体酶的内吞、促进胞外酶和糖蛋白
基质在细胞间的转移中起重要作用。有证据显示,
这种受体同时也介导增殖素、糖基化的 LIF、凝乳
酶前体(rennin precursor)和表皮生长因子受体的内化
及随后的降解或激活。这种内化过程也形成笼型小
体,通过笼型蛋白相关的调节蛋白AP-2和 IGF-2/
M6P受体 C-末端相互作用[20]。
3.3 IGF-2/M6P受体与IGF-2 IGF-2是目前最为清
楚的与 IGF-2/M6P受体结合的非M6P配体。许多
证据表明,IGF-2通过影响细胞分裂和分化,在哺
乳动物生长发育中起着至关重要的作用,但 IGF-2
的促生长效应主要通过 IGF-1r和 /或 IR,而非 IGF-
2/M6P受体 [21]。IGF-2/M6P受体识别 IGF-2是使 IGF-
2进入溶酶体内并介导其降解的重要机制,这可从
基因打靶实验得到证明:IGF-2/M6P受体基因敲除
后,鼠胚胎个体偏大,循环中 IGF-2浓度升高,并
常因心脏功能异常导致围产期死亡[22],而同时敲除
IGF-2或 IGF-1r基因后这种现象即消除[23],因此,
推测 IGF-2/M6P受体缺失致死是由于过量 IGF-2刺
激 IGF-1r 的结果。
IGF-2/M6P受体介导 IGF-2降解的观点被普遍
接受,但在调节 IGF-2引起的其他各种效应中所起
的作用仍有争议。有研究证实,IGF-2/M6P受体结
合 IGF-2可诱导多种特异性应答,如增加肌纤维吸
收氨基酸、肝细胞合成糖原、胰腺细胞分泌胰岛
素、K562细胞的分化、精母细胞基因的表达、人
横纹肌肉瘤的运动性、人外绒膜滋养层细胞的迁
移、刺激犬肾细胞 Na+/H+交换与三磷酸肌醇的产
生、BALB/c 3T3成纤维细胞 Ca2+内流等[24]。
体外研究发现,IGF-2/M6P受体胞内区虽无酪
氨酸激酶活性,但 IGF-2/M6P受体能与G蛋白相互
作用[24~25]。序列分析推测,IGF-2/M6P受体胞内区
段 Arg2410~Lys2423能激活 Giα。另外, IGF-2/
M6P受体 C-末端 Ser2424~Ile2451区段与Gβγ结合
蛋白同源,有抑制腺苷酸环化酶活性[26]。在 3T3和
CHO细胞中,IGF-2 通过作用 Giα蛋白,能刺激
Ca2+内流[24]。也有发现表明,IGF-2/M6P受体激活
G蛋白导致 PKC诱导的细胞内蛋白磷酸化,刺激
MAPK信号途径和 /或降低腺苷酸环化酶活性[24]。因
此,认为 IGF-2/M6P受体介导 IGF-2某些生物学效
应很可能通过 G-蛋白偶联途径。
4 Igf-2r基因印迹及其表达
人 Igf-2r基因约 136 kb,位于第 6号染色体,
含 48个外显子,而小鼠 Igf-2r基因位于第 17号染
色体[27~28]。与其他多结构域受体不同,Igf-2r外显
子的分隔与其结构域并不相对应,胞外区由外显子
1~46翻译,其中15个部分重复性结构域均由3~5个
独立的外显子翻译而成[27]。在转录起始点上游 266
bp的启动子区,有一约 54 bp的增强子,由 2个
E-box基序,可能与转录因子 Sp1和NGF-1A结合
的位点构成[29]。小鼠 Igf-2r基因在外围组织中为父
源性印迹(paternal imprinting),母源性等位基因表
达。基因印迹(gene imprinting)与其启动子区和内含
子 2结构的DNA差异甲基化修饰相关。但在中枢神
经系统中,由于其启动子区未甲基化,因而双亲等
位基因均表达。尽管 Igf-2r基因在人类大部分组织
中都表达,但其表达水平受组织特异性和发育阶段
性调控 [ 30 ]。
基因印迹是胎生哺乳动物普遍存在的表观遗传
(epigenetic heredity)现象,通常在配子的形成后期基
因被印迹。基因印迹的消除和重建与细胞DNA甲基
化水平密切相关,认为在原祖生殖细胞(primordial
germ cells)的去甲基化过程(DNA demethylation)伴随
着原有印迹的消除,而减数分裂后配子形成或成熟
时基因印迹得到重建[31~32],基因印迹的重建与维持
与DNA甲基化转移酶(DNA methylation transferase,
DNMT)有关。DNMT3L对于卵细胞DNA甲基化[33~34]、
DNMT3A (而不是DNMT3B)对于基因印迹控制区
(imprinting control region, ICR)的甲基化至关重要[35]。
ICR通常 GC含量高,富含 CpG结构,形成 CpG
岛(CpG island)。由于 ICR调控等位基因印迹主要通
442 生命科学 第17卷
过差异甲基化修饰,因而 ICR在有的文献中也叫
DNA甲基化差异修饰区(DNA differentially methylated
region, DMR)。Igf-2r基因有两个 ICR区,ICR1在
基因启动子和外显子 1前端,而 ICR2位于内含子 2
