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Research progress on chemical communication of development and host-finding of nematodes

线虫转型发育和寄主识别的化学通讯研究进展



全 文 :
摇 摇 摇 摇 摇 生 态 学 报
摇 摇 摇 摇 摇 摇 摇 (SHENGTAI XUEBAO)
摇 摇 第 33 卷 第 7 期摇 摇 2013 年 4 月摇 (半月刊)
目摇 摇 次
前沿理论与学科综述
线虫转型发育和寄主识别的化学通讯研究进展 张摇 宾,胡春祥,石摇 进,等 (2003)……………………………
生物物种资源监测原则与指标及抽样设计方法 徐海根,丁摇 晖,吴摇 军,等 (2013)……………………………
个体与基础生态
呼伦贝尔草原人为火空间分布格局 张正祥,张洪岩,李冬雪,等 (2023)…………………………………………
青藏高原草地地下生物量与环境因子的关系 杨秀静,黄摇 玫,王军邦,等 (2032)………………………………
1961—2010 年桂林气温和地温的变化特征 陈摇 超,周广胜 (2043)……………………………………………
黄泥河自然保护区狍冬季卧息地选择 朱洪强,葛志勇,刘摇 庚,等 (2054)………………………………………
青藏高原草地植物叶解剖特征 李全发,王宝娟,安丽华,等 (2062)………………………………………………
青藏高原高寒草甸夏季植被特征及对模拟增温的短期响应 徐满厚,薛摇 娴 (2071)……………………………
高温影响番茄小孢子发育的细胞学研究 彭摇 真,程摇 琳,何艳军,等 (2084)……………………………………
黄土丘陵半干旱区柠条林株高生长过程新模型 赵摇 龙,王振凤,郭忠升,等 (2093)……………………………
栎属 7 种植物种子的发芽抑制物质研究 李庆梅,刘摇 艳,刘广全,等 (2104)……………………………………
水分胁迫和杀真菌剂对黄顶菊生长和抗旱性的影响 陈冬青,皇甫超河,刘红梅,等 (2113)……………………
铜尾矿废弃地与相邻生境土壤种子库特征的比较 沈章军,欧祖兰,田胜尼,等 (2121)…………………………
云雾山典型草原火烧不同恢复年限土壤化学性质变化 李摇 媛,程积民,魏摇 琳,等 (2131)……………………
根系分区交替灌溉条件下水肥供应对番茄果实硝酸盐含量的影响 周振江,牛晓丽,李摇 瑞,等 (2139)………
喀斯特山区土地利用对土壤团聚体有机碳和活性有机碳特征的影响 李摇 娟,廖洪凯,龙摇 健,等 (2147)……
自生固氮菌活化土壤无机磷研究 张摇 亮,杨宇虹,李摇 倩,等 (2157)……………………………………………
德国鸢尾对 Cd胁迫的生理生态响应及积累特性 张呈祥,陈为峰 (2165)………………………………………
施污土壤重金属有效态分布及生物有效性 铁摇 梅,宋琳琳,惠秀娟,等 (2173)…………………………………
基于叶面积指数改进的直角双曲线模型在玉米农田生态系统中的应用 孙敬松,周广胜 (2182)………………
中稻田三种飞虱的捕食性天敌优势种及农药对天敌的影响 林摇 源,周夏芝,毕守东,等 (2189)………………
种群、群落和生态系统
珠江口超微型浮游植物时空分布及其与环境因子的关系 张摇 霞,黄小平,施摇 震,等 (2200)…………………
输水前后塔里木河下游物种多样性与水因子的关系 陈永金,刘加珍,陈亚宁,等 (2212)………………………
南海西北部陆架区鱼类的种类组成与群落格局 王雪辉,林昭进,杜飞雁,等 (2225)……………………………
滇西北高原碧塔湖滨沼泽植物群落分布与演替 韩大勇,杨永兴,杨摇 杨 (2236)………………………………
石羊河下游白刺灌丛演替过程中群落结构及数量特征 靳虎甲,马全林,何明珠,等 (2248)……………………
资源与产业生态
土壤深松和补灌对小麦干物质生产及水分利用率的影响 郑成岩,于振文,张永丽,等 (2260)…………………
豆科绿肥及施氮量对旱地麦田土壤主要肥力性状的影响 张达斌,姚鹏伟,李摇 婧,等 (2272)…………………
沟垄全覆盖种植方式对旱地玉米生长及水分利用效率的影响 李摇 荣,侯贤清,贾志宽,等 (2282)……………
城乡与社会生态
北京北护城河河岸带的温湿度调节效应 吴芳芳,张摇 娜,陈晓燕 (2292)………………………………………
西安太阳总辐射时空变化特征及对城市发展的响应 张宏利,张纳伟锐,刘敏茹,等 (2304)……………………
研究简报
安徽琅琊山大型真菌区系多样性 柴新义,许雪峰,汪美英,等 (2314)……………………………………………
中国生态学学会 2013 年学术年会征稿通知 (2320)………………………………………………………………
第七届现代生态学讲座、第四届国际青年生态学者论坛通知 (玉)………………………………………………
中、美生态学会联合招聘国际期刊主编 (印)………………………………………………………………………
期刊基本参数:CN 11鄄2031 / Q*1981*m*16*318*zh*P* ¥ 90郾 00*1510*32*
室室室室室室室室室室室室室室
2013鄄04
封面图说: 金灿灿的小麦熟了———小麦是世界上最早栽培的农作物之一,是一种在世界各地广泛种植的禾本科植物,起源于中
东地区。 全世界大概有 43 个国家,近 35%—40%的人口以小麦为主要粮食。 小麦是禾谷类作物中抗寒能力较强的
越冬作物,具有一定的耐旱和耐盐碱能力。 中国的小麦分布于全国各地,主要集中于东北平原、华北平原和长江中
下游一带。 小麦秋季播种、冬季生长、春季开花、夏季结实。 子粒含有丰富的淀粉、较多的蛋白质、少量的脂肪,还有
多种矿物质元素和维生素 B,是一种营养丰富、经济价值较高的粮食。
彩图及图说提供: 陈建伟教授摇 北京林业大学摇 E鄄mail: cites. chenjw@ 163. com
第 33 卷第 7 期
2013 年 4 月
生 态 学 报
ACTA ECOLOGICA SINICA
Vol. 33,No. 7
Apr. ,2013
http: / / www. ecologica. cn
基金项目:林业公益性行业科研专项(201004003);国家自然科学基金(30970369, 31221091,31272323);国家重点基础研究发展计划 973 项目
(2009CB119200);中国科学院创新工程项目(KSCX2鄄EW鄄J鄄2)
收稿日期:2011鄄12鄄24; 摇 摇 修订日期:2012鄄10鄄10
*通讯作者 Corresponding author. E鄄mail: zhaoll@ ioz. ac. cn
DOI: 10. 5846 / stxb201112241967
张宾,胡春祥1,石进,蒋丽雅,汤宗斌,石敬夫,赵莉蔺.线虫转型发育和寄主识别的化学通讯研究进展.生态学报,2013,33(7):2003鄄2012.
Zhang B, Hu C X, Shi J,Jiang L Y, Tang Z B, Shi J F, Zhao L L. Research progress on chemical communication of development and host鄄finding of
nematodes. Acta Ecologica Sinica,2013,33(7):2003鄄2012.
