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摇 摇 摇 摇 摇 生 态 学 报
摇 摇 摇 摇 摇 摇 摇 (SHENGTAI XUEBAO)
摇 摇 第 31 卷 第 21 期摇 摇 2011 年 11 月摇 (半月刊)
目摇 摇 次
基于景观格局理论和理想风水模式的藏族乡土聚落景观空间解析———以甘肃省迭部县扎尕那村落为例
史利莎,严力蛟,黄摇 璐,等 (6305)
……
……………………………………………………………………………
武夷山风景名胜区景观生态安全度时空分异规律 游巍斌,何东进,巫丽芸,等 (6317)…………………………
旅游地道路生态持续性评价———以云南省玉龙县为例 蒋依依 (6328)…………………………………………
城市空间形态紧凑度模型构建方法研究 赵景柱,宋摇 瑜,石龙宇,等 (6338)……………………………………
丹顶鹤多尺度生境选择机制———以黄河三角洲自然保护区为例 曹铭昌,刘高焕,徐海根 (6344)……………
西南喀斯特区域水土流失敏感性评价及其空间分异特征 凡非得,王克林,熊摇 鹰,等 (6353)…………………
流域尺度海量生态环境数据建库关键技术———以塔里木河流域为例 高摇 凡,闫正龙,黄摇 强 (6363)………
雌雄异株植物鼠李的生殖分配 王摇 娟,张春雨,赵秀海,等 (6371)………………………………………………
长白山北坡不同年龄红松年表及其对气候的响应 王晓明,赵秀海,高露双,等 (6378)…………………………
不同高寒退化草地阿尔泰针茅种群的小尺度点格局 赵成章,任摇 珩,盛亚萍,等 (6388)………………………
残存银杏群落的结构及种群更新特征 杨永川,穆建平,TANG Cindy Q,等 (6396)……………………………
濒危植物安徽羽叶报春两种花型的繁育特性及其适应进化 邵剑文,张文娟,张小平 (6410)…………………
神农架海拔梯度上 4 种典型森林的乔木叶片功能性状特征 罗摇 璐,申国珍,谢宗强,等 (6420)………………
不同植被恢复模式下煤矸石山复垦土壤性质及煤矸石风化物的变化特征
王丽艳,韩有志,张成梁,等 (6429)
………………………………………
……………………………………………………………………………
火烧对黔中喀斯特山地马尾松林分的影响 张摇 喜,崔迎春,朱摇 军,等 (6442)…………………………………
内蒙古高原锦鸡儿属植物的形态和生理生态适应性 马成仓,高玉葆,李清芳,等 (6451)………………………
古尔班通古特沙漠西部梭梭种群退化原因的对比分析 司朗明,刘摇 彤,刘摇 斌,等 (6460)……………………
白石砬子国家级自然保护区天然林的自然稀疏 周永斌,殷摇 有,殷鸣放,等 (6469)……………………………
黑龙江省东完达山地区东北虎猎物种群现状及动态趋势 张常智,张明海 (6481)………………………………
基于 GIS的马铃薯甲虫扩散与河流关系研究———以新疆沙湾县为例 李摇 超,张摇 智,郭文超,等 (6488)……
2010 年广西兴安地区稻纵卷叶螟发生动态及迁飞轨迹分析 蒋春先,齐会会,孙明阳,等 (6495)……………
B型烟粉虱对寄主转换的适应性 周福才,李传明,顾爱祥,等 (6505)……………………………………………
利用 PCR鄄DGGE方法分析不同鸡群的盲肠微生物菌群结构变化 李永洙,Yongquan Cui (6513)………………
鸡粪改良铜尾矿对 3 种豆科植物生长及基质微生物量和酶活性的影响
张摇 宏,沈章军,阳贵德,等 (6522)
…………………………………………
……………………………………………………………………………
铜绿微囊藻对紫外辐射的生理代谢响应 汪摇 燕,李珊珊,李建宏,等 (6532)……………………………………
10 种常见甲藻细胞体积与细胞碳、氮含量的关系 王摇 燕,李瑞香,董双林,等 (6540)…………………………
冬季太湖表层底泥产毒蓝藻群落结构和种群丰度 李大命,孔繁翔,于摇 洋,等 (6551)…………………………
城市机动车道颗粒污染物扩散对绿化隔离带空间结构的响应 蔺银鼎,武小刚,郝兴宇,等 (6561)……………
新疆城镇化与土地资源产出效益的空间分异及其协调性 杨摇 宇,刘摇 毅,董摇 雯,等 (6568)…………………
山东潍坊地下水硝酸盐污染现状及 啄15N溯源 徐春英,李玉中,李巧珍,等 (6579)……………………………
增温对宁夏引黄灌区春小麦生产的影响 肖国举,张摇 强,张峰举,等 (6588)……………………………………
一种估测小麦冠层氮含量的新高光谱指数 梁摇 亮,杨敏华,邓凯东,等 (6594)…………………………………
黄河上游灌区稻田 N2O排放特征 张摇 惠,杨正礼,罗良国,等 (6606)…………………………………………
专论与综述
植物源挥发性有机物对氮沉降响应研究展望 黄摇 娟,莫江明,孔国辉,等 (6616)………………………………
植物种群更新限制———从种子生产到幼树建成 李摇 宁,白摇 冰,鲁长虎 (6624)………………………………
研究简报
遮荫对两个基因型玉米叶片解剖结构及光合特性的影响 杜成凤,李潮海,刘天学,等 (6633)…………………
学术信息与动态
科学、系统与可持续性———第六届工业生态学国际大会述评 石海佳,梁摇 赛,王摇 震,等 (6641)……………
期刊基本参数:CN 11鄄2031 / Q*1981*m*16*340*zh*P* ￥ 70郾 00*1510*37*
室室室室室室室室室室室室室室
2011鄄11
封面图说: 鹤立———丹顶鹤是世界 15 种鹤数量极小的一种,主要栖息在沼泽、浅滩、芦苇塘等湿地,以捕食小鱼虾、昆虫、蛙蚧、
软体动物为主,也吃植物的根茎、种子、嫩芽。 善于奔驰飞翔,喜欢结群生活。 丹顶鹤属迁徙鸟类,主要在我国的黑
龙江、吉林,俄罗斯西伯利亚东部、朝鲜北部以及日本等地繁殖。 在长江下游一带越冬。 在中国文化中有“仙鹤冶之
说。 被列为中国国家一级重点保护野生动物名录,濒危野生动植物种国际贸易公约绝对保护的 CITES 附录一物种
名录。
彩图提供: 陈建伟教授摇 国家林业局摇 E鄄mail: cites. chenjw@ 163. com
第 31 卷第 21 期
2011 年 11 月
生 态 学 报
ACTA ECOLOGICA SINICA
Vol. 31,No. 21
Nov. ,2011
http: / / www. ecologica. cn
基金项目:国家重点基础研究发展计划 973 项目(2008CB418004)
收稿日期:2010鄄08鄄31; 摇 摇 修订日期:2011鄄05鄄23
*通讯作者 Corresponding author. E鄄mail: lijianhong@ njnu. edu. cn
汪燕,李珊珊,李建宏,邓洁,潘澄,李朋富.铜绿微囊藻对紫外辐射的生理代谢响应.生态学报,2011,31(21):6532鄄6539.
