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Microwave assisted synthesis of ionic liquids and their influence on lipase catalysis

几种离子液体的微波法合成及其对脂肪酶催化效果的影响



全 文 :第9卷第3期
2011年5月
生 物 加 工 过 程
ChineseJournalofBioprocessEngineering
Vol.9No.3
May2011
doi:10.3969/j.issn.1672-3678.2011.03.007
收稿日期:2010-10-15
基金项目:江西省科技攻关项目(20041B0103000)
作者简介:郭炳其(1985—),男,湖北黄石人,硕士研究生,研究方向:发酵工程;段学辉(联系人),教授,Email:xhduan@ncu.edu.cn
几种离子液体的微波法合成及其对脂肪酶
催化效果的影响
郭炳其,段学辉,傅 奇,魏 斌,贾奎艳
(南昌大学 食品科学与技术国家重点实验室,南昌 330047)
摘 要:采用微波法合成9种目标离子液体,对中间体[Bmim]Br的合成条件及其离子液体对全细胞催化剂催化效
果的影响进行考察。直接将产脂肪酶真菌粗状假丝酵母(Candidavalida)T2细胞固定在聚氨酯颗粒中,制备固定
化细胞催化剂,将其应用于合成离子液体介质中催化甲醇与大豆油酯交换反应制备生物柴油。结果表明:微波功
率200W下间隙照射100s,中间体[Bmim]Br的收率达9516%,有效地提高了离子液合成产率;在[Bmim]PF6离
子液中固定化细胞酶催化转酯化反应30h,大豆油的转化率达42%,反应效果较其他8种合成离子液体好;固定化
细胞颗粒和[Bmim]PF6重复使用4次,其油脂转化率和酶活保持率分别达到29%和69%,表现出较好的催化反应
稳定性。
关键词:离子液体;微波;脂肪酶;酯交换;全细胞
中图分类号:Q8142    文献标志码:A    文章编号:1672-3678(2011)03-0031-06
Microwaveassistedsynthesisofionicliquidsandtheirinfluenceon
lipasecatalysis
GUOBingqi,DUANXuehui,FUQi,WEIBin,JIAKuiyan
(StateKeyLaboratoryofFoodScienceandTechnology,NanchangUniversity,Nanchang330047,China)
Abstract:Ninekindsoftargetionicliquidsweresynthesisedbymicrowaveradiation,thepreparationcon
ditionsofintermediate[Bmim]Brandtheinfulenceoftheseionicliquidstothewholecelcatalystwere
studied.TheimmobilizedcelcatalystwaspreparedbylipaseproducingfungiCandidavalidaT2immobi
lizedonpolyurethaneparticlesdirectly.Then,theimmobilizedcelcatalystwasusedtocatalyzethe
transesterificationofsoybeanoilandmethanoltoproducebiodieselinthepresenceofionicliquids.The
resultsshowedthattheyieldofintermediate[Bmim]Brreached95.16% underthemicrowavepowerof
200Wandtheintermissioniradiationtimeof100s,thesynthesisyieldofionicliquidswasimproved.
Inthe[Bmim]PF6ionicliquid,theconversionratioofsoybeanoilreached42% within30h,andits
catalyticeficiencywasbeterthanthatoftheothereightionicliquids.Whentheimmobilizedcelparti
clesand[Bmim]PF6wereusedfourtimes,theconversionratioofsoybeanoilandtheremainingenzyme
activitywere29% and69%,respectively.