线虫转型发育和寄主识别的化学通讯研究进展
张摇 宾1, 2,胡春祥1,石摇 进3,蒋丽雅4,汤宗斌5,石敬夫6,赵莉蔺2,*
(1. 东北林业大学林学院,哈尔滨摇 150040; 2. 中国科学院动物研究所农业虫害鼠害综合治理研究国家重点实验室,北京摇 100101;
3. 安徽省国有林管理局,合肥摇 230001; 4. 安徽省林业有害生物防治检疫局,合肥摇 230031;
5. 合肥市森林病虫害防治检疫站,合肥 摇 230031; 6. 安徽省全椒县森林病虫害防治检疫站,全椒摇 239500)
摘要:线虫是一类低等无脊椎动物,在自然界分布很广。 因为线虫通常生活在土壤或寄生物中,没有适宜的视觉或听觉系统,接
收环境信号的重要途径就是借助于其精细的化学感受系统。 研究表明,线虫能够通过识别挥发性物质来引导一系列行为:取
食、交配、产卵和驱避有毒物质、避免高种群密度等。 目前,对线虫化学感受机制的研究越来越被人们所重视,也取得了一些突
破性进展。 综合近年来已有的研究成果,从发育调控机制、寄主识别机制、化学感受机理等方面进行了详细系统的总结,并对未
来研究和线虫防治进行了展望。
关键词:线虫;化学感受;发育调控;寄主识别;化学通讯
Research progress on chemical communication of development and host鄄finding
of nematodes
ZHANG Bin1,2, HU Chunxiang1, SHI Jin3,JIANG Liya4, TANG Zongbin5, SHI Jingfu6, ZHAO Lilin2,*
1 College of Forestry, Northeast Forestry University, Harbin 150040, China
2 State Key Laboratory of Integrated Management of Pest Insects and Rodents, Institute of Zoology, Chinese Academy of Sciences, Beijing 100101, China
3 Administration of State鄄owned Forests of Anhui Province,Hefei 230001,China
4 Bureau of Forest Pest and Disease Control and Quarantine of Anhui Province,Hefei 230031,China
5 Station of Forest Pest and Disease Control and Quarantine of Hefei,Hefei 230031,China
6 Station of Forest Pest and Disease Control and Quarantine of Quanjiao,Quanjiao 239500,China
Abstract: Nematodes are globally distributed invertebrates, which are often found living in soil or as parasites of animals,
insects and plants. They lack vision and hearing systems, so the survival of both free鄄living and parasitic nematodes
depends on well developed chemosensation and chemotaxis systems. Nematodes utilize chemical signals in their environment
to detect food sources, potential hosts, noxious compounds, reproductive partners and sometimes to enable them to choose
between alternative developmental states. Interest in the mechanisms involved in chemosensing and identification of the
discrete components of the chemical signals has steadily increased over the past few decades. Here we have summarized and
evaluated recent discoveries and advances in this field, involving the mechanism of developmental regulation, the
recognition of hosts, the construction and function of the chemoreceptor system, signal transduction, the prospects for
related research and the control of harmful nematodes based on chemical ecology. The pheromonal cues that indicate
overcrowding, high temperature, or starvation can trigger the nematodes to enter into diapause and enhance longevity by
modulating endocrine signaling and gene expression. The genetic and molecular basis of phenotypic plasticity has been
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studied extensively in Caenorhabditis elegans, and recently, it was discovered that pheromones called ascarosides secreted
by C. elegans themselves induce formation of the dauer stage and the four chemoreceptors of the dauer juveniles.
Recognition of hosts by nematodes is very specific and the chemical signals from the hosts, as well as the chemoreceptors of
the nematodes play key roles in this process. Both free鄄living and parasitic nematodes can sense chemical signals comprised
of water soluble and / or volatile compounds. The chemotaxis of C. elegans has been studied for over 30 years and inducing
substances identified thus far include salt ion (Na+、Li+、Cl-、OH-), amino acid, nucleotides, biotin and some volatiles
(pyrazine, diacetyl, benzaldehyde, 2,4,5鄄trimethylthiazole, isoamylalcohol, 2,3鄄pentanedione) . Another example is
Bursaphelenchus xylophilus, the pinewood nematode, which is a plant parasitic nematode that is transmitted via Monochamus
beetles. The chemical relationships within this system has been under investigation for several years, but no conclusive
results regarding the discrete signaling molecules involved and their roles within the system have been obtained to date.
Electrophysiological analyses indicated that different responses to chemical signals are due to differences in the