Wang Y, Li S S, Li J H, Deng J, Pan C, Li P F. Physiological response of Microcystis to solar UV radiation. Acta Ecologica Sinica,2011,31 (21):
6532鄄6539.
铜绿微囊藻对紫外辐射的生理代谢响应
汪摇 燕1,李珊珊1,李建宏1,*,邓摇 洁1,潘摇 澄1,李朋富2
(1. 南京师范大学生命科学学院,江苏省生物技术和生物多样性重点实验室,南京摇 210046;2. 南京大学生命科学学院, 南京摇 210093)
摘要:采用紫外(UV)滤膜过滤日光 UV以及紫外灯添加 UV的方法,研究了 UV辐射对铜绿微囊藻 Microcystis aeruginosa单细胞
藻株 PCC7806 和群体藻 XW01 生长及生理代谢的影响。 结果显示,在室内条件下低剂量 UV辐射可促进群体微囊藻 XW01 生
长;室外条件下与滤除了 UV的光照相比,含有 UV的完全日光更有利于微囊藻生长;而相同的 UV辐射强度均导致单细胞株死
亡,群体株显示了较强的 UV抗性;日光中的 UV可促进 XW01 合成抗氧化相关的超氧化物歧化酶(SOD)和过氧化氢酶(CAT)、
促进胞外多糖的产生并形成较大的群体、促进 UV屏障物质类菌孢素氨基酸(MAAs)和伪枝藻素(Scy)积累。 这些生理代谢的
改变,消除了阳光辐射中 UV对微囊藻的伤害。 研究的结果提示,自然条件下阳光中的 UV有助于群体微囊藻生长。
关键词:紫外辐射;微囊藻;群体;多糖;抗紫外
Physiological response of Microcystis to solar UV radiation
WANG Yan1, LI Shanshan1, LI Jianhong1,*, DENG Jie1, PAN Cheng1, LI Pengfu2
1 Jiangsu Key Laboratory of Biodiversity and Biotechnology, Life Sciences College, Nanjing Normal University, Nanjing 210046, China
2 School of Life Sciences, Nanjing University, Nanjing 210093, China
Abstract: Toxic cyanobacteria Microcystis blooms often occur in eutrophic lakes around the world. During bloom鄄occurring,
Microcystis population aggregates at the surface of water and is often exposed to strong UV radiation of sunlight. To evaluate
the ecological function of solar UV on Microcystis bloom, we studied effects of UV radiation on two M. aeruginosa strains,
the unicellular strain PCC7806 and the colonial strain XW01, by using a transparent UV protection film filtering out the
solar UV from sunlight (cut off more than 90% UV radiation, “without UV冶) in outdoor鄄culture, and using a 30 W UV
lamp (1. 25 滋W / cm2 at the surface of culture medium) adding artificial UV radiation in lab鄄culture. Results showed that
the growth of XW01 in the whole solar light ( the highest intensity of UV鄄297 and UV鄄254 was about 120 滋W / cm2 at noon,
“with UV冶) was better than in the light without UV in the outdoor鄄culture condition; the cell density (OD650nm) of 6鄄day
culture with UV was 35. 8% higher than that without UV. In the lab condition, the low鄄intensity artificial UV at 18. 75 J /
m2 daily radiation (repeat 5鄄second UV light with 20鄄second intervals, 30 cycles) improved the growth of XW01, the cell
density of 6鄄day culture was 14. 5% higher than the control (without UV). However, the same UV intensities killed the
strain PCC7806 both of in the lab and outdoor experiments. These data show that a suitable UV radiation increase the
growth of colonial XW01, and the colonial strain has a stronger resistance to UV than the unicellular strain.
To discover the mechanism of XW01 against UV, we investigated the changes of antioxidant protective enzymes
superoxide dismutase (SOD) and catalase (CAT) in XW01 cultured with or without solar UV. The activities of SOD and
CAT of XW01 cultured with solar UV were 86% and 34% above that without solar UV respectively. However, the same
solar UV decreased the activities of SOD and CAT of PCC7806 by 42% and 39% respectively and caused the cell death.
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The data indicate that XW01 has stronger antioxidant ability than PCC7806.
Solar UV could induced accumulation of UV鄄protection compounds mycosporine鄄like amino acids ( MAAs) and
scytonemin (Scy) in XW01, the relative contents of MAA and Scy of the cells with solar UV were 27. 3% and 23. 4%
higher than that of the cells without UV. These physiological reaction could be helpful for XW01 protecting from the
damages caused by the solar UV.
Solar UV also increased the production of extracellular polysaccharides. In the 4鄄day culture of XW01, extracellular
soluble polysaccharides and extracellular wall polysaccharides increased 12. 5% and 22% respectively. The UV obviously
improved the formation of larger colonies. The percentage of smallest colonies decreased from 20% to less than 3% , and
larger colonies increased from 35% to 47% , average colonial size increased about 68% . The colonial size increasing was
consistent with the production of extracelullar polysaccharides. More extracellular polysaccharides should be benefit for
bigger colony formation.
