全 文 :第25卷 第11期
2013年11月
Vol. 25, No. 11
Nov., 2013
生命科学
Chinese Bulletin of Life Sciences
文章编号:1004-0374(2013)11-1089-05
SOCS-3在哮喘Th1/Th2免疫失衡中的作用研究进展
邓 伊,王志强*
(三峡大学医学院,宜昌 443002)
摘 要:支气管哮喘 (简称哮喘 )是一种以 Thl/Th2免疫失衡、Th2优势应答为特征的慢性气道炎症性疾病。
细胞因子信号转导抑制因子 3 (SOCS-3)是一类与细胞因子 JAK/STAT信号转导途径有关的负反馈调节因子,
参与细胞固有免疫、获得性免疫和炎症反应。近年来研究发现,在哮喘的发生发展中 SOCS-3均表现出分
子水平或功能的异常,提示 SOCS-3可作为哮喘诊断和治疗的新靶点。就 SOCS-3与哮喘的关系研究进展
进行综述,讨论其在哮喘 Th1/Th2免疫失衡中的作用。
关键词:SOCS-3;细胞因子;Th1/Th2;哮喘
中图分类号:R562.2 文献标志码:A
Research progress of SOCS-3 on the imbalance of Th1/Th2 in asthma
DENG Yi, WANG Zhi-Qiang*
(Medical Science College of China Three Gorges University, Yichang 443002, China)
Abstract: Bronchial asthma (asthma) is a kind of chronic airway inflammatory diseases, characterized by immune
imbalance of Thl/Th2 cytokine and Th2-skewed immune response. SOCS-3 is a negative feedback regulatory
protein related to the cytokine signaling transduction pathways of JAK/STAT, which is mainly involved in innate
and adaptive immunity and inflammation. In recent years, researches have found that SOCS-3 has an abnormal
molecular level or impaired function during the onset and development of asthma. Therefore, SOCS- 3 may serve as
a therapeutic and diagnostic target for asthma. In this review, the advances of research on relationship between
SOCS-3 and asthma were summarized, and the roles of SOCS-3 in the imbalance of Th1 and Th2 in asthma were
discussed.
Key words: SOCS-3; cytokine; Th1/Th2; asthma
收稿日期:2013-05-31; 修回日期:2013-06-20
基金项目:三峡大学研究生科研创新基金项目(2012-
CX055)
*通信作者:E-mail: defly2008@163.com
支气管哮喘是一种由多种炎性细胞和细胞因
子相互作用引发的慢性气道炎症性疾病,其发病机
制涉及复杂的细胞级联反应,现在仍不完全清楚,
但 T淋巴细胞中的 Thl和 Th2亚群功能失衡在哮喘
炎症中起核心作用。细胞因子信号转导抑制因子 3
(suppressor of cytokine signaling 3, SOCS- 3) 是近年
发现的一类新型细胞因子信号转导抑制分子,为
SOCS 家族的重要成员之一,主要参与信号转导途
径的负反馈调节。
1 SOCS生物学特征
1.1 SOCS家族概述
Yoshinura等 [1]于 1995年研究细胞因子对易感
基因作用时,发现了一种受细胞因子诱导并对细胞
因子信号转导有负调控作用的蛋白,因其含有 SH2
结构域而命名为CIS (cytokine inducible SH2 containing
protein)。两年后,3个实验小组用不同的实验方法
都发现 SOCS家族的第二位成员 SOCS-1蛋白。
Starr等 [2]在研究单核细胞白血病时,发现了一种
抑制或阻滞 IL-6对M1细胞诱导分化的蛋白,并将
