全 文 :第 12卷第 5期
2014年 9月
生 物 加 工 过 程
Chinese Journal of Bioprocess Engineering
Vol 12 No 5
Sep 2014
doi:10 3969 / j issn 1672-3678 2014 05 004
收稿日期:2013-10-30
基金项目:国家自然科学基金(21376155)
作者简介:朱 健(1987—),男,江苏常熟人,硕士研究生,研究方向:工业微生物;卫功元(联系人),教授,E⁃mail:weigy@ suda edu cn
产朊假丝酵母全细胞转化合成谷胱甘肽的
营养条件
朱 健,胥京京,汪成富,卫功元
(苏州大学 基础医学与生物科学学院,苏州 215123)
摘 要:为了进一步提高产朊假丝酵母全细胞转化生物合成谷胱甘肽(GSH)的能力,利用响应面分析方法对酵母
培养的发酵培养基进行优化。 在单因素实验的基础上,通过 Plackett⁃Burman设计筛选出显著影响 GSH转化力的 2
个主要因素:葡萄糖和 KH2PO4。 采用最陡爬坡试验和响应面设计预测了葡萄糖和 KH2PO4的最佳质量浓度分别为
58 5 和 17 2 g / L。 验证实验结果表明,在该优化培养基条件下,酵母细胞的 GSH转化力为 1 54 mg / (g·h),比优化
前提高了 1倍。 该结果为类似的采用全细胞转化法高效合成有用化学品的研究与开发提供了可行的优化思路。
关键词:谷胱甘肽;全细胞转化;产朊假丝酵母;响应面分析
中图分类号:Q939 97 文献标志码:A 文章编号:1672-3678(2014)05-0023-06
Media optimization for glutathione production by bioconversion using
Candida utilis as whole⁃cell catalyst
ZHU Jian,XU Jingjing,WANG Chengfu,WEI Gongyuan
(School of Biology and Basic Medical Sciences,Soochow University,Suzhou 215123,China)
Abstract:Candida utilis SZU 07⁃01 was used as a whole⁃cell catalyst for the production of glutathione
(GSH) by bioconversion. In order to improve the capability of the yeast cell on GSH biotransformation,the
response surface methodology was applied for the media optimization. Based on the results of the single⁃
factor experiments together with the Plackett⁃Burman design,glucose and KH2 PO4 were selected as the
primary factors with significant influences on GSH biotransformation rate. The optimal concentrations of
58 5 and 17 2 g / L for glucose and KH2 PO4 were predicted by using the steepest ascent test and the
response surface methodology,respectively According to the verification experiments in flasks,the average
GSH biotransformation rate of 1 54 mg / ( g·h) was achieved under the optimized medium,which was
increased by 100% compared with that without media optimization. The results provided a feasible approach
on the efficient production of analogical useful chemicals synthesized by the whole⁃cell bioconversion.
Key words:glutathione;whole⁃cell conversion;Candida utilis;response surface methodology
谷胱甘肽(GSH)是 1种广泛存在于生物体内的
活性三肽化合物,分子中的活性巯基赋予了 GSH多