Above all, the results suggest that the solar UV should be helpful for colonial Microcystis growth. Microcystis bloom
could effectively protect themselves from UV damages, and solar UV be helpful for Microcystis bloom forming in natural
water body.
Key Words: UV radiation; microcystis; colony; polysaccharide; UV鄄protection.
我国滇池、巢湖和太湖等大型湖泊因微囊藻水华的爆发,对人们的生存环境质量构成了潜在的威胁[1鄄2]。
虽然众多的研究已确认氮磷等物质流入导致的富营养化、适当的温度、水流等是微囊藻水华形成的必要条件,
但对水华形成的详细机理仍有许多待解的谜团。
强烈阳光中的 UV 成分,一般对生物都会产生不利影响,近年来已有很多关于 UV 作用于蓝藻的报
道[3鄄8],这些工作主要集中于对蓝藻伤害机理的研究,但对于自然阳光中 UV对微囊藻水华的实际影响并无报
道。 微囊藻水华通常漂浮于水面,暴露于强烈阳光 UV 辐射下,却依然能良好生长,形成绝对的种群优势,其
中必有一套能适应和抵抗 UV的机制。 关于太阳 UV对微囊藻水华的影响机理,目前尚未见研究报道。
本研究用一株可稳定培养的群体铜绿微囊藻 XW01 为主要材料,比较分析了 UV对群体和单细胞铜绿微
囊藻生长的影响,探讨了 XW01 对 UV的适应性机制,以期为进一步揭示微囊藻水华爆发机制提供一定的理
论依据。
1摇 材料与方法
1. 1摇 藻种及培养
铜绿微囊藻 Microcystis. aeruginosa PCC7806: 单细胞状态,由张承才教授惠赠;铜绿微囊藻 M. aeruginosa
XW01: 群体状态,为本实验室分离培养。 所有藻种均用 BG鄄11[9]进行培养;培养温度为(28依2)益,光照强度
为培养期间 60 滋mol m-2 s-1,24 h连续光照,培养期间振荡摇匀。
1. 2摇 太阳 UV辐射处理
日光 UV 照射实验于 2009 年 10 月中旬天气持续晴朗期间开展(气温 23—28益)。 500 mL 烧杯中加入
300 mL 藻液,初始浓度相同。 UV光照组将培养烧杯置于阳光直接照射下;7:00 置于阳光下,18:00 移入室内
置于黑暗处。 无 UV组采用双层无色透明 UV滤膜 (紫外阻挡率>90% ,南京金士威环保科技有限公司) 滤除
UV,所有处理均设置 3 个重复。
实验期间测得实验地点一天中太阳辐射光强及 UV鄄254、UV鄄297 的强度(UV鄄B 型紫外辐射强度仪,北京
师范大学)(图 1)。
1. 3摇 室内 UV处理
以 30 W石英紫外灯(中心波长 254 nm)为 UV 光源(XHW鄄B 型,天津紫晶特种光源有限公司)。 40 mL
藻置于 100 mL锥形瓶中培养。 UV辐射处理时将藻液倒入直径 9 cm高 1. 8 cm 的培养皿中,培养皿距 UV光
3356摇 21 期 摇 摇 摇 汪燕摇 等:铜绿微囊藻对紫外辐射的生理代谢响应 摇
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0
30
60
90
120
150
0
500
1000
1500
2000
2500UV-254UV-297
9:00 10:00 12:00 14:00 16:00 8:00 10:00 12:00 13:0014:00 15:00 16:00
时间 Time 时间 Time
图 1摇 实验期间的太阳光照辐射强度日变化
Fig. 1摇 Daily variation of solar irradiation during the experiment
源 40 cm (光强 1. 25 滋W / cm2),通过控制照射时间调整辐射剂量。 照射时间分别为 0、5、8、10、15、20 s,每天
照射 30 次,间隔 20 s,各实验组每天的总 UV照射剂量列于表 1。 UV 照射后将藻液倒回培养瓶,置于正常条
件下继续培养。 每组 5 个平行。
表 1摇 不同照射时间下的每天的总 UV辐照剂量
Table 1摇 Daily UV irradiation amount of different exposure time
辐照时间 Exposure time / s 0 5 8 10 15 20
日辐照量 Daily amount / (J / m2) 0 摇 18. 75 30. 0 37. 5 56. 25 75. 0
1. 4摇 生长曲线的测定
群体株细胞在测定前先经涡旋振荡处理 3 min, 尽量使群体分散。 用分光光度计测定 650 nm 的光吸收
(OD650)以确定藻的生长情况。
1. 5摇 光合色素及 UV屏障物质含量的测定
类菌孢素氨基酸(mycosporine鄄like amino acids, MAAs)含量测定采用甲醇提取法。 取 8 mL藻液离心去上
清,加体积分数为 30%的甲醇 3 mL,震荡使沉淀悬浮,50 益水浴 30 min,7 000 g离心 5 min,上清液即为水溶
性色素提取液,用紫外分光光度计(54032PC,岛津公司)测定 UV 吸光光谱,扫描波长范围 270—380 nm。 以
MAAs在 334 nm的吸收峰值表示其相对含量[10,11]。
伪枝藻素(scytonemin,Scy) 含量测定采用丙酮提取法。 取 3 mL藻液,9 000 g离心 5 min,沉淀加入 3 mL
丙酮,于 4益下暗处静置,提取脂溶性色素 24 h,然后 9000 g 离心 5 min,取上清液,测定 384 nm 处的光吸
收值[10鄄11]。
叶绿素含量测定采用分光光度法[12];MAAs和 Scy的相对含量均以单位叶绿素的相对含量表示。
1. 6摇 微囊藻群体大小的测定
用显微镜观察微囊藻,随机观察 20 个视野,通过显微测微尺测定所观察到群体的大小。 用载玻片裁成
“厚盖玻片冶,由于在盖玻片和载玻片之间,微囊藻群体均被压成近似厚度的片状,故采用长轴与短轴的乘积
作为近似面积来估算群体的大小。
1. 7摇 胞外多糖(EPS)和释放到培养基中的多糖(RPS)的测定