其命名为 SOCS-1 (suppressor of cytokine signaling-1)
生命科学 第25卷1090
蛋白,即细胞信号转导抑制因子或抑制蛋白;Naka
等 [3]也在对小鼠的实验中发现了一种能与 STAT-3
的 SH2结构域发生交叉免疫反应的蛋白,将其命名
为 SSI-1 (STAT induced STAT inhibitor-1),即 STAT
诱导的 STAT抑制蛋白 1;Endo等 [4]发现一种新型
的 JAK (Janus family kinase)调节蛋白,能与 JAK2
催化域 JH1结合,从而将其命名为 JAB (JAK-binding
protein),即 JAK结合蛋白,与前两者不同的是
JAB是人源的。鼠源 SOCS-1基因编码 212个氨基
酸的蛋白质,人源 SOCS-1基因编码 211个氨基酸
的蛋白质。尽管以上 3者的种属来源不尽相同,但
同源性高达到 95%以上。1998年,Hilton等 [5]和
Yoshinura[6]发现了 SOCS家族的另几位成员。到目
前为止,SOCS家族的主要成员有 8位,即 SOCS1~7
及 CIS。
1.2 SOCS结构特征
SOCS家族各成员尽管氨基酸数目有所不同,
结构上也有很大的差异,但是大都具有 3个共同结
构 [7]:N端可变区、SH2结构域和 SOCS盒 (socs
box)。其中 SH2结构域和 SOCS盒是 SOCS调节信
号转导途径所必需的功能区域。SH2结构域与 JAK
(janus family kinase)结合,介导 SOCS与其他信号
转导分子间的结合和相互作用 [8]。与 SH2结构域相
邻的 N端是其发挥功能的重要结构,SOCS-1与
SOCS-3在此区域有一段氨基酸序列是高度同源的,
称为激酶抑制区 (kinase inhibit region, KIR)[9]。KIR
与 JAK活化环 (activation loop)有高度亲和性,因此,
KIR可以竞争性地与 JAK结合,抑制 JAK的激酶
活性,阻断 STAT磷酸化,从而抑制细胞信号转导
的级联反应。SOCS盒是 C端的一段保守序列,由
40个氨基酸残基组成,同源性在 80%以上 [10]。它
不仅可以防止 SOCS蛋白被蛋白酶降解,而且募集
延伸蛋白 BC(elongin BC)、Cullin5、泛素酶 E2等
形成泛素化复合物,促使 JAK被泛素链标记,最
后通过泛素化被降解 [11]。SOCS家族蛋白的 N端的
长度是可变的,其范围在 50~380个氨基酸不等。
SOCS1~3以及 CIS的 N末端相对较短,有 50~75
个氨基酸,而 SOCS4~7的 N末端较长,有数百个
氨基酸。
1.3 SOCS-3的表达和沉默
SOCS-3作为 SOCS家族的重要成员之一,在
人体分布广泛,包括胸腺、脑、心脏、骨骼肌、肺、
肌肉、前列腺等,不同的组织含量不等。正常情况下,
细胞内 SOCS-3表达水平很低或是不表达 [12],但在
细胞因子 (如 IL-6、IFN-α、IFN-γ、EPO、GH、LIF
等 )和激素的刺激下,可快速诱导 SOCS-3的转录
和表达,SOCS-3水平迅速升高,而产生的 SOCS-3
又抑制这种表达机制,形成一个负反馈调节通路。
这种诱导效应具有组织细胞特异性,同时也有可能
会受到其他 SOCS蛋白的调控,如瘦素 (leptin)、白
血病抑制因子 (LIF)、睫神经营养因子 (CNTF)等可
诱导 SOCS3 mRNA表达,而不诱导其他 SOCS mRNA
的表达 [13]。在许多肿瘤细胞中都有发现基因沉默现
象,这是由于是启动子区 CpG岛的异常高度甲基
化导致的。SOCS-3启动子区的 CpG岛是转录因子
的结合位点,对 SOCS-3的转录起始起着重要的作
用。在肿瘤的发生过程中存在 JAK/STAT信号通路
的异常活化,而 SOCS-3在肿瘤细胞系中经常发生
甲基化而被关闭表达 [14],所以,SOCS-3的沉默可
能是 JAK/STAT信号通路异常活化的重要原因。
1.4 SOCS-3抑制信号转导的作用机制
细胞因子与特异性细胞因子受体结合后,激活
JAK/STAT (janus kinase/signal transducer and activator
of transcription)信号通路,导致 STAT磷酸化形成
二聚体,信号转导入细胞核,刺激核内 SOCS-3基
因发生转录 [15],而表达产物 SOCS-3蛋白又反馈性
抑制 JAK/STAT信号蛋白转导的作用,从而阻碍了
JAK/STAT信号通路转导。SOCS-3的负反馈调节主
要通过以下 3种途径 [16]。(1)通过与 SH2结构域相
邻的激酶抑制区 (KIR)作为假底物,竞争性地与
JAK底物结合,抑制 JAK激酶的活性,阻断 STAT
蛋白磷酸化,从而抑制细胞信号转导的级联反应。(2)