Keywords:ionicliquids;microwave;lipase;transesterification;wholecel
  作为传统有机溶剂的替代品,一种新型的绿色
溶剂———离子液体 (ionicliquids,ILs)在生物催化
领域的应用已引起人们的高度重视[1-2]。离子液体
的合成通常采用两步法,利用微波辅助合成离子液
体,其反应速率较传统加热法速率快几十倍甚至上
千倍,且反应产率高,是一种具有工业化前景的绿
色合成方法[3]。微波法制备离子液体的过程中,随
着离子液体的生成,反应体系很容易过热和失控,
导致卤代烃的气化和产物的分解。为了解决这一
问题,Varma等[4]采用微波间歇辐射并间歇混合反
应物的操作,快速合成了离子液体,但未对其合成
工艺条件进行优化研究。
脂肪酶催化合成生物柴油反应中,有机溶剂和
甲醇对脂肪酶会造成不可逆失活,导致酶的催化活
性降低[5]。离子液体在酶催化反应中能有效地解
决酶在有机溶剂中失活的问题,且能够提高酶的热
稳定性和催化反应的选择性[6-7],在高极性底物的
生物转化反应中具有巨大的应用潜力[8]。近年来,
国内外学者对离子液体中脂肪酶催化酯交换反应
展开了大量的研究工作,固定化全细胞具有价格优
廉,可重复使用等优点,但利用其在离子液体中催
化合成生物柴油的研究还尚未见文献报道。
本研究采用微波辐射间隙磁力搅拌,对两步法
合成离子液体的工艺进行优化,制备9种目标离子
液化合物,考察合成离子液体对固定化细胞酶催化
酯交换反应的影响。
1 材料与方法
11 原料与试剂
菌种:粗状假丝酵母(Candidavalida)T2,南昌
大学食品科学与技术国家重点实验室保藏菌株。
试剂:N 甲基咪唑、溴乙烷和溴代正丁烷均为
分析纯,上海晶纯试剂有限公司;吡啶、六氟磷酸
钾、对甲基苯磺酸钠等试剂均为分析纯,国药集团
化学试剂有限公司。
12 发酵培养基及培养条件
培养基(g/L):橄榄油 150,蛋白胨 200,
NH4NO3100,MgSO410,K2HPO420,Tween 80
05,糊精50。
培养方法:在温度30℃、接种量8%、摇床转速
200r/min条件下对菌株粗状假丝酵母 C.validaT2
发酵培养48h,培养结束后将载体颗粒与发酵液过
滤分离,经生理盐水清洗和真空冷冻干燥,测定其
酶活为3025U。酶活定义:40℃下,每分钟催化脂
肪水解产生1μmol脂肪酸所需的干细胞质量定义
为一个脂肪酶酶活单位(U)。
13 微波法合成离子液体
131 中间体的合成
取干燥后的一定摩尔比的 N 甲基咪唑和溴代
正丁烷于锥形瓶中,置于磁力搅拌器上搅拌,混合
均匀后,将其放入已预热的微波炉中,照射一段时
间后取出,间歇采用磁力搅拌器搅拌,反应结束后
冷却至室温,将油状黏稠液倒入分液漏斗中,用乙
酸乙酯萃取3次,下层萃取液经旋转蒸发,真空干燥
得到产物溴化1 丁基 3 甲基咪唑([Bmim]Br),
称质量,计算收率。
反应步骤同上,选取一定摩尔比的 N 甲基咪
唑和溴乙烷,以及吡啶和溴代正丁烷分别合成中间
体溴化1 乙基 3 甲基咪唑([Emim]Br)和溴化
1 正丁基吡啶([BuPy]Br),中间体结构如图 1
所示。
图1 3种中间体的结构
Fig.1 Structureofthreeintermediates
132 目标离子液体的合成
采用两步法,按表1的设计,选用含其他3种阴
离子的物质分别与 [Emim]Br、[Bmim]Br和
[BuPy]Br发生复分解反应,利用微波辐射一定时
间,间歇磁力搅拌的方法合成相应的离子液体。其
中[Bmim]PF6的合成原理图如图2所示。
133 中间体的合成条件优化
第二步反应是用一种阴离子置换中间体的阴
离子得到目标离子液体,即通过离子交换对中间离
子液体进行改性,在合成工艺上对影响中间体合成
的主要因素进行考察、优化,如反应物摩尔比、微波
辐射功率和辐射时间等。
14 全细胞催化剂的制备
在发酵培养基中,接入一定量的菌液及经过无
菌处理的聚氨酯泡沫颗粒载体(5mm×5mm×
23 生 物 加 工 过 程   第9卷 
5mm),在30℃、200r/min条件下摇床培养48h,
细胞进入或依附于聚氨酯泡沫内壁生长,培养结束
后将载体颗粒与发酵液过滤分离,生理盐水清洗3
次,真空冷冻干燥得固定化全细胞催化剂。
表1 目标离子液体的设计
Table1 Designoftargetionicliquids
序号 反应物A 反应物B 目标离子液体
1 [Emim]Br KPF6 [Emim]PF6
2 [Bmim]Br KPF6 [Bmim]PF6
3 [BuPy]Br KPF6 [BuPy]PF6
4 [Emim]Br NaPTSA [Emim]PTSA
5 [Bmim]Br NaPTSA [Bmim]PTSA
6 [BuPy]Br NaPTSA [BuPy]PTSA