(1)EPS含量测定摇 藻液冻融,7000 g离心,沉淀用蒸馏水洗涤、重悬浮;沸水浴 4 h,7000 g 离心 15 min,
取上清用硫酸鄄苯酚比色法测定胞外多糖的质量浓度[13]。
(2)RPS含量测定摇 取培养 4 d藻液离心沉淀,上清液用两倍体积乙醇沉淀,丙酮洗涤后,用少量蒸馏水
4356 摇 生摇 态摇 学摇 报摇 摇 摇 31 卷摇
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悬浮。 沸水浴 2 h后,测定多糖浓度。
1. 8摇 超氧化物歧化酶(SOD)和过氧化氢酶(CAT)活力测定
SOD活性测定参考 Bewley的方法[14];CAT活性测定采用钼酸盐法[15]。
1. 9摇 数据处理
数据结果表示为(平均值依标准差),用 t鄄test检验试验组和对照组的差异显著性,显著水平为 0. 05。
2摇 结果与分析
2. 1摇 太阳 UV辐射对微囊藻生长的影响
两株不同形态的微囊藻在全阳光和过滤消除了 UV 的条件下的生长情况如图 2 所示。 单细胞株
PCC7806 在滤除了 UV的光照下能良好地生长,但在有 UV的太阳辐射条件下,细胞逐渐死亡,说明 PCC7806
对 UV敏感。 而群体株 XW01 在有 UV的条件下,生长速度反而高于无 UV的条件,培养第 6 天的藻浓度提高
了 35. 8% 。 这一结果显示,群体微囊藻不但可有效地消除太阳 UV 的伤害,并能更有效地利用强烈的太阳
辐射。
为验证不同剂量 UV对微囊藻生长的作用,在室内采用紫外灯添加 UV进行实验。 结果如图 3 所示,低剂
量 UV照射 5 s对 XW01 生长显示出促进作用,培养 6 d 的藻浓度比对照高 14. 5% 。 但同样条件下 PCC7806
却被 UV杀死。 高剂量的 UV也显著抑制 XW01 的生长。 这一结果验证了适量的 UV辐射有益于群体微囊藻
的生长。
0
0.4
0.8
1.2
细胞
浓度
Cell
conc
entra
tion (
OD6
50)
0 1 2 3 4 5 6
XW01 - UV(无紫外辐射)XW01 + UV(有紫外辐射)PCC7806 -UVPCC7806 + UV
培养时间 Culture time/d
图 2摇 阳光 UV对微囊藻 PCC7806 和 XW01 生长的影响
摇 Fig. 2 摇 Effects of solar UV radiation on the growth of M.
aeruginosa XW01 and PCC7806
0
0.2
0.4
0.6
0.8
1
细胞
密度
Cell
conc
entra
tion (
OD6
50) 0s
20s15s
10s8s
5s
0 1 2 3 4 5 6
时间 Time/d
图 3摇 不同剂量 UV照射对微囊藻 XW01 生长的影响
摇 Fig. 3 摇 Effects of different UV intensities on the growth of M.
aeruginosa XW01
2. 2摇 太阳 UV辐射对微囊藻 SOD和 CAT 活性的影响
SOD和 CAT是细胞内的抗氧化酶体系中的重要组成,它们能有效清除细胞内的由于 UV 辐射等产生的
活性氧自由基,是衡量植物抗逆性的重要指标[16]。 阳光下培养 4 d的 2 株微囊藻中 SOD和 CAT活性变化如
图 4 所示。 在有 UV的条件下 XW01 细胞内 SOD和 CAT的活性显著高于无 UV条件下的水平,两种酶的活性
分别提高了 86%和 34% ;而对 PCC7806 而言,由于强烈 UV辐射对微囊藻的伤害,导致藻细胞开始死亡,SOD
和 CAT的活性比无 UV条件下显著下降,其下降率分别为 42%和 39% 。 结果说明 XW01 有更强的修复 UV
损伤的能力。
2. 3摇 太阳 UV辐射对群体微囊藻细胞群体大小的影响
微囊藻群体的大小与其获得生态优势有关[17]。 由图 5 中的结果可见,在有 UV辐射的条件下 XW01 的群
体显著大于无 UV 的条件下的群体;在无 UV 的条件下,大于 5 伊103滋m2的群体占 35% ,平均群体大小为
(4. 30依3. 74)滋m2;而在有 UV辐射的条件下,增加到 47% ,平均群体大小为(7. 23依7. 43) 滋m2,平均体积增大
5356摇 21 期 摇 摇 摇 汪燕摇 等:铜绿微囊藻对紫外辐射的生理代谢响应 摇
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图 4摇 太阳 UV辐射对微囊藻 XW01 和 PCC7806 SOD和 CAT活性的影响
Fig. 4摇 Effects of solar UV on the SOD and CAT activities of M. aeruginosa XW01 and PCC7806 under radiation
图 5摇 太阳 UV辐射对 XW01 群体大小的影响
Fig. 5摇 Effects of solar UV on colony sizes of M. aeruginosa XW01
了约 68% 。 特别是在有 UV辐射的条件下,小于 1伊103
滋m2的小群体由 20%减少到 3% 。 UV 辐射显著地促进
了微囊藻形成较大的群体(P<0郾 05)。
2. 4摇 太阳 UV辐射对胞外微囊藻多糖产生的影响
蓝藻胞外多糖包括细胞壁多糖( extracellular poly鄄
saccharides,EPS)和释放到环境中的多糖( extracellular
soluble polysaccharides, RPS)。 太阳 UV 辐射可促进
XW01 胞外多糖的产生(图 6)。 在有 UV 的条件下,
XW01 的 RPS 含量相对增加了 12. 5% , EPS 含量增加
了 22% 。 多糖的增加有助于群体的形成[17],这一结果
与群体大小的变化一致。
2. 5摇 太阳 UV 辐射下群体微囊藻 UV 屏障物质含量的
变化
蓝藻生长于强烈阳光照射环境下可产生MAAs及 Scy防御强光的伤害。 由于这些物质对 UV有强烈的吸
收作用,可使 UV在进入细胞之前就被过滤削弱,从而保护藻类细胞免受伤害[18]。
MAAs包括一系列无色、低分子量、具有单一吸收峰的水溶性物质,最大吸收峰介于 310—360 nm。 M.
