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Identification of a ε-polylysine-producing strain and study of its biosynthetic conditions

产ε-聚赖氨酸菌株生物合成条件研究



全 文 :! 第 " 卷第 # 期
#$$% 年 % 月
生 物 加 工 过 程
&’()*+* ,-./)01 -2 3(-4/-5*++ 6)7()**/()7
809 #$$%
· :%! ·
产 !;聚赖氨酸菌株生物合成条件研究
朱宏阳:,陈玮玮:,徐! 虹:,代书玲#!
(:<南京工业大学! 制药与生命科学学院,南京 #:$$$=;#<上海农林职业技术学院,上海 #$:>$$)
摘! 要:对一株产 !;聚赖氨酸 !"#$%$#&%’&($ +4? @A>;" 菌株进行生理生化特性研究。并通过 %A 发酵罐中 !;@A 的合
成条件的考察,发现在搅拌转速为 "%$ / B C(),4D E? $,初糖浓度为 "F并补糖的操作条件下 !;@A的质量浓度可高达
>? >% 7 B A,产率提高近 :$ 倍。
关键词:!;聚赖氨酸;北里孢菌属;生物合成;发酵控制
中图分类号:G="=? =! ! ! ! 文献标识码:H! ! ! ! 文章编号::>I# J ">IK(#$$%)$# J $$:% J $E
!"#$%&’&()%&*$ *’ ) !+,*-.-./&$#+,0*"1(&$2 /%0)&$ )$" /%1".
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(:? &-11*7* -2 A(2* T5(*)5* 0)U @’0/C059,N0)V()7 M)(W*/+(X9 -2 Y*5’)-1-79,N0)V()7 #:$$$=,&’()0;
#< T’0)7’0( Z-50X(-)01 Y*5’)(501 &-11*7* -2 H7/(5.1X./* [ \-/*+X/9,T’0)7’0( #$:>$$,&’()0)
53/%0)(%:T9+X*C0X(501 +X.U9 -) X’* +X/0(),!"#$%$#&%’&($ +4< @A>;",()51.U()7 C-/4’-1-79,4’9+(-1-7(501 0)U
](-5’*C(501 5’0/05X*/+ P0+ 50//(*U -.X< S)W*+X(70X(-) -) X’* 2*/C*)X0X(-) 5-)U(X(-)+ -2 !;@A P0+ 5-)U.5X*U
P(X’ 0 % A 2*/C*)X*/< M)U*/ X’* -4X(C01 5-)U(X(-):4D E< $,+X(//()7 +4**U "%$ / B C(),()(X(01 C0++ 5-)5*)X/0;
X(-) -2 71.5-+* 0X "F P(X’ ()X*/C(XX*)X +.441*C*)X,X’* C0++ 5-)X*)X -2 !;@A /*05’*U >< >% 7 B A,0)U X’*
4/-U.5X(W(X9 -2 ";@A P0+ :$;2-1U+ ’(7’*/ X’0) X’0X ]9 X’* +’0^*U 210+^ 5.1X./*<
6#. 7*0"/:!;4-1919+()*;!"#$%$#&%’&($;](-+9)X’*+(+;2*/C*)X0X(-) 5-)X/-11()7
! ! !;聚赖氨酸(!;4-1919+()*,!;@A)是一种由放线
菌大量生产的氨基酸同型聚合物,由人体必需氨基
酸 A;赖氨酸的 !;氨基与另一 A;赖氨酸的 #;羧基形
成的 !;酰胺键连接而成[:]。!;@A 是一种水溶性的
可生物降解的生物高分子,通常由 #% _ "$ 个赖氨酸
单体组成,相对分子量在 " %$$ _ E %$$ 之间。!;@A
具有广谱抑菌性,能够抑制革兰氏阳性菌、革兰氏阴
性菌、真菌、一些耐热性芽孢杆菌及病毒等,在中性
和微酸性环境条件有较强的抑菌性。!;@A 热稳定
性好,可用于米饭、面条、糕点等淀粉和快餐食品及