内[36~37]。将 Igf-2r基因 ICR取代内源性基因 Rasgrf1
重复区,可诱导 Rasgrf1父源性等位基因甲基化,
显然 Igf-2r基因 ICR对控制 Igf-2r基因的表达至关重
要[37]。另外,在胚外组织(extra-embryonic tissue),
ICR2对抑制位于 Igf-2r基因下游几百kb之外其他两
个父源性等位基因 Slc22a2、Slc22a3的表达也很重
要[35](图 1)。小鼠模型研究表明,ICR2内含Air (anti-
sense Igf-2r RNA)的转录启动区,控制长达 400 kb
的非翻译性RNA的转录。Sleutels等[36]将 PolyA信号
引入Air基因形成一截短的转录本,从而证明Air对
于父源性等位基因 Igf-2r、Slc22a2、Slc22a3的印
迹沉默至关重要。由于其导致基因沉默的方式与
Kcnq1基因簇沉默,以及 X-染色体的失活非常相
似,而Kcnq1基因簇沉默和X-染色体的失活研究证
明,基因的沉默过程还与 Eed和 Enx等梳状蛋白
(polycomb group proteins, PcG),以及组蛋白的甲
基化修饰密切相关[38~39],因而这些蛋白也很可能参
与了 Igf-2r基因簇的印迹和沉默。但对人来说,情
况可能不同,人 Ig f-2r 两个亲缘性等位基因都表
达,异常三倍体胎盘组织中也未能检测到 Air RNA
[40]。在小鼠神经系统中,由于两个亲缘性等位基因
都表达,因此也很可能 Air和 Igf-2r基因的印迹并
不关联。哺乳动物进化研究资料表明,Igf-2r基因
印迹随着侵入性胎盘的出现逐渐形成,从有袋类动
物开始出现。值得注意的是,尽管负鼠(Opossum)
Igf-2r基因被印迹,但并没有小鼠内含子 2中类似
的序列[41]。这就意味着在不同的哺乳动物及有袋类
动物中,Igf-2r基因印迹的机制可能并不相同,或
者通过其他的一些表观遗传结构修饰,如对组蛋白
的修饰等达到对基因印迹的目的[42]。
5 IGF-2r与生长发育
首先证明IGF-2r在生长发育中起作用的证据来
自过度生长的 Tme (T-maternal effect)小鼠,IGF-2r
功能缺失后,小鼠出现过度生长[43]。特异性敲除小
鼠 Igf-2r母源性等位基因导致胎儿过度生长,特别
是心脏和胎盘。因此推测,Igf-2r母源性等位基因
敲除小鼠围产期死亡很可能是由于 IGF-2r功能缺失
导致心血管和呼吸系统发育不全所致。这一推测可
从 Igf-2r敲除后 IGF-2r水平升高,以及 Igf-2r敲除
小鼠与Igf-2基因敲除小鼠杂交后这一现象得到缓和
的事实得到证明[22~23]。用组成性启动子驱动 Cre表
达来破坏 Igf-2r基因,Wylie等[44]同样观察到相似的
胚胎过度生长和致死现象,从而进一步证实了 Igf-
2r基因在胚胎发育中的重要作用。但 Igf-2r基因功
能丧失致死的原因,还有待于各种条件性敲除
(conditional knock-out)动物模型的建立。最初用白
蛋白和肌氨酸激酶(creatin kinase)启动子驱动,通过
Cre介导的肝脏和肌肉组织中Igf-2r基因敲除实验并
未观察到上述现象,显然在 Cre表达前,IGF-2与
IGF-2r的相互作用在胚胎发育中有重要意义[45]。最
近,大动物的克隆过程经常出现胎儿过度肥大和围
产期死亡现象,这很可能与 Igf-2r基因 ICR甲基化
被破坏,Igf-2r基因表达异常有关[46]。
另外,可溶性 IGF-2r在体外抑制细胞分裂,说
明 IGF-2r还可能通过非 IGF-2依赖性机制起作用。
以角蛋白(keratin)启动子驱动的可溶性 IGF-2r(无跨
膜区)转基因动物器官相对较小,与 Igf-2基因敲除
小鼠杂交后器官更小,说明 IGF-2r还存在不依赖
IGF-2的作用途径[6,47]。小鼠 Igf-2r双等位基因都表
达,则胚胎生长缓慢。因此对于人类 Igf-2r双等位
基因表达,除却父源和母源性基因在竞争母源性卵
质不说,这种“双亲竞争冲突”假说(“parent con-
flict”hypothesis)在进化上究竟有何优势还有待于进
一步阐述。
6 结束语
近来,更多与 IGF-2r作用的配体被发现,IGF-
2r的细胞内信号传递和相关组分也逐渐阐明,为深
入理解 IGF-2r结构和功能提供了有力的证据,但信
号传递靶蛋白以及与 IGF-2r转运相关的因子还有许
多不明确的地方。对 IGF-2r基因结构、基因印迹
和调控,以及条件敲除动物模型的建立为理解 IGF-
2r在胚胎发育中的作用奠定了基础,但 IGF-2r影响
图1 DNA甲基化差异修饰区和 Air RNA
对父源性Igf-2r基因的印迹调控
由于父源性 Igf-2r基因 DMR2 未被甲基化, 非编码性 Air RNA抑制
父源性等位基因 Ig f-2 r、S lc 22 a 2、S lc 22 a 3 的表达。M:母源
