免费文献传递   相关文献

Effects of exogenous abscisic acid on heteromorphic seed germination of Suaeda aralocaspica, a typical halophyte of Xinjiang desert region

外源激素ABA影响新疆荒漠盐生植物异子蓬异型种子萌发机制



全 文 :第 35 卷第 20 期
2015年 10月
生 态 学 报
ACTA ECOLOGICA SINICA
Vol.35,No.20
Oct.,2015
http: / / www.ecologica.cn
基金项目:国家自然科学基金(31260037, 31060027); 新疆自治区优秀青年科技人才培养项目(2013721013); 新疆生物资源基因工程重点实验
室开放基金(XJDX0201鄄2011鄄03)
收稿日期:2014鄄05鄄13; 摇 摇 网络出版日期:2014鄄12鄄18
*通讯作者 Corresponding author.E鄄mail: lanhaiyan@ xju.edu.cn
DOI: 10.5846 / stxb201405130978
曹婧, 李晓荣, 王翠, 王璐, 兰欣欣, 兰海燕.外源激素 ABA 影响新疆荒漠盐生植物异子蓬异型种子萌发机制.生态学报,2015,35( 20):
6666鄄6677.
Cao J, Li X R, Wang C, Wang L, Lan X X, Lan H Y.Effects of exogenous abscisic acid on heteromorphic seed germination of Suaeda aralocaspica, a
typical halophyte of Xinjiang desert region.Acta Ecologica Sinica,2015,35(20):6666鄄6677.
外源激素 ABA 影响新疆荒漠盐生植物异子蓬异型种
子萌发机制
曹摇 婧, 李晓荣, 王摇 翠, 王摇 璐, 兰欣欣, 兰海燕*
新疆大学生命科学与技术学院,新疆生物资源基因工程重点实验室, 乌鲁木齐摇 830046
摘要:以新疆荒漠盐生植物异子蓬(Suaeda aralocaspica)异型种子为材料,通过外源 ABA直播(长时间)与浸种(短时间)处理分
别研究不同浓度(0、0.5、1.0、5.0、10.0 滋mol / L)ABA对异型种子萌发、幼苗生长的影响,并通过定量 PCR技术分析与萌发相关的
ABC转运蛋白基因、丝裂原活化蛋白激酶激酶基因和 DNA修复和转录因子基因在 5.0 滋mol / L ABA处理下的表达规律,探讨外
源 ABA影响异子蓬异型种子萌发差异的机制。 结果显示:(1)外源 ABA直播处理下,褐色种子萌发及幼苗生长均受到明显抑
制,黑色种子的萌发和幼苗生长在低浓度被促进,较高浓度被显著抑制;短时间浸种处理,能够同时促进异型种子的萌发及幼苗
生长,且随 ABA浓度增加促进效应增强。 (2)直播萌发后,褐色种子中 3个基因的表达量与对照相比均不变或降低表达(除了
DNA修复和转录因子基因在 8 h显著升高),黑色种子与对照相比均上调表达(除了 ABC转运蛋白基因在 8h显著下调);短时
间浸种萌发后,褐色种子中 3个基因的表达量均比对照显著升高,黑色种子中升高不明显。 基因表达规律与种子萌发结果趋势
一致,暗示 ABA浸种可能触发了异子蓬种子萌发内在机制并对随后的萌发过程产生促进作用。 而黑色种子对 ABA 处理表现
出较好的萌发响应,可能是其幼苗能抵御荒漠地区逆境环境的重要原因。
关键词:ABA; 异子蓬; 异型种子; 种子萌发; 定量 PCR; 分子机制
Effects of exogenous abscisic acid on heteromorphic seed germination of Suaeda
aralocaspica, a typical halophyte of Xinjiang desert region
CAO Jing, LI Xiaorong, WANG Cui, WANG Lu, LAN Xinxin, LAN Haiyan*
Xinjiang Key Laboratory of Biological Resources and Genetic Engineering, College of Life Science and Technology, Xinjiang University, Urumqi
830046, China
Abstract: In order to examine the effects of exogenous abscisic acid ( ABA) on germination and seedling growth of
heteromorphic Suaeda aralocaspica seeds, we either directly sowed ( long鄄term treatment ) or presoaked ( short鄄term
treatment) the two seed morphs under different concentrations (0, 0.5, 1.0, 5.0, 10.0 滋mol / L) of ABA. To further
understand the molecular mechanism of exogenous ABA effects on different germination characteristics of heteromorphic
seeds of S. aralocaspica, we examined the expression of three genes with known functions in seed germination: ABC
transporter family protein, mitogen鄄activated protein kinase kinase, and DNA repair and transcription factor. Gene
expression was analyzed using quantitative PCR on directly sown and presoaked seeds treated with 5.0 滋mol / L ABA. The
results revealed two findings:(1) For directly sown seeds, different concentrations of exogenous ABA inhibited germination
and seedling growth of brown seeds significantly, while these processes in black seeds were accelerated by lower
http: / / www.ecologica.cn
concentrations of ABA, rather than by higher concentrations. In contrast, pre鄄soaking promoted germination and seedling
growth of both types of seed, and this effect increased at higher concentrations of ABA. (2) Quantitative PCR revealed
that, for directly sown brown seeds, only the expression level of the gene for DNA repair and transcription factor increased
significantly at 8 h compared to that of control seeds. In black seeds, the genes for DNA repair and transcription factor and
for mitogen鄄activated protein kinase kinase were significantly up regulated compared to those in the control. For pre鄄soaked
seeds, treatment with ABA markedly increased the expression levels of all three genes in brown seeds rather than in black
seeds. Expression patterns of the three genes were consistent with the results of seed germination. These results suggest that
presoaking with ABA may trigger the internal germination mechanism of S. aralocaspica seeds and accelerate the subsequent
germination process. The stronger response of black seeds to ABA treatment may be an important adaptation to the harsh and
unpredictable environment of Xinjiang desert region.
Key Words: ABA; Suaeda aralocaspica; heteromorphic seeds; seed germination; quantitative PCR; molecular mechanism
种子休眠和萌发是高等植物个体发育中的重要事件,直接关系到种群的生存、分布和繁衍,具有重要的生
态意义[1]。 种子萌发是极其复杂的生理过程,受到环境因素、内部因素及萌发相关基因的调控。 迄今对大量
影响种子休眠和萌发突变体的研究发现,在种子休眠的获得或解除过程中起关键作用的内源信号分子是脱落
酸(Abscisic acid, ABA)和赤霉素(Gibberellin 3, GA3) [2],其中,脱落酸对植物生长发育的许多重要过程都起
调节作用,包括种子贮藏蛋白和脂质的合成、种子的耐脱水性和休眠、胚胎生长向萌发生长转变的抑制和营养
生长到生殖生长转变的抑制等[3鄄4],特别是对保持种子休眠和抑制种子萌发和萌发后幼苗生长等具有重要作
用[5鄄6]。 研究表明,ABA的营养缺陷型能够增强种子萌发能力,甚至有时会产生胎萌[7],而大量积累 ABA 的
转基因株系增强了休眠,且 ABA能抑制这些转基因株系后代种子的早熟发芽,诱导种子的初级休眠[8鄄9]。 深
入研究显示,ABA主要通过抑制细胞壁降解酶的合成使种子的胚乳不能软化,导致胚根尖无法突破种皮而抑
制萌发[10]。 多项研究表明,添加外源 ABA能够抑制多种植物种子的萌发[11鄄15],但也有报道显示低浓度的外
源 ABA能够促进某些植物如黄连种子的萌发[16],也可促进植物根或胚轴的生长等[17鄄18]。 但有关外源 ABA