奶油、色拉、罐头、肉制品等[#]。
笔者从土壤中筛选得到一株高产 !;@A 菌株,
!"#$%$#&%’&($ +4? @A>;"。为了考察其生物合成 !;@A
的性能,对其形态特征和生理生化特性进行了研究,
并在 % A发酵罐中对其生物合成进行了研究。
89 材料与方法
:? :! 材! 料
:? :? :! 试菌株
供试放线菌为 !;@A产生菌株 @A>;" 菌株,由本
! 收稿日期:#$$%;$E;$:
基金项目:国家十五攻关项目资助(#$$E3HI:"3$>;#)
作者简介:朱宏阳(:=I=;),男,硕士研究生,主要从事生物高分子微生物学方面的研究。
联系人:徐! 虹,$#%;K"%KI""#,‘.’a )V.X? *U.? 5)万方数据
! · "#! · 生物加工过程 第 $ 卷第 % 期
实验室从南京紫金山周边地区土壤中筛选得到并鉴
定为 !"#$%$#&%’&($ &’( )*#+$。
"( "( %! 培养基
")! 生理特性等研究所用培养基与试剂参照
《放线菌的分类和鉴定》[$],《链霉菌鉴定手册》[,],
《-./0.12& 345647 89 :1&;.<4;=> -4>;./=87801》[?]。
%)! 种子培养基(0 @ *)
葡萄糖 $A,(BC,)% :D, "A,B4% C)D, "( ?,EC%
)D, "( ?,30:D,·FC%D A( ?,G5:D,·FC%D A( A$,H.+
:D,·FC%D A( A",酵母膏 ?。
$)! 发酵培养基(0 @ *)
葡萄糖 ?A,(BC,)% :D, "A,B4% C)D, "( ?,EC%
)D, "( ?,30:D,·FC%D A( ?,G5:D,·FC%D A( A$,H.+
:D,·FC%D A( A",酵母膏 ?。
"( %! 试验方法
"( %( "! 形态特征
分别于高氏合成一号琼脂、无机盐淀粉琼脂、淀
粉+酵母提取物琼脂、桑塔斯、-.55.;;2&琼脂上 %I J
插片培养 F K 后观察,记录菌丝形态、孢子丝形态、
孢子排列方式、孢子形态及大小等[,,?]。
"( %( %! 生理生化特征
参照《放线菌的分类和鉴定》、《链霉菌鉴定手
册》、《-./0.12& 345647 89 :1&;.<4;=> -4>;./=87801》的
内容与方法[$+?]。
"( %( $! 拮抗性实验
采用管碟法测定[$]。
"( %( ,! 发酵条件
取一环孢子接入种子培养基内(IA <*培养基 @
?AA <*三角瓶),于 %I J旋转摇床 %AA / @ <=5 下培
养 %, L。将 $AA <* 种子培养液接入到装有 %( F *
发酵培养基的自控式发酵罐(EH+? *,E8 -=8 M.>L
N8( *MO,E8/.45)中,搅拌转速 %AA P ,AA / @ <=5,通风
量 % * @ <=5,%I J发酵 F% L。
"( %( ?! 分析方法
")! 生物量测定
干重法。
%)! 残糖测定
:-Q+,AN生物传感分析仪测定。
$)! !+)*的测定
参照 R;SL4T=方法[#]。
!" 结" 果
%( "! 菌株的生理性能
%( "( "! 形态特征
插片培养 "A K 后,观察菌株基内菌丝、气生菌
丝和孢子丝的形态特征(结果见表 "),发现 !(
&’( )*#+$ 菌株在高氏合成一号琼脂上生长中度,气
生菌丝生长中度,孢子丝呈波曲状或松螺旋,在电子
显微镜下孢子为长椭圆形或椭圆形,大小差别较大。
基内菌丝和孢子丝的光学显微镜形态见图 "。菌丝
在扫描电镜下的形态见图 %。
表 "! 菌株的形态特征
M4U7. "! ML. <8/’L87801 89 !( &’( )*#+$ &;/4=5
菌株 气生菌丝 基内菌丝 孢子丝
)*#+$ 生长丰富
无横隔,不断裂,
不生孢,无孢囊
直或柔曲或成螺旋状,
孢子 $ P %A 个不等
Q为 !( &’( )*#+$ 菌株基内菌丝,-为 !( &’( )*#+$ 菌株孢子
丝形态
图 "! !( &’( )*#+$ 菌株基内菌丝和孢子丝在光学显微镜下
的形态
H=0( "! ML. <8/’L87801 89 &;/4=5 )*#+$ 65K./ 8’;=> <=>/8&>8’.