性等位基因;P, 父源性等位基因; 空圆圈:D M R 未被甲基化,
实心圈:D M R 被甲基化
443龙健儿,等:IGF-2 r的结构和功能及其在胚胎发育中的作用第5期
胚胎发育的机理还有待深入的研究。
致谢:非常感谢任兆瑞教授认真阅读本文和提出的
宝贵修改意见。
[参 考 文 献]
[1] Mohan S, Baylink D J. IGF-binding proteins are multifunc-
tional and act via IGF-dependent and -independent
mechanisms. J Endocrinol, 2002, 175(1): 19~31
[2] Dupont J, LeRoith D. Insulin and insulin-like growth factor
I receptors: similarities and differences in signal transduction.
Horm Res, 2001, 55: 22~26
[3] Pandini G, Frasca F, Mineo R, et al. Insulin/insulin-like
growth factor I hybrid receptors have different biological
characteristics depending on the insulin receptor isoform
involved. J Biol Chem, 2002, 277(42): 39684~39695
[4] Morgan D O, Edman J C, Standring D N, et al. Insulin-like
growth factor II receptor as a multifunctional binding protein.
Nature, 1987, 329(6137): 301~307
[5] Korner C, Nurnberg B, Uhde M, et al. Mannose 6-phos-
phate/insulin-like growth factor II receptor fails to interact
with Gproteins, analysis of mutant cytoplasmic receptor
domains. J Biol Chem, 1995, 270(1): 287~295
[6] Zaina S, Squire S. The soluble type 2 insulin-like growth
factor (IGF-II) receptor reduces organ size by IGF-II-medi-
ated and IGF-II independent mechanisms. J Biol Chem, 1998,
273(44): 28610~28616
[7] Reddy S T, Chai W G, Childs R A, et al. Identification of a
low affinity mannose 6-phosphate-binding site in domain 5
of the cation-independent mannose 6-phosphate receptor. J
Biol Chem, 2004, 279(37): 38658~38667
[8] Olson L J, Dahms N M, Kim J J. The N-terminal carbohy-
drate recognition site of the cation-independent mannose 6-
phosphate receptor. J Biol Chem , 2004, 279(32):
34000~34009
[9] Brown J, Esnouf R M, Jones M A, et al. Structure of a
functional IGF2R fragment determined from the anomalous
scattering of sulfur. EMBO J, 2002, 21(5): 1054~1062
[10] Linnell J, Groeger G, Hassan A B. Real time kinetics of
insulinlike growth factor II (IGF-II) interaction with the
IGF-II/mannose 6-phosphate receptor: the effects of do-
main 13 and pH. J Biol Chem, 2001, 276(26): 23986~ 23991
[11] Dahms N M, Brzycki-Wessell M A, Ramanujam K S, et al.
