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微藻碳酸酐酶的特性及其环境调控



全 文 :植物生理学通讯 第 46卷 第 7期, 2010年 7月 631
收稿 2009-09-14 修定  2010-05-14
资助 国家自然科学基金(40676079、40976078)和广州市植
物抗逆基因功能研究重点实验室开放基金。
* 通讯作者(E-mail: jrxia@gzhu.edu.cn; Tel: 020-39366937)。
微藻碳酸酐酶的特性及其环境调控
黄瑾 1, 夏建荣 1,*, 邹定辉 2
1广州大学环境科学与工程学院, 广州 510006; 2华南理工大学环境科学与工程学院, 广州 510006
提要: 本文概述微藻碳酸酐酶的性质、种类、分布、分离纯化和环境调控的研究进展, 并对未来有关微藻碳酸酐酶研究中
需要探讨的问题作了展望。
关键词: 微藻; 碳酸酐酶; 环境调控
Characteristics and Environmental Regulation of Carbonic Anhydrase in
Microalgae
HUANG Jin1, XIA Jian-Rong1,*, ZOU Ding-Hui2
1School of Environmental Science and Engineering, Guangzhou University, Guangzhou 510006, China; 2College of Environmental
Science and Engineering, South China University of Technology, Guangzhou 510006, China
Abstract: The advances in the characteristics, type, distribution, purification and environmental regulation of
carbonic anhydrase in microalgae are outlined, and further researches for better understanding carbonic anhy-
drase in microalgae are prospected.
Key words: microalgae; carbonic anhydrase; environmental regulation
碳酸酐酶(carbonic anhydrase, CA)是一种含
Zn2+的金属酶, 在CO2和HCO3-相互转化的可逆反
应中起催化作用; 在水合作用时, CO2在酶活性中
心与 Zn-OH反应, 而在脱水作用时, HCO3-与 Zn-
H2O反应。此酶最初是在哺乳动物的红细胞中发
现的, 并随后在鱼类、无脊椎动物、植物和微生
物中相继发现。尽管催化同一化学反应, 但其在不
同有机体中所起的生理作用存在较大差异, 它可以
涉及离子交换、呼吸作用、pH 稳定性、二氧化
碳浓缩机制以及光合作用的各个方面( D i e t e r
1998)。微藻是水体(包括湖泊、水库和海洋)环境
中主要的初级生产者, 其光合固碳量约占全球总光
合固碳量的 50%, 长期以来, 微藻光合固碳作用的
研究一直是水生生物学和藻类学工作者非常关注的
一个问题。与陆生高等植物一样, 核酮糖 -1,5-二
磷酸羧化氧化酶(Rubisco)也是藻类固定 CO2的关
键酶, 藻类中 95%以上的有机碳均是Rubisco所固
定的。水体中微藻的光合固碳受两大天然因素的
制约, 一方面, 微藻的 Rubisco对 CO2的亲和力远
比陆生高等植物的要小; 另一方面, 因为 CO2在水
中的扩散速率比空气中要慢一万倍, 水体中CO2的
供应少。但是水体中微藻的光合效率很高, 甚至比
陆生高等C4植物还要高, 其主要原因是其细胞内存
在二氧化碳浓缩机制(CO2 concentrating mechanism,
CCM) (Badger和 Price 1992; Raven等 2008; Martin
和 Tortell 2008)。藻细胞既可以间接地通过质膜
主动转运HCO3-进入胞液, 在细胞内通过碳酸酐酶
的作用将HCO3-转变为CO2; 也可以直接通过胞外
CA催化细胞表面的HCO3-转变为CO2, CO2再以扩