chemoreceptors of various species of nematodes, which are composed by amphid and phasmid. Specific chemoreceptors in
the neurons recognize particular compounds, and the neurons work collectively to receive chemical signals, and then
activate a response through signal transduction. Nematodes, especially plant parasitic nematodes, cause huge economic
damages every year, as advances in the study of the chemosenation mechanism are made, more effective strategies based on
chemical ecology may be devised, thus replacing traditional control methods utilized today.
Key Words: Nematodes; chemosensation; development control; host recognition; chemical communication
线虫是一类低等无脊椎动物,在自然界分布很广,占据了陆地和海洋的大部分生境[1]。 一部分线虫可以
独立生存,称为自由生活线虫;另一部分采用寄生策略,以植物和动物作为寄主。 线虫通常生活在土壤或寄生
物中,没有适宜的视觉或听觉系统,接收环境信号的重要途径是其精细的化学感受系统[2鄄5]。 面对错综复杂
的外部环境,线虫能够充分利用周围的环境信息,采取多种多样的生存策略,完成生活史。 由此可见,感受系
统的形成对于线虫的生存至关重要[6]。 研究表明,线虫能够通过嗅觉感受 (识别挥发性物质) 来引导其一系
列行为:取食、交配、产卵和驱避有毒物质、避免高种群密度等,最终得以持续生存[3鄄5]。 在进化过程中,化学
感受系统越来越精细,并已经成为重要的神经感受工具,不仅能导致线虫行为的改变,还能调控线虫的发育途
径。 在不良环境中,线虫选择由繁殖周期虫态转型发育为滞育周期虫态,以提高对不利环境的抗性[2, 4鄄5]。
目前,对线虫化学感受机制的研究越来越被人们所重视,也取得了一些突破性进展,包括发育调控机制、
寄主识别机制、化学感受机理等。
1摇 化学通讯与线虫转型发育
线虫可以通过识别环境信号决定进入两种不同的发育周期:繁殖周期和扩散周期(植物寄生线虫一般称
为寄生期)。 在适宜的生存环境中,线虫进入繁殖周期,经过 3—4次蜕皮,发育为成虫。 随着环境恶化,环境
信号和信息物质诱导线虫改变自身的发育模式,进入扩散周期,从而使线虫具备长期生存或移动扩散的特性,
有机会转移到新寄主,增加生存机会[7鄄8]。 进入扩散周期能够从根本上使寄生线虫的发育与适宜寄主的季节
变换相一致[9]。
Sommerville和 Davey认为,线虫发育从繁殖周期向扩散周期转化,提高了线虫的生存机会[8]。 扩散周期
虫态(植物寄生线虫一般称为寄生期幼虫)是转移寄主、完成侵染循环所必需的侵染虫态,依靠激活线虫体内
一种生存增强型信号途径而形成[10鄄11]。
线虫是否转型进扩散周期虫态的首要条件就是化学信息感应[8]。 在环境信号的诱导刺激下,线虫分泌
化学信息物质,并在个体间进行信息交流。 环境信号包括化学信息、温度、种群密度等[8, 12鄄13]。 是否进入扩散
周期发育阶段的决定性因素主要是化学信息物质浓度和持续时间[7]。 在足够浓度化学信息物质持续刺激
下,线虫启动特殊信号传导途径,改变体内激素水平,并使系统代谢降低和形态过程改变,从而进入扩散周期,
4002 摇 生摇 态摇 学摇 报摇 摇 摇 33 卷摇
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提高对恶劣环境的抗性[7, 14]。
线虫转型发育并进入扩散周期的基本原理是一致的,扩散周期虫态因线虫种类不同而不同。 秀丽隐杆线
虫(Caenorhabditis elegans)的扩散周期虫态是三龄幼虫 J芋,诱导信息物质属于种内信息素,调控因子是高温、
种群密度和食物缺乏[7],在信息素刺激下,分散型二龄幼虫 J域直接蜕皮形成 J芋。 植物寄生线虫松材线虫
(Brusaphelenchus xylophilus)采取了另一种特殊生存策略[7],与秀丽隐杆线虫相对应的两个侵染虫态分别为分
散型三龄线虫 J芋和持久性四龄线虫 J郁。 J芋形成的诱导信息素是种内信息素,调控因子是低温、种群密度和
食物缺乏,并不直接形成 J郁,但能长期生存。 J芋蜕皮形成 J郁的诱导信息素是媒介天牛的特异种间信息物
质[15鄄16]。 动物寄生线虫圆形线虫(Pristionchus pacificus)的生活史与秀丽隐杆线虫相似,不同于 C. elegans 的
是,它形成扩散虫态后进入金龟子科甲虫(scarab beetles)体内,一直到甲虫死亡后,再取食甲虫尸体上腐生的
微生物并继续发育[17鄄18]。
20 世纪 80 年代以来,调控线虫扩散虫态形成的信息物质鉴定一直是人们研究的重点,但是,由于线虫个
体微小和生存环境的特殊,分离技术瓶颈难以突破。 直到 2005 年,Jeong 等才分离鉴定出第 1 个线虫诱导滞
育信息素:秀丽隐杆线虫诱导侵染虫态 J芋形成的信息素:(2)鄄 (6R)鄄 (3,5鄄 dihydroxy鄄 6鄄methyltetrahydropyran鄄
2鄄yloxy) heptanoic acid,属于一种脂肪酸衍生物。 这篇论文的发表为今后的相关研究指引了方向,此后很多报
道都证明了茴糖脂肪酸衍生物可以引起秀丽隐杆线虫转型[19]。
2摇 化学通讯与线虫寄主识别
线虫具有复杂、独特的化学感应机制,能识别繁杂的化学物质,并做出多种相应的行为反应[4鄄5]。 运动是
线虫侵染和取食的必要条件。 寄生线虫在环境恶化时会进入扩散周期,形成一个甚至更多的侵染虫态,进行
转移寄主[4]。
侵染虫态能够成功识别寄主,并选择适宜进攻部位,甚至能够产生朝向新寄主的跳跃行为[20鄄21]。 在此过
程中,寄主化学信号以及线虫化学感受扮演了重要的角色。 线虫可以从众多物质中识别出一种目标气味[3]。
植物寄生线虫大多生活在充满空气、含一定水分的土壤环境中。 因此,影响寄主识别的化学信号主要包括挥
发性和水溶性两类化合物[4, 20]。 其中,水溶性化合物能在土壤中缓慢释放,提供短距离化学感受信息;挥发
性物质传播迅速,比水溶性物质扩散率高 4 个数量级,提供远距离化学信息[21]。 线虫与昆虫、脊椎动物类似,
能感受脂肪和芳香族化合物,包括醛、酯、酮、醇、羧酸、胺类、氯化物和硫化物[4, 22]。
线虫寄主识别具有高度特异性[23]。 不同寄主植物的根泌物对线虫的吸引有一定专化性,并有一些特异
的寄主定位次生代谢物质,如马铃薯根浸出液能够引诱马铃薯线虫(Globodera rostochiensis),并引起该线虫化
感器的电生理反应[24]。 不同种类线虫的化学趋性也有所不同。 昆虫寄生线虫———嗜菌异小杆线虫
(Heterorhabditis bacteriophora)对强烈引诱自由生活线虫———秀丽隐杆线虫的物质没有趋向反应[22]。 同种线
虫不同龄期有时会表现不同的趋性。 嗜菌异小杆线虫繁殖周期的引诱物质包括乙醇、尿酸和 CO2,而扩散周
期的侵染虫态被 1鄄庚醇 (1鄄heptanol),1鄄辛醇 (1鄄octanol) 和 1鄄壬醇 (1鄄nonanol) 强烈吸引[22, 25]。 马铃薯根浸
出液对马铃薯线虫(Globodera rostochiensis)寄生期幼虫具有引诱作用,雄虫能识别并趋向于雌虫性信息
素[24鄄25]。 可以看到,寄生性线虫的化学趋性,尤其是扩散周期侵染虫态的寄主识别具有很高的特异
性[3, 22, 26]。 但是,目前大部分化学信息物质研究结果仍局限在一些普遍的引诱剂如 CO2、盐类、乙酰胆碱、氨
基酸等[27鄄29],特异性信息物质成分很少被分离鉴定。
2. 1摇 直接识别
自由生活线虫能够直接感受环境中寄主或食物的大量水溶性和挥发性化合物。 秀丽隐杆线虫在土壤中
的化学趋向研究已达 30 多年[22]。 研究结果发现,引诱物质包括盐离子 Na+、Li+、Cl-、OH-,氨基酸 ( amino
acids):赖氨酸、组氨酸、半胱氨酸,核苷酸 ( nucleotides):cAMP、cGMP,生物素和一些挥发性物质:吡嗪
(pyrazine), 联乙醯 (diacetyl)、安息香醛 (benzaldehyde)、2,4,5鄄三甲基噻唑 (2,4,5鄄 trimethylthiazole)、异戊
基乙醇 (isoamylalcohol) 和 2,3鄄戊二酮 (2,3鄄pentanedione)等[22,30鄄31]。 很多分解有机质的细菌作为秀丽隐杆
5002摇 7 期 摇 摇 摇 张宾摇 等:线虫转型发育和寄主识别的化学通讯研究进展 摇