利用 SH2结构域与 STAT结构具有相似性,SOCS
与 STAT竞争靶蛋白结合位点,抑制 STAT的活性,
使其不能磷酸化而阻断信号转导;SOCS-3基因的
启动子含有 STAT1/STAT3的结合位点,能调节相
关基因的表达。(3) SOCS盒募集延伸蛋白 BC、
Cullin5、Rbx2、泛素结合酶 E2形成复合体,使结
合于巯基结构域上的 JAK受体被泛素链标记,进
而通过泛素化使其降解,最终抑制 JAK/STAT信号
转导。前两种机制都是抑制了 JAK/STAT的催化活
性,而保留了细胞因子受体,后一种机制却使 JAK
和细胞因子受体都被降解。
2 SOCS-3与哮喘
2.1 哮喘发病免疫机制
支气管哮喘是由多种细胞参与的气道慢性炎症
性疾病,包括气道炎性细胞 (如嗜酸粒细胞、肥大
邓 伊,等:SOCS-3在哮喘Th1/Th2免疫失衡中的作用研究进展第11期 1091
细胞、T淋巴细胞、中性粒细胞 )和结构细胞 (如
平滑肌细胞、气道上皮细胞 )等。目前哮喘发病机
制仍不完全清楚,主要与变态反应、气道炎症反应、
气道高反应性、神经因素等相互作用有关。但近年
来较多的研究显示,辅助性 T淋巴细胞中的 Thl和
Th2亚群免疫应答失衡和 Th2优势应答是哮喘发病
的关键机制。
2.2 SOCS-3影响Th1/Th2免疫平衡
CD4+T细胞选择性地分化为 Th1、Th2、Th17
及 Treg。微环境中的细胞因子种类是影响 Th细胞
分化的关键因素,是 T细胞成熟的重要调节器。已
有研究显示,IFN-γ/STAT1途径和 IL-12/STAT4途
径促进 CD4+T细胞向 Th1分化,而 IL-4/STAT6途
径则有利于 Th2分化 [17]。SOCS调节细胞因子信号
途径调节 CD4+T 细胞的分化,其中 SOCS-1 和
SOCS-3发挥着主要作用 [18]。SOCS-1通过抑制
STAT6的活化,抑制 IL-4诱导的 Th2细胞分化;
SOCS-3过度表达抑制 IL-12依赖的 STAT4活化,
抑制 Th1分化,进而增强 Th2分化。另外,SOCS-3
通过抑制 STAT3途径,抑制 IL-6、IL21、IL-23的
表达。因此,在不同免疫状态下,SOCS-3可能表
现为促进或抑制炎症反应。在 T细胞中,条件性地
去除 SOCS-3基因,既可表现为抑制 Th1型免疫反
应,又可表现为抑制 Th2型免疫反应。这种抑制效
应可能是由于增强了免疫抑制细胞 TGF-β和 IL-10
的水平,而不是直接作用于 Th1和 Th2细胞的分化。
研究显示,Th1优势表达时,SOCS-1在 Th1中的
表达是在 Th2中的 5倍;而 Th0向 Th2分化时,
SOCS-3的表达量则是 Th1中的 23倍 [19]。对临床
上支气管哮喘和异位性皮炎患者的外周血细胞进行
测定,发现 SOCS-3 mRNA表达与病情严重程度呈
正相关。动物实验进一步发现,SOCS-3转基因小
鼠在哮喘发作时,Th2型免疫应答和气道高反应性
等病理特征更为显著,而 Th1型细胞因子 TNF-α、
IFN-γ表达则明显减少。显性负突变 SOCS-3转基
因小鼠与 SOCS-3基因敲除小鼠则表现为 Th2型免
疫应答减弱,说明 SOCS-3的高表达打破了 Th1/
Th2免疫平衡,使 T细胞向着有利于过敏反应发生
的 Th2型细胞免疫方向分化发展 [20]。因此,在 Th2
介导的过敏性免疫疾病中,SOCS-3起到了调节和
维持的作用,提示 SOCS-3可以作为抗过敏药物研
制的新靶点。
2.3 抑制SOCS-3表达在哮喘治疗的价值
SOCS-3是机体免疫反应重要的负反馈调节因
子,与哮喘的发生发展有着密切的关系。SOCS-3
主要在 Th2 细胞中表达,促进 Th2 分泌 IL-4、
IL-5、IL-10等细胞因子和 Th2介导的体液免疫和
超敏反应。同时,SOCS-3可以抑制 STAT3信号的
激活,抑制 Th1型保护性免疫反应,抑制 Th1分泌
IL-2、IFN-γ、TNF-β等细胞因子,减弱巨噬细胞活
化等免疫应答 [21]。另外,Th1型细胞和 Th2型细胞
相互制约失衡后,Th2型细胞因子可以进一步抑制
Th1细胞分泌细胞因子,促进 Th2优势的免疫应答。
因此,抑制或阻断 SOCS-3的表达在哮喘的治疗中
十分有价值。
Th1和 Th2两个亚群的分化平衡,在很大程度
上是由Th1型和Th2型细胞因子的相互作用所介导,
并且 Th1和 Th2分化程度和分化后的稳定性与 Th
起始致敏时的条件有关。有研究显示,Th2型细胞
因子 IL-4和 IL-10对 Th1型细胞因子 IFN-γ的分泌
有明显抑制作用,如在 Th0向 Th1分化早期加入
IL-4,则表现为持久性 Th1抑制作用,导致 Th1分
化持续受阻 [22-23]。在 SOCS-3转基因 T细胞的培养