散作用进入细胞内, 经胞内和胞外CA的作用保持
细胞内有稳定浓度的 CO2供给 Rubisco, 使藻细胞
在 CO2浓度限制的环境中维持较高的光合作用效
率。由此可见, CA在藻类植物碳运输和碳代谢中
起着非常重要的作用。本文简要介绍微藻碳酸酐
酶的种类、定位、性质及其受到环境因子调控的
综 述Reviews
植物生理学通讯 第 46卷 第 7期, 2010年 7月632
研究进展。
1 微藻CAs的种类
单细胞微藻中有许多形式的CAs (Badger 2003;
Moroney等 2001)。至今已发现 5种独立的类型,
包括 α-、β -、γ -、ζ- 和 δ-CA。尽管它们主要
序列没有明显的相似性, 但其活性位点大多结合 1
个对其酶活性很重要的锌原子(Moroney等 2001;
Soto等 2006)或者镉原子(Lane和Morel 2000; Lane
等 2005; Soto等 2006), 而且催化机制也都比较相
似(Badger 2003)。大多数 α-CAs都是分子量为 30
kDa左右的单体, 其酶活性部位的锌原子都有 3个
保守的组氨酸残基和 1个水分子与之配位, 一般对
磺胺类抑制剂很敏感(Karlsson等 1995)。所有的
有活性的β-CAs既有单体, 也可以是含有 1个保守
的组氨酸残基及2个半胱氨酸残基的杂合体, 杂合
体中各残基分别与锌原子结合。γ-CAs的结构与
α-CAs和β-CAs明显不同, 它是由相同亚单位组成
的同型三聚体, 含有 3个锌原子。与 α-CAs相似,
γ-CAs活性部位的锌原子也有 3个组氨酸残基和 1
个水分子与之配位, 但是其组氨酸残基含有2个单
独的亚基。γ - C A s 也对磺胺类物质高度敏感
(Badger 2003)。近几年来在微藻中又陆续发现了
新的 CA种类, 包括 ζ-和 δ-型 CAs。ζ-CAs存在于
海链藻(Thalassiosira weissflogii和 Thalassiosira
pseudonana)中, 与 α-、β-、γ-CAs不同, 它是一
种含镉的CA, 具有镉结合位点且镉原子与2个或更
多个硫醇盐结合, 与高等植物中的含锌 CA的金属
结合位点有2个半胱氨酸残基和1个组氨酸残基相
类似(Lane等 2005; McGinn和Morel 2008)。δ-CAs
是从海洋颗石藻(Emiliania huxleyi)中鉴定出来的。
2 微藻CAs的分离与纯化
探索合适的CA分离纯化方法对进一步研究其
性质非常重要。芳香磺胺类物质是有效的CA特异
性抑制剂, 早在20世纪60年代, 磺胺米隆(sulfamylon,
对位氨甲基磺胺药物)就已经作为亲和层析的非水
溶性填料(sulfamylon sepharose, 即 p-aminometh-
ylbenzene sulfonamide-agarose, p-AMBS)用于CA纯
化。在温和的条件下, 用含有 CA抑制剂的洗脱液
能将 CA洗脱下来, 以此达到分离纯化 CA的目的
(Whitney 1974)。Yang等(1985)方法的大致流程是:
高速离心收集微藻细胞→30%~65%硫酸铵分级沉
淀→透析除盐→p-AMBS亲和层析→透析除盐得到
纯化的CA。此后很多研究者对这一方法进行了一
定程度的改良, 如Satoh等(1998)分离纯化耐热性小
球藻(Chlorella sorokiniana) CA的方法过程大致是:
DEAE-纤维素A-500离子交换层析→与HPLC系统
连接的Econo-PacQ离子交换层析→ p-AMBS亲和
层析; Satoh等(2001)按照Yang等(1985)的方法研究
三角褐指藻胞内 CA的生理和分子特性时, 在硫酸
铵分级沉淀后, 将样品依次通过DEAE-sephacel离
子交换层析和p-AMBS亲和层析, 最后脱盐浓缩获
得纯化的 CA蛋白。总的来说, CA的分离纯化最
终少不了 p-AMBS亲和层析这一步。
3 微藻CAs的性质
莱茵衣藻(Chlamydomonas reinhardtii)的CA是
真核藻类中研究得最广泛的。已经发现莱茵衣藻
中存在6种编码CA的基因, 包括3种α-CAs和3种
β-CAs (Kucho等 2003; Mitra等 2004; Ynalvez等
2008), 其中 2种 α型胞外 CAs (Cah1和 Cah2)的核
编码基因已得到鉴定, 它们的氨基酸序列有 91.8%