aeruginosa产生的MAAs主要是吸收峰位于 334 nm 的成分(shinorine and porphyra鄄334) [3]。 培养 4 d的 XW01
藻细胞甲醇提取液扫描结果如图 7A,在太阳 UV的作用下,310—360 nm 区域内的光吸收显著提高,其中 334
nm的吸收峰为微囊藻 MAAs的典型吸收峰,其相对含量比无 UV组增加了 27. 3% 。
Scy是存在于蓝藻胶质鞘上的屏蔽色素,对微囊藻 XW01 的 Scy含量的分析结果显示(图 7 B),UV使 Scy
增加了 23% (P<0. 01)。
3摇 讨论
UV辐射可产生氧自由基,破坏光合作用色素、DNA、蛋白质等细胞成分,对生物产生多种伤害。 过去对
于 UV作用于蓝藻的研究多着重于其胁迫伤害作用[8,19鄄22],而本研究的结果显示,室内低剂量的 UV辐射和正
常日光所含的 UV辐射对群体微囊藻的群体生长有促进作用,这显然有利于漂浮于水面的微囊藻在自然环境
下获得更多的光照优势。 这一结果与冯朝发现的低剂量的 UV 辐射对赤潮微藻的生长有一定的刺激作
6356 摇 生摇 态摇 学摇 报摇 摇 摇 31 卷摇
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图 6摇 不同 UV辐射强度对微囊藻 XW01 胞外多糖含量的影响
Fig. 6摇 EPS and RPS content of M. aeruginosa XW01 under solar UV radiation
0.16
0.12
0.08
0.04
0相对
含量
Rela
tive c
onten
t/(g
Chl
)
+UV-UV
MAAs Scy
325 334 +UV
-UV
A B0.160
0.120
0.080270.00 325.00 380.00
吸光
值 A
bsorb
ance
波长 Wavelength/cm
图 7摇 太阳 UV辐射对微囊藻 XW01UV屏障物质MAAs和 Scy的影响
Fig. 7摇 Effects of solar UV radiation on the contents of UV鄄protection substances MAAs(B) and Scy in M. aeruginosa XW01
用[23],以及李国才等报道的小剂量 UV辐射对蓝藻有刺激效应相吻合[24]。
从比较单细胞和群体两种不同形态的微囊藻来看,相同 UV辐射强度下群体株所受到的影响要远远小于
单细胞株(在本文的实验中 UV照射均导致 PCC7806 死亡),细胞的团聚作用可能在减轻 UV伤害方面起着重
要的作用。 周亚莉的研究表明,藻体相互靠近并集聚在一起是最直接和有效的抵御强光和 UV 的机制[25],本
文的结果也显示,日光 UV可导致群体显著增大。 自然水华中观察到的群体也常常有具有较大的体积,其原
因之一可能与抵御强烈的太阳辐射有关。
大多数藻类含有或经诱导后能合成 UV屏障物质来抵抗 UV的伤害[18],藻类的屏障物质主要有伪枝藻素
(Scy),类菌孢素氨基酸(MAAs)等[26鄄28]。 Scy 是一种脂溶性 UV 吸收物质,UV 辐射可诱导其合成[29];富含
MAAs的细胞对 UV辐射具有较强的耐性,MAAs既可吸收 UV还可淬灭由于光氧化所产生的自由基,减少 UV
损伤[30]。 刘正文等报道铜绿微囊藻和太湖微囊藻有较高含量的 MAAs[31]。 本项研究结果证实,在太阳 UV
的诱导下铜绿微囊藻合成了较高含量的 UV屏障物质,用于消除 UV 的损伤,适应水体表面高辐照度,这些代
谢过程无疑对其维持在水面生存是有贡献的。
UV辐射下,群体株的胞外多糖和释放到培养基中的多糖含量显著增加。 胞外多糖的合成可提高微囊藻
在 UV照射下的存活能力[32]。 Wright等对念珠藻的研究发现,胞外多糖能产生保护机制以抵抗 UV辐射[33]。
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多糖可与 UV吸收物质结合,形成有效的 UV防护屏障[11,34]。 因此,太阳 UV诱导的微囊藻胞外多糖增加,可
协同防御 UV的伤害。
综上所述,微囊藻可通过多种代谢机制消除 UV 辐射产生的危害,强烈阳光中的 UV 辐射并不会对漂浮
在水面的微囊藻产生伤害作用,反而有利于其生长。 这一机制可能有助于微囊藻水华的形成。
References:
[ 1 ]摇 Cai Q M. The Ecological Environment of Taihu. Beijing: China Meteorological Press, 1998.
[ 2 ] 摇 Lian M, Chen C W, Yu S Z, Liu Y. The distribution of microcystin and its influence factors in Dianshan Lake in summer. China Environmental
Science, 2000, 20(4): 323鄄327.
[ 3 ] 摇 Sinha R P, Richter P, Faddoul J, Braun M, H覿der D P. Eects of UV and visible light on cyanobacteria at the cellular level. Photochemical and
Photobiological Sciences, 2002, 1(8): 553鄄559.
[ 4 ] 摇 Liu P, Miao J L, Kan G F, Zhang B T, Li G Y. Effect of UV鄄B on the morphology and ultrastructure of a strain of antarctic cyanophyceae. Marine
Sciences, 2004, 28 (5): 21鄄25.
[ 5 ] 摇 Sakai H, Ogawa K, Katayama H, Ohgaki S. Low鄄or medium鄄pressure UV lamp inactivation of Microcystis aeruginosa. Journal of Water and
Environment Technology, 2005, 3(1): 55鄄61.
[ 6 ] 摇 Lesser M P. Effects of ultraviolet radiation on productivity and nitrogen fixation in the Cyanobacterium, Anabaena sp. ( Newton忆 s strain) .
Hydrobiologia, 2008, 598(1): 1鄄9.
[ 7 ] 摇 Gouv俸a S P, Boyer G L, Twiss M R. Influence of ultraviolet radiation, copper, and zinc on microcystin content in Microcystis aeruginosa
(Cyanobacteria) . Harmful Algae, 2008, 7(2): 194鄄205.
