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不同耐淹油菜品种的耐淹性生理差异



全 文 :植物生理学报 Plant Physiology Journal 2013, 49 (9): 959~967 959
收稿 2013-07-04  修定 2013-08-06
资助 国家油菜产业技术体系(CARS-13)和科技部支撑计划(2010-
BAD01B10)。
* 通讯作者(E-mail: qckjaas@gmail.com; Tel: 025-84390372)。
不同耐淹油菜品种的耐淹性生理差异
吕艳艳, 金岩, 付三雄, 戚存扣*
江苏省农业科学院经济作物研究所, 南京210014
摘要: 以甘蓝型油菜耐淹品系WR-4和不耐淹品系WR-24为材料, 研究淹水处理后两个品系的植株形态差异、植株可溶性
糖和脯氨酸的含量以及SOD活性和MDA含量的变化差异。结果表明, WR-4植株根系发育良好, 有支细根发生, 淹水6 d后,
WR-4的根长增加了9.4%, WR-24的根长没有明显增加; 淹水6 d+去水后3 d, WR-24的干重增长幅度明显低于WR-4; 淹水6
d+去水后1 d, WR-4叶片中可溶性糖的含量和脯氨酸的含量增加, 且高于WR-24; WR-4叶片中氧化产物MDA的含量去水后
逐渐下降, 而WR-24中MDA含量仍在增加, 相当于对照的2倍。通过组织化学染色, WR-4叶片中积累的过氧化氢(H2O2)和
超氧阴离子(O2·ˉ )较WR-24少, 抗氧化酶SOD的活性明显高于WR-24。上述结果表明: 淹水胁迫下, WR-4通过增加可溶性糖
及脯氨酸等渗透调节有机物的含量和及时启动抗氧化酶系统来恢复淹水伤害的能力显著高于不耐淹品系WR-24。
关键词: 甘蓝型油菜; 耐淹性; 生理差异; SOD; MDA
Physiological Differences of Different Waterlogging-Resistant Brassica napus L.
under Waterlogging Stress
LÜ Yan-Yan, JIN Yan, FU San-Xiong, QI Cun-Kou*
Institute of Industrial Crops, Jiangsu Academy of Agricultural Sciences, Nanjing 210014, China
Abstract: The morphological performance and physiological mechanism of Brassica napus under water stress
were studied by waterlogging (submergence) treatment of the seedlings of waterlogging-resistant line WR-4
and waterlogging-susceptible line WR-24. The contents of soluble sugar and proline, and activities of SOD and
MDA content in the seedlings were measured. Results showed that after submergence treatment, WR-4
performed a well-developed root system with more branch hair on the main root. The root length of WR-4
increased by 9.4% compared to control. The dry weight of WR-4 from 6 d submergence+3 d recovery treatment
increased more than WR-24. The soluble sugar and proline content in leaf of WR-4 from 6 d submergence+1 d
recovery treatment increased more than WR-24. Content of MDA in leaves of WR-4 decreased after 6 d
submergence+1 d recovery, while that in WR-24 was increasing. Through histochemical staining, WR-4
accumulated less hydrogen peroxide (H2O2) and superoxide anion (O2¯· ) in leaves comparing to WR-24. And its
SOD activity was significantly higher than WR-24. It indicated that WR-4, the waterlogging-resistant line
showed a strong ability to restore damage resulting from water stress by increasing the content of soluble sugar
and proline, and timely starting antioxidant enzyme system to defend against oxidative damage.