种重要的生理功能,特别是对于维持体内适宜的氧
化还原环境起着至关重要的作用[1]。 GSH 具有较
强的抗氧化、解毒、提高免疫力等功能,可广泛应用
于临床医药、食品加工和化妆品等诸多领域中,因
此市场需求正日益飞涨[2]。
常采用微生物发酵法以及酶法进行合成和生
产 GSH[3]。 发酵法生产 GSH 从原料成本上来说是
最经济的,但产物浓度偏低增加了 GSH分离提取过
程的难度和费用[4]。 酶法合成 GSH 可以获得较高
浓度的产物,但 GSH 的合成是 1 个系统工程,包括
γ 谷氨酰半胱氨酸合成酶和谷胱甘肽合成酶的催
化和 ATP 的供给,任何一步都有可能限制最终产
物[5],而单纯提高某一酶活的水平并不一定能提高
最终 GSH的合成量,因此需要考虑各因素的综合影
响[6-7]。 同时,如何将游离酶的活性一直保持在较
高的水平也是需要突破的技术难题[8]。
鉴于此,科学家们提出了全细胞催化 /转化的
概念,其实质是充分利用细胞内的相关酶和辅因
子,结合适量的底物和前体的供给,高效地合成目
标产物[5,9]。 在全细胞转化过程中,获得具有高转
化能力活细胞是实现目标产物高效合成的前
提[10-11],而合适的细胞培养条件尤其是营养物的浓
度及其组合对于提高细胞的转化能力具有非常重
要的作用[12-13]。
本文中笔者利用产朊假丝酵母全细胞转化合
成 GSH,并结合响应面分析法对显著影响细胞转化
能力的培养基成分进行筛选和优化,以期在此基础
上实现 GSH生物合成的高效运行。
1 材料与方法
1 1 菌种
产朊假丝酵母(Candida utilis) SZU 07 01,苏
州大学微生物工程实验室保藏。
1 2 培养基
种子培养基(g / L):葡萄糖 20、蛋白胨 20、酵母
粉 10;pH 6 0。
初始发酵培养基(g / L):葡萄糖 20、蛋白胨 20、
酵母粉 10、KH2PO4 10、MgSO4·7H2O 0 05;pH 6 0。
1 3 培养方法
种子液制备:将-70 ℃冰箱中冻存的菌种接
种到种子培养基中,并于 30 ℃ 、200 r / min 下摇
床培养 24 h,然后按体积分数 10%的接种量将培
养液接种至发酵培养基中,同样条件下摇床培养
20 h。
GSH生物转化: 5 mL 发酵液于 4 ℃、 3 500
r / min离心去上清,生理盐水洗涤 2 次后,向湿菌体
中加入 5 mL前体反应液,于 30 ℃、200 r / min 摇床
中转化 6 h。
前体反应液 (mmol / L):谷氨酸 40、半胱氨酸
40、甘氨酸 40、ATP 50,MgCl2·6H2O 50,用 pH 7 0
的磷酸缓冲液 0 05 mol / L溶解[6]。
1 4 分析方法
生物量(DCW)、GSH的提取与测定方法参照文
献[14]。 γ 谷氨酰半胱氨酸合成酶(γ GCS)的酶
活测定按照试剂盒(南京建成生物工程研究所)说
明书进行。
GSH转化力定义:
转化力= ρ(转化后总 GSH)
-ρ(转化前胞内 GSH)
ρ(DCW)·时间
2 结果与讨论
2 1 单因素实验
保持其他成分不变,改变初始培养基中的某一
组分,分别考察各营养要素的不同水平对酵母细胞
生长及 GSH转化力的影响,结果见图 1。 由图 1 可
以看出,各因素合适的水平均在考察范围之内,酵
母细胞的生物量也大多保持在 10 g / L 左右。 但
GSH转化力随着培养基的成分及其质量浓度的变
化而有较大的改变,当各因素的水平分别为葡萄糖
50 g / L,蛋白胨 25 g / L,酵母粉 10 g / L,KH2PO4 15
g / L,MgSO4·7H2O 0 05 g / L和 pH 6 0时,产朊假丝
酵母具有相对较高的 GSH转化力。
2 2 Plackett⁃Burman(P B)试验设计
在单因素实验的基础上进行 P B 试验设计,
每个因素取高(+1)和低(-1)2个水平,高低水平的
设置依据图 1的实验结果进行。 P B 试验设计及
响应值、各因素效应及显著性分析见表 1。
在变量分析中,当参数的置信度大于 90%(即
P<0 1),则可认为该因素具有显著的作用[15]。 因
此,根据表 1 结果发现,葡萄糖和 KH2PO4是影响产
朊假丝酵母 GSH转化力的显著因素,其余各因素对
响应值的影响均不显著。
42 生 物 加 工 过 程 第 12卷
图 1 各因素对 GSH转化力的影响
Fig 1 Effects of nutrients on biotransformation rate of GSH
表 1 P B实验设计及结果分析
Table 1 Experimental design and results of P⁃B
编号
ρ(因素) / (g·L-1)
葡萄糖 蛋白胨 酵母粉 KH2PO4 MgSO4·7H2O)
pH GSH转化力 /(mg·g-1·h-1)
1 1(30) 1(25) -1(6 5) 1(10) 1(0 05) 1(6) 1 15±0 05