[ 8 ] 摇 Yuan K, Mao X Z, Tao Y, Zhang X H. Dynamic experiment on controlling of Microcystis aeruginosa by UV鄄C irradiation. Environmental Science,
2010, 31(2): 310鄄317.
[ 9 ] 摇 Hua R C. The Cultivation and Use of Single鄄cell Algae. Beijing: China Agriculture Press, 1986.
[10] 摇 Ye K X, Liu K, Zhang L. The inductive effect of ultraviolet radiation on mycosporine鄄like amino acids (MAAs) in Microcystis aeruginosa. Amino
Acids and Biotic Resources, 2008, 30(1): 25鄄28.
[11] 摇 Ehling鄄Schulz M, Bilger W, Scherer S. UV鄄B鄄induced synthesis of photoprotective pigments and extracellular polysaccharides in the terrestrial
cyanobacterium Nostoc commune. Journal of Bacteriology, 1997, 179(6): 1940鄄1945.
[12] 摇 Zou Q. Plant Physiology Experimental Guidance. Beijing: China Agriculture Press, 2000.
[13] 摇 Su J Y, Jia S R, Chen X F, Yu H F. Morphology, cell growth, and polysaccharide production of Nostoc flagelliforme in liquid suspension culture at
different agitation rates. Journal of Applied Phycology, 2008, 20(3): 213鄄217.
[14] 摇 Bewley J D. Physiological aspects of desiccation tolerance. Annual Review of Plant Physiology, 1979, 30: 195鄄238.
[15] 摇 Aebi H. Catalase in vitro. Methods in Enzymology, 1984, 105: 121鄄126.
[16] 摇 Pierpoint W S. Salicylic acid and its derivatives in plants: medicines, metabolites and messenger molecules. Advances in Botanical Research,
1994, 20: 163鄄235.
[17] 摇 Reynolds C S. Variability in the provision and function of mucilage in phytoplankton: facultative responses to the environment. Hydrobiologia,
2007, 578(1): 37鄄45.
[18] 摇 Rozema J. The role of UV鄄B radiation in aquatic and terrestrial ecosystems鄄an experimental and functional analysis of the evolution of UV鄄absorbing
compounds. Journal of Photochemistry and Photobiology B: Biology, 2002, 66(1): 2鄄12.
[19] 摇 Tian J Y, Tang X X, Yu J, Xiao H, Feng L. The physiological and biochemical responses of marine microaigae to UV鄄B radiation. Marine
Sciences, 2006, 30(4): 54鄄58, 63.
[20] 摇 Gour R K, Pandey P K, Bisen P S. Differential response in damage and repair of wild鄄type Anacystis nidulans and its UV鄄B plus heat shock tolerant
(UV鄄HSt) strain under UV鄄B and heat shock stress. Journal of Photochemistry and Photobiology B: Bio1ogy, 1997, 40(1): 61鄄67.
[21] 摇 Ar佗oz R, Lebert M, Hader D P. Translation activity under ultraviolet radiation and temperature stress in the cyanobacterium Nostoc sp. Journal of
Photochemistry and Photobiology B: Bio1ogy, 1998, 47(2 / 3): 115鄄120.
[22] 摇 babu G S, Joshi P C, Viswanathan P N. UVB鄄induced reduction in biomass and overall productivity of cyanobacteria. Biochemical and Biophysical
Research Communications, 1998, 244(1): 138鄄142.
[23] 摇 Feng Z, Tang X X, Qu L, Dong D, Wang Q X. Interaction of UV鄄B radiation enhancement and athracene on the growth of three species of red tide
microalgae. Marine Environmental Science, 2008, 27(1): 51鄄53.
[24] 摇 Li G C, Song L R. Effects of ultraviolet radiation on Cyanobacterial cells activity. Journal of Microbiology, 2002, 22(4): 31鄄33.
8356 摇 生摇 态摇 学摇 报摇 摇 摇 31 卷摇
http: / / www. ecologica. cn
[25]摇 Zhou Y L. Effect of High Temperature and Solar UV Radiation on Growth and Physiology of Spirulina and Arthrospira platensis. Qingdao: Ocean
University of China, 2007.
[26] 摇 Sinha R P, Klisch M, Gr觟niger A, H覿der D P. Mycosporine鄄like amino acids in the marine red alga Gracilaria cornea鄄effects of UV and heat.
Environmental and Experimental Botany, 2000, 43(1): 33鄄43.
[27] 摇 Zudaire L, Roy S. Photoprotection and long鄄term acclimation to UV radiation in the marine diatom Thalassiosira weissflogii. Journal of
Photochemistry and Photobiology B: Biology, 2001, 62(1 / 2): 26鄄34.
[28] 摇 Sinha R P, Klisch M, Gr觟niger A, H覿der D P. Ultraviolet鄄absorbing / screening substances in cyanobacteria, phytoplankton and macroalgae.
Journal of Photochemistry and Photobiology B: Bio1ogy, 1998, 47(2 / 3): 83鄄94.
[29] 摇 Garcia鄄Pichel F, Sherry N D, Castenholz R W. Evidence for an ultraviolet sunscreen role of the extracellular pigment scytonemin in the terrestrial
cyanobacterium Chlorogloeopsis sp. Photochemistry and Photobiology, 1992, 56(1): 17鄄23.
[30] 摇 Conde F R, Churio M S, Previtali C M. The photoprotector mechanism of mycosporine鄄like amino acids. Excited鄄state properties and photostability
of porphyra鄄334 in aqueous solution. Journal of Photochemistry and Photobiology B (Biology), 2000, 56(2 / 3): 139鄄144.
[31] 摇 Liu Z W, Zhong P, Han B P. UV protective compounds mycosporine鄄like amino acids (MAAs) and bloom forming mechanism in Microcystis
aeruginosa. Journal of Lake Sciences, 2003, 15(4): 359鄄363.
[32] 摇 Pattanaik B, Schumann R, Karsten U. Effects of ultraviolet radiation on cyanobacteria and their protective mechanisms. Algae and Cyanobacteria in
Extreme Environments, 2007, 11(2): 29鄄45.