的相似性, 与动物CA有 20%的相似性。每个基因
都编码2个分子量大小不同的多肽, 即先翻译成分
子量为 41.6 kDa的前体, 随后加工成 1个糖基化的
分子量为 35~37 kDa的大亚基和 1个分子量为 4.1
kDa的小亚基(Mitra等 2004)。Cah1的转录受 2个
调节区域控制: 1个在高浓度CO2条件或黑暗条件
下抑制转录的沉默子区域和1个在低浓度CO2和光
照条件下激活转录的增强子区域, 增强子区域中的
2个增强子都有一段在激活中起主要作用的短而保
守的DNA序列, 并且有与增强子相合的DNA结合
蛋白(Kucho等 2003)。定位于叶绿体中类囊体膜
内侧的α-CA (Cah3), 其分子量为29.5 kDa, 这种蛋
白在细胞匀浆中主要以不溶性片段出现, 只有用高
浓度氯化钾冲洗膜后才可溶解, 纯化的Cah3对硫铵
类抑制剂很敏感(Hanson等 2003)。另外, 莱茵衣
藻2种线粒体β-CAs (β-ca1和β-ca2)的氨基酸序列
之间有97%的相似性, 各由1个反向重复序列构成
(Giordano等 2003)。叶绿体β-CA Cah6与其他 2种
线粒体 β-CAs不同, 核苷酸序列数据表明 Cah6的
cDNA包含一段 264 bp的开放阅读框架, 它所编码
的多肽的导肽序列能够将蛋白靶定到叶绿体基质上
(Mitra等 2004)。
植物生理学通讯 第 46卷 第 7期, 2010年 7月 633
CAs在海洋微藻如三角褐指藻(Phaeodactylum
tricornutum)、威氏海链藻(Thalassiosira weissflogii)、
中肋骨条藻(Skeletonema costatum)以及海洋颗石藻
(Emiliania huxleyi)中均有报道。三角褐指藻的
PtCA1属于 β型CA, 分子量约为 26 kDa, 有 1个完
全保守的锌结合区域, 由核基因编码。编码PtCA1
的 cDNA序列(ptca1)含有 282个氨基酸, 拥有一段
138 bp的前体序列(pre138), pre138编码一段 46个
氨基酸的N端序列(Pre46AA), 推测 Pre46AA可作
为 PtCA1的引导信号, 引导 PtCA1在细胞中的定
位。成熟的 PtCA1蛋白由 236个氨基酸组成, 但
不含有Pre46AA (Tanaka等 2005; Sakaue等2008)。
三角褐指藻的另一种β型CA为PtCA2, 其cDNA有
一个 819 bp的开放阅读框架(它编码一个 273个氨
基酸的多肽), 其编码基因 PtCA2与 PtCA1有 83%
的相似性; PtCA2的氨基酸序列拥有完全保守的Zn
结合残基。PtCA2 N末端的 19个氨基酸序列是一
种内质网靶定信号, 蛋白可能定位在一种细胞器或
周质空间中(Harada和Matsuda 2005; Kitao等
2008)。威氏海链藻中有一种含锌的CA (TwCA1),
通过克隆其相应的cDNA (twca1)后, 发现其序列与
其他藻类CA不同, 编码分子量约为34 kDa的蛋白,
TwCA1氨基末端的氨基酸序列由起始蛋氨酸和其
下游的 72个氨基酸残基组成。这些差异可能由于
存在一个短期的信号序列, 可以引导酶进行正确的
细胞定位(Roberts等 1997)。威氏海链藻中还存在
一种含镉的 ζ-CA (CdCA1), 其蛋白分子量约为 69
kDa (Lane等 2005)。从中肋骨条藻已分离鉴定出
位于细胞膜外侧的CA, 其分子量约为30 kDa (Nimer
等 1999)。颗石藻中含有 2种独特的 CA, 分别属
于γ和δ类的CA (分别为γ-EhCA2和δ-EhCA1) (Soto
等2006), δ-EhCA1的cDNA编码一种含有702个氨
基酸的蛋白, 分子量为 77.3 kDa, 含有 373个氨基
酸的跨膜N端区域和329个氨基酸的C端开放阅读
框架。γ-EhCA2蛋白有 235个氨基酸, 分子量为
24.9 kDa。在评价颗石藻CA的生物学作用问题上,
以前的研究都认为这些酶在多种非光合或与钙化不
相关的功能中起作用, 而忽视了这些 CA在碳代
谢、离子转运、pH 动态平衡和钙化的中间过程
中所表现出来的作用。至于这些 CA的进化、结
构和机制差异尚待进一步研究(Soto等 2006)。
4 微藻CAs的定位
根据CA在细胞内外的分布差异, 可分为胞外