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线虫的食物,其代谢产物:醛、酯、酮、醇、羧酸和碳水化合物对秀丽隐杆线虫也具有强烈的吸引作用[32]。
与自由生活线虫不同的是,寄生线虫必须调整它们的化学感受系统,对寄主特异性信号进行准确定位,具
有更为复杂、专一的化学感受机制[3]。
植物寄生线虫,大多属于专性寄生,包括 3 个较大的目:三矛目(Triplonchida)、矛线目(Dorylaimida)和垫
刃目(Tylenchida) [33]。 其中,前两个目的线虫属于根外寄生,垫刃目线虫属于体内寄生。 体内寄生线虫与寄
主之间具有最密切、复杂的关系[33]。
大部分植物寄生线虫通过直接侵染植物根系来转移寄主。 在进化过程中,有的种类已经形成与寄主细胞
之间以复杂的协同进化关系来维持长久的寄生生境[13]。 植物寄生线虫寄生期幼虫能通过对寄主特异指纹化
学信息物作出准确而快速的反应,使自身的寄生生活史与寄主植物生活史保持协调一致。 寄生期幼虫定位寄
主行为虽种间有所不同,但大部分属于一种被动扩散[34],主要的化学趋向因子来自寄主[35]。 其中,寄主根的
伸长区对线虫具有引诱作用[3, 26, 36]。
2. 2摇 间接识别
2. 2. 1摇 昆虫病原线虫对植物信号的利用
昆虫病原线虫主要包括斯氏线虫属(Steinernema)和异小杆线虫属(Heterorhabditis),具有更为严密的化学
感受系统[4, 22]。 当处于同一生活环境中,这两个属的广食性昆虫病原线虫采取各自不同的识别寄主策
略[37鄄38]。 斯氏线虫属采取消极“埋伏冶策略,如当小地老虎(Agrotis ipsilon)在根表层取食时小卷蛾斯氏线虫
(Steinernema carpocapsae)直接进行侵染[37];而异小杆线虫属采用积极“巡航策略冶(cruiser strategy),如异小杆
线虫(Heterorhabditis bacteriophora)等进行寄主定位时,并不直接趋向寄主昆虫,而是在土壤中搜索远距离深土
层的昆虫寄主葡萄根象甲(Otiorhynchus sulcatus) [37]。 异小杆线虫能对植物以及植物与昆虫的混合体产生聚
集反应,而对昆虫本身并无明显反应,说明昆虫寄生线虫首先远距离识别昆虫的寄主植物,尤其是昆虫取食过
的寄主植物,然后近距离侵染寄生昆虫[39鄄40]。 这样,异小杆线虫把植物根作为一条“高速路冶,接近并侵染深
土层的多种昆虫[22]。
2005 年 Rasmann等在《Nature》报道了植物根中对昆虫寄生线虫具有引诱作用的化学物质。 玉米根叶甲
(Diabrotica virgifera virgifera LeConte)幼虫取食后,玉米根释放出的石竹烯(E)鄄caryophyllene 能够吸引远距离
异小杆线虫,进而能够使线虫近距离侵染玉米根叶甲[41]。 这是首次从化学分子水平阐明了昆虫寄生线虫、昆
虫和植物之间的化学通讯。
2. 2. 2摇 植物寄生线虫对昆虫信号的利用
在动物界,线虫和昆虫是种群数量占优势的两大类群。 线虫与昆虫之间的相互关系也构成了生态系统多
样性种间联系的一个极其有意义的部分。 大多数昆虫体内具有一个适合线虫移动的微环境,线虫可以在其中
取食、移动和栖息[42]。 线虫和昆虫的关系,除了寄生 (以昆虫为食物) 之外,还包括携带关系(昆虫作为传播
媒介,并不提供营养)和携带兼营养关系 (昆虫作为传播媒介,死亡后又为线虫提供营养) [42]。
植物寄生线虫与昆虫之间的携带关系最为特殊,伞滑刃属线虫的侵染需要鞘翅目昆虫作为携带者[43]。
其中,松材线虫(Bursaphelenchus xylophilus (Steiner and Buhrer) Nickle)、拟松材线虫 (B. mucronatus) 、伪伞滑
刃线虫 (B. fraudulentus) 和锥尾伞滑刃线虫(B. conicaudatus)被称为 “ xylophilus group冶 [44]。 “ xylophilus
group冶并不象大多数植物寄生线虫,直接识别定位新寄主,进行被动扩散,而是依靠沟胫天牛族 (Lamiini)天
牛的携带,间接传播到新寄主。 “xylophilus group冶寄生期四龄幼虫能够准确定位并大量聚集在天牛体内。 天
牛作为传播媒介并不提供营养。 “xylophilus group冶起源于共同的祖先,并与沟胫天牛族之间形成特殊的共生
关系[45鄄51]。
生物之间的共生关系分为细胞内共生、有机质内共生、种间共生和种群间共生关系[52]。 从进化角度上,
种群间的共生关系属于最为高级的共生关系[45]。 “xylophilus group冶与媒介天牛之间的互惠共利就属于一类
种群间的共生关系[52]。 Pristionchus属线虫和金龟子、马铃薯甲虫之间是携带兼营养关系[42]。 人们在物种进
6002 摇 生摇 态摇 学摇 报摇 摇 摇 33 卷摇
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化领域对这种关系的研究比较活跃[53]。 这类线虫嗅觉系统高度多样化,涉及调控线虫、寄主之间的相互作
用。 Pristionchu属线虫对昆虫特异信息物质及环境中的植物挥发物表现出独特的化学趋向,与秀丽隐杆线虫
相比,无论是引诱剂的种类,还是线虫反应速度、方式和反应的浓度范围都有所不同[42]。
3摇 线虫化学感受机理与信号传递
嗅觉系统能够使生物发现并鉴别成千上万种分子,尤其是有机分子。 无论是低等动物———线虫,还是高
等动物———人,对有机物具有相似的基本感受机制[54]。 最近人们应用电生理学技术分析线虫对不同化学刺
激的反应。 电生理学分析表明,线虫对化学信息物质识别的差异是由于化学感受反应的差异造成的[55]。
3. 1摇 化学感受系统
线虫化学感受器官主要包括化感器和尾感器。 位于线虫尾部的尾感器在分类学上非常重要。 线虫因有
无尾感器被分成两个主要类群:尾感器纲和无尾感器纲。 大部分植物寄生线虫属于尾感器纲,少数属于无尾
感器纲[4, 22]。
线虫头部两侧唇的外侧各具有一个侧器,被称为化感器。 化感器是最重要而复杂的感觉器官,是线虫头
部侧面特化的囊状构造,神经末梢与腺细胞的联合体,通过突出的孔与外界向通。 每个化感器包括一个腺体
鞘细胞、一个突出的孔和一些树状突。 树状突浸泡在鞘细胞表面产生的分泌液中[4, 22]。 大多数线虫包含 7
个树状突。 其中 2—5个来自同一束化感器神经元,并在线虫头部形成其它结构[54]。
化感器孔是体表的一个内陷物,呈囊状、管状、螺旋状、圆盘状等各种形态,是线虫分类的重要依据之一。
化感器腺体鞘细胞可以产生分泌物。 分泌物成分因线虫种类不同而不同,包含各种特殊功能糖蛋白凝集
素。 寄生线虫分泌物中含有乙酰胆碱酶[55],是神经生理学上重要的神经脉冲传导物质。
线虫神经元的结构简单,只有一个或两个不分叉的突起。 形成或接受突触连结,但其基本功能与其他动
物相似,具有主要的神经递质(乙酰胆碱、五羟色胺、多巴胺、谷氨酰胺等) [56]。
3. 1. 1摇 化学感受系统在线虫不同发育阶段的变化
Matsuura等认为,随着发育进程的改变,线虫化学感受机制发生了相应的改变。 许多线虫化感器发生结
构改变能够为阶段性特殊功能服务。 尤其是繁殖和扩散等不同生活周期之间具有不同的化感器结构和功
能[57]。 超微结构能够显示出化感器结构和功能的变化。 人们可以把化感器发挥作用的龄期作为感觉干扰防
治的目标。 例如马铃薯线虫(Globodera rostochiensis)没有孵化时化感器没有分泌物质,处于皱缩状态,对马铃
薯根浸提液没有反应。 一旦卵孵化,化感器便具备定位寄主的功能。 秀丽隐杆线虫幼虫和成虫的神经系统也
是不同的[3, 57]。
3. 1. 2摇 化学感受系统控制线虫识别化学信息物质
秀丽隐杆线虫化感器包括 11 对化学感受神经元[20, 58]。 通过激光突变鉴定针对挥发性和水溶性物质的
神经元发现,识别水溶性物质的 8 对神经元具有简单的单个或两个感觉毛端,具有两种不同的输出途径。 识
别大多数挥发性物质的 3 对神经元 AWA、AWB、AWC,具有精细的类似翅膀、平坦的感觉毛端,附在化感器腺
体鞘细胞上。 附属纤毛 对感受挥发性物质起重要作用,较大的表面积使这 3 对神经元能充分接收挥发性物
质信号。 其中,AWA和 AWC可以识别引诱物质,而 AWB识别忌避物质[54, 59鄄60]。 最近发现 BAG神经元负责
部分寄主识别功能[29]。
3. 1. 3摇 化学感受系统控制线虫进入扩散周期
秀丽隐杆线虫控制扩散虫态形成的基因缺失体在化感器超微结构上受损,意味着化感器调节扩散虫态的
形成[61]。 线虫通常利用化学感受和温度感受来控制扩散周期形成[62]。 秀丽隐杆线虫侵染虫态形成过程的
分子机制已得到广泛研究[63],有两类神经元发挥作用:一类是化学感受神经元,识别种内信息物质;另一类是
温度感受神经元,同时也具有化感功能。 犬钩口线虫(Ancylostoma caninum)包含翅状和指状化感神经元。 指
状化感神经元是主要的温度感受器。 翅状神经元 ADF和 ASI 控制线虫侵染虫态形成并进入扩散周期。 成对
的 ASJ神经元控制从扩散周期恢复发育状态,转入繁殖周期[54]。 ASI 神经元中有 4 种受体 srbc鄄 64、srbc鄄 66、