2 -1(20) 1 1(10) -1(6 5) 1 1 0 54±0 03
3 1 -1(16 5) 1 1 -1(0 03) 1 1 20±0 06
4 -1 1 -1 1 1 -1(5 5) 0 79±0 03
5 -1 -1 1 -1 1 1 0 52±0 02
6 -1 -1 -1 1 -1 1 0 84±0 02
7 1 -1 -1 -1 1 -1 0 64±0 03
8 1 1 -1 -1 -1 1 0 70±0 03
9 1 1 1 -1 -1 -1 1 14±0 07
10 -1 1 1 1 -1 -1 0 66±0 02
11 1 -1 1 1 1 -1 1 00±0 03
12 -1 -1 -1 -1 -1 -1 0 73±0 01
F值 11 19 0 015 0 15 6 78 1 39 1 624×10-4 3 25 (模型)
P值 0 008 6 0 904 0 0 711 7 0 028 6 0 268 4 0 990 1 0 049 8(模型)
显著性 ∗ ∗ ∗(模型)
52 第 5期 朱 健等:产朊假丝酵母全细胞转化合成谷胱甘肽的营养条件
2 3 最陡爬坡试验结果
根据 P B 试验结果,设计显著因素葡萄糖和
KH2PO4的最陡爬坡路径和步长,并进行试验,结果
见表 2。 由表 2可知:具有最大 GSH 转化力的酵母
细胞的培养条件以在试验 5 和 7 之间为宜,故选择
试验 6的条件为响应面试验的中心点。
表 2 最陡爬坡试验设计及结果
Table 2 Experimental design and results of
steepest ascent test
编号 ρ(葡萄糖) /(g·L-1)
ρ(KH2PO4) /
(g·L-1)
GSH转化力 /
(mg·g-1·h-1)
1 30 10 0 53±0 02
2 35 11 35 0 78±0 03
3 40 12 7 0 81±0 03
4 45 14 05 1 02±0 02
5 50 15 4 1 26±0 06
6 55 16 75 1 38±0 02
7 60 18 1 1 31±0 06
8 65 19 45 1 23±0 04
9 70 20 8 0 96±0 01
2 4 响应面设计及结果
2 4 1 中心组合设计(CCD)
结合表 1和表 2确定的主要影响因素及响应面
试验的中心点,利用 Design Expert 7 0 软件进行二
因素五水平的 CCD 设计试验,实验结果见表 3。 针
对 GSH转化力的显著性检验及方差分析结果见
表 4。
表 3 中心组合设计及实验结果
Table 3 Experimental design and results of CCD
编号 ρ(葡萄糖) /(g·L-1)
ρ(KH2PO4) /
(g·L-1)
GSH转化力 /
(mg·g-1·h-1)
1 -1(45) -1(14 05) 1 13±0 02
2 -1 -1 1 01±0 03
3 -1 -1 1 07±0 06
4 1(65) -1 1 31±0 07
5 1 -1 1 26±0 01
6 1 -1 1 36±0 02
7 -1 1(19 45) 1 22±0 05
8 -1 1 1 08±0 03
9 -1 1 0 87±0 03
10 1 1 1 34±0 06
11 1 1 1 40±0 03
12 1 1 1 36±0 07
13 -1 414(40 86) 0(16 75) 1 34±0 02
14 -1 414 0 0 68±0 03
15 -1 414 0 1 19±0 01
16 1 414(69 14) 0 1 49±0 05
17 1 414 0 1 23±0 07
18 1 414 0 1 23±0 04
19 0(55) -1 414(12 93) 0 84±0 06
20 0 -1 414 1 07±0 03
21 0 -1 414 1 12±0 02
22 0 1 414(20 57) 1 23±0 04
23 0 1 414 1 29±0 02
24 0 1 414 1 33±0 06
25 0 0 1 49±0 02
26 0 0 1 42±0 01
27 0 0 1 44±0 05
28 0 0 1 56±0 03
29 0 0 1 51±0 04
表 4 GSH转化力的显著性检验及方差分析
Table 4 Analysis of variance and their significance for GSH biotransformation rate
因素 SS df MS F值 P值 显著性
模型 0 46 5 0 093 16 41 <0 000 1 ∗∗
葡萄糖(X1) 0 14 1 0 14 24 68 <0 000 1 ∗∗
KH2PO4(X2) 0 05 1 0 05 8 95 0 007 5 ∗
X1X2 1 058×10-3 1 1 058×10-3 0 19 0 669 9
X21 0 17 1 0 17 29 25 <0 000 1 ∗∗∗