CA (extracellular CA)和胞内CA (intracellular CA)。
胞外 CA常分布于细胞的周质空间(periplasmic
space), 胞内 CA的分布常因细胞种类的不同而不
同, 现已发现的有: 叶绿体 CA (chloroplast CA,
cCA)、线粒体 CA (mitochondria CA, mCA)和细胞
质 CA (cytoplasm CA, cpCA) (Nimer等 1998)。
4.1 周质空间CA (periplasmic CA, pCA) 一般天然
海水的 pH为 7.8~8.3, 其中的无机碳以碳酸氢根形
式为主, 而游离的 CO2浓度很低, 不足以维持微藻
的光合作用, pCA能使海洋中大量的HCO3-转化为
CO2, 因而使得微藻细胞可充分利用胞外无机碳
(Dieter 1998)。
4.2 叶绿体CA (chloroplast CA, cCA) 用传统方法
很难测出 cCA活性, 一般用 18O交换质谱以及 77K
荧光光谱和免疫学技术联合才可检测出 cCA的存
在(van Hunnik等 2001; Park等 1999; Villarejo等
2001)。莱茵衣藻的一种 α-CA (Cah3)定位于类囊
体膜内侧, 与光系统 II (PS II)相耦联, 其CCM的启
动和维持依赖于PS II介导的电子传递所引起的跨
类囊体膜的 pH梯度, 因此可以推测类囊体膜介导
的 CCM是由 PS II驱动的, 并由与 PS II相耦联的
CA催化(Park等 1999; Villarejo等 2001)。Cah3的
主要功能是催化类囊体内腔的HCO3-水解, 可为定
位于叶绿体蛋白核中的 Rubisco提供充足的 CO2。
大部分绿藻的 Rubisco存在于蛋白核中, cCA可能
与蛋白核结构相关联, 就象蓝藻有些胞内CAs特异
定位在接近 Rubisco的羧体中一样。普通小球藻
(Chlorella vulgaris)有一种与蛋白核有关的胞内CA,
可能在其CCM机制和适应低浓度CO2的过程中起
作用(Villarejo等 1998)。
4.3 线粒体CA (mitochondria CA, mCA) 有实验
表明, 线粒体 CA可能参与为磷酸烯醇式丙酮酸羧
化酶催化反应提供HCO3-, 也为氮同化提供碳骨架
(Giordano等 2003)。莱茵衣藻的 β-CAs (β-ca1和
β-ca2)可能在呼吸作用和光呼吸的CO2循环中起作
用, 将线粒体中的CO2转化为HCO3-, HCO3-流回到
细胞质, 再转运到叶绿体基质中。
4.4 细胞质CA (cytoplasm CA, cpCA) cpCA的种
类相对较少, 至今只发现在少数种类的植物中存在,
植物生理学通讯 第 46卷 第 7期, 2010年 7月634
如在单细胞绿藻 Coccomyxa中发现定位于细胞质
中的 β-CA, 此酶的天然形式是一种分子量大小为
100 kDa的同型四聚体(Dieter 1998), 但其生理作用
尚不清楚。
5 环境调控对微藻CAs的影响
CA在微藻光合固碳中具有比较重要的作用, 其
活性与光合效率直接相关, 微藻中 CA活性的调控
一直是 CA研究中的一个重点问题。CA活性受多
种环境因素的调控, 如 CO2浓度、光照、pH值、
温度以及金属元素等。
5.1 CO2浓度 单细胞微藻有多种形式的CA, 其表
达受环境中 CO2水平的影响(Badger 2003)。小球
藻(Chlorella saccharophila)在低CO2浓度条件下, CA
受诱导, 胞外活性明显升高, 而在较高 CO2条件下
活性受抑制(Beuf等 2000; Williams和 Colman
1993)。莱茵衣藻 Cah1在高浓度 CO2 (5%)培养下
表达受抑制, 转入低浓度 CO2 (0.04%)后, 1 h内此
酶的表达被激活(Karlsson等 1995; Kucho等2003);
而Cah2在低浓度CO2条件下表达很少, 在高浓度CO2
条件下有轻微的增加(Karlsson等 1995)。小球藻
(Chlorella vulgaris)从高浓度 CO2 (5%)转移到低
浓度 CO2 (0.03%)后, 胞内 CA活性 6 h内增加了
6~7倍(Villarejo等 1998)。莱茵衣藻 β-cCA (Cah6)
在低浓度 CO2 (空气)条件下的表达仅有轻微提高