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srg鄄36 和 srg鄄 37 被鉴定参与感受转型信息素[64鄄65]。
3. 2摇 信号传递过程
线虫通过对外界化学信号的接收、传递,进而改变自身的行为和发育。
化学感受生理生化过程在秀丽隐杆线虫中研究的比较深入,包括以下两个步骤[54]:(1) 化学信号分子与
化感器分泌蛋白相接触并结合[3],这些分泌蛋白的特殊性质能够增强线虫嗅觉感受效果;(2) 通过特殊转换
途径,外界化学分子信息转换为神经信号,被线虫化感器神经元识别:神经元和化学信息分子之间相互作用,
刺激 GTP 联接的蛋白 (G蛋白) 活性,通过 G蛋白信号途径转换为神经信号[4, 22]。
化学感受信号转换途径的第 1 步是化学配合基与受体蛋白的偶联[54];第 2 步是 7 个跨膜域受体,如
ODR鄄10 与 G蛋白相偶联[66]。 AWA中联乙醯识别模型为:联乙醯被 ODR鄄10 受体蛋白发现,再通过 ODR鄄3 G
蛋白与包含 OSM鄄9的通道相连。
3. 3摇 化学感受机理
秀丽隐杆线虫具有简单而灵敏的化学感受系统。 老鼠识别上千种化学物质需要 107 个神经元,果蝇发现
同样多的化学物质需要 1000 个神经元,而秀丽隐杆线虫能够利用 20—30 个神经元来发现上千种化学
物质[54]。
很多受体蛋白都出现在感觉毛中。 现在已经发现 odr 基因系列是线虫识别挥发性物质的受体蛋白特殊
基因组,大部分涉及内嗅觉神经元的变化。
秀丽隐杆线虫能够鉴别同一个神经元接收到的很多气味信号,单个神经元能表达多种受体[54]。 例如,联
乙醯和吡嗪都是秀丽隐杆线虫 AWA神经元能感受的引诱剂。 吡嗪存在情况下,线虫依然能够对一系列梯度
的联乙醯产生反应,意味着联乙醯和吡嗪各自具有特异受体[67]。
秀丽隐杆线虫一种气味分子被成对神经元中表达的单个受体识别,来驱动单一信号输出。 同样的受体能
够在很多神经元中表达,单个气味分子刺激具有多个受体识别。 联乙醯受体 ODR鄄10 能够识别那些与联乙醯
结构相同的物质, 并且联乙醯能够被其它受体识别[67鄄68]。
理论上来讲,这样一个“组合译码冶方案应该比单个受体识别提供更多的气味信息。 化学感受是一个至
关重要的收集信息的方式。 因为线虫缺乏复杂的大脑,需在神经外围进行更多的处理和控制。 也许大量受体
和 G蛋白能够使每一个单个神经元在内外环境联系中更好地适应外界环境。 秀丽隐杆线虫很可能利用混合
译码来翻译自然混合气味的刺激[54]。
不同动物之间化学感受机制很类似。 虽然精密度和复杂程度有所不同,但是哺乳动物和秀丽隐杆线虫具
有相近数量的受体[54]。 随着进化,化学感受受体已经各自成倍增加。 这些受体基因能够在基因组中成簇出
现,意味着它们的形成具有同样的机制。 基因组中 G 蛋白偶联的受体基因首建者特别易于复制和突变[69]。
随着这些基因快速复制和多样化,它们产生出大量不同的化学感受受体,为化学感受系统提供了很大的识别
能力[54]。 线虫和脊椎动物会利用大量的 G 蛋白与繁多的族受体偶联来发现化学信号。 不同点在于受体种
类,以及使用的能量分别为 cGMP 和 cAMP [54]。
与线虫相比,脊椎动物每个神经元只能表达一种嗅觉受体[70鄄71]。 脊椎动物受体在神经元连接网络中起
作用。 所有嗅觉神经元对于同一种突触后靶标表达一种特殊的受体反应,通过受体表达的改变进行调
控[72鄄73]。 而秀丽隐杆线虫受体还没有发现在神经元连接网络起重要作用[54, 60]。
4摇 线虫化学通讯研究应用
植物寄生线虫在全世界范围造成巨大经济损失。 目前常用的防治线虫的方法包括间作轮作,杀线虫剂应
用和培育抗性品种,但都有一定局限性[74]。 急需寻找和开发新型的、更为有效的控制策略[75]。
近年来随着线虫化学感受机制研究的深入,让人们越来越认识到化学通讯应用在线虫防治中的巨大潜
力,认为化学通讯观念的应用将引发一系列新的防治措施[3]。
植物和寄生线虫之间互作机制研究的逐步深入,为防治线虫病害提供了许多新思路。 在生活史的特殊时
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期例如寄主选择、寻找食物源或寻找配偶时,线虫对化学感受干扰尤其敏感。 结合线虫的独特生活史,释放天
然化学信息物,如线虫性信息素或寄主释放物,以达到人为干扰线虫行为的目的。 性引诱剂香兰酸作为田间
生物控制因子来控制大豆孢囊线虫 (Heterodera glycines);利用 CO2 的释放来增加捕食线虫真菌颗粒剂的使用
效率;调节温度和 CO2 梯度来增加贝尔曼漏斗法的提取效率;应用凝结素 (lectins) 来阻断化学感受功能;利
用硝酸铵 (ammonium nitrate) 和其它忌避剂盐类来保护植物的根;应用引诱剂丹宁酸 (tannic acid) 放入土壤
来作为线虫干扰剂;通过间作另一种植物,释放的刺激物散发到生境中能够扰乱线虫对寄主释放气味的识别。
各种植物根渗出液的混合物能够减少(R. reniformis)对番茄根的侵染[76]。
线虫作为一类简单的模式动物,在进化过程中形成了精细的化学感受系统,能够通过识别周围的环境信
息物质对行为和发育状态进行调整。 其化学通讯研究对于揭示生物间联系和个体发育机制具有特殊意义。
但是线虫化学生态学整体研究发展缓慢,分离技术不成熟,种特异性信息物质难以被鉴定。 进而使得神经生
物学研究遭到了一定的阻力,直到近两年才有所突破。 两篇具有代表性的论文在《Nature》上的发表[12, 41],充
分表明了线虫化学通讯研究的重要意义,也说明线虫化学生态学逐渐进入了迅速发展时期,为今后的研究指
引了方向,提供了必要的技术和理论参考。
近年来化学通讯观念被应用于松材线虫(Bursaphelenchus xylophilus)的取样和在树体内的空间分布研究
中[77鄄79],为线虫的取样提供了新的思路。 尽管如此,化学通讯在线虫综合治理措施中还没有得到大面积应
用,在线虫调查、监测、检疫,甚至防治具有很大的发展空间和潜力。 而且现有基础研究和实验技术不能全面
评价新型治理方法的潜力,还需要深入研究天然化学物质对线虫神经系统的影响,了解生物控制和环境生态
机理,发展生物控制技术。
线虫化学通讯研究的基础和前提就是对特异性信息物质的分离鉴定。 这需要多学科的交叉,并引进气相
色谱、高效液相色谱、质谱和核磁共振等精密分析仪器用于昆虫信息素、神经传递素、激素和类固醇的分离鉴
定,为线虫化学通讯研究服务。
References:
[ 1 ]摇 Poinar G O Jr. The natural history of nematodes. Englewood Cliffs: Prentice鄄Hall, 1983.
[ 2 ] 摇 Huettel R N. Chemical communicators in Nematodes. Journal of Nematology, 1986, 18(1): 3鄄8.
[ 3 ] 摇 Perry R N. Chemoreception in plant parasitic nematodes. Annual Review of Phytopathology, 1996, 34(1): 181鄄199.
[ 4 ] 摇 O忆Halloran D M, Burnell A M. An investigation of chemotaxis in the insect parasitic nematode Heterorhabditis bacteriophora. Parasitology, 2003,
127(4): 375鄄385.
[ 5 ] 摇 Bargmann C I. Chemosensation in C. elegans / / The C. Elegans Research Community, ed. WormBook. 2006. http: / / www. wormbook. org.
[ 6 ] 摇 Lessing D, Carlson J R. Chemosensory behavior: the path from stimulus to response. Current Opinion in Neurobiology, 1999, 9(6): 766鄄771.
[ 7 ] 摇 Riddle D L, Georgi L L. Advances in research on Caenorhabditis elegans: application to plant parasitic nematodes. Annual Review of
Phytopathology, 1990, 28(1): 247鄄269.
[ 8 ] 摇 Sommerville R I, Davey K G. Diapause in parasitic nematodes: a review. Canadian Journal of Zoology, 2002, 80(11): 1817鄄1840.
[ 9 ] 摇 Michel J F. Arrested development of nematodes and some related phenomena. Advances in Parasitology, 1974, 12: 279鄄366.