X22 0 22 1 0 22 38 20 <0 000 1 ∗∗
残差 0 11 19 5 633×10-3
失拟项 0 02 3 6 630×10-3 1 21 0 336 6
纯误差 0 087 16 5 459×10-3
总值 0 57 24
62 生 物 加 工 过 程 第 12卷
显著性检验与方差分析能较为直观地了解实
验设计是否合理。 由表 4 结果可以看出,模型的显
著性小于 0 000 1,说明模型非常显著;X1 的显著性
小于 0 000 1,X2 的显著性等于 0 007 5(<0 05),说
明 X1 和 X2 对 GSH 转化力影响显著,且 X1 的影响
非常显著;X1X2 的显著性大于 0 05,说明 X1 和 X2
的交互作用不显著。 此外,失拟误差的显著性等于
0 336 6(>0 05),说明所有实验数据都可以很好地
用模型来进行解释。
2 4 2 响应面建模和图形分析
以 GSH 转化力(Y)为响应值,葡萄糖(X1)和
KH2PO4(X2)为自变量,利用 Design Expert 软件进
行二次多元回归拟合,得二次回归方程:
Y= 1 48+0 091X1 +0 050X2 -9 895E-003X1X2-
0 13X21-0 14X22 (1)
图 2 葡萄糖和 KH2PO4对 GSH转化力影响
的响应面分析图
Fig 2 Response surface plot for the effects of glucose
and KH2PO4 on GSH biotransformation rate
图 2给出了方程(1)的立体曲面图,该图直观
地反映出 GSH转化力随葡萄糖和 KH2PO4质量浓度
的变化规律。 由图 2 可知:随着葡萄糖质量浓度的
提高,GSH 转化力快速增加,达到极大值后迅速下
降,在 55~60 g / L范围内存在最适合 GSH转化的葡
萄糖质量浓度;KH2PO4也有与葡萄糖类似的现象,
但整体上其对 GSH转化力的影响不如葡萄糖大,在
16 75~18 1 g / L 范围内可以获得 GSH 转化力最大
时的 KH2PO4质量浓度。 在 GSH合成过程中适当的
K+浓度已经被证实有利于细胞内部分酶活的提高,
并进而对 GSH合成起到了一定的促进作用[14]。 从
图 2 还可以看出:针对葡萄糖和 KH2PO4的响应面
曲面上存在极大值点。 对方程(1)进行求导,通过
换算获得葡萄糖和 KH2PO4的最佳质量浓度分别为
58 5和 17 2 g / L。 将此浓度代入方程(1)中,预测
得到 GSH转化力的最大值为 1 50 mg / (g·h)。
2 5 模型的验证
综上,优化后的营养条件为葡萄糖 58 5 g / L、
蛋白胨 25 g / L、酵母粉 10 g / L、KH2PO4 17 2 g / L、
MgSO4·7H2O 0 05 g / L和 pH 6 0。 以初始培养基
为对照,在摇瓶中进行 3 次平行实验验证,结果发
现该优化营养条件下产朊假丝酵母的 GSH 转化力
平均为 1 54 mg / ( g·h)(图 3),与理论预测值非常
接近,这表明响应面分析方法是可靠的,能较好地
反映实际情况。 与对照的结果(0 77 mg / ( g·h))
相比,优化后的营养条件下 GSH 转化力提高了
1 倍。
图 3 响应面分析试验结果验证
Fig 3 Verification of the results derived from
response surface analysis
3 结 论
在采用全细胞转化法合成 GSH 的过程中,培
养出具有高 GSH转化力的产朊假丝酵母对于 GSH
的高效合成至关重要,而对酵母细胞的营养条件
进行优化则是需要重点关注的因素。 本文在单因
素实验的基础上,采用 P B 试验筛选出显著影响
GSH转化力的培养基组分葡萄糖和 KH2PO4。 采
用响应面分析方法对葡萄糖和 KH2PO4的最佳浓
度进行优化,预测在葡萄糖为 58 5 g / L和 KH2PO4
为 17 2 g / L时, GSH 转化力具有最大值 1 50
mg / ( g·h)。 验证实验结果表明,实际的 GSH 转化
力平均为 1 54 mg / ( g·h),与预测值十分接近,比
营养条件优化前的 GSH 转化力提高了 1 倍。 因
72 第 5期 朱 健等:产朊假丝酵母全细胞转化合成谷胱甘肽的营养条件
此,本文的研究结果可为进一步提高全细胞转化
GSH的合成效率奠定基础。
参考文献:
[ 1 ] Izawa S,Inoue Y,Kimura A.Oxidative stress response in yeast:
effect of glutathione on adaptation to hydrogen peroxide stress in
Saccharomyces cerevisiae[J] .FEBS Letters,1995,358(1):73⁃76.