促进植物种子特别是荒漠盐生植物种子萌发的相关机制鲜见报道。
异子蓬(Suaeda aralocaspica)是藜科异子蓬属具典型种子异型性的一年生草本盐生植物,在我国仅分布
于准噶尔盆地南缘,生长于重度盐碱化荒漠戈壁和丘间低地,其生长、发育、繁殖等各个阶段都受到逆境的胁
迫,具有很强的耐干旱、盐碱和贫瘠能力[19鄄20]。 种子异型性在盐生植物中较常见,是盐生植物应对胁迫生境
的重要策略之一[21]。 异子蓬异型种子的种皮结构存在显著差异,褐色种子只有一层薄膜状种皮,而黑色种子
有内外两层种皮结构且外种皮细胞排列致密,质地坚硬[22]。 黑色种子的外种皮限制了胚胎吸水速度,对胚根
伸长产生一定的机械阻力,从而导致与褐色种子之间具有不同的萌发与休眠特性,对环境刺激也产生不同的
响应[23]。 在本研究小组前期对异子蓬种子萌发的胁迫实验中发现,低浓度 ABA处理能够明显促进异子蓬异
型种子的萌发,且有时间效应(数据未显示)。 同时利用 cDNA鄄AFLP 技术研究了异子蓬异型种子萌发过程中
基因表达的差异,从中筛选到一些在种子萌发过程显著上调的基因,如 ABC 转运蛋白基因、丝裂原活化蛋白
激酶激酶基因和 DNA修复和转录因子基因等,并在此基础上选择了以上基因对 ABA影响异子蓬异型种子萌
发的深层机制进行分析。 目前,对异子蓬的研究主要集中于叶片解剖结构[23鄄25]、光合类型[26]及异型种子萌发
特性[27]等方面,对胁迫(包括 ABA处理)下异型种子萌发差异的深层机制的探索研究鲜见报道。 基于前期的
初步实验,为进一步了解 ABA促进异子蓬异型种子萌发的分子机制,本研究以 ABA直播(长时间)和浸种(短
时间)处理方式和不同浓度对异型种子的萌发过程和特性、幼苗生长以及萌发相关基因的表达等方面进行了
分析,期望从分子水平对 ABA促进异子蓬种子萌发的机制有深入理解,并探索 ABA 在盐生植物异型种子休
眠与萌发中的调控方式,为今后利用干旱区植物资源修复并改良盐碱地生态环境提供理论依据。
7666摇 20期 摇 摇 摇 曹婧摇 等:外源激素 ABA影响新疆荒漠盐生植物异子蓬异型种子萌发机制 摇
http: / / www.ecologica.cn
1摇 材料和方法
1.1摇 实验材料
2011年 10月于新疆五家渠 103团治沙站北沙窝(44毅29忆N, 87毅31忆E)重度盐碱地上自然成熟的异子蓬植
株上采集两种类型种子。 此生境属于中温带荒漠区,春季有融雪、较湿润;全年降雨稀少(仅 310 mm),蒸发
量大(约 1300 mm),大气湿度和土壤含水量均很低。 种子采集后,置通风避光处晾干,筛选干净,室温保存
备用。
1.2摇 方法
1.2.1摇 种子萌发实验
萌发实验均按 4重复、每重复 30粒种子设置。 淤 直播处理:将完整饱满大小一致的异子蓬异型种子,随
机播在铺有二层滤纸的培养皿(直径为 9 cm)中,分别添加 5 mL不同浓度(0.5、1.0、5.0、10.0 滋mol / L)ABA溶
液和蒸馏水,于 25 益、16 h光 / 8 h 暗的培养箱中萌发,期间不断补充水分及对应浓度的 ABA溶液。 于 浸种
处理:分别用上述浓度 ABA溶液浸泡种子 3 h,以蒸馏水洗净种子后,接入用蒸馏水浸润饱和的滤纸上进行萌
发实验。 种子萌发以胚根露出为准,每 24 h记录一次,直到发芽率恒定后统计终萌发率,同时选择 30 株幼苗
分别测量子叶、下胚轴及胚根长度。
1.2.2摇 萌发相关基因的表达分析
(1) 直播处理摇 挑选 40 粒完整饱满的异子蓬异型种子置于铺有两层滤纸的培养皿中,分别加 5 mL
5.0 滋mol / L ABA(预实验中促进萌发的浓度)和灭菌蒸馏水于 25 益恒温光照培养箱中培养。 萌发 8 h 和 3 d
时分别选择状态一致的种子(幼苗)提取总 RNA(参照 Bioteke RNAprep Pure Plant Kit试剂盒说明书)。
(2) 浸种处理摇 分别添加 5.0 滋mol / L ABA和灭菌蒸馏水浸泡异子蓬异型种子 3 h 后,用蒸馏水洗净种
皮表面残留溶液后于水中萌发,选择萌发 8 h和萌发 3 d时状态一致的种子(幼苗)提取总 RNA。
利用 GeneAmp 7500 实时 PCR 系统及 SYBR Green ( Invitrogen)进行定量 PCR 分析。 反应条件:95益
2 min;95 益 30 s,62 益 30 s,72 益 30 s,40 个循环。 相关引物见表 1。 以异子蓬 茁鄄actin 基因为内参,分析
ABC转运蛋白基因(ABC transporter family protein,简称 SaABC)、丝裂原活化蛋白激酶激酶基因(Mitogen鄄
activated protein kinase kinase,简称 SaMAPKK)以及 DNA 修复和转录因子基因(DNA repair and transcription
factor,简称 SaDRTF)在上述不同胁迫处理及不同萌发时间的表达变化,具体操作步骤参照 Invitrogen 公司荧
光定量试剂盒说明书。
表 1摇 定量 PCR引物
Table 1摇 Primer Sequence of Quantitative PCR
引物名称 Primer name 序列 Primer sequence 引物名称 Primer name 序列 Primer sequence
SaABC鄄P1 5忆鄄GTTGTGGCAGGTCGTATTGGAAG鄄3忆 SaABC鄄P2 5忆鄄CACCAAAGCACATCAGGGTCAG鄄3忆
SaMAPKK鄄P1 5忆鄄AGTTTAGGGACTTTATTCGTTGCTG鄄3忆 SaMAPKK鄄P2 5忆鄄TCATGGGAGCACTACTAGTCTGAG鄄3忆
SaDRTF鄄P1 5忆鄄CTACGAGCCATGTTGAGAGGAC鄄3忆 SaDRTF鄄P2 5忆鄄TAAGAATACGACCAAGACGCTGAG鄄3忆
茁鄄actin鄄P1 5忆鄄CCAAAGGCCAACAGAGAGAAGAT鄄3忆 茁鄄actin鄄P2 5忆鄄TGAGACACACCATCACCAGAAT鄄3忆
1.3摇 统计分析方法
种子萌发率和萌发速率数据经反正弦转换,以保证方差齐性。 本研究中萌发数据采用 4 次重复,荧光定
量数据采用 3 次生物学重复和两次技术重复(共 6 个重复)计算平均值,所有图表中的误差线代表平均数的
标准误差。 数据分析和图的绘制均用 GraphPad Prism 4 软件。 利用 One鄄way ANOVA 和 Two鄄way ANOVA 对
种子萌发率、幼苗生长指标及基因表达规律等进行差异显著性检验。 用 Tukey多重比较法确定各样本间的差
异显著水平。
8666 摇 生摇 态摇 学摇 报摇 摇 摇 35卷摇
http: / / www.ecologica.cn
2摇 结果与分析
2.1摇 外源激素 ABA对异子蓬异型种子萌发及幼苗生长的影响
异子蓬褐色与黑色种子在 ABA不同处理下的萌发进程存在较大差异,日累计萌发率及终萌发率结果(图
1,图 2)。 随 ABA浓度的增加,直播的褐色种子萌发率逐渐降低且均低于对照,而所有浸种处理的褐色种子
萌发率均高于对照;黑色种子萌发则在 ABA较低浓度(0.5、1.0 滋mol / L)的直播及较高浓度的浸种(1.0、5.0、
10.0 滋mol / L)均受到促进。
双因素方差分析结果显示(表 2),ABA 直播与浸种两种处理下,种子类型、ABA 浓度以及二者间的交互
作用均对异子蓬种子萌发具有显著影响。
图 1摇 不同脱落酸(ABA)浓度对异子蓬异型种子萌发进程的影响
Fig.1摇 Effect of various concentration of abscisic acid on germination process of S. aralocaspica heteromorphic seed
图 2摇 不同 ABA浓度对异子蓬异型种子终萌发率的影响
Fig.2摇 Effect of various concentration of ABA on final germination percentage of S. aralocaspica heteromorphic seed
9666摇 20期 摇 摇 摇 曹婧摇 等:外源激素 ABA影响新疆荒漠盐生植物异子蓬异型种子萌发机制 摇
http: / / www.ecologica.cn
表 2摇 不同浓度脱落酸(ABA)和种子类型对异子蓬种子萌发影响的双因素方差分析
Table 2摇 Two鄄way ANOVA of seed germination percentage of S. aralocaspica under various concentration of abscisic acid and seed type
差异来源
Source of variation
直播 Directly sown seed in ABA
自由度
df
离均差
平方和
SS
均方
MS F P
浸种 Pre鄄soaked seed in ABA
自由度
df
离均差
平方和
SS
均方
MS F P
ABA浓度
Concentration of ABA 4 517.4 129.3 8.894 <0.0001 4 637.9 159.5 4.096 0.0090
种子类型 Seed type 1 3836 3836 263.8 <0.0001 1 1983 1983 50.93 <0.0001
交互作用 Interaction effect 4 488.4 122.1 8.397 0.0001 4 610 152.5 3.918 0.0112
不同浓度 ABA处理的异子蓬异型种子幼苗生长情况存在较大差异(图 3,两周幼苗),从幼苗长势观察,
随 ABA浓度升高,直播的褐色和黑色种子幼苗生长受到较明显抑制,且程度依次加剧;而浸种处理对幼苗无
明显抑制现象,且低浓度(0.5滋mol / L与 1.0滋mol / L)ABA对幼苗生长产生一定促进作用。
图 3摇 不同 ABA浓度对异子蓬异型种子幼苗生长的影响
Fig.3摇 Effect of various concentration of ABA on seedling growth of S. aralocaspica heteromorphic seed
对幼苗子叶、下胚轴和胚根长度的测量结果显示:直播处理下(表 3),褐色种子幼苗的子叶、下胚轴及胚
根生长均受 ABA的不显著抑制,10.0 滋mol / L 则显著影响其下胚轴和胚根的伸长(P<0.0001);低浓度 ABA
(0.5—1.0 滋mol / L)不显著地促进黑色种子幼苗子叶和下胚轴生长,但所有处理浓度均抑制其胚根伸长,特别
是高浓度下抑制作用更明显。 浸种处理对两种幼苗的子叶和下胚轴生长均表现促进作用(表 4),但对胚根伸
长产生抑制效应。 整体趋势显示,ABA浸种处理的幼苗子叶和下胚轴长势优于直播处理。
ABA与种子类型对异子蓬幼苗生长影响的双因素方差分析结果显示,直播处理下(表 5),不同 ABA浓度
对异子蓬幼苗子叶、下胚轴、胚根的伸长均有显著影响,种子类型仅对幼苗下胚轴伸长有显著影响,二者之间
的交互作用对幼苗各项指标的影响均不显著;浸种处理下(表 6),不同 ABA 浓度对异子蓬幼苗子叶、胚根伸
长具有显著影响,种子类型仅对幼苗子叶伸长有显著影响,而二者交互作用对子叶、胚根伸长具有显著影响。
0766 摇 生摇 态摇 学摇 报摇 摇 摇 35卷摇
http: / / www.ecologica.cn