(Mitra等 2004), 而它的 2种 β型mCA (β-ca1和 β-
ca2)的表达明显受生长过程中CO2浓度的影响, 即
在低浓度CO2下被大量诱导, 而在高浓度CO2下则
受抑制(Giordano等 2003)。三角褐指藻中一种定
位于叶绿体基质中的 β-CA (PtCA1)在大气 CO2浓
度水平下培养是引发ptca1的转录所必需的(Harada
等 2005)。通过改变周围的 CO2浓度, 在转录水平
上调控其编码基因的表达, 即通过滤空气培养的细
胞中 CA基因转录水平比 5% CO2培养的细胞高
5~10倍(Satoh等 2001)。中肋骨条藻的 pCA只有
当CO2浓度低于5 mmol·m-3时才能检测到(Nimer等
1998)。
5.2 光照 莱茵衣藻 CA活性的诱导与光合作用中
的能量流动速率有关, 有人推测光在 CA转录水平
上的调节中是必需的, 同时还发现 CA转录调节过
程中存在一种蓝光的促进机制(Dionisio-Sese等
1990)。高光强对于铜绿微囊藻(Microcystis aeru-
ginosa)的生长并不是最有利的,但是CA活性仍然受
高光强所诱导(王山杉等 2006)。Harada和Matsuda
(2005)将三角褐指藻从 5% CO2条件下转入通空气
(0.035% CO2)培养后, 不论在光照还是在黑暗条件
下, 都会引发其β-CA (PtCA1)基因ptca1的转录, 但
黑暗条件下的mRNA含量比光照条件下减少50%,
表明 CO2浓度是引发 ptca1转录的必需条件, 而光
照影响则能调控其转录强度。
5.3 pH 一些淡水微藻, 如莱茵衣藻、小球藻(Chlor-
ella saccharophila、Chlorella regularis 和Chlorella
ellipsoidea), 它们的pCA诱导和活性在酸性条件(pH
4.5)下均受到抑制(Fett和 Coleman 1994; Gehl等
1990; Shiraiwa等 1991; Williams和Colman 1993)。
Beuf等(2000)比较了酸性和碱性条件下绿球藻
(Chlorococcum littorale)的 pCA活性, 发现 pH可能
只影响其CA活性水平, 而不能阻止CA酶的诱导。
Janette和 John (1994)认为酸性 pH下的胞外 CA活
性之所以明显低于碱性pH下的则是由于pH值影响
无机碳的存在形式。在酸性 pH条件下, 培养液中
无机碳主要以CO2形式存在, 有足够的CO2进入细
胞内, 因此胞外 CA活性低; 在碱性 pH条件下无机
碳主要以HCO3-形式存在, 必需依靠胞外 CA催化
HCO3-方可转化成 CO2, 以满足细胞的需要。测定
莱茵衣藻在不同pH值下pCA的活性变化表明, 在
pH 7.2时的 pCA活性最高, 而 pH 5.5时 pCA活性
明显低于 pH 7.2时和 pH 9.0时的活性(陈雄文等
2000); 高 pH下培养的铜绿微囊藻有较高的 CA活
性, 当 pH为 9.0时, CA活性约是 pH 8.0时的 2倍(王
山杉等 2006)。pH值对 CA活性的调节作用, 可能
是通过 pH控制水中CO2的供应来实现的。当然也
有可能是 pH的直接作用, 对此问题尚待进一步研
究。
5.4 温度 水温不仅会影响微藻的生长和呼吸速率,
而且还会影响水中氧的溶解度, 同时也会影响 CA
的活性。例如, 在逐渐降低CO2浓度从3%到0.04%
的条件下, 随着温度的升高, 小球藻(Chlorella
vulgaris)的 CA活性明显上升, 在 32~37 ℃下达到
最大值(Shiraiwa和Miyachi 1985)。高温(30 ℃)下
培养的铜绿微囊藻具有较高的胞外 CA活性(王山
杉等 2006)。
5.5 金属元素 锌是 CA的组成元素, 因此微藻的
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CA活性对锌很敏感。锌浓度会影响固氮鱼腥藻
(Anabaena azotica)的 CA活性(王山杉等 2002); 当
Zn2+浓度从 0增加到 12 pmol·L-1时, 中肋骨条藻的
pCA和胞内CA活性也随之增加(Hu等2003)。Lane
和Morel (2000)报道, 海洋硅藻的CA受低浓度CO2
的诱导, 诱导水平依赖于 Zn2+的浓度。在海洋硅