[ 2 ] Li Y,Wei G Y,Chen J.Glutathione:a review on biotechnological
production[J] .Applied Microbiology and Biotechnology,2004,66
(3):233⁃242.
[ 3 ] Penninckx M J, Elskens M T. Metabolism and functions of
glutathione in microorganisms[J] . Advances in Microbial
Physiology,1993,34:239⁃301.
[ 4 ] Wang M M,Sun J F,Xue F Y,et al. The effect of intracellular
amino acids on GSH production by high⁃cell⁃density cultivation of
Saccharomyces cerevisiae[J] . Applied Microbiology and
Biotechnology,2012,168(1):198⁃205.
[ 5 ] Yoshida H,Hara K Y,Kiriyama K,et al. Enzymatic glutathione
production using metabolically engineered Saccharomyces
cerevisiae as a whole⁃cell biocatalyst [ J] . Applied Microbiology
and Biotechnology,2011,91:1001⁃1006.
[ 6 ] 沈立新,魏东芝,赵哲峰,等.谷胱甘肽合成酶系的克隆、测序
及表达[J] .生物工程学报,2001,17(1):98⁃100.
[ 7 ] Lin J,Liao X Y,Du G C,et al.Use of Escherichia coli add / ade
mutant and Saccharomyces cerevisiae WSH2 to construct a highly
efficient coupled system for glutathione production [ J] . Enzyme
and Microbial Technology,2010,46(2):82⁃86.
[ 8 ] 陶锐,吴梧桐,许激扬.酶法制备谷胱甘肽的研究[ J] .药物生
物技术,1999,6(4):203⁃207.
[ 9 ] 郭明,胡昌华.生物转化:从全细胞催化到代谢工程[ J] .中国
生物工程杂志,2010,30(4):110⁃115.
[10] de Carvalho C C.Enzymatic and whole cell catalysis:finding new
strategies for old processes[J] .Biotechnology Advances,2011,29
(1):75⁃83.
[11] Li W,Li Z M,Yang J H,et al.Production of glutathione using a
bifunctional enzyme encoded by gshF from Streptococcus
thermophilus expressed in Escherichia coli[J] . Journal of
Biotechnology,2011,154(4):261⁃268.
[12] Murata K, Kimura A. Overproduction of glutathione and its
derivatives by genetically engineered microbial cells[J] .
Biotechnology Advances,1990,8:59⁃96.
[13] Li W,Li Z,Ye Q,et al.Enzymatic synthesis of glutathione using
yeast cells in two⁃stage reaction [ J] . Bioprocess and Biosystems
Engineering,2010,33(6):675⁃682.
[14] 王玉磊,叶子优,贺秋萍,等.S 腺苷蛋氨酸和谷胱甘肽联产
发酵中盐胁迫的作用[J] .生物加工过程,2012,10(3):33⁃38.
[15] Myers R H, Montgomery D C, Anderson⁃Cook C M. Response
surface methodology: process and product optimization using
designed experiments[M].3rd ed.New York:John Wiley & Sons
Inc.,2009.
(责任编辑 周晓薇)
82 生 物 加 工 过 程 第 12卷