图 %! )*#+$ 菌株基内菌丝在扫描电镜下的形态
H=0( %! 38/’L87801 89 &;/4=5 )*#+$
%( "( %! 生理生化特征
部分生理生化特征见表%,拮抗性实验结果见表$。
万方数据
! "##$ 年 $ 月 朱宏阳等:产 !%聚赖氨酸菌株生物合成条件研究 · &’! ·
表 "! ()*%+ 菌株的生理生化特性
,-./0 "! ,10 213456/6758-/ 81-9-8:0954:584 6; 4:9-5< ()*%+
特征 ()*%+ 特征 ()*%+ 特征 ()*%+
明胶水解酶 = >? @-A/ % 葡萄糖 =
牛奶凝固 % &#? @-A/ % 木糖 =
牛奶胨化 = (1"B # = 阿拉伯糖 =
淀粉水解酶 = 2C+B # = 半乳糖 =
纤维素分解 = % 2CDB # = 棉籽糖 =
C"E产生 % 2C$B # = 甘油 =
几丁质酶 % 2C*B # = 蔗糖 =
#? @-A/ = F % 2C’B # = 甘露糖 %
&? @-A/ = 2CGB # = 果糖 =
+? @-A/ = 2C>B # % 肌醇 %
$? @-A/ = F % 2C&#B # % 麦芽糖 =
’? @-A/ %
注:=表生长,%表不生长,= F %表生长可疑。
"B "! !%()生物合成条件的研究
"B "B &! 搅拌转速对 !"#$%$#&%’&($ 42B ()*%+ 产 !%()
的影响
在 $ ) 发酵罐中进行 !%() 生物合成条件实验
考察,首先考察了搅拌转速 "## H D## 9 F I5< 的变化
对 ()*%+ 菌株产 !%()的影响,结果如图 +。
表 +! ()*%+ 菌株的拮抗性实验结果
,-./0 +! ,10 -<:-76<54I 6; ()*%+ 4:9-5<
供试菌株 ()*%+
枯草芽孢杆菌 = =
大肠杆菌 =
粪产碱菌 = =
注:= =表抑制良好;=表抑制;%表不抑制
从图 + 中可以看出,随着搅拌转速的提高,菌体
生长程度也随着提高,生物量从 "B G+ 7 F )("## 9 F
I5<)提高到 DB ’D 7 F )(+$# 9 F I5<),!%() 产量也从
#B +># 7 F )("## 9 F I5<)提高到 #B **& 7 F )(+$# 9 F
I5<),说明提高搅拌转速能够提高溶氧传质,有利
于菌体生长。同时从表 D 中可知,虽然在 D## 9 F I5<
下菌体得率最高为 #B &>& 7 80// F 7 4J.,但其 !%()的
产物得率仅为#B # ""’ 7 !%() F 7 4J.。搅拌转速为
+$# 9 F I5<时 !%()的得率最高,得率为 #B #"$ G 7 !%
() F 7 4J.,因此以后研究选择 +$# 9 F I5< 为搅拌转
速。
—"—2C;—#—生物量;—$—残糖;—%—!%()
K:"## 9 F I5<;L:+## 9 F I5<;A:+$# 9 F I5<;M:D## 9 F I5<
图 +! 搅拌转速对 !"#$%$#&%’&($ 42B ()*%+ 发酵的影响
N57B +! ,10 0;;08:4 6; 4:59909 4200O 6< :10 !"#$%$#&%’&($ 42B ()*%+ ;09I0<:-:56<
万方数据
! · "#! · 生物加工过程 第 $ 卷第 % 期
表 &! 不同搅拌转速下 !"#$%$#&%’&($’() *+,-$发酵动力学参数
./012 & ! .32 4256278/89:7 ;97289< (/5/62825’ =7>25 >94425278
’895597? ’(22>
转速 @
( 5 @ 697)
) @
(? @ +)
* @
(? @ +)
+ @
(? @ +)
,A@ B @
(? <211 @ ? ’=0)
,* @ B @
(? !-*+ @ ? ’=0)
%CC %) #$ C) $DC %C) " C) "&, C) C"D &
$CC &) $% C) EE, %&) C C) "#C C) C%$ %
$EC &) F& C) ,," %E) , C) "#E C) C%E #
&CC &) $C C) E"C %%) E C) "D" C) C%% F
注:)为菌体质量浓度,* 为产物质量浓度,+ 为底物消耗质
量浓度,,A@ B为菌体得率,,* @ B为产物得率。
%) %) %! (G 值对 !"#$%$#&%’&($ ’() *+,-$ 产 !-*+ 的
影响
文献报道[F],产 !-*+菌体细胞膜结构中并存着
!-聚赖氨酸合成酶和 !-聚赖氨酸降解酶。并且有人
通过实验证明,在发酵体系 (G值为 E) C H F) C 时,!-
*+不会累积,其中原因是 !-聚赖氨酸降解酶活力远