藻中, 金属元素钙、镉、锌在功能上可以互相替
代, 以维持藻的最佳生长和 CA在 CCM中的作用
(Lane和Morel 2000; Lane等 2005; Xu等 2008)。
6 结语
以淡水绿藻莱茵衣藻和海洋硅藻三角褐指藻
为模式藻类研究CA在藻类光合固碳和无机碳浓缩
机制中作用已取得了一定的进展, 但还有许多问题
仍值得进一步探讨: (1)一些具有重要生态学意义的
藻类, 特别是水华蓝藻和海洋赤潮藻类爆发的时候,
水体中CO2浓度变得很低, 其光合固碳可能更需要
依赖 CA的存在和作用, 爆发过程中藻类的后期生
存也可能与 CA有密切关系, 因此研究水华蓝藻和
海洋赤潮藻类CA的功能及其表达调控的分子机制
对揭示其生存策略具有重要的生态学意义; (2)研究
微藻 CA酶蛋白分子结构与酶活性的关系, 特别是
以其他金属离子取代锌离子后可能造成CA结构和
活性的变化, 从而影响微藻在环境中的生存; (3)现
有CA的环境调控研究一般都是从单个环境因子获
得的结果, 而环境因子的综合效应研究较少, 因此
多种环境因子对微藻CA的协同调控作用研究也值
得重视。
参考文献
陈雄文 , 戴新宾 , 张荣铣( 2 0 0 0 ) . p H 值和氮素对莱氏衣藻
(Chlamydomonas reinhardtii)胞外碳酸酐酶活性的影响. 南
京农业大学学报, 23 (1): 27~29
王山杉, 刘永定, 金传荫, 李敦海(2002). Zn2+浓度对固氮鱼腥藻
(Anabaena azotica Ley)光能转化特性的影响. 湖泊科学, 14
(4): 350~356
王山杉, 刘永定, 邹永东, 李敦海(2006). 微囊藻碳酸酐酶活性在
不同环境因素下的调节与适应. 生态学报, 26 (8): 2443~2448
Badger M (2003). The roles of carbonic anhydrases in photosyn-
thetic CO2 concentrating mechanisms. Photosyn Res, 77:
83~94
Badger MR, Price GD (1992). The CO2 concentrating mechanism
in cyanobacteria and microalgae. Physiol Plant, 84: 606~615
Beuf L, Kurano N, Miyachi S (2000). Effect of external pH on
inorganic carbon assimilation in unicellular marine green
algae. Phycol Res, 48: 47~54
Dieter S (19 98). Carbonic anhydrase in euka ryotic a lgae
characterization, regulation, and possible function during
photosynthesis. Can J Bot, 76: 962~972
Dionisio-Sese ML, Fukuzawa H, Miyachi S (1990). Light-induced
ca rbonic a nhydra se expression in Ch la m y d o m o n a s
reinhardtii. Plant Physiol, 94: 1103~1110
Fett JP, Coleman JR (1994). Regulation of periplasmic carbonic
anhydrase expression in Chlamydomonas reinhardtii by
acetate and pH. Plant Physiol, 106: 103~108
Gehl KA, Colman B, Sposato LM (1990). Mechanism of inor-
ganic carbon uptake in Chlorella saccharophila: the lack of
involvement of carbonic a nhydra se . J Exp Bot , 41 :
1385~1391
Giordano M, Norici A, Forssen M, Eriksson M, Raven JA (2003).