中,IL-12介导的 Th1细胞分化被选择性抑制,而
IL-4介导的 Th2细胞分化仍保持稳定,促进 Th2优
势表达,这可能与阻滞 IL-12受体信号转导链有关,
最终致使 Th1/Th2免疫失衡。Sun等 [24]采用 siRNA
干预沉默 STAT4或 SOCS-3,后与淋巴细胞共培养
检测 T细胞表达情况,结果显示 STAT4具有调控
IL-12诱导 T细胞向 Th1分化的作用,并且抑制
Th2的分化。在 STAT4缺乏时,Th1细胞分化减少,
而 Th2细胞分化加强,说明抑制 SOCS-3的表达对
IL-12或 IL-4调节 T细胞分化有一定的影响。同样
地,Moriwaki等 [25]的一系列研究发现,采用电穿
孔技术把 SOCS-3的 siRNA导入 CD4+T细胞中使
SOCS-3沉默后,与对照组相比,SOCS-3表达减少
40%,Th2分化受到抑制,IL-17表达增强;他们后
又通过 SOCS3flox/flox小鼠与 CD4-Cre转基因小鼠杂
交灭活 T细胞中的 SOCS-3,与卵清蛋白诱导的哮
喘小鼠相比,杂交小鼠的肺泡灌洗液中存在较少的
IL-4和嗜酸性粒细胞。这些研究显示,有效抑制
SOCS-3在 CD4+T细胞中的表达,可以在过敏性哮
喘的发生发展过程中发挥治疗作用。另外,López
等 [26]采用质粒编码半乳糖凝集素 -3 (Gal-3)对慢性
哮喘小鼠进行基因治疗,并运用微阵列数据分析法
定量分析结果,相对于哮喘模型组,治疗组小鼠细
胞中 SOCS-3表达减低,说明 Gal-3对 SOCS-3负
调控改善了 Th2型过敏性炎症,是一个有价值的治
生命科学 第25卷1092
疗途径。
2.4 SOCS-3与哮喘发生中的炎症反应
哮喘是一种以 Th2细胞优势表达和嗜酸性细胞
增多等为特征的炎症反应疾病。在炎症反应中,巨
噬细胞受到微环境的影响而被极化为不同的表型,
表现出明显的功能差异。M1型和M2型巨噬细胞
分别通过参与增强炎症反应或下调免疫应答两个截
然不同的过程来调节炎症反应。Spence等 [27]研究
发现,M2型巨噬细胞在 SOCS-3缺陷小鼠体内大
量表达,而M1型巨噬细胞则在 SOCS-2缺陷小鼠
体内表达升高,这证明 SOCS是巨噬细胞极化的重
要调节蛋白,间接通过巨噬细胞调节免疫应答。
Qin等 [28]研究 SOCS-3对巨噬细胞极化和功能的影
响,发现与 SOCS-3转基因小鼠相比,从 SOCS-3
基因缺陷小鼠体内提取的巨噬细胞显示出具有增
强和延长 JAK/STAT信号通路的作用,并且具有更
强的诱导 Th1和 Th17细胞分化的能力。这显示
SOCS-3与抑制 M1型促炎症反应巨噬细胞有关,
人们可以通过抑制 SOCS-3基因的表达来减轻炎症
反应,进而达到治疗炎症疾病的目的。因此,在哮
喘的发生过程中,M1型巨噬细胞通过分泌促炎性
细胞因子、趋化因子 (如 IL-12、IL-6、TNF等 ),
促进 IL-12介导的 Th1的反应;而M2型巨噬细胞
有支持 Th2相关效应的作用,分泌抗炎细胞因子、
生长因子 (如 IL-10、TGF-β等 )参与气道重塑。
随着对哮喘发病机制的深入探索,发现血清
IgE水平与 SOCS-3密切相关,而 IgE抗体水平升
高是哮喘发病中最关键的因素之一。研究发现,
SOCS-3表达可致外周 Th2细胞累积增加 [29],Th2
通过分泌 IL-4、IL-6和 IL-10促进 B细胞分泌 IgE,
IgE与肥大细胞结合后再与嗜碱性粒细胞上的高亲
和力 IgE受体 FcεR I结合,当变应原再次进入机体
结合 IgE后,诱发多种生物活性物质的合成和释放,
导致速发超敏反应 (I型超敏反应 )[30]。因此,临床
上通过抑制 SOCS-3治疗 IgE类过敏性哮喘是新的
研究方向。
3 结语
SOCS-3影响 Th1/Th2免疫平衡,对哮喘的发
生发展有着重要的作用,因此,通过抑制其表达来
治疗哮喘是目前研究的一个重要方向。近年来,以
SOCS-3为分子靶标、SOCS-3基因为靶基因,对支
气管哮喘等疾病的研究还在起步阶段。随着对
SOCS蛋白表达研究的深入,与 SOCS-3相关的小
分子化学物质会相继出现,针对 SOCS-3的有效药
物将会开拓哮喘治疗药物的新市场。
目前研究已经证实,SOCS家族中 SOCS-1、
SOCS-3和 SOCS-5可以调节 CD4+T细胞分化,但
其他家族成员是否有同样的作用则不十分清楚。
SOCS家族成员间的相互作用以及表达差异又会如
何影响机体免疫应答还有待于研究。此外,树突状
细胞或巨噬细胞的表达情况与 SOCS家族成员是否
具有关联性,也是需要研究的。
[参 考 文 献]
[1] Yoshimura A, Ohkubo T, Kiguchi T, et al. A novel