3摇




A
BA



















Ta
bl
e
3摇
Ef
fe
ct
of
va
ri
ou
s
co
nc
en
tr
at
io
n
of
A
BA
on
se
ed
lin
g
gr
ow
th
of
di
re
ct
ly
so
w
n
se
ed
of
S.
ar
al
oc
as
pi
ca
AB
A


(滋
m
ol
/L
)
Co
nc
en
tra
tio
n
of
AB
A






Se
ed
lin
g
of
br
ow
n
se
ed
/c
m


Co
ty
le
do
n



H
yp
oc
ot
yl


Ra
di
cl
e






Se
ed
lin
g
of
bl
ac
k
se
ed
/c
m


Co
ty
le
do
n



H
yp
oc
ot
yl


Ra
di
cl
e
0
0.
56
9依
0.
04
0a
2.
87
1依
0.
17
2a
2.
06
1依
0.
17
7a
0.
54
1依
0.
08
4a
b
2.
16
4依
0.
34
9a
b
2.
47
0依
0.
34
6a
0.
5
0.
56
0依
0.
06
5a
2.
83
5依
0.
36
4a
2.
18
2依
0.
23
6a
0.
58
7依
0.
12
8a
b
2.
30
4依
0.
66
4a
2.
34
1依
0.
57
4a
1.
0
0.
52
6依
0.
03
7a
2.
70
1依
0.
33
2a
1.
63
7依
0.
39
6a
b
0.
66
5依
0.
02
8a
2.
34
6依
0.
22
3a
1.
96
4依
0.
42
5a
5.
0
0.
55
5依
0.
29
1a
2.
36
2依
0.
08
3a
1.
18
9依
0.
22
3b
c
0.
50
9依
0.
05
4a
b
1.
90
0依
0.
09
8a
b
1.
64
7依
0.
11
7a
10
.0
0.
45
2依
0.
08
0a
1.
47
2依
0.
21
7b
0.
89
5依
0.
10
2c
0.
45
8依
0.
03
3b
1.
32
5依
0.
10
2b
0.
51
6依
0.
03
8b