An anaplerotic role for mitochondrial carbonic anhydrase in
Chlamydomonas reinhardtii. Plant Physiol, 132: 2126~2134
Hanson DT, Franklin LA, Samuelsson G, Badger MR (2003).
Chlamydomonas reinhardtii cia3 mutant lacking a thylakoid
lumen-localized carbonic anhydrase is limited by CO2 supply
to rubisco and not photosystem II function in vivo . Plant
Physiol, 132: 2267~2275
Harada H, Matsuda Y (2005). Identification and characterization
of a new carbonic anhydrase in the marine diatom Phaeodactylum
tricornutum. Can J Bot, 83: 909~916
Harada H, Nakatsuma D, Ishida M, Matsuda Y (2005). Regulation
of the expression of intracellular β-carbonic anhydrase in
response to CO2 and light in the marine diatom Phaeodactylum
tricornutum. Plant Physiol, 139: 1041~1050
Hu H, Shi Y, Cong W, Cai Z (2003). Growth and photosynthesis
limitation of marine red tide alga Skeletonema costatum by
low concentrations of Zn2+. Biotech Lett, 25: 1881~1885
Janette PF, John RC (1994). Regulation of periplasmic carbonic
anhydrase expression in Chlamydomonas reinhardtii by
acetate and pH. Plant Physiol, 106: 103~108
Karlsson J, Hiltonen T, Husic HD, Ramazanov Z, Samuelsson G
(1995). Intracellular carbonic anhydrase of Chlamydomo-
nas reinhardtii. Plant Physiol, 109: 533~539
Kitao Y, Harada H, Matsuda Y (2008). Localization and target-
ing mechanisms of two chloroplastic-carbonic anhydrases in
the marine dia tom Phaeodactylum tricornutum. Physiol
Plant, 133: 68~77
Kucho K, Yoshioka S, Taniguchi F, Ohyama K, Fukuzawa H (2003).
Cis-acting elements and DNA-binding proteins involved in
CO2-responsive transcriptional activation of Cah1 encoding
a periplasmic carbonic anhydrase in Chlamyd omonas
reinhardtii. Plant Physiol, 133: 783~793
Lane TW, Morel FMM (2000). Regulation of carbonic anhydrase
expression by zinc, cobalt, and carbon dioxide in the marine
diatom Thalassiosira weissflogii. Plant Physiol, 123: 345~352
Lane TW, Saito MA, George GN, Pickering IJ, Prince RC, Morel
FMM (2005). A cadmium enzyme from a marine diatom.
Nature, 435: 42~45
Martin CL, Tortell PD (2008). Bicarbonate transport and extra-
cellular carbonic anhydrase in marine diatoms. Physiol Plant,
植物生理学通讯 第 46卷 第 7期, 2010年 7月636
133: 106~116
McGinn PJ, Morel FMM (2008). Expression and regulation of
carbonic anhydrases in the marine diatom Thalassiosira
pseudonana and in natural phytoplankton assemblages from
Great Bay, New Jersey. Physiol Plant, 133: 78~91
Mitra M, Lato SM, Ynalvez RA, Ying X, Moroney JV (2004).