7 [Emim]Br KNO3 [Emim]NO3
8 [Bmim]Br KNO3 [Bmim]NO3
9 [BuPy]Br KNO3 [BuPy]NO3
 注:PTSA为对甲基苯磺酸根。
图2 两步法合成离子液体[Bmim]PF6
Fig.2 Synthesisofionicliquid[Bmim]PF6by
twostepmethods
15 离子液体中的酯交换反应
将一定摩尔比的20mL大豆油和甲醇,及质量
分数5%的离子液体,加入到50mL三角瓶中,搅拌
均匀后加入全细胞催化剂(约10g),30℃下密闭
振荡反应一定时间,甲醇分2次添加。反应结束后,
离心分层,上层为产物相,下层为离子液体相,取上
层产物相进行气相色谱分析。以不加离子液体反
应分离液为空白对照组。
16 气相分析
采用气相色谱法对产物进行分析[9]。GC
2010气相色谱仪,PEG 20M毛细管柱(30m×
025mm),FID检测器,分流进样,进样口温度为
260℃,检测器温度为 270℃,程序升温:柱温
140℃,以8℃/min升至240℃,保温10min。采用
内标法,以十七酸甲酯为内标物,将已知浓度的内
标物与待测试样进行配比,混合均匀,取样注入气
相色谱进行检测。
大豆油转化率 =(实际生成的脂肪酸甲酯含
量/理论生成的脂肪酸甲酯含量)×100%。
2 结果与讨论
21 离子液体的筛选
利用微波法制备的9种目标离子液体作为反应
介质,在醇油体积比4∶1、摇床振荡频率200r/min、
30℃条件下加入一份固定化的全细胞催化剂,在酯
交换体系中反应24h,进行生物柴油的制备。反应
结束后产物进行气相分析,各离子液体中大豆油转
化率如图3所示。
图3 各离子液体中大豆油的转化率
Fig.3 Conversionrateofsoybeanoilineachionicliquid
由图3可知:离子液体[Bmim]PF6反应体系中,
全细胞催化剂催化反应效果最好,油脂转化率达
37%,[BuPy]NO3中的转化率最低(3%)。除以
NO-3 为阴离子的离子液反应体系外,其他各离子液
体系中的酯交换转化率都较空白组有不同程度的
增加。不同离子液中细胞酶催化反应的转化率的
明显差异可能与离子液体的黏度、盐效应、甲醇浓
度以及微生物的兼容性对酯交换反应的影响有关;
部分离子液体的加入降低了有机溶剂对酶的影响,
从而使催化转化率较空白组有所提高。而以 NO-3
为阴离子的离子液反应体系中的酶催化转化率较
空白组低,可能是NO-3 为阴离子的离子液体对酶的
折叠结构有破坏作用,影响了酶的催化活性[10],导
致该体系的转化率有所降低。
22 合成条件对中间体[Bmim]Br收率的影响
极性较强的中间体[Bmim]Br极易吸收微波,
单次加热时间过长会使反应体系产生过热效应,导
致温度超过体系的沸点而引起液体沸腾[11]。因此,
33 第3期 郭炳其等:几种离子液体的微波法合成及其对脂肪酶催化效果的影响
合成中间体[Bmim]Br的过程中,采用微波加热、间
歇磁力搅拌的方法,考察反应物的摩尔比、微波辐
射功率和辐射时间 3个合成条件对中间体
[Bmim]Br收率的影响,结果如图4~图6所示。
图4 反应物摩尔比对[Bmim]Br收率的影响
Fig.4 Efectofinteractantmolarratioon
yieldof[Bmim]Br
从图4可以看出:随着溴代正丁烷与 N 甲基
咪唑摩尔比的增加,[Bmim]Br收率呈现先增加后
平稳的趋势。当其摩尔比为11∶1时,收率相对较
高 (7895%),继 续 增 加 溴 代 正 丁 烷 的 量,
[Bmim]Br的收率趋于平稳。较多溴代正丁烷的加
入会给后续纯化处理增加困难,导致目标产物中含
有杂质,对以离子液为反应介质的酯交换反应产生
不良影响。因此,反应选择溴代正丁烷与 N 甲基
咪唑的摩尔比为11∶1。
图5 微波功率对[Bmim]Br收率的影响
Fig.5 Efectofmicrowavepoweron
yieldof[Bmim]Br
由图5可知:微波功率为200W时,[Bmim]Br
收率相对较大,达到8453%。由于反应为合成反
应,当微波功率小于200W时,可能功率偏低,不能
充分诱导反应的进行,致使反应速率慢,产率偏低;
当微波功率达到220W以上时,反应液温度出现过
热现象,溴代正丁烷有所挥发,导致产率下降。微
波功率为200W时,反应收率较高。
60s—(30s×2);80s—(30s×2+20s×1);100s—(30s×2+
20s×2);120s—(30s×2+20s×3);140s—(30s×2+20s×4)
图6 微波辐射时间对[Bmim]Br收率的影响
Fig.6 Efectofmicrowaveradiation
timeonyieldof[Bmim]Br
由图6可知:总辐射时间为100s和120s时,
[Bmim]Br的收率都大于95%。虽然总照射时间为