Key words: Brassica napus L.; waterlogging-resistant; physiological differences; SOD; MDA
油菜是重要的油料作物之一。我国油菜种植
面积和产量约占世界的30%。我国长江流域为冬
油菜主产区, 油菜种植面积占全国的70%左右。该
区在油菜生长期间、尤其在苗前期处于多雨季节,
加上特有的油菜-水稻的轮作方式, 导致油菜湿害
严重(曾建军和时明芝2004; 谭筱玉等2011)。湿害
是指土壤中的水分达到饱和形成的嫌气环境而导
致植物的生长发育受到的危害(Jackson和Colmer
2005)。湿害影响植物的代谢, 在湿害胁迫下, 植物
通过无氧呼吸产生的乙醇、乳酸等物质在植物体
内的大量积累对植物自身会造成毒害; 其次打破
植物内部活性氧(reactive oxygen species, ROS)产
生与清除的平衡, ROS的大量积累会对植物造成氧
化伤害; 第三, 湿害会影响植物体内源激素如乙烯
(ethylene, ET)、脱落酸(abscisic acid, ABA)、细胞
分裂素(cytokinin, CTK)的水平, 影响植物正常的生
长发育; 另外, 湿害还会使植物对营养物质的吸收
失调(Dennis等2000; Grichko和Glick 2001)。研究
植物生理学报960
表明, 甘蓝型油菜的耐湿性基因型差异较大, 存在
广泛的遗传变异, 大部分种质资源属于中等耐湿
类型, 只有少数为高耐湿类型(Ashraf和Mehmood
1990; 陈洁等2006)。因此选育耐湿性强的品种成
为油菜育种的重要研究内容。
国内关于甘蓝型油菜湿害和耐湿性等方面的
报导主要是对耐湿油菜品系的筛选和鉴定(陈洁等
2006; 张雪花等2011)。李云等(2012)建立了一种
油菜苗期耐淹性快速鉴定方法, 认为用幼苗全淹
处理6 d, 去水后7 d的相对死苗率可作为幼苗耐淹
性鉴定指标。张学昆等(2007)通过对耐湿和敏感
型甘蓝型油菜苗期指标的测定, 发现湿害胁迫下,
耐湿基因型能显著增加渗透调节有机物的含量,
同时能及时启动活性氧清除系统, 降低膜脂过氧
化能力, 增强植株抵御湿害带来的缺氧胁迫能力,
认为根系活力, 植株总干重和脯氨酸含量等3项指
标可以作为鉴定甘蓝型油菜幼苗的耐湿性指标。
李玲等(2012)研究发现, 外源施加ABA和油菜素内
酯(brassinolide, BR)可以缓解油菜幼苗受到的湿
害, 而机理也是通过调节渗透有机物的含量和提
高抗氧化酶的活性等途径来实现。另外, 研究发
现, 油菜的耐湿性还和种子的颜色有关, 种子颜色
呈黑色的耐湿性较强, 红色次之, 黄色种子耐湿性
较差(Zhang等2008)。
国外对不同作物耐湿相关基因以及启动子等
调控元件的研究较多(Mohanty等2005)。在逆境胁
迫下, 植物中的一类转录因子AP2/ERF家族在抵御
逆境胁迫时发挥着重要的作用, 目前关于ERF在湿
害胁迫中的功能研究也主要是集中于拟南芥、水
稻等几种模式生物(Nakano等2006; Cao等2006;
Zhuang等2011; Sharoni等2011), 如水稻中的Sub1A,
受湿害诱导表达, 过量表达Sub1A的水稻, 增强了
对湿害的耐性(Xu等2006; Fukao等2006; Fukao和
Bailey-Serres 2008)。而在油菜中关于ERF基因的
发掘还存在很大的空间。Zou等(2013)通过DGE技
术对淹水处理后的甘蓝型油菜进行转录组学分析,
在表达上调的191个基因中, 有18.6%属于转录调
节因子, 其中5个ERF家族基因受到上调, 但是, 在
湿害胁迫下, ERF调节的下游功能基因包括哪些,
ERF如何调节下游基因的表达, 还需要更为深入的
研究。
本文对已鉴定获得的耐淹和不耐淹甘蓝型油
菜品系幼苗淹水处理后形态、生理的指标变化及其
差异进行研究, 探索耐淹油菜的耐淹生理机制, 为
油菜相关耐淹基因的筛选和功能分析提供依据。
材料与方法
1 材料
甘蓝型油菜(Brassica napus L.)耐淹品系WR-4
和不耐淹品系WR-24由江苏省农业科学院经济作
物研究所油菜室提供。
2 方法
2.1 耐淹性鉴定试验材料的种植与淹水处理
将耐淹品系WR-4和不耐淹品系WR-24的种