Characterization of mannose 6-phosphate receptors (MPRs)
from opossum liver: opossum cation-independent MPR
binds insulin-like growth factor-II. Endocrinology, 1993,
133(2): 440~446
[12] Yandell C A, Dunbar A J, Wheldrake J F, et al. The kangaroo
cation-independent mannose 6-phosphate receptor binds
insulin-like growth factor II with low affinity. J Biol Chem,
1999, 274(38): 27076~27082
[13] Clairmont K B, Czech M P. Chicken and Xenopus mannose
6-phosphate receptors fail to bind insulin-like growth factor
II. J Biol Chem, 1989, 264(28): 16390~16392
[14] Mendez E, Planas J V, Castillo J, et al. Identification of a
type II insulin-like growth factor receptor in fish embryos.
Endocrinology, 2001, 142(3): 1090~1097
[15] Sohar I, Sleat D, Liu C G, et al. Mouse mutants lacking the
cation-independent mannose 6-phosphate/insulin-like
growth factor II receptor are impaired in lysosomal enzyme
transport: comparison of cation-independent and cation-
dependent mannose 6-phosphate receptor-deficient mice.
Biochem J, 1998, 330(Pt2): 903~908
[16] Ghosh P, Dahms N M, Kornfeld S. Mannose 6-phosphate
receptors: new twists in the tale. Nat Rev Mol Cell Biol, 2003,
4(3): 202~212
[17] Puertollano R, Aguilar R C, Gorshkova I, et al. Sorting of
mannose 6-phosphate receptors mediated by the GGAs.
Science, 2001, 292(5522): 1712~1716
[18] Zhu Y X, Doray B, Poussu A, et al. Binding of GGA2 to the
lysosomal enzyme sorting motif of the mannose 6-phos-
phate receptor. Science, 2001, 292(5522): 1716~1718
[19] Iversen T G, Skretting G, Llorente A, et al. Endosome to
Golgi transport of ricin is independent of clathrin and Rab9-
and Rab11-GTPases. Mol Biol Cell, 2001, 12(7): 2099~2107
[20] Le Borgne R, Hoflack B. Protein transport from the secre-
tory to the endocytic pathway in mammalian cells. Biochim
Biophys Acta, 1998, 1404(1-2): 195~209
[21] Baker J, Liu J P, Robertson E J, et al. Role of insulin-like
growth factors in embryonic and postnatal growth. Cell,
1993, 75(1): 73~82
[22] Wang Z Q, Fung M R, Barlow D P, et al. Regulation of
embryonic growth and lysosomal targeting by the imprinted
Igf2/Mpr gene. Nature, 1994, 372(6505): 464~467
[23] Ludwig T, Eggenschwiler J, Fisher P, et al. Mouse mutants
lacking the type 2 IGF receptor (IGF2R) are rescued from
perinatal lethality in Igf2 and Igf1r null backgrounds. Dev
Biol, 1996, 177(2): 517~535
[24] Zhang Q M, Tally M, Larsson O, et al. Insulin-like growth
factor-II signaling through the insulin like growth factor-II/
mannose 6-phosphate receptor promotes exocytosis of in-
sulin-secreting cells. Proc Natl Acad Sci USA, 1997, 94(12):
6232~6237
[25] Okamoto T, Katada T, Murayama Y, et al. A simple struc-
ture encodes G protein-activating function of the IGF-II/
mannose 6-phosphate receptor. Cell, 1990, 62(4): 709~717
[26] Ikezu T, Okamoto T, Giambarella U, et al. In vivo coupling
of insulin-like growth factor II/mannose 6-phosphate recep-
tor to heteromeric G proteins. Distinct roles of cytoplasmic
domains and signal sequestration by the receptor. J Biol
Chem, 1995, 270(49): 29224~29228
[27] Killian J K, Jirtle R L. Genomic structure of the human
M6P/IGF2 receptor. Mamm Genome, 1999, 10(1): 74~77
[28] Laureys G, Barton D E, Ullrich A, et al. Chromosomal map-
ping of the gene for the type II insulin-like growth factor