4摇




A
BA



















Ta
bl
e
4摇
Ef
fe
ct
of
va
ri
ou
s
co
nc
en
tr
at
io
n
of
A
BA
on
se
ed
lin
g
gr
ow
th
of
pr
e鄄
so
ak
ed
se
ed
of
S.
ar
al
oc
as
pi
ca
AB
A


(滋
m
ol
/L
)
Co
nc
en
tra
tio
n
of
AB
A






Se
ed
lin
g
of
br
ow
n
se
ed
/c
m


Co
ty
le
do
n



H
yp
oc
ot
yl


Ra
di
cl
e






Se
ed
lin
g
of
bl
ac
k
se
ed
/c
m


Co
ty
le
do
n



H
yp
oc
ot
yl


Ra
di
cl
e
0
0.
54
3依
0.
01
1a
b
2.
45
3依
0.
34
6a
2.
12
4依
0.
32
3a
b
0.
53
0依
0.
02
9a
2.
58
4依
0.
25
3a
2.
45
3依
0.
23
2a
b
0.
5
0.
58
4依
0.
05
7a
3.
13
6依
0.
34
1a
2.
41
5依
0.
27
3a
0.
60
7依
0.
04
3a
3.
02
0依
0.
64
2a
1.
92
7依
0.
24
5a
bc
1.
0
0.
41
9依
0.
03
9b
2.
38
3依
0.
35
3a
1.
69
7依
0.
22
0a
b
0.
60
5依
0.
03
8a
3.
33
2依
0.
18
9a
2.
64
6依
0.
17
8a
5.
0
0.
47
9依
0.
03
7a
b
2.
50
3依
0.
38
3a
1.
41
9依
0.
23
8a
b
0.
57
8依
0.
01
9a
2.
58
0依
0.
08
0a
1.
84
2依
0.
38
0b
c
10
.0
0.
54
7依
0.
07
8a
2.
60
2依
0.
09
5a
1.
20
3依
0.
22
4b
0.
59
2依
0.
06
6a
2.
29
7依
0.
17
4a
1.
28
4依
0.
34
3c

5摇




A
BA

























Ta
bl
e
5摇
Tw
o鄄
w
ay
A
N
O
V
A
of
se
ed
lin
g
gr
ow
th
of
di
re
ct
ly
so
w
n
se
ed
of
S.
ar
al
oc
as
pi
ca
un
de
r
va
ri
ou
s
co
nc
en
tr
at
io
n
of
A
BA
an
d
se
ed
ty
pe




So
ur
ce
of
va
ria
tio
n


Co
ty
le
do
n/
cm
df
SS
M
S
F
P



H
yp
oc
ot
yl
/c
m
df
SS
M
S
F
P


Ra
di
cl
e/
cm
df
SS
M
S
F
P
AB
A


Co
nc
en
tra
tio
n
of
AB
A
4
0.
09
36
4
0.
02
34
1
4.
16
4
0.
00
84
4
7.
89
5
1.
97
4
15
.4
7
<0
.0
00
1
4
13
.7
0
3.
24
6
27
.1
0
<0
.0
00
1




Se
ed
ty
pe
1
0.
00
38
08
0.
00
38
08
0.
67
74
0.
41
70
1
1.
96
0
1.
96
0
15
.3
7
0.
00
05
1
0.
38
03
0.
38
03
3.
00
9
0.
09
31




In
te
ra
ct
io
n
ef
fe
ct
4
0.
04
23
8
0.
01
06
0
1.
88
5
0.
13
90
4
0.
34
68
0.
08
66
9
0.
67
97
0.
61
14
4
0.
92
61
0.
23
15
1.
83
2
0.
14
87

6摇




A
BA

























Ta
bl
e
6摇
Tw
o鄄
w
ay
A
N
O
V
A
of
se
ed
lin
g
gr
ow
th
of
pr
e鄄
so
ak
ed
se
ed
of
S.
ar
al
oc
as
pi
ca
un
de
r
va
ri
ou
s
co
nc
en
tr
at
io
n
of
A
BA
an
d
se
ed
ty
pe




So
ur
ce
of
va
ria
tio
n


Co
ty
le
do
n/
cm
df
SS
M
S
F
P



H
yp
oc
ot
yl
/c
m
df
SS
M
S
F
P


Ra
di
cl
e/
cm
df
SS
M
S
F
P
AB
A


Co
nc
en
tra
tio
n
of
AB
A
4
0.
03
62
2
0.
00
90
55
3.
16
2
0.
02
79
4
2.
30
2
0.
57
55
2.
39
6
0.
07
24
4
6.
41
7
1.
60
4
9.
50
3
<0
.0
00
1




Se
ed
ty
pe
1
0.
04
66
6
0.
04
66
6
16
.2
9
0.
00
03
1
0.
21
62
0.
21
62
0.
90
02
0.
35
03
1
0.
66
92
0.
66
92
3.
96
4
0.
05
57