[33] 摇 Wright D J, Smith S C, Joardar V, Scherer S, Jervis J, Warren A, Helm R F, Potts M. UV irradiation and desiccation modulate the three鄄
dimensional extracellular matrix of Nostoc commune(cyanobacteria) . The Journal Biological Chemistry, 2005, 280(48): 71鄄81.
[34] 摇 Ehling鄄Schulz M, Schulz S, Wait R, G觟rg A, Scherer S. The UV鄄B stimulon of the terrestrial cyanobacterium Nostoc commune comprises early
shock proteins and late acclimation proteins. Molecular Microbiology, 2002, 46(3): 827鄄843.
References:
[ 1 ]摇 蔡启明. 太湖环境生态研究. 北京: 气象出版社, 1998.
[ 2 ] 摇 连民, 陈传炜, 俞顺章, 刘颖. 淀山湖夏季微囊藻毒素分布状况及其影响因素. 中国环境科学, 2000, 20(4): 323鄄327.
[ 4 ] 摇 刘鹏, 缪锦来, 阚光锋, 张波涛, 李光友. UV鄄B增强对南极蓝藻形态和超微结构影响的研究. 海洋科学, 2004, 28(5): 21鄄25.
[ 8 ] 摇 袁侃, 毛献忠, 陶益, 张锡辉. UV鄄C辐照抑制铜绿微囊藻生长的动态实验研究. 环境科学, 2010, 31(2): 310鄄317.
[ 9 ] 摇 华汝成. 单细胞藻类的培养与利用. 北京: 中国农业出版社, 1986.
[10] 摇 叶凯雄, 刘康, 詹领. 紫外辐射对铜绿微囊藻中类菌孢素氨基酸 (MAAs) 的诱导效应. 氨基酸和生物资源, 2008, 30(1): 25鄄28.
[12] 摇 邹琦. 植物生理学实验指导. 北京: 中国农业出版社, 2000.
[19] 摇 田继远, 唐学玺,于娟, 肖惠, 冯蕾. 海洋微藻对 UV鄄B辐射的生理生化响应. 海洋科学, 2006, 30(4): 54鄄58, 63鄄63.
[23] 摇 冯朝, 唐学玺, 曲良, 董栋, 王其翔. UV鄄B辐射增强和蒽对 3 种赤潮微藻生长的相互作用. 海洋环境科学, 2008, 27(1): 51鄄53.
[24] 摇 李国才, 宋立荣. 紫外线辐射对蓝藻细胞活性的影响. 微生物学杂志, 2002, 22(4): 31鄄33.
[25] 摇 周亚莉. 高温和太阳紫外辐射对螺旋藻和节旋藻生长和生理影响的研究. 青岛: 中国海洋大学, 2007.
[31] 摇 刘正文, 钟萍, 韩博平. 铜绿微囊藻中的紫外保护物质类菌孢素氨基酸(MAAs)与水华形成机制探讨. 湖泊科学, 2003, 15 (4):
359鄄363.
9356摇 21 期 摇 摇 摇 汪燕摇 等:铜绿微囊藻对紫外辐射的生理代谢响应 摇
ACTA ECOLOGICA SINICA Vol. 31,No. 21 November,2011(Semimonthly)
CONTENTS
Landscape spatial analysis of a traditional tibetan settlement based on landscape pattern theory and feng鄄shui theory:the case of
Zhagana, Diebu, Gansu Province SHI Lisha, YAN Lijiao, HUANG Lu, et al (6305)……………………………………………
Temporal鄄spatial differentiation and its change in the landscape ecological security of Wuyishan Scenery District
YOU Weibin,HE Dongjin,WU Liyun,et al (6317)
……………………
…………………………………………………………………………………
Evaluation of eco鄄sustainability of roads in a tourism area: a case study within Yulong County JIANG Yiyi (6328)…………………
Study on the compactness assessment model of urban spatial form ZHAO Jingzhu, SONG Yu, SHI Longyu, et al (6338)……………
A multi鄄scale analysis of red鄄crowned crane忆s habitat selection at the Yellow River Delta Nature Reserve, Shandong, China
CAO Mingchang, LIU Gaohuan, XU Haigen (6344)
…………
………………………………………………………………………………
Assessment and spatial distribution of water and soil loss in karst regions, southwest China
FAN Feide,WANG Kelin,XIONG Ying,et al (6353)
……………………………………………
………………………………………………………………………………
Construction of an eco鄄environmental database for watershed鄄scale data: an example from the Tarim River Basin
GAO Fan, YAN Zhenglong, HUANG Qiang (6363)
……………………
………………………………………………………………………………
Reproductive allocation in dioecious shrub, Rhamnus davurica WANG Juan, ZHANG Chunyu, ZHAO Xiuhai, et al (6371)………
Age鄄dependent growth responses of Pinus koraiensis to climate in the north slope of Changbai Mountain, North鄄Eastern China
WANG Xiaoming, ZHAO Xiuhai, GAO Lushuang, et al (6378)
………
…………………………………………………………………
Fine鄄scale spatial point patterns of Stipa krylovii population in different alpine degraded grasslands
ZHAO Chengzhang, REN Heng, SHENG Yaping, et al (6388)
……………………………………
……………………………………………………………………
Community structure and population regeneration in remnant Ginkgo biloba stands
YANG Yongchuan, MU Jianping, TANG Cindy Q. ,et al (6396)
……………………………………………………
…………………………………………………………………
Reproductive characteristics and adaptive evolution of pin and thrum flowers in endangered species, Primula merrilliana
SHAO Jianwen, ZHANG Wenjuan, ZHANG Xiaoping (6410)
……………
………………………………………………………………………
Leaf functional traits of four typical forests along the altitudinal gradients in Mt. Shennongjia
LUO Lu, SHEN Guozhen, XIE Zongqiang,et al (6420)
…………………………………………
……………………………………………………………………………
Reclaimed soil properties and weathered gangue change characteristics under various vegetation types on gangue pile
WANG Liyan, HAN Youzhi, ZHANG Chengliang, et al (6429)
…………………
……………………………………………………………………
Influence of fire on stands of Pinus massoniana in a karst mountain area of central Guizhou province
ZHANG Xi, CHUI Yingchun, ZHU Jun, et al (6442)
…………………………………
……………………………………………………………………………
Morphological and physiological adaptation of Caragana species in the Inner Mongolia Plateau
MA Chengcang, GAO Yubao, LI Qingfang, et al (6451)
………………………………………
…………………………………………………………………………
A comparative study on reasons of degenerated of Haloxylon ammodendron population in the western part of Gurbantunggut desert