receptor/cation-independent mannose 6-phosphate recep-
tor in man and mouse. Genomics, 1988, 3(3): 224~229
[29] Liu Z, Mittanck D W, Kim S, et al. Control of insulin-like
growth factor-II/mannose 6-phosphate receptor gene tran-
scription by proximal promoter element. Mol Endocrinol,
1995, 9(11): 1477~1487
[30] Matzner U, von Figura K, Pohlmann R. Expression of the
two mannose 6-phosphate receptors is spatially and tempo-
rally different during mouse embryogenesis. Development,
1992, 114(4): 965~972
[31] Reik W, Walter J. Genomic imprinting: parental influence on
the genome. Nat Rev Genet, 2001, 2(1): 21~32
[32] Tilghman S M. The sins of the fathers and the mothers:
genomic imprinting in mammalian development. Cell, 1999,
96(2): 185~193
[33] Bourc’his D, Xu G L, Lin C S, et al. Dnmt3L and the
establishment of maternal genomic imprints. Science, 2001,
294(5551): 2536~2539
[34] Hata K, OkanoM, Lei H, et al. Dnmt3L cooperates with the
444 生命科学 第17卷
Dnmt3 family of de novo DNA methyltransferases to estab-
lish maternal imprints in mice. Development, 2002, 129(8),
1983~1993
[35] Zwart R, Sleutels F, Wutz A, et al. Bidirectional action of the
Igf2r imprint control element on upstream and downstream
imprinted genes. Genes Dev, 2001, 15(18): 2361~2366
[36] Sleutels F, Zwart R, Barlow D P. The non-coding Air RNA
is required for silencing autosomal imprinted genes. Nature,
2002, 415(6873): 810~813
[37] Herman H, Lu M, Anggraini M, et al. Trans allele methyla-
tion and paramutation-like effects in mice. Nat Genet, 2003,
34(2): 199~202
[38] Okamoto I, Otte A P, Allis C D, et al. Epigenetic dynamics
of imprinted X inactivation during early mouse development.
Science, 2004, 303(5658): 644~649
[39] Mak W, Nesterova T B, de Napoles M, et al. Reactivation of
the paternal X chromosome in early mouse embryos. Science,
2004, 303(5658): 666~669
[40] Oudejans C B, Westerman B, Wouters D, et al. Allelic IGF2R
repression does not correlate with expression of antisense
RNA in human extraembryonic tissues. Genomics, 2001, 73
(3): 331~337
[41] Killian J K, Byrd J C, Jirtle J V, et al. M6P/IGF2R imprint-
ing evolution in mammals. Mol Cell, 2000, 5(4): 707~716
[42] Hu J F, Pham J, Dey I, et al. Allele-specific histone acetyla-
tion accompanies genomic imprinting of the insulin-like
growth factor II receptor gene. Endocrinology, 2000, 141
(12): 4428~4435
[43] Barlow D P, Stoger R, Herrmann B G, et al. The mouse
insulin-like growth factor-type 2 receptor is imprinted and
closely linked to the Tme locus. Nature, 1991, 349(6304):
84~87
[44] Wylie A A, Pulford D J, McVie-Wylie A J, et al. Tissue-
specific inactivation of murine M6P/IGF2R. Am J Pathol,
2003, 162(1): 321~328
[45] Burns J L, Hassan A B. Cell survival and proliferation are
modified by insulin-like growth factor 2 between days 9 and
10 of mouse gestation. Development, 2001, 128(19):
3819~3830
[46] Young L E, Fernandes K, McEvoy T G, et al. Epigenetic
change in IGF-2R is associated with fetal overgrowth after
sheep embryo culture. Nat Genet, 2001, 27(2): 153~154
[47] Zaina S, Newton R V, Paul M R, et al. Local reduction of
organ size in transgenic mice expressing a soluble insulin-
like growth factor II/mannose-6-phosphate receptor.
Endocrinology, 1998, 139(9): 3886~3895