120s时的收率较100s时略有增加,但其产物颜色有
所加深,可能有其他杂质化合物生成,故选择200W下
总辐射100s进行中间体[Bmim]Br合成反应。
23 目标产物[Bmim]PF6的红外光谱表征
目标产物[Bmim]PF6的红外测试结果如图 7
所示。
图7 目标产物[Bmim]PF6的红外光谱
Fig.7 Infraredspectrogramoftarget
production[Bmim]PF6
由图7可知:在3400~3200cm-1范围无O—H
的特征吸收谱带,故离子液体中不含O—H,表明离
子液体中的水已经完全被除去。具体的特征峰归
属如下:316986和311739cm-1处为咪唑环上
C—H键伸缩振动峰,296652和287645cm-1处为
侧链烷基C—H键伸缩振动峰,157264和 74831
cm-1处分别为咪唑环的骨架振动峰和弯曲振动峰,
116879cm-1处为咪唑环 C—N键伸缩振动,
146427和138611cm-1处分别为—CH2和—CH3
的弯曲振动峰,83739cm-1处宽而强的吸收峰为
43 生 物 加 工 过 程   第9卷 
PF6
-的P—F键伸缩振动峰,这表明合成的离子液体
确实为[Bmim]PF6。
在3100~3000cm-1波数范围内没有氢键的
吸收谱带,这与配合性较弱的阴离子PF6
-不能与其
他离子形成强的氢键特性一致,表明红外谱图的结
果与[Bmim]PF6无氢键相一致。
24 离子液体中醇油摩尔比对酯交换反应的影响
酯交换反应是油脂与醇的转酯化反应,底物大豆
油和甲醇的摩尔比是影响脂肪酶在离子液体中催化
反应的一个重要因素。根据 Shimada等[12]的报道,
当甲醇和大豆油的摩尔比为15时,甲醇在该油中的
溶解度达到最小值,高浓度的甲醇易导致脂肪酶的失
活。在[Bmim]PF6介质体系和无离子液体系中进行
转酯化反应,醇油摩尔比对固定化细胞酶催化大豆油
和甲醇酯交换反应24h的结果如图8所示。
图8 醇油摩尔比对转化率的影响
Fig.8 Efectsofmolarratioofmethanolto
oilonconversionrate
从图8可以看出:在离子液[Bmim]PF6介质体
系中,固定化细胞酶所能耐受的甲醇量与无离子液
体系相比明显增加,转化率较无离子液体系中的转
化率有较大程度提高;醇油摩尔比为4∶1时,转化率
达到 38%,继续增加甲醇的量,转化率反而降低。
酯交换反应是一个可逆反应,一定范围内增大反应
物浓度应有利于正反应的进行,但过量的甲醇会抑
制酶的催化作用,造成酶的不可逆失活[13],影响催
化反应的进行,导致转化率降低。在离子液介质
中,由于离子液体可以作为甲醇的储存相,在一定
程度上能减轻甲醇对微生物细胞酶的毒害作用[14],
从而提高酶的催化效率。
25 离子液体中反应时间对酯交换转化率的影响
在醇油摩尔比为4∶1的条件下,[Bmim]PF6介
质体系和无离子液体系中大豆油转化率随固定化
细胞酶催化反应时间变化的实验结果如图9所示。
由图9可知:无离子液体系中,20h后转化率几乎不
再变化,且过程整体转化率较低。离子液体介质
中,催化反应开始后,转化率增长速率较快,反应到
30h时,转化率达到42%,反应30h后转化速率减
缓,40h后转化率基本恒定,酯交换反应已经达到
平衡。说明离子液体[Bmim]PF6的加入能有效提高
固定化细胞酶的催化效率和反应体系的转化率。
图9 反应时间对转化率的影响
Fig.9 Efectsofreactiontimeonconversionrate
图10 不同体系下的固定化细胞稳定性
Fig.10 Stabilityofimmobilizedcelsindiferentsystems
26 离子液体和固定化细胞酶重复使用的稳定性
固定化细胞催化剂的优势在于制备成本相对
较低,可以重复利用和连续化操作。为了考察固定
化细胞酶和离子液体重复使用的稳定性,以石油醚
体系为对照,将固定化细胞和离子液重复用于催化
新鲜底物,各批次酯交换反应30h的转化率如图10
所示。由图10可知:重复使用到第4个反应批次
时,石油醚体系下转化率和酶活保持率分别为4%
53 第3期 郭炳其等:几种离子液体的微波法合成及其对脂肪酶催化效果的影响
和25%;而离子液体系下,大豆油转化率为29%,酶
活保持率仍达到69%,固定化细胞和离子液均表现
出较好的重复使用性。
3 结论
利用微波法合成了9种目标离子液体,通过酯
交换反应筛选到适合粗状假丝酵母 Candidavalida
T2脂肪酶催化甲醇与大豆油酯交换反应的离子液
体反应介质[Bmim]PF6。经过中间体[Bmim]Br的
合成条件优化,当反应中溴代正丁烷用量为N 甲基
咪唑用量的 11倍、微波功率 200W、总辐射时间
100s时,[Bmim]Br的合成收率达到9516%,有效
地提高了反应产率。
在离子液体[Bmim]PF6的介质体系中,微生物