[10] 摇 Vanfleteren J R, Braeckman B P. Mechanisms of life span determination in Caenorhabditis elegans. Neurobiology of Aging, 1999, 20 (5):
487鄄502.
[11] 摇 Braeckman B P, Vanfleteren J R. Genetic control of longevity in C. elegans. Experimental Gerontology, 2007, 42(1 / 2): 90鄄98.
[12] 摇 Jeong P Y, Jung M, Yim Y H, Kim H, Park M, Hong E, Lee W, Kim Y H, Kim K, PaikY K. Chemical structure and biological activity of the
Caenorhabditis elegans dauer鄄inducing pheromone. Nature, 2005, 433(7025): 541鄄545.
[13] 摇 Olsen D P, Phu D, Libby L J M, Cormier J A, Montez K M, Ryder E F, Politz S M. Chemosensory control of surface antigen switching in the
nematode Caenorhabditis elegans. Genes, Brain and Behavior, 2007, 6(3): 240鄄252.
[14] 摇 Rea S L. Metabolism in the Caenorhabditis elegans Mit mutants. Experimental Gerontology, 2005, 40(11): 841鄄849.
[15] 摇 Linit M J. Nematode鄄vector relationships in the pine wilt disease system. Journal of Nematology, 1988, 20(2): 227鄄235.
[16] 摇 Dwinell L D. The pinewood nematode: regulation and mitigation. Annual Review of Phytopathology, 1997, 35: 153鄄166.
[17] 摇 Ogawa A, Streit A, Antebi A, Sommer R J. A Conserved Endocrine mechanism controls the formation of dauer and infective larvae in nematodes.
9002摇 7 期 摇 摇 摇 张宾摇 等:线虫转型发育和寄主识别的化学通讯研究进展 摇
http: / / www. ecologica. cn
Current Biology, 2009, 19(1): 67鄄71.
[18] 摇 Kwon E S, Narasimhan S D, Yen K, Tissenbaum H A. A new DAF鄄16 isoform regulates longevity. Nature, 2010, 466(7305): 498鄄502.
[19] 摇 Butcher R A, Fujita M, Schoreder F C, Clardy J. Small鄄molecule pheromones that control dauer development in Caenorhabditis elegans. Nature
Chemical Biology, 2007, 3(7): 420鄄422.
[20] 摇 Bargmann C I, Mori I. Chemotaxis and thermotaxis / / Riddle D L, Blumenthal T, Meyer B J, Preiss J R, eds. C. Elegans II. Cold Spring, New
York: Harbor Press, 1997: 717鄄738.
[21] 摇 Chen Z X, Chen S Y,Dickson D W. Nemotology: Advance and prospect摇 1: Morphology, physiology and ecology of nematode. Beijing: Tsinghua
University Press, 2004.
[22] 摇 O忆Halloran D M, Fitzpatrick D A, Burnell A M. The chemosensory system of Caenorhabditis elegans and other nematodes / / Dicke M, Takken W,
eds. Chemical Ecology: From Gene to Ecosystem. Netherlands: Springer, 2006: 71鄄88.
[23] 摇 Saux R L, Qu佴n佴hev佴 P. Differential chemotactic responses of two plant鄄parasitic nematodes, Meloidogyne incognita and Rotylenchulus reniformis,
to some inorganic ions. Nematology, 2002, 4(1): 99鄄105.
[24] 摇 Clarke A J, Hennessy J. Movement of Globodera rostochiensis (Wollenweber) juveniles stimulated by potato鄄root exudate. Nematologica, 1984, 30
(2): 206鄄212.
[25] 摇 Riga E, Perry R N, Barrett J, Johnston M R L. Electrophysiological responses of males of the potato cyst nematodes, Globodera rostochiensis and
G. pallida, to their sex pheromones. Parasitology, 1996, 112(2): 239鄄246.
[26] 摇 Zuckerman B M, Jansson H B. Nematode chemotaxis and possible mechanisms of host / prey recognition. Annual Review of Phytopathology, 1984,
22: 95鄄113.
[27] 摇 Rolfe R N, Barrett J, Perry R N. Analysis of chemosensory responses of second stage juveniles of Globodera rostochiensis using electrophysiological
techniques. Nematology, 2000, 2(5): 523鄄533.
[28] 摇 Brown F D, D忆Anna I, Sommer R J. Host鄄finding behaviour in the nematode Pristionchus pacificus. Proceedings of the National Academy of
Sciences, 2011, 278(1722): 3260鄄3269.
[29] 摇 Hallem E A, Dillman A R, Hong A V, Zhang Y J, Yano J M, DeMarco S F, Sternberg P W. A sensory code for host seeking in parasitic
nematodes. Current Biology, 2011, 21(5): 377鄄383.
[30] 摇 Tajima T, Watanabe N, Kogawa Y, Takiguchi N, Kato J, Ikeda T, Kuroda A, Ohtake H. Chemotaxis of the nematode Caenorhabditis elegans
toward cycloheximide and quinine hydrochloride. Journal of Bioscience and Bioengineering, 2001, 91(3): 322鄄324.
[31] 摇 Shingai R, Wakabayashi T, Sakata K, Matsuura T. Chemotaxis of Caenorhabditis elegans during simultaneous presentation of two water鄄soluble
attractants, l鄄lysine and chloride ions. Comparative Biochemistry and Physiology Part A: Molecular and Integrative Physiology, 2005, 142(3):
308鄄317.
[32] 摇 Sch觟ller C, Molin S, Wilkins K. Volatile metabolites from some gram鄄negative bacteria. Chemosphere, 1997, 35(7): 1487鄄1495.
[33] 摇 Tytgat T, De Meutter J, Gheysen G, Coomans A. Sedentary endoparasitic nematodes as a model for other plant parasitic nematodes. Nematology,
2000, 2(1): 113鄄121.
[34] 摇 Prot J C. Migration of plant鄄parasitic nematodes towards plant roots. Revue de N佴matologie, 1980, 3(2): 305鄄318.
[35] 摇 Riga E. Sensory responses of plant parasitic nematodes to semiochemicals. Nematology Monographs and Perspectives, 2004, 2: 695鄄706.
[36] 摇 Zhao X W, Schmitt M, Hawes M C. Species鄄dependent effects of border cell and root tip exudates on nematode behavior. Phytopathology, 2000,
90(11): 1239鄄1245.
[37] 摇 Kaya H K, Burlando T M, Thruston G S. Two entomopathogenic nematode species with different search strategies for insect suppression.
Environmental Entomology, 1993, 22(4): 859鄄864.
[38] 摇 Grewal P S, Lewis E E, Gaugler R, Campbell J F. Host finding behaviour as a predictor of foraging strategy in entomopathogenic nematodes.
Parasitology, 1994, 108(2): 207鄄215.
[39] 摇 van Tol R W H M, van Der Sommen A T C, Boff M I C, van Bezooijen J, Sabelis M W, Smits P H. Plants protect their roots by alerting the
enemies of grubs. Ecology Letters, 2001, 4(4): 292鄄294.
[40] 摇 Boff M I C, van Tol R H W M, Smits P H. Behavioural response of Heterorhabditis megidis towards plant roots and insect larvae. BioControl,
2002, 47(1): 67鄄83
[41] 摇 Rasmann S, K觟llner T G, Degenhardt J, Hiltpold I, Toepfer S, Kuhlmann U, Gershenzon J, Turlings T C J. Recruitment of entomopathogenic
nematodes by insect鄄damaged maize roots. Nature, 2005, 434(7034): 732鄄737.
[42] 摇 Hong R L, Sommer R J. Chemoattraction in Pristionchus nematodes and implications for insect recognition. Current Biology, 2006, 16(23): 2359鄄
2365.
[43] 摇 Giblin R M. Association of Bursaphelenchus sp. (Nematoda: Aphefenchoididae) with nitidulid beetles ( Coleoptera: Nitidulidae) . Revue de
0102 摇 生摇 态摇 学摇 报摇 摇 摇 33 卷摇
http: / / www. ecologica. cn
N佴matologie, 1985, 8(4): 369鄄375.