In
te
ra
ct
io
n
ef
fe
ct
4
0.
04
79
7
0.
01
19
9
4.
18
7
0.
00
82
4
1.
84
5
0.
46
13
1.
92
1
0.
13
27
4
2.
19
6
0.
54
90
3.
25
2
0.
02
49
1766摇 20期 摇 摇 摇 曹婧摇 等:外源激素 ABA影响新疆荒漠盐生植物异子蓬异型种子萌发机制 摇
http: / / www.ecologica.cn
2.2摇 外源激素 ABA处理下异子蓬种子萌发相关基因的表达分析
为进一步了解添加外源 ABA促进异子蓬异型种子萌发和幼苗生长的内在机制,基于前期对异子蓬异型
种子萌发过程中 mRNA (cDNA)的差异表达分析结果(数据未显示),选择了其中可能与种子萌发相关的 3个
基因,包括:ABC转运蛋白基因(SaABC)、丝裂原活化蛋白激酶激酶基因(SaMAPKK)、DNA 修复和转录因子
基因(SaDRTF),对 5.0 滋mol / L ABA直播或浸种后萌发 0 h(对照)、8 h(萌发期)和 3 d(幼苗早期)的表达情
况进行了定量 PCR分析。
2.2.1摇 ABC转运蛋白基因(SaABC)
如图 4所示,在 5.0 滋mol / L ABA直播处理下异子蓬异型种子萌发过程中 ABC转运蛋白基因的表达与对
照相比显著降低(褐色种子在处理 3 d时,黑色种子在处理 8 h时)。 浸种处理时褐色和黑色种子中该基因在
8 h和 3 d时均比水中萌发的表达升高,褐色种子中表现为极显著上调(P<0.001)。
图 4摇 定量 PCR检测 ABA处理下 ABC转运蛋白基因(SaABC)的表达规律
Fig.4摇 Quantitative PCR analysis of the expression pattern of SaABC gene in S. aralocaspica under H2O and ABA treatment
2.2.2摇 丝裂原活化蛋白激酶激酶基因(SaMAPKK)
异子蓬褐色种子在水中萌发时丝裂原活化蛋白激酶激酶基因的表达呈现 8 h 显著升高(P<0.05),3 d 下
降趋势(图 5)。 5.0 滋mol / L ABA直播或浸种处理后褐色种子中该基因的表达变化趋势与对照一致,但浸种
处理该基因在 8 h和 3 d时相对于水中的萌发表达极显著上升(P<0.001)。 黑色种子中,该基因在水中不同
时间点的表达变化不显著,而 ABA直播或浸种两种处理下该基因的表达随时间有增高趋势,但无显著差异。
2.2.3摇 DNA修复和转录因子基因(SaDRTF)
5.0 滋mol / L ABA直播或浸种处理褐色和黑色种子萌发过程中 DNA修复和转录因子基因在 8 h时的表达
均比水中显著升高(图 6),3 d时直播黑色种子和浸种褐色种子该基因的表达比水中显著上升,直播褐色种子
和浸种黑色种子表达与对照无显著差异。
3摇 讨论
ABA 是 20世纪 60年代发现的一种倍半萜类化合物,作为最重要的激素之一参与调控植物的生长发育
(如胚胎发育、种子休眠与萌发、幼苗生长、根系发育、果实成熟和衰老等),并对干旱、高盐、低温、病菌等胁迫
2766 摇 生摇 态摇 学摇 报摇 摇 摇 35卷摇
http: / / www.ecologica.cn
图 5摇 定量 PCR检测 ABA处理下丝裂原活化蛋白激酶激酶基因(SaMAPKK)的表达规律
Fig.5摇 Quantitative PCR analysis of the expression pattern of SaMAPKK gene in S. aralocaspica under H2O and ABA treatment
图 6摇 定量 PCR检测 ABA处理下 DNA修复和转录因子基因(SaDRTF)的表达规律
Fig.6摇 Quantitative PCR analysis of the expression pattern of SaDRTF gene in S. aralocaspica under H2O and ABA treatment
产生应答[3鄄4, 28鄄30]。 通常认为 ABA是促进种子成熟、诱导和维持种子休眠并抑制种子萌发的植物激素[31鄄35]。
但对某些植物而言,低剂量的 ABA却能促进种子萌发和幼苗生长[16,36鄄41]。 然而目前对 ABA促进种子萌发的
3766摇 20期 摇 摇 摇 曹婧摇 等:外源激素 ABA影响新疆荒漠盐生植物异子蓬异型种子萌发机制 摇
http: / / www.ecologica.cn
深层机制鲜见报道。 本研究通过 ABA对异子蓬异型种子萌发过程的影响及相关基因的表达分析,初步探讨
了 ABA促进种子萌发的机制。 对异子蓬褐、黑种子进行 ABA直播和短时间浸种萌发实验发现,低浓度 ABA
可能通过引发(或触发)萌发过程相关生理机制及分子事件从而促进种子萌发和幼苗生长。
研究表明,外源 ABA能促进黄连种子萌发[16];低浓度(臆1 滋mol / L) ABA 可以刺激拟南芥、豌豆(Pisum
sativum)及黄豆幼苗根部的生长[17, 36];此外,ABA 还能促进拟南芥根毛的发生[37];Xing 等发现 0.5 滋mol / L
ABA能刺激拟南芥幼苗根伸长,但高浓度(5—50 滋mol / L) ABA 处理后,根长及生物量积累均受到抑制[38],
由此说明 ABA对幼苗生长的影响存在剂量效应。 ABA浸种能显著促进幼苗生长,如 ABA浸种处理水稻后的
秧苗素质、壮苗指标及产量均明显优于对照组[39鄄40];经过较高浓度 ABA浸种的甜瓜种子能够明显促进幼苗后
期生长[41]。 本研究通过对新疆荒漠盐生植物异子蓬异型种子在低浓度 ABA 直播或浸种处理下的萌发过程
观察发现,褐色与黑色种子在 ABA不同处理下的萌发进程存在明显差异。 不同浓度外源 ABA直播处理下异
子蓬褐色种子萌发及幼苗生长均受到明显抑制,并呈剂量效应;直播黑色种子的萌发和幼苗生长在低浓度
(0.5—1.0 滋mol / L)ABA被促进,较高浓度则被显著抑制;而 ABA 短时间浸种处理能够同时促进褐色和黑色
种子的萌发及幼苗的生长,且随 ABA的浓度增加促进效应增强。 产生这种现象的可能原因是异型种子种皮
结构的差异以及低浓度 ABA短时间处理起到的刺激信号作用。 通常成熟种子的种皮主要用以保护胚胎免受
外界环境不利条件的影响[42]。 而异子蓬褐色种子只有一层薄膜状种皮[22],透水性强,无休眠现象,胚根极易
突破种皮,遇水就能萌发(直播 0—8 h内萌发率接近 60%)。 当种子长时间在 ABA 溶液中直接萌发时,由于
胚几乎没有任何保护层,即使 ABA浓度很低,仍然对种子萌发产生了抑制作用;而黑色种子具有一层致密且
坚硬的外种皮[22],透水性差、阻碍外界空气进入及内外物质交换[43],处于非深度休眠状态,虽然直播处理后
种皮软化,吸水增强,但黑色种子致密的外种皮仍能对长时间的 ABA 直接处理产生一定隔离保护作用,使较
高浓度 ABA对黑色种子萌发没有影响(尽管幼苗生长受到抑制),而此时低浓度 ABA 作为长时间的刺激(或
适当胁迫)因素,在一定程度上激活了种子内在的生理活性,缓解了黑色种子的休眠状态,从而提高种子的萌
发率。 在短时间浸种(用 ABA浸泡种子 3 h后于水中萌发)处理下,较高浓度的 ABA在一定程度上得以稀释
从而产生了低剂量效应,更重要的是,前期较高浓度 ABA的短时间浸种对褐色及黑色种子的萌发起到了一定
的引发刺激作用,并能缓解黑色种子的休眠,这种脉冲刺激和低剂量效应同时作用,显著地促进了两种种子的
萌发及随后的幼苗生长。 这也同时能够说明 ABA低浓度直播而高浓度浸种促进黑色种子萌发的现象。 研究
显示,异子蓬黑色种子萌发需经过极端逆境的引发效应,从而打破休眠[44]。 本研究采用了不同浓度 ABA 直
播和浸种两种方式,分别代表着不同剂量长时间和短时间的处理,结果显示,ABA 对异子蓬种子特别是黑色
种子萌发及幼苗生长的促进作用不仅有剂量效应(低浓度和高浓度),还有时间依赖效应(长时间直播和短时
间浸种)。 ABA对异子蓬种子的这种短时间促进而长时间抑制的作用方式暗示,外源 ABA 短暂处理可能对
种子萌发起到了“引发冶(或“触发冶)的作用,类似于引发剂在种子萌发中的促进作用[45鄄46];ABA 亦或作为一
种胁迫因素促进了种子萌发过程中防御系统的启动,从而使与萌发相关的生理过程和分子事件变得活跃。
ABA促进种子休眠以及抑制种子萌发的机制已众所周知[5鄄6],但在一定条件下,当 ABA 做为第二信使起作用
时[47],它能够通过刺激相应信号系统,激发相关基因的表达及适应机制的启动来调节植物的适应反应[48鄄49]。
如 Xiong等从水稻中分离得 OsMAPK5基因,可被外源 ABA激活,正调控与干旱、高盐和低温响应相关基因的
表达[50];添加外源 ABA能使高粱中甜菜碱醛脱氢酶 BADH的表达水平上升,添加 ABA合成抑制剂则会使该
基因下调表达,ABA通过促进 BADH和甜菜碱的合成来调节水分和离子平衡,从而增加耐盐性[51];外源 ABA
能使抗寒基因 cor 基因家族( cor78、cor47、cor15a、cor66 等)上调表达,参与调控拟南芥冷诱导基因 cor15 和
rd19a的启动等,最终提高植物耐寒性[52]。 浸种处理可以提前完成种子萌发过程的代谢活动,提高种子的萌