全细胞CandidavalidaT2脂肪酶作为催化剂催化甲
醇与大豆油酯交换反应制备生物柴油,与传统的酶
法制备生物柴油相比,反应介质离子液能降低反应
物甲醇和副产物甘油对细胞脂肪酶的负面影响,在
醇油摩尔比为4∶1的条件下,固定化细胞酶催化酯
交换反应30h的大豆油转化率达42%。固定化细
胞颗粒和离子液体[Bmim]PF6重复使用4次,油脂
转化率和酶活保持率分别为29%和69%,表现出较
好的催化反应稳定性。
参考文献:
[1] LozanoP,PiamtongkamR,KohnsK,etal.Ionicliquidsimprove
citronelylestersynthesiscatalyzedbyimmobilizedCandidaant
arcticalipaseBinsolventfreemedia[J].GreenChemistry,
2007,9(7):780784.
[2] ParkS,KazlauskasRJ.Biocatalysisinionicliquidsadvantages
beyondgreentechnology[J].CurentOpinioninBiotechnology,
2003,14(4):432437.
[3] MartínezPalouR.Microwaveassistedsynthesisusingionicliq
uids[J].MolecularDiversity,2010,14(1):325.
[4] VarmaRS,NamboodiriVV.Solventfreepreparationofionicliq
uidsusingahouseholdmicrowaveoven[J].PureandApplied
Chemistry,2001,73(8):13091313.
[5] KodaR,NumatT,HamaS,etal.Ethanolysisofrapeseedoilto
producebiodieselfuelcatalyzedbyFusariumheterosporumlipase
expressingfungusimmobilizedwholecelbiocatalysts[J].Journal
ofMolecularCatalysisB:Enzymatic,2010,66(1/2):101104.
[6] 王文魁,包宗宏.氯铝酸离子液体催化大豆油制备生物柴油
[J].中国油脂,2007,32(9):5153.
[7] 李在均,朱授兴,单海霞.离子液体作为脂肪酶生物催化绿色
反应介质的研究进展[J].江南大学学报:自然科学版,2009,
8(4):495504.
[8] SeddonKR.Ionicliquidsforcleantechnology[J].JChemTech
nolBiotechnol,1997,68(4):351356.
[9] 李元元,李春,唐凤仙,等.固定化脂肪酶催化棉籽油合成生
物柴油[J].石河子大学学报:自然科学版,2008,26(5):
598603.
[10] KaarJL,JesionowskiAM,BerberichJA,etal.Impactofionic
liquidphysicalpropertiesonlipaseactivityandstability[J].JAm
ChemSoc,2003,125(14):41254131.
[11] 张冲,房旭彬,田丹碧.微波法合成离子液体1 丁基 3 甲基
咪唑四氟硼酸盐的研究[J].化学试剂,2007,29(2):7274.
[12] ShimadaY,WatanabeY,SugiharaA,etal.Enzymaticalcoholysis
forbiodieselproductionandapplicationofthereactiontooilpro
cessing[J].JournalofMolecularCatalysisB:Enzymatic,2002,17
(3/5):133142.
[13] KaiedbM,SamukawT,KondoA,etal.Efectofmethanoland
watercontentsonproductionofbiodieselfuelfromplantoilcata
lyzedbyvariouslipasesinasolventfreesystem[J].JBiosciBio
eng,2001,91(l):1215.
[14] AraiS,NakashimaK,TaninoT,etal.Productionofbiodieselfuel
fromsoybeanoilcatalyzedbyfunguswholecelbiocatalystsin
ionicliquids[J].EnzymMicrobTech,2010,46(1):5155.
63 生 物 加 工 过 程   第9卷