[44] 摇 Kanzaki N, Futai K. A PCR primer set for determination of phylogenetic relationship of Bursaphelenchus species within the xylophilus group.
Nematology, 2002, 4(1): 35鄄41.
[45] 摇 Kanzaki N, Futai K. Life History of Bursaphelenchus conicaudatus ( Nematoda: Aphelenchoididae) in relation to the yellow鄄spotted longicorn
beetle, Psacothea hilaris (Coleoptera: Cerambycidae) . Nematology, 2001, 3(5): 473鄄479.
[46] 摇 Giblin鄄Davis R M, Davies K A, Morris K, Thomas W K. Evolution of parasitism in insect鄄transmitted plant nematodes. Journal of Nematology,
2003, 35(2): 133鄄141.
[47] 摇 Michod R E. Individuality, immortality, and sex / / Keller L, ed. Levels of Selection in Evolution: Monographs in Behavior and Ecology. New
Jersey: Princeton University Press, 1999: 53鄄74.
[48] 摇 Miyazaki M, Oda K, Yamaguchi A. Behavior of Bursaphelenchus lignicolus to unsaturated fatty acids. Journal of the Japan Wood Research Society,
1977, 23(5): 254鄄261.
[49] 摇 Bolla J A, Bramble J, Bolla R I. Attraction of Bursaphelenchus xylophilus, Pathotype MPS鄄1, to Monochamus carolinensis larvae. Japanese Journal
of Nematology, 1989, 19: 32鄄37.
[50] 摇 Chen X Y, Xu R M, Xie B Y. The role of chemical communication in the infection and spread of pine wood nematodes ( Bursaphelenchus
xylophilus) . Acta Ecologica Sinica, 2005, 25(2): 339鄄345.
[51] 摇 Necibi S, Linit M J. Effect of Monochamus carolinensis on Bursaphelenchus xylophilus dispersal stage formation. Journal of Nematology, 1998, 30
(2): 246鄄254.
[52] 摇 Giblin鄄Davis R M. Nematodes as mutualists: where and how did these associations evolve? Nematology Monographs and Perspectives, 2004, 2:
383鄄394.
[53] 摇 Simpson P. Evolution of development in closely related species of flies and worms. Nature Reviews Genetics, 2002, 3(12): 907鄄991.
[54] 摇 Troemel E R. Chemosensory signaling in C. elegans. BioEssays, 1999, 21(12): 1011鄄1020.
[55] 摇 Duan YX, Wu G. Plant nematode disease prevention and control. Beijing: The Chinese Academy of Agricultural Sciences, 2002.
[56] 摇 Wang Y H. Caenorhabditis elegance鄄a simplest model for the study of nervous system. Chinese Journal of Neuroscience, 2000, 16(1): 60鄄64.
[57] 摇 Matsuura T, Endo S, Iwamoto R, Takahashi H, Ichinose M. Developmental changes in chemotactic response and choice of two attractants, sodium
acetate and diacetyl, in the nematode Caenorhabditis elegans. Comparative Biochemistry and Physiology Part A: Molecular and Integrative
Physiology, 2007, 147(4): 920鄄927.
[58] 摇 Bargmann C I, Horvitz H R. Control of larval development by chemosensory neurons in Caenorhabditis elegans. Science, 1991, 251(4998): 1243鄄
1246.
[59] 摇 Bargmann C I, Hartwieg E, Horvitz H R. Odorant鄄selective genes and neurons mediate olfaction in C. elegans. Cell, 1993, 74(3): 515鄄527.
[60] 摇 Troemel E R, Kimmel B E, Bargmann C I. Reprogramming chemotaxis responses: sensory neurons define olfactory preferences in C. elegans.
Cell, 1997, 91(2): 161鄄169.
[61] 摇 Liu W Z. Plant pathogenic nematodes. Beijing: China Agriculture Press, 2000.
[62] 摇 Sommer R J, Ogawa A. Hormone signaling and phenotypic plasticity in nematode development and evolution. Current Biology, 2011, 21(18):
R758鄄R766.
[63] 摇 Fielenbach N, Antebi A. C. elegans dauer formation and the molecular basis of plasticity. Genes Development, 2008, 22: 2149鄄2165.
[64] 摇 McGrath P T, Xu Y F, Ailion M, Garrison J L, Butcher R A, Bargmann C I. Parallel evolution of domesticated Caenorhabditis species targets
pheromone receptor genes. Nature, 2011, 477(7364): 321鄄325.
[65] 摇 Kim K, Sato K, Shibuya M, Zeiger D M, Butcher R A, Ragains J R, Clardy J, Touhara K, Sengupta P. Two chemoreceptors mediate
developmental effects of dauer pheromone in C. elegans. Science, 2009, 326(5955): 994鄄998.
[66] 摇 Zhang Y N, Chou J H, Bradley J, Bargmann C I, Zinn K. The C. elegans 7鄄transmembrane protein ODR鄄10 functions as an odorant receptor in
mammalian cells. Proceedings of the National Academy of Sciences, 1997, 94(22): 12162鄄12167.
[67] 摇 Sengupta P, Chou J H, Bargmann C I. Odr鄄 10 encodes a seven transmembrane domain olfactory receptor required for responses to the odorant
diacetyl. Cell, 1996, 84(6): 899鄄909.
[68] 摇 Chou J H, Troemel E R, Sengupta P, Colbert H A, Tong L, Tobin D M, Roayaie K, Crump J G, Dwyer N D, Bargmann C I. Olfactory
recognition and discrimination in Caenorhabditis elegans. Cold Spring Harbor Symposia on Quantitative Biology, 1996, 61: 157鄄164.
[69] 摇 The C. elegans Sequencing Consortium. Genome sequence of the nematode Caenorhabditis elegans: a platform for investigating biology. Science,
1998, 282(5396): 2012鄄2018.
[70] 摇 Buck L, Axel R. A novel multigene family may encode odorant receptors: a molecular basis for odor recognition. Cell, 1991, 65(1): 175鄄187.
[71] 摇 Malnic B, Hirono J, Sato T, Buck L B. Combinatorial receptor codes for odors. Cell, 1999, 96(5): 713鄄723.
1102摇 7 期 摇 摇 摇 张宾摇 等:线虫转型发育和寄主识别的化学通讯研究进展 摇
http: / / www. ecologica. cn
[72]摇 Mombaerts P, Wang F, Dulac C, Chao S K, Nemes A, Mendelsohn M, Edmondson J, Axel R. Visualizing an olfactory sensory map. Cell, 1996,
87(4): 675鄄686.
[73] 摇 Wang F, Nemes A, Mendelsohn M, Axel R. Odorant receptors govern the formation of a precise topographic map. Cell, 1998, 93(1): 47鄄60.
[74] 摇 Sasser J N, Freckman D W. A world perspective on nematology: the role of the society / / Veeck J A, Dickson D W, Hyattsville M D, eds. Vistas
on Nematology. Orlando: Society of Nematologists, 1987: 7鄄14.
[75] 摇 Williamson V M. Plant nematode resistance genes. Current Opinion in Plant Biology, 1999, 2(4): 327鄄331.
[76] 摇 Chitwood D J. Phytochemical based strategies for nematode control. Annual Review of Phytopathology, 2002, 40: 221鄄249.
[77] 摇 Zhao L L, Jiang P, Humble L M, Sun J H. Within鄄tree distribution and attractant sampling of propagative pinewood nematode, Bursaphelenchus
xylophilus: an early diagnosis approach. Forest Ecology and Management, 2009, 258(9): 1932鄄1937.
[78] 摇 Zhao L L, Wei W, Kang L, Sun J H. Chemotaxis of the pinewood nematode, Bursaphelenchus xylophilus, to volatiles associated with host pine,
Pinus massoniana, and its vector Monochamus alternatus. Journal of Chemical Ecology, 2007, 33(6): 1207鄄1216.