发率,促进极端环境下幼苗的最初生长并提高植物抗逆性[53]。 研究表明,ABA处理可显著提高涝渍条件下水
稻种子的出苗率、种子相对活力指数[54];ABA 预浸种能缓解盐胁迫对向日葵种子的伤害[55];低浓度 ABA 处
理能缓解镉对种子萌发的毒害作用等[56]。
4766 摇 生摇 态摇 学摇 报摇 摇 摇 35卷摇
http: / / www.ecologica.cn
ABA对异子蓬种子萌发引发作用的推测与对萌发相关基因表达的分析结果相吻合。 为了探索 ABA 对
异子蓬种子萌发和幼苗生长促进作用的内在机制,利用前期在异子蓬异型种子萌发过程中获得的 mRNA
(cDNA鄄AFLP)差异条带,从中选取了 ABC 转运蛋白基因 ( SaABC)、丝裂原活化蛋白激酶激酶基因
(SaMAPKK)、DNA修复和转录因子基因(SaDRTF)等在异型种子中显著上调表达的基因开展研究。 我们在
实验中发现,较高浓度 ABA长时间处理黑色种子时,尽管没有影响其萌发率(还有少许升高),但其幼苗生长
受到了显著影响,这似乎暗示较高浓度 ABA长时间处理对幼苗的生长影响更严重,为了区分萌发期和幼苗期
对 ABA响应可能存在的内部差异,选择了萌发 8 h代表萌发期(前期研究确定此时间点足以看出异型种子相
关基因上调表达趋势),3 d代表幼苗期对相关基因的表达进行了分析。 结果显示,这 3 个基因在 5.0 滋mol / L
ABA短时间浸种的异子蓬萌发种子及幼苗中的表达呈上升趋势(褐色种子达显著水平),而在直播处理中则
较大程度上表现不变或降低表达。 以上趋势初步显示,在短暂浸种处理时,ABA 可能作为信号分子激发相关
基因的表达从而促进萌发过程[47鄄49]。 经 ABA直播 3 d 的褐色种子幼苗中各基因的表达比对照降低或不变,
而黑色种子幼苗中有两个基因的表达与对照无差异。 这与萌发实验中的观察结果基本一致,即一定浓度
ABA长期处理对异子蓬幼苗生长的影响比萌发更强烈。 研究表明,拟南芥中 AtPMP2 蛋白属于 ABC 转运蛋
白家族的 ABCD亚族,其功能是运载长链脂肪酸到过氧化物酶体,是脂肪酸 茁 氧化所必需的蛋白,种子中该
基因的突变将导致萌发缺陷[57]。 Footitt等在拟南芥中也发现一个 ABC转运蛋白可以控制拟南芥的种子萌发
和休眠,并且转运脂肪酸乙酰辅酶 A 进入过氧化物酶体[58]。 在此之前 Russell 等也曾报道 ABC 转运蛋白基
因可以显著促进种子萌发,该基因的突变体表现为深度休眠[59]。 丝裂原活化蛋白激酶(MAPK)途径是细胞
内一个极其复杂的信号网络通路,植物遭受低温、干旱、机械损伤、植物激素、活性氧物质及病原体侵染等胁迫
时会激活 MAPK,它是植物生长发育和应对逆境的重要组分[60鄄62]。 丝裂原活化蛋白激酶激酶基因作为 MAPK
信号通路中第 2个关键蛋白,受多种信号分子的调控,许多实验证实 MAPK级联途径参与调控 ABA信号转导
过程[63]。 在非生物胁迫下植物细胞 DNA 可能受到严重损伤,并由此对植物产生毒性[64]。 为此,DNA修复相
关因子在其中起到重要作用。 有报道显示,拟南芥种子在吸胀过程中 DNA 连接酶迅速表达,且在没有 DNA
复制和细胞分裂的情况下,有大量新 DNA 的合成,说明是对损伤的 DNA 进行修复[65]。 本研究中外源 ABA
浸种处理下异子蓬异型种子萌发过程中 ABC转运蛋白基因、丝裂原活化蛋白激酶激酶基因和 DNA修复和转
录因子基因尽管在 8 h和 3 d时的表达量比对照的萌发均显著上升,但 3个基因的总体表达趋势是下降的(图
4,图 5,图 6),这可能由于前 3h种子完全浸没在水中,从而对相关基因的表达产生了影响,因为褐色种子用蒸
馏水浸种处理的萌发率比直播的明显降低(图 1,图 2)。
生存于盐碱地中的植物通常都面临一系列的逆境胁迫,而盐生植物种子应对逆境胁迫主要有两种策略:
一是直接在高盐、干旱等条件下顺利萌发;其次在逆境中不萌发但保持生活力,待环境条件适合时迅速萌
发[66]。 而异子蓬作为典型的荒漠盐生植物,同时具有这两种特性,即褐色种子种皮薄萌发快、耐受逆境能力
较强,黑色种子种皮厚且硬、能抵御外界不良因素刺激、可在逆境中保持休眠推迟萌发[22, 67]。 ABA 是种子成
熟过程中积累的主要激素,也可以作为一种胁迫刺激信号,对异子蓬异型种子产生不同的影响从而表现萌发
的差异,这不仅拓宽了种子的萌发时间,还分散了单次萌发的风险,提高了幼苗的存活率,有效地保证了种群
的成功建立和顺利繁殖[66],由此对盐生植物异子蓬在种子阶段主动适应逆境具有重要的生态学意义。 ABA
对植物生长发育的调控是一个十分重要且复杂的过程,它与多个调控途径存在互作关系,全面深入理解 ABA
在植物中的生理功能,将为植物生长的精细调控提供重要的理论基础。 而了解其在植物体内的作用方式并应
用于培育抗逆作物,将为现代农业生产提供有价值的理论借鉴。
参考文献(References):
[ 1 ]摇 Philippi T. Bet鄄edging germination of desert annuals beyond the first year. American Naturalist, 1993, 142(3):474鄄487.
[ 2 ] 摇 Brady S M, Mccourt P. Hormone cross鄄talk in seed dormancy. Journal of Plant Growth Regulation, 2003, 22(1):25鄄31.
[ 3 ] 摇 Leung J, Giraudat J. Abscisic acid signal transduction. Annual Review of Plant Physiology and Plant Molecular Biology, 1998, 49(1):199鄄222.
5766摇 20期 摇 摇 摇 曹婧摇 等:外源激素 ABA影响新疆荒漠盐生植物异子蓬异型种子萌发机制 摇
http: / / www.ecologica.cn
[ 4 ]摇 Rohde A, Kurup S, Holdsworth M. ABI3 emerges from the seed. Trends in Plant Science, 2000, 5(10):418鄄419.
[ 5 ] 摇 Koornneef M, Bentsink L, Hilhorst H. Seed dormancy and germination. Current Opinion in Plant Biology, 2002, 5(1):33鄄36.
[ 6 ] 摇 Kucera B, Cohn M A, Leubner鄄Metzger G. Plant hormone interactions during seed dormancy release and germination. Seed Science Research,
2005, 15(4):281鄄307.
[ 7 ] 摇 McCarty D R. Genetic control and integration of maturation and germination pathways in seed development. Annual Review of Plant Physiology and
Plant Molecular Biology, 1995, 46(1):71鄄93.
[ 8 ] 摇 Okamoto M, Kuwahara A, Seo M, Kushiro T, Asami T, Hirai N, Kamiya Y, Koshiba T, Nambara E. CYP707A1 and CYP707A2, which encode
ABA 80忆鄄hydroxylases, are indispensable for proper control of seed dormancy and germination in Arabidopsis. Plant Physiology, 2006, 141(1):
97鄄107.
[ 9 ] 摇 Okamoto M, Tatematsu K, Matsui A, Morosawa T, Ishida J, Tanaka M, Endo T A, Mochizuki Y, Kamiya Y, Shinozaki K, Nambara E, Swki M.
Genome鄄wide analysis of endogenous abscisic acid鄄mediated transcription in dry and imbibed seeds of Arabidopsis using tiling arrays. The Plant
Journal, 2010, 62(1):39鄄51.
[10] 摇 M俟ller K, Tintelnot S, Leubner鄄Metzger G. Endosperm鄄limited Brassicaceae seed germination:abscisic acid inhibits embryo鄄induced endosperm