cytokine-inducible gene CIS encodes an SH2-containing
protein that binds to tyrosine-phosphorylated interleukin 3
and erythropoietin receptors. EMBO J, 1995, 14(12):
2816-26
[2] Starr R, Willson TA, Viney EM, et al. A family of
cytokine-inducible inhibitors of signaling. Nature, 1997,
387(6636): 917-21
[3] Naka T, Narazaki M, Hirata M, et al. Structure and
function of a new STAT-induced STAT inhibitor. Nature,
1997, 387(6636): 924-9
[4] Endo TA, Masuhara M, Yokouchi M, et al. A new protein
containing an SH2 domain that inhibits JAK kinases.
Nature, 1997, 387(6636): 921-4
[5] Hilton DJ, Richardson RT, Alexander WS, et al. Twenty
proteins containing a C-terminal SOCS box form five
structural classes. Proc Natl Acad Sci USA, 1998, 95(1):
114-9
[6] Yoshimura A. The CIS/JAB family: novel negative
regulators of JAK signaling pathways. Leukemia, 1998,
12(12): 1851-7
[7] Yoshimura A. Regulation of cytokine signaling by the
SOCS and spred family proteins. Keio J Med, 2009,
58(2): 73-83
[8] Babon JJ, Kershaw NJ, Murphy JM, et al. Suppression of
cytokine signaling by SOCS3: characterization of the
mode of inhibition and the basis of its specificity.
Immunity, 2012, 36(2): 239-50
[9] Akhtar LN, Benveniste EN. Viral exploitation of host
SOCS protein functions. J Virol, 2011, 85(5): 1912-21
[10] Babon JJ, Sabo JK, Soetopo A, et al. The SOCS box
domain of SOCS3: structure and interaction with the
elonginBC-cullin5 ubiquitin ligase. J Mol Biol, 2008,
381(4): 928-40
[11] Babon JJ, Sabo JK, Zhang JG, et al. The SOCS box
encodes a hierarchy of affinities for Cullin5: implications
for ubiquitin ligase formation and cytokine signalling
suppression. J Mol Biol, 2009, 387(1): 162-74
[12] Kolesnik TB, Nicholson SE. Analysis of suppressor of
cytokine signalling (SOCS) gene expression by real-time
quantitative PCR. Methods Mol Biol, 2013, 967: 235-48
[13] Babon JJ, Nicola NA. The biology and mechanism of
action of suppressor of cytokine signaling 3. Growth Fac-
邓 伊,等:SOCS-3在哮喘Th1/Th2免疫失衡中的作用研究进展第11期 1093
tors, 2012, 30(4): 207-19
[14] Wilop S, van Gemmeren TB, Lentjes MH, et al.