SI Langming,LIU Tong,LIU Bin,et al (6460)
……
………………………………………………………………………………………
Self鄄thinning of natural broadleaved forests in Baishilazi Nature Reserve ZHOU Yongbin, YIN You, YIN Mingfang, et al (6469)…
Population status and dynamic trends of Amur tiger忆s prey in Eastern Wandashan Mountain, Heilongjiang Province
ZHANG Changzhi, ZHANG Minghai (6481)
…………………
………………………………………………………………………………………
The relationship between the occurrence of Colorado Potato Beetle, Leptinotarsa decemlineata, and rivers based on GIS: a case
study of Shawan Country LI Chao, ZHANG Zhi, GUO Wenchao, et al (6488)…………………………………………………
Occurrence dynamics and trajectory analysis of Cnaphalocrocis medinalis Guen佴e in Xing忆an Guangxi Municipality in 2010
JIANG Chunxian, QI Huihui, SUN Mingyang, et al (6495)
…………
………………………………………………………………………
Adaptability of B鄄biotype Bemisia tabaci (Gennadius) to Host Shift ZHOU Fucai, LI Chuanming, GU Aixiang, et al (6505)………
Structural change analysis of cecal bacterial flora in different poultry breeds using PCR鄄DGGE LI Yongzhu,Yongquan Cui (6513)…
Effect of chicken manure鄄amended copper mine tailings on growth of three leguminous species, soil microbial biomass and enzyme
activities ZHANG Hong, SHEN Zhangjun, YANG Guide, et al (6522)…………………………………………………………
Physiological response of Microcystis to solar UV radiation WANG Yan, LI Shanshan, LI Jianhong, et al (6532)……………………
Relationship between cell volume and cell carbon and cell nitrogen for ten common dinoflagellates
WANG Yan,LI Ruixiang,DONG Shuanglin,et al (6540)
……………………………………
……………………………………………………………………………
The community structure and abundance of microcystin鄄producing cyanobacteria in surface sediment of Lake Taihu in winter
LI Daming, KONG Fanxiang,YU Yang, et al (6551)
………
………………………………………………………………………………
Influence of green belt structure on the dispersion of particle pollutants in street canyons
LIN Yinding, WU Xiaogang, HAO Xingyu, et al (6561)
………………………………………………
…………………………………………………………………………
Spatio鄄temporal variation analysis of urbanization and land use benefit of oasis urban areas in Xinjiang
YANG Yu, LIU Yi, DONG Wen, et al (6568)
………………………………
……………………………………………………………………………………
Nitrate contamination and source tracing from NO-3 鄄啄15N in groundwater in Weifang, Shandong Province
XU Chunying, LI Yuzhong, LI Qiaozhen, et al (6579)
……………………………
……………………………………………………………………………
The impact of rising temperature on spring wheat production in the Yellow River irrigation region of Ningxia
XIAO Guoju, ZHANG Qiang, ZHANG Fengju, et al (6588)
…………………………
………………………………………………………………………
A new hyperspectral index for the estimation of nitrogen contents of wheat canopy
LIANG Liang, YANG Minhua, DENG Kaidong, et al (6594)
……………………………………………………
………………………………………………………………………
The feature of N2O emission from a paddy field in irrigation area of the Yellow River
ZHANG Hui,YANG Zhengli,LUO Liangguo, et al (6606)
…………………………………………………
…………………………………………………………………………
Review and Monograph
Research perspective for the effects of nitrogen deposition on biogenic volatile organic compounds
HUANG Juan, MO Jiangming, KONG Guohui, et al (6616)
……………………………………
………………………………………………………………………
Recruitment limitation of plant population: from seed production to sapling establishment
LI Ning, BAI Bing, LU Changhu (6624)
……………………………………………
……………………………………………………………………………………………
Scientific Note
Response of anatomical structure and photosynthetic characteristics to low light stress in leaves of different maize genotypes
DU Chengfeng, LI Chaohai, LIU Tianxue, et al (6633)
…………
……………………………………………………………………………
2009 年度生物学科总被引频次和影响因子前 10 名期刊绎
(源于 2010 年版 CSTPCD数据库)
排序
Order
期刊
Journal
总被引频次
Total citation
排序
Order
期刊
Journal
影响因子
Impact factor
1 生态学报 11764
2 应用生态学报 9430
3 植物生态学报 4384
4 西北植物学报 4177
5 生态学杂志 4048
6 植物生理学通讯 3362
7
JOURNAL OF INTEGRATIVE
PLANT BIOLOGY
3327
8 MOLECULAR PLANT 1788
9 水生生物学报 1773
10 遗传学报 1667
1 生态学报 1. 812
2 植物生态学报 1. 771
3 应用生态学报 1. 733
4 生物多样性 1. 553
5 生态学杂志 1. 396
6 西北植物学报 0. 986
7 兽类学报 0. 894
8 CELL RESEARCH 0. 873
9 植物学报 0. 841
10 植物研究 0. 809
摇 绎《生态学报》 2009 年在核心版的 1964 种科技期刊排序中总被引频次 11764 次,全国排名第 1; 影响因
子 1郾 812,全国排名第 14;第 1—9 届连续 9 年入围中国百种杰出学术期刊; 中国精品科技期刊
摇 摇 编辑部主任摇 孔红梅摇 摇 摇 摇 摇 摇 摇 摇 摇 摇 执行编辑摇 刘天星摇 段摇 靖
生摇 态摇 学摇 报
(SHENGTAI摇 XUEBAO)
(半月刊摇 1981 年 3 月创刊)
第 31 卷摇 第 21 期摇 (2011 年 11 月)
ACTA ECOLOGICA SINICA
摇
(Semimonthly,Started in 1981)
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Vol郾 31摇 No郾 21摇 2011
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