Identification of a new chloroplast carbonic anhydrase in
Chlamydomonas reinhardtii. Plant Physiol, 135: 173~182
Moroney JV, Bartlett SG, Samuelsson G (2001). Carbonic anhy-
drases in plants and algae. Plant Cell Environ, 24: 141~153
Nimer NA, Miao XL, Brownlee C, Merrett MJ (1999). Inorganic
carbon limitation, exofacial carbonic anhydrase activity, and
plasma membrane redox activity in marine phytoplankton
species. J Phycol, 35: 1200~1205
Nimer NA, Warrenz M, Merrett MJ (1998). The regulation of
photosynthetic rate and activation of extracellular carbonic
anhydrase under CO2-limiting conditions in the marine dia-
tom Skeletonema costatum. Plant Cell Environ, 21: 805~812
Park Y, Karlsson J, Rojdestvenski I, Pronina N, Klimov V, Öquist
G, Samuelsson G (1999). Role of novel photosystem II-
associated carbonic anhydrase in photosynthetic carbon as-
similation in Chlamydomonas reinhardtii. FEBS Lett, 444:
102~105
Raven JA, Giordano M, Beardall J (2008). Insights into the
evolution of CCMs from comparisons with other resource
acquisition and assimilation processes. Physiol Plant, 133:
4~14
Roberts SB, Lane TW, Morel FMM (1997). Carbonic anhydrase
in the marine diatom Thalassiosira weissflogii (Bacillar-
iophyceae). J Phycol, 33: 845~850
Sakaue K, Harada H, Matsuda Y (2008). Development of gene
expression system in a marine diatom using viral promoters
of a wide variety of origin. Physiol Plant, 133: 59~67
Satoh A, Iwasaki T, Odani S, Shiraiwa Y (1998). Purification,
characterization and cDNA cloning of soluble carbonic an-
hydrase from Chlorella sorokiniana grown under ordinary
air. Planta, 206: 657~665
Satoh D, Hiraoka Y, Colman B, Matsuda Y (2001). Physiological
and molecular biological characterization of intracellular
carbonic anhydrase from the marine diatom Phaeodactylum
tricornutum. Plant Physiol, 126: 1459~1470
Shiraiwa Y, Miyachi S (1985). Effects of temperature and CO2
concentration on induction of carbonic anhydrase and changes
in efficiency of photosynthesis in Chlorella vulgaris 11h.
Plant Cell Physiol, 26: 543~549
Shiraiwa Y, Yokoyama S, Satoh A (1991). pH-dependent regula-
tion of carbonic anhydrase induction and change in photo-
synthesis during adaptation of Chlorella cells to low CO2. Jpn
J Phycol, 39: 355~362
Soto AR, Zheng H, Shoemaker D, Rodriguez J, Read BA, Wahlund
TM (2006). Identification and preliminary characterization
of two cDNAs encoding unique carbonic anhydrase from the
marine alga Emiliania huxleyi. Appl Environ Microb, 72 (8):
5500~5511
Tanaka Y, Nakatsuma D, Harada H, Ishida M, Matsuda Y (2005).
Localization of soluble β-carbonic anhydrase in the marine
diatom Phaeodactylum tricornutum. Sorting to the chloro-
plast and cluster formation on the girdle lamellae. Plant
Physiol, 138: 207~217
van Hunnik E, Livne A, Pogenberg V, Spijkerman E, vanden
Ende H, Garcia Mendoza E, Sültemeyer D, de Leeuw JW
(2001). Identification and localization of a thylakoid-bound
carbonic anhydrase from the green algae Tetraedron mini-
mum (Chlorophyta) and Chlamydomonas noctigama (chlor-
ophyta). Planta, 212: 454~459
Villarejo A, Isabel Orús MI, Ramazanov Z, Martínez F (1998). A
38-kilodalton low-CO2-inducible polypeptide is associated
with the pyrenoid in Chlorella vulgaris. Planta, 206: 416~425
Villarejo A, Rolland N, Martinez F, Sültemeyer DF (2001). A new
chloroplast envelope carbonic anhydrase activity is induced
during acclimation to low inorganic carbon concentrations
in Chlamydomonas reinhardtii. Planta, 213: 286~295
Whitney PL (197 4). Affini ty chromatography of ca bonic
anhydrase. Anal Biochem, 57: 467~476
Williams TG, Colman B (1993). Identification of distinct inter-
nal and external isozymes of carbonic anhydrase in Chlo-
rella saccharophila. Plant Physiol, 103: 943~948
Xu Y, Feng L, Jeffrey PD, Shi Y, Morel FMM (2008). Structure
and metal exchange in the cadmium carbonic anhydrase of
marine diatoms. Nature, 452: 56~62
Yang SY, Tsuzuki M, Miyachi S (1985). Carbonic anhydrase of
Chamydomonas: purification and studies on its induction
using antiserum against Chlamydomonas carbonic anhydrase.
Plant Cell Physiol, 26(1): 25~34
Ynalvez RA, Xiao Y, Ward AS, Cunnusamy K, Moroney JV (2008).
Identification and characterization of two closely related -
carbonic anhydrases from Chlamydomonas reinhardtii .
Physiol Plant, 133: 15~26