远高于 !-聚赖氨酸合成酶的活力,合成的 !-*+很快
被降解为赖氨酸;而当发酵体系为 (G&) C H &) % 时,
!-聚赖氨酸降解酶活力急剧下降,但对 !-聚赖氨酸
合成酶活力的影响却很小,因此在此条件下合成的
!-*+累积在体系中;当发酵体系中的 (G 值降为
$) C 时,!-聚赖氨酸降解酶活力基本接近于零,同时
!-聚赖氨酸合成酶活力也急剧下降,而且此条件下
菌体生长不良,因此 !-*+产物产率也很低。借鉴文
献报道的经验,作者在实验中采用控制发酵中后期
体系 (G值的策略来提高 !-*+产率。
由图 & 可知,(G值控制在 (G &) C 时,发酵中前
期菌体增长迅速,到了 &C 3时菌体增长趋势稍有下
降,过度到平稳增长阶段,到发酵终了时,菌体浓度
达到了 E) DF ? @ +(干重)。而产物在发酵中后期有
很大的累积,!-*+ 产率达到了 C) D, ? @ +,比没有调
控发酵中后期 (G值的增长将近 ECI。但从图中可
以看出,葡萄糖的利用率却不高,到发酵终了时,残
糖质量分数依然为 %) $EI。糖的利用率低成了产
物产率提高的最重要的影响因素。为此考虑降低葡
萄糖起始质量分数为 $I,采用中期补料的方式来
调控发酵,每次补糖 "E ?,体积 $C 6+。当葡萄糖质
量分数降至 ") EI左右时,开始补加葡萄糖。
从图 E 中可知,当葡萄糖起始质量分数为 $I
时,菌体生长迅速,并且在补糖后也保持着很好的生
长势头,并且 !-*+ 的合成速率一直保持较高的水
平。到发酵终了时,菌体浓度达到 ,) EC ? @ +(干
重),而产物的产率则达到了 ") ED ? @ +。与葡萄糖
起始质量分数为 EI的相比,葡萄糖总消耗量大致
相同(葡萄糖起始质量分数为 EI时,葡萄糖实际利
用为 %,) E ? @ +;而起始质量分数为 $I补料方式的
葡萄糖实际利用为 %F) E ? @ +),这种低起始质量分
数补糖操作过程菌体质量分数增长 EI,产率却增
长了 ,EI。由此可见,采取低糖补料方式培养有利
于菌体生长和产率的提高。
—"—(G;—#—生物量;—$—残糖;—%—!-*+
图 &! 搅拌速率 $EC 5 @ 697、(G&) C 和葡萄糖起始质量分数
EI时 !-*+发酵曲线
J9?) &! !-*+ 4256278/89:7 <=5K2 =7>25 (G &) C <:785:112>,$EC
5 @ 697 /7> L983 EI 97989/1 ?1=<:’2 <:7<2785/89:7 <:7>9-
89:7’
—"—(G;—#—生物量;—$—残糖;—%—!-*+
图 E! 搅拌速率 $EC 5 @ 697、(G &) C、葡萄糖起始质量分数 $I
及补料时 !-*+发酵曲线
J9?) E! !-*+ 4256278/89:7 <=5K2 =7>25 (G &) C <:785:112>,$EC
5 @ 697,L983 $I 97989/1 ?1=<:’2 <:7<2785/89:7 /7> 422>97?
?1=<:’2 <:7>989:7’
由图 , 可见,综合考虑以上各种因素进行多尺
度调控,还延长了发酵周期,有利于提高 !-*+产率。
由图 ,可知,当发酵条件为 $EC 5 @ 697,葡萄糖起
始质量分数为$I,调控发酵中后期 (G &) C并且补加
葡萄糖时,发酵体系中最终菌体质量分数达到 ,) D&
? @ +,而 !-*+的产率则高达 ,) ,E ? @ +,比最初不
(下转第 &C 页)万方数据
! · "#! · 生物加工过程 第 $ 卷第 % 期
蜜 &’,工业蛋白胨 () *++’,,-%./" #) (*’,012/"
#) (*’,032/" #) ### (’,432/" #) ### (’,562/"
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(++E7
(上接第 (& 页)
采用调控时,产率提高将近 (# 倍。由此说明,在 !C
.B发酵中通过外部环境的调控可以提高 !C.B 的产
率。
—#—I-;—$—生物量;
—%—残糖;—&—!C.B
图 E! I-调控和补料时 !C.B发酵曲线
5A1) E! JA=6 I;1LN9
!" 结" 论
$7 (! 对 !C.B 产生菌株 !"#$%$#&%’&($ ?I) .BEC$ 的形
态特征和生理生化特性进行了系统研究。
$7 %! 当搅拌转速为 $*# ; P =A3、控制 I- ") # 并采用
初糖质量分数为 $’及补糖时可获得最大的 !C.B
产量 E) E* 1 P B,菌体量为 E) +" 1 P B。
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