Methylation-associated dysregulation of the suppressor of
cytokine signaling-3 gene in multip le myeloma.
Epigenetics, 2011, 6(8): 1047-52
[15] Palmer DC, Restifo NP. Suppressors of cytokine signaling
(SOCS) in T cell differentiation, maturation, and function.
Trends Immunol, 2009, 30(12): 592-602
[16] Linossi EM, Babon JJ, Hilton DJ, et al. Suppression of
cytokine signaling: The SOCS perspective. Cytokine
Growth Factor Rev, 2013, 24(3): 241-8
[17] Tamiya T, Kashiwagi I, Takahashi R, et al. Suppressors of
cytokine signaling (SOCS) proteins and JAK/STAT
pathways: regulation of T-cell inflammation by SOCS1
and SOCS3. Arterioscler Thromb Vasc Biol, 2011, 31(5):
980-5
[18] Böttcher I, Bellinghausen I, König B, et al. Different
regulation of T helper 1- and T helper 2-promoting
cytokine signalling factors in human dendritic cells after
exposure to protein versus contact allergens. Immunology,
2008, 123(1): 139-44
[19] Cooper JC, Shi M, Chueh FY, et al. Enforced SOCS1 and
SOCS3 expression attenuates Lck-mediated cellular
transformation. Int J Oncol, 2010, 36(5): 1201-08
[20] Zhang JG, Nicholson SE. Detection of endogenous
SOCS1 and SOCS3 proteins by immunoprecipitation and
western blot analysis. Methods Mol Biol, 2013, 967: 249-
59
[21] Yoshimura A, Suzuki M, Sakaguchi R, et al. SOCS,
inflammation, and autoimmunity. Front Immunol, 2012, 3:
20
[22] Nakaya M, Hamano S, Kawasumi M, et al. Aberrant IL-4
production by SOCS3-over-expressing T cells during
infection with Leishmania major exacerbates disease
manifestations. Int Immunol, 2011, 23(3): 195-202
[23] Tang JF, Guan SH, Wang ZG. Roles of interleukin-10
differentiated dendritic cell of allergic asthma patients in
T-lymphocyte proliferation in vitro. Zhonghua Yi Xue Za
Zhi, 2012, 92(40): 2851-4
[24] Sun L, Wei XL, Wang QS, et al. Experimental investigation
of roles of STAT4 and SOCS3 in differentiation and cytokine
secretion of T helper cells by RNA interference. Zhonghua
Yi Xue Za Zhi, 2009, 89(17): 1197-202
[25] Moriwaki A, Inoue H, Nakano T, et al. T cell treatment
with small interfering RNA for suppressor of cytokine
signaling 3 modulates allergic airway responses in a
murine model of asthma. Am J Respir Cell Mol Biol,
2011, 44(4): 448-55
[26] López E, Zafra MP, Sastre B, et al. Gene expression
profiling in lungs of chronic asthmatic mice treated with
galectin-3: down regulation of inflammatory and
regulatory genes. Mediators Inflamm, 2011, 2011: 823279
[27] Spence S, Fitzsimons A, Boyd CR, et al. Suppressors of
cytokine signaling 2 and 3 diametrically control
macrophage polarization. Immunity, 2013, 38(1): 66-78
[28] Qin H, Holdbrooks AT, Liu Y, et al. SOCS3 deficiency
promotes M1 macrophage polarization and inflammation.
J Immunol, 2012, 189(7): 3439-48
[29] Hui Y, Xie JJ, Li L, et al. Association between suppressors
of cytokine signaling mRNA expression and Th1/Th2
balance in children with asthma. Zhongguo Dang Dai Er
Ke Za Zhi, 2012, 14(10): 755-8
[30] Deo SS, Mistry KJ, Kakade AM, et al. Role played by Th2
type cytokines in IgE mediated allergy and asthma. Lung
India, 2010, 27(2): 66-71