weakening of Lepidium sativum ( cress) and endosperm rupture of cress and Arabidopsis thaliana. Plant and Cell Physiology, 2006, 47( 7):
864鄄877.
[11] 摇 Schmitz N, Abrams S R, Kermode A R. Changes in ABA turnover and sensitivity that accompany dormancy termination of yellow鄄cedar
(Chamaecyparis nootkatensis) seeds. Journal of Experimental Botany, 2002, 53(366):89鄄101.
[12] 摇 李章海, 王能如, 冯勇刚, 徐增汉, 周慧玲, 王东胜. 天然型脱落酸和微量元素对烤烟种子萌发的影响. 烟草科技, 2006, (2):53鄄55.
[13] 摇 汤日圣, 王节萍, 童红玉. 脱落酸对水稻种子萌发和秧苗生长的调控作用. 江苏农业学报, 2003, 19(2):75鄄80.
[14] 摇 王熹, 陶龙兴, 黄效林, 谈惠娟, 董文忠, 季茂荣. 外源 ABA抑制水稻种子发芽的生理机制. 作物学报, 2004, 30(12):1250鄄1253.
[15] 摇 雍太文, 杨文钰, 王小春. 利用外源 ABA控制杂交水稻穗萌的研究. 农学通报, 2003, 19(1):21鄄23, 29鄄29.
[16] 摇 陈瑛, 李先恩, 张军. ABA促进黄连种子萌发 1例. 中国中药杂志, 1993, 18(3):145鄄146.
[17] 摇 Lopez鄄Molina L, Mongrand S, Chua N H. A postgermination developmental arrest checkpoint is mediated by abscisic acid and requires the ABI5
transcription factor in Arabidopsis. Proceedings of the National Academy of Sciences of United States of America, 2001, 98(8):4782鄄4787.
[18] 摇 吴三桥, 丁锐, 李新生. 赤霉素和脱落酸对黑稻黄化幼苗中胚轴伸长生长的作用研究. 氨基酸和生物资源, 2002, 24(3):44鄄45.
[19] 摇 李安仁. 中国植物志(第二十五卷, 第二分册) . 北京:科学出版社, 1979:157鄄186.
[20] 摇 毛祖美. 新疆植物志(第二卷, 第一分册) . 乌鲁木齐:新疆科技卫生出版社, 1994:84鄄106.
[21] 摇 Clavijo E R D. The reproductive strategies of the heterocarpic annual Calendula arvensis (Asteraceae) . Acta Oecologica, 2005, 28(2):119鄄126.
[22] 摇 宋以刚, 李利, 张希明, 潘响亮, 曾歆花. 异子蓬二型性种子的种皮结构及离子含量差异. 植物研究, 2012, 32(2):290鄄295.
[23] 摇 Wang L, Huang Z Y, Baskin C C, Baskin J M, Dong M. Germination of dimorphic seeds of the desert annual halophyte Suaeda aralocaspica
(Chenopodiaceae), a C4 plant without Kranz anatomy. Annals of Botany, 2008, 102(5):757鄄769.
[24] 摇 Voznesenskaya E V, Franceschi V R, Kiirats O, Freitag H, Edwards G E. Kranz anatomy is not essential for terrestrial C4 plant photosynthesis.
Nature, 2001, 414(6863):543鄄546.
[25] 摇 Sage R F. The evolution of C4 photosynthesis. New Phytologist, 2004, 161(2):341鄄370.
[26] 摇 Lara M V, Chuong S D X, Akhani H, Andreo C S, Edwards G E. Species having C4 single鄄cell鄄type photosynthesis in the Chenopodiaceae Family
evolved a photosynthetic phosphoenolpyruvate carboxylase like that of Kranz鄄type C4 species. Plant Physiology, 2006, 142(2):673鄄684.
[27] 摇 王雷, 董鸣, 黄振英. 种子异型性及其生态意义的研究进展. 植物生态学报, 2010, 34(5):578鄄590.
[28] 摇 Nambara E, Marion鄄Poll A. ABA action and interactions in seeds. Trends in Plant Science, 2003, 8(5):213鄄217.
[29] 摇 Shinozaki K, Yamaguchi鄄Shinozaki K. Molecular responses to dehydration and low temperature: Differences and cross鄄talk between signaling
pathways. Current Opinion in Plant Biology, 2000, 3(3):217鄄223.
[30] 摇 曹婧, 兰海燕. 植物激素脱落酸受体及其信号转导途径研究进展. 生物技术通报, 2014, (6):22鄄29.
[31] 摇 Hilhorst H W M. A critical update on seed dormancy. I. Primary dormancy. Seed Science Research, 1995, 5(2):61鄄73.
[32] 摇 Kermode A R. Role of abscisic acid in seed dormancy. Journal of Plant Growth Regulation, 2005, 24(4):319鄄344.
[33] 摇 Feurtado J A, Kermode A R. A merging of paths:Abscisic acid and hormonal cross鄄talk in the control of seed dormancy maintenance and alleviation.
Annual Plant Reviews, 2007, 27:176鄄223.
[34] 摇 Finch鄄Savage W E, Leubner鄄Metzger G. Seed dormancy and the control of germination. New Phytologist, 2006, 171(3):501鄄523.
[35] 摇 Holdsworth M J, Finch鄄Savage W E, Grappin P, Job D. Post鄄genomics dissection of seed dormancy and germination. Trends in Plant Science,
2008, 13(1):7鄄13.
[36] 摇 Pitet P E. Some cellular and molecular properties of abscisic acid:its particular involvement in growing plant roots. Cellular and Molecular Life
Sciences, 1998, 54(8):851鄄865.
[37] 摇 Bai L, Zhou Y, Zhang X R, Song C P, Cao M Q. Hydrogen peroxide modulates abscisic acid signaling in root growth and development in
Arabidopsis. Chinese Science Bulletin, 2007, 52(8):1142鄄1145.
[38] 摇 Xing Y, Jia W, Zhang J. Atmkk1 and Atmpk6 are involved in abscisic acid and sugar signaling in Arabidopsis seed germination. Plant Molecular
Biology, 2009, 70(6):725鄄736.
6766 摇 生摇 态摇 学摇 报摇 摇 摇 35卷摇
http: / / www.ecologica.cn