[79]摇 Zhao L L, Wei W, Liu X Z, Sun J H. A novel rapid sampling method for pinewood nematode, Bursaphelenchus xylophilus ( Nematoda:
Parasitaphelenchidae) . Canadian Journal of Forest Research, 2007, 37(10): 1867鄄1872.
参考文献:
[21]摇 陈忠孝, 陈森玉, 迪克森 D W. 线虫学: 进展和前景卷 1: 形态学、生理学和生态学. 北京: 清华大学出版社, 2004.
[50] 摇 成新跃, 徐汝梅, 谢丙炎. 化学通讯在松材线虫侵染和扩散中的作用. 生态学报, 2005, 25(2): 339鄄345.
[55] 摇 段玉玺, 吴刚. 植物线虫病害防治. 北京: 中国农业科技出版社, 2002.
[56] 摇 王亚辉. 秀丽隐杆线虫 (Caenorhabditis elegans)———一个研究神经系统的最简单模型. 科学通报, 2000, 16: 60鄄64.
[61] 摇 刘维志. 植物病原线虫学. 北京: 中国农业出版社, 2000.
2102 摇 生摇 态摇 学摇 报摇 摇 摇 33 卷摇
ACTA ECOLOGICA SINICA Vol. 33,No. 7 April,2013(Semimonthly)
CONTENTS
Frontiers and Comprehensive Review
Research progress on chemical communication of development and host鄄finding of nematodes
ZHANG Bin, HU Chunxiang, SHI Jin,et al (2003)
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Principles, indicators and sampling methods for species monitoring XU Haigen, DING Hui, WU Jun, et al (2013)…………………
Autecology & Fundamentals
Spatial distribution pattern of human鄄caused fires in Hulunbeir grassland
ZHANG Zhengxiang, ZHANG Hongyan, LI Dongxue,et al (2023)
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Belowground biomass in Tibetan grasslands and its environmental control factors
YANG Xiujing, HUANG Mei, WANG Junbang, et al (2032)
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Analysis on variation characteristics of air temperature and ground temperature in Guilin from 1961 to 2010
CHEN Chao, ZHOU Guangsheng (2043)
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Winter bed鄄site selection by roe deer (Capreolus capreolus) in Huangnihe Nature Reserve
ZHU Hongqiang, GE Zhiyong, LIU Geng, et al (2054)
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Leaf anatomical characteristics of the plants of grasslands in the Tibetan Plateau
LI Quanfa, WANG Baojuan, AN Lihua, et al (2062)
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A research on summer vegetation characteristics & short鄄time responses to experimental warming of alpine meadow in the Qinghai鄄
Tibetan Plateau XU Manhou, XUE Xian (2071)……………………………………………………………………………………
Cytological study on microsporogenesis of Solanum lycopersicum var. Micro鄄Tom under high temperature stress
PENG Zhen, CHENG Lin, HE Yanjun, et al (2084)
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A new plant height growth process model of Caragana forest in semi鄄arid loess hilly region
ZHAO Long, WANG Zhenfeng,GUO Zhongsheng,et al (2093)
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Germination inhibitory substances extracted from the seed of seven species of Quercus
LI Qingmei, LIU Yan, LIU Guangquan, et al (2104)
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Effects of water stress and fungicide on the growth and drought resistance of Flaveria bidentis
CHEN Dongqing, HUANGFU Chaohe, LIU Hongmei, et al (2113)
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Characters of soil seed bank in copper tailings and its adjacent habitat SHEN Zhangjun, OU Zulan, TIAN Shengni, et al (2121)…
Changes of soil chemical properties after different burning years in typical steppe of Yunwun Mountains
LI Yuan, CHENG Jimin, WEI Lin, et al (2131)
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Effects of water and fertilizers on nitrate content in tomato fruits under alternate partial root鄄zone irrigation
ZHOU Zhenjiang, NIU Xiaoli, LI Rui, et al (2139)
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Effect of land use on the characteristics of organic carbon and labile organic carbon in soil aggregates in Karst mountain areas
LI Juan,LIAO Hongkai,LONG Jian,et al (2147)
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Mobilization of inorganic phosphorus from soils by five azotobacters ZHANG Liang, YANG Yuhong, LI Qian, et al (2157)…………
Physiological鄄ecological responses of Iris germanica L. to Cd stress and its accumulation of Cd
ZHANG Chengxiang, CHEN Weifeng (2165)
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The available forms and bioavailability of heavy metals in soil amended with sewage sludge
TIE Mei, SONG Linlin, HUI Xiujuan, et al (2173)
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LAI鄄based photosynthetic light response model and its application in a rainfed maize ecosystem
SUN Jingsong, ZHOU Guangsheng (2182)
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The dominant species of predatory natural enemies of three kinds of planthoppers and impact of pesticides on natural enemies
in paddy field LIN Yuan, ZHOU Xiazhi, BI Shoudong, et al (2189)……………………………………………………………
Population, Community and Ecosystem
Spatial and temporal variation of picophytoplankton in the Pearl River Estuary
ZHANG Xia, HUANG Xiaoping, SHI Zhen, et al (2200)
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Analysis of the relationship between species diversity and hydrologic factors during an interval of intermittent water delivery at
the Lower Reaches of Tarim River, China CHEN Yongjin, LIU Jiazhen, CHEN Yaning, et al (2212)…………………………
Fish species composition and community pattern in the continental shelf of northwestern South China Sea
WANG Xuehui, LIN Zhaojin, DU Feiyan, et al (2225)
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Distribution and succession of plant communities in Lake Bita coastal swamp on the plateau region, northwestern Yunnan
HAN Dayong, YANG Yongxing, YANG Yang (2236)
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Analysis on community structure and quantitative characteristics of Nitraria tangutorum nebkhas at different succession stage in
lower reaches of Shiyang River JIN Hujia,MA Quanlin,HE Mingzhu,et al (2248)………………………………………………
Resource and Industrial Ecology
Effects of subsoiling and supplemental irrigation on dry matter production and water use efficiency in wheat
ZHENG Chengyan, YU Zhenwen, ZHANG Yongli, et al (2260)
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Effects of two years忆 incorporation of leguminous green manure on soil properties of a wheat field in dryland conditions
ZHANG Dabin, YAO Pengwei, LI Jing, et al (2272)
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Effects of planting with ridge and furrow mulching on maize growth, yield and water use efficiency in dryland farming
LI Rong, HOU Xianqing, JIA Zhikuan, et al (2282)
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Urban, Rural and Social Ecology
Effects of riparian buffers of North Mort of Beijing on air temperature and relative humidity
WU Fangfang, ZHANG Na,CHEN Xiaoyan (2292)
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Characteristics of spatial and temporal variations of global solar radiation in Xi忆an and relevant response in urban development
ZHANG Hongli,ZHANG Naweirui, LIU Minru,et al (2304)
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Research Notes
A analysis of macrofungal flora diversity in Langyashan Nature Reserve, Anhui Province, China
CHAI Xinyi, XU Xuefeng, WANG Meiying, et al (2314)
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《生态学报》2013 年征订启事
《生态学报》是由中国科学技术协会主管,中国生态学学会、中国科学院生态环境研究中心主办的生态学
高级专业学术期刊,创刊于 1981 年,报道生态学领域前沿理论和原始创新性研究成果。 坚持“百花齐放,百家
争鸣冶的方针,依靠和团结广大生态学科研工作者,探索自然奥秘,为生态学基础理论研究搭建交流平台,促
进生态学研究深入发展,为我国培养和造就生态学科研人才和知识创新服务、为国民经济建设和发展服务。
《生态学报》主要报道生态学及各分支学科的重要基础理论和应用研究的原始创新性科研成果。 特别欢
迎能反映现代生态学发展方向的优秀综述性文章;研究简报;生态学新理论、新方法、新技术介绍;新书评价和
学术、科研动态及开放实验室介绍等。
《生态学报》为半月刊,大 16 开本,300 页,国内定价 90 元 /册,全年定价 2160 元。
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第 33 卷摇 第 7 期摇 (2013 年 4 月)
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