[39]摇 陈文瑞, 张武军. 脱落酸浸种对水稻秧苗素质的影响. 四川农业大学学报, 2000, 18(2):131鄄133.
[40] 摇 邵玺文, 孙长占, 阮长春, 韩立军, 赵兰坡, 胡耀辉. ABA浸种对水稻生长及产量的影响. 吉林农业大学学报, 2003, 25(3):243鄄 245,
249鄄249.
[41] 摇 苗永美, 戈应祥, 居文军, 杨海林, 王万洋, 简兴, 周玉丽. 不同浸种处理对甜瓜种子发芽及幼苗生长的影响. 种子, 2013, 32(11):
20鄄27.
[42] 摇 Mohamed鄄Yasseen Y, Barringer S A, Splittstoesser W E, Costanza S. The role of seed coats in seed viability. Botanical Review, 1994, 60(4):
426鄄439.
[43] 摇 Yao S X, Lan H Y, Zhang F C. Variation of seed heteromorphism in Chenopodium album and the effect of salinity stress on the descendants. Annals
of Botany, 2010, 105(6):1015鄄1025.
[44] 摇 何美香, 杜晓峰, 陈玲, 吕秀云, 兰海燕. 盐分、变温和激素处理对盐生植物异子蓬异型性种子萌发及成苗的影响. 生态学杂志, 2013,
32(1):45鄄51.
[45] 摇 管博, 曹迪, 于君宝. 引发处理对甜高粱种子萌发阶段生理生态影响. 生态学杂志, 2014, 33(4):982鄄988.
[46] 摇 何军, 浦俊, 王渭玲, 高青鸽. 引发对黄芪种子萌发及幼苗抗旱性的影响. 干旱地区农业研究, 2013, 31(5):233鄄237.
[47] 摇 Finkelstein R R, Gampala S S L, Rock C D. Abscisic acid signaling in seeds and seedlings. The Plant Cell, 2002, 14(S1):15鄄45.
[48] 摇 Fujita Y, Fujita M, Satoh R, Maruyama K, Parvez M M, Seki M, Hiratsu K, Takagi M O, Shinozaki K, Shinozaki K Y. AREB1 is a transcription
activator of novel ABRE鄄dependent ABA signaling that enhances drought stress tolerance in Arabidopsis. The Plant Cell, 2005, 17 ( 12):
3470鄄3488.
[49] 摇 Xiong L, Schumaker K S, Zhu J K. Cell signaling during cold, drought, and salt stress. The Plant Cell, 2002, 14:165鄄l83.
[50] 摇 Xiong L, Yang Y. Disease resistance and abiotic stress tolerance in rice are inversely modulated by an abscisic acid鄄inducible mitogen鄄activated
protein kinase. The Plant Cell, 2003, 15(3):745鄄759.
[51] 摇 Saneoka H, Ishiguro S, Moghaieb R E A. Effect of salinity and abscisic acid on accumulation of glycinebetaine and betaine aldehyde dehydrogenase
mRNA in sorghum leaves (Sorghum bicolor). Journal of Plant Physiology, 2001, 158(7):853鄄859.
[52] 摇 Yamaguchi鄄Shinozaki K, Shinozaki K. A novel cis鄄acting element in an Arabidopsis gene is involved in responsiveness to drought, low鄄temperature,
or high鄄salt stress. The Plant Cell, 1994, 6(2):251鄄264.
[53] 摇 张小冰, 邢勇, 郭乐, 张彩凤. 腐植酸钾浸种对干旱胁迫下玉米幼苗保护酶活性及 MDA 含量的影响. 中国农学通报, 2011, 27(7):
69鄄72.
[54] 摇 陈思妍, 邹华文. 脱落酸浸种提高萌发期水稻种子对涝渍胁迫的抗性研究. 安徽农业科学, 2013, 41(2):593鄄594.
[55] 摇 颜宏, 赵伟, 张志静, 胡晓悦. 盐胁迫下 ABA预浸种对向日葵幼苗的缓解效应. 中国农学通报, 2013, 29(34):139鄄143.
[56] 摇 张晓菲. ABA对 Cd胁迫下小麦种子萌发特性的影响. 现代商贸工业, 2010, (4):305鄄306.
[57] 摇 Wanders R J, Visser W F, van Roermund C W, Kemp S, Waterham H R. The peroxisomal ABC transporter family. Pflugers Archiv鄄 鄄European
Journal of Physiology, 2007, 453(5):719鄄734.
[58] 摇 Footitt S, Slocombe S P, Larner V, Kurup S, Wu Y S, Larson T, Graham L, Baker A, Holdsworth M. Control of germination and lipid
mobilization by COMATOSE, the Arabidopsis homologue of human ALDP. The EMBO Journal, 2002, 21(12):2912鄄2922.
[59] 摇 Russell L, Larner V, Kurup S, Bougourd S, Holdsworth M. The Arabidopsis COMATOSE locus regulates germination potential. Development,
2000, 127(17):3759鄄3767.
[60] 摇 Tena G, Asai T, Chiu W L, Sheen J. Plant mitogen鄄activated protein kinase signaling cascades. Current Opinion in Plant Biology, 2001, 4(5):
392鄄400.
[61] 摇 Pitzschke A, Schikora A, Hirt H. MAPK cascade signaling networks in plant defence. Current Opinion in Plant Biology, 2009, 12(4):421鄄426.
[62] 摇 譒amajov佗 O, Pl侏hal O, Al鄄Yousif M, Hirt H, Samaj J. Improvement of stress tolerance in plants by genetic manipulation of mitogen鄄activated
protein kinases. Biotechnology Advances, 2013, 31(1):118鄄128.
[63] 摇 张茂迎, 宗晓娟, 李德全. 植物 MAPK级联途径参与调控 ABA信号转导. 生命科学, 2010, 22(8):736鄄742.
[64] 摇 钟鸣, 陈琢, 刘宛, 李培军, 台培东. 逆境胁迫下植物 DNA损伤和 DNA错配修复研究进展. 生态学杂志, 2013, 31(9):2404鄄2411.
[65] 摇 Bray C M., West C E. DNA repair mechanisms in plants:crucial sensors and effectors for the maintenance of genome integrity. New Phytologist,
2005, 168(3):511鄄528.
[66] 摇 Weber D J. Salinity and Water Stress. Netherlands:Springer, 2009:179鄄185.
[67] 摇 刘艳芳, 魏岩, 严成. 异子蓬二型种子的萌发与休眠特性及其生态适应. 生态学报, 2009, 29(12):6609鄄6614.
7766摇 20期 摇 摇 摇 曹婧摇 等:外源激素 ABA影响新疆荒漠盐生植物异子蓬异型种子萌发机制 摇