子置于培养皿中湿润的滤纸上催芽(25 ℃, 36 h)。
种子露白后播种于盛有营养土(有机质含量≥50%,
氮、磷、钾含量≥2.5%)和蛭石(1:1)的穴盘中(长
51 cm, 宽24 cm, 高6 cm), 共(3穴×9排)27穴。每个
材料播种3穴(3个重复), 每穴播种25株。
子叶平展时定苗, 每穴留苗20株。定苗后, 将
穴盘置于周转箱(长56 cm, 宽40 cm, 高16 cm)中进
行淹水处理(全淹)。淹水深度: 水面距幼苗顶部2
cm; 淹水时间: 6 d。淹水满6 d后, 将穴盘从周转箱
中取出(去水), 在自然状态下进行恢复性生长, 于
去水后7 d统计各穴的存活率。存活率(%)=(存活
苗数/总苗数)×100%。
2.2 植株形态和生理指标观察试验材料的种植与
淹水处理
将WR-4和WR-24的种子置于培养皿中湿润
的滤纸上催芽(25 ℃, 36 h)。种子露白后播于盛有
蛭石的盆钵(高8 cm, 直径12 cm)中, 每盆6株。子
叶平展时, 用1/2 Hogland营养液浇灌, 以后每3 d浇
灌一次。二叶期定苗, 每盆留苗3株。
三叶期时, 分单钵置于水桶(高21 cm, 直径22
cm)中进行淹水处理。淹水深度: 水面距幼苗顶部
2 cm。共设4个处理: 对照(CK, 未进行淹水处理,
于淹水当天取样); 淹水6 d (T1); 淹水6 d+去水后1
d (T2); 淹水6 d+去水后3 d (T3)。每个处理设3个
重复。
2.3 根长和植株干重测定
将植株从钵土中取出, 尽量避免伤害到根系,
用自来水冲洗、洗净, 吸干表面水分, 测定根长,
并分别称量地上部和根系鲜重, 然后于80 ℃烘箱
中烘干48 h, 称量干重。
吕艳艳等: 不同耐淹油菜品种的耐淹性生理差异 961
2.4 可溶性糖、脯氨酸及丙二醛(malondialdehyde,
MDA)的测定
可溶性糖含量的测定采取蒽酮比色法; 脯氨
酸含量的测定采取磺基水杨酸法; MDA含量按
Heath和Packer (1968)方法测定。
2.5 蛋白提取及含量测定
将新鲜叶片或根系洗净, 吸干表面水分, 分别
称取0.2 g, 于预冷的研钵中加入50 mmol·L-1预冷的
磷酸缓冲液(PBS)研磨, 4 ℃, 12 000×g离心20 min,
上清液即为酶提取液, 蛋白含量测定采取Bradford
(1976)方法。
2.6 酶活性测定
超氧化物歧化酶(superoxide, SOD)活性的测
定采取氮蓝四唑光化还原法, 参照Giannopolitis和
Ries (1977)文献进行测定。以氮蓝四唑光化还原
反应50%抑制率所需的酶量作为一个酶活力单位
(U)。3 mL反应体系中含50 mmol·L-1磷酸缓冲液
(pH 7.8)、13 mmol·L-1甲硫氨酸(methionine,
MET)、75 µmol·L-1氯化硝基四氮唑兰(nitroblue
terazdium, NBT)、2 µmol·L-1核黄素、0.1 mmol·L-1
乙二胺四乙酸(ethylene diamine tetraacetic acid,
EDTA)、适量待测酶液。此反应混合液光照15
min (光强100 µmol·m-2·s-1)后测560 nm处吸光值。
过氧化氢酶(catalase, CAT)活性的测定参照
Aebi (1984)的方法进行。3 mL反应体系中含50
mmol·L-1磷酸缓冲液(pH 7.0)、适量待测酶液以及
10 mmol·L-1 H2O2, 迅速测定3 min内A240的连续变化
值。消光系数为39.4 µmol·L-1·cm-1。
2.7 O2¯· 和H2O2的组织化学染色
处理后的植株叶片洗净后在3,3-二氨基联苯
胺(3,3-diaminobenzidine, DAB)染液(0.1%, pH 5.8)
中抽真空10 min, 然后置于室温、黑暗环境中静置
24 h, 期间经常振荡, 叶片要分散开, 不要压在一起,
至褐色斑点出现, 用蒸馏水冲洗叶片, 加入适量
95%的乙醇在80 ℃水浴中进行脱色, 至叶片不含
叶绿素, 脱色后观察。
同样处理的植株在氯化硝基四氮唑兰(nitroblue
terazdium, NBT)染液(0.1%)中抽真空10 min, 置于
室温、光照下反应, 直至出现紫色的斑点, 加入适
量95%的乙醇在80 ℃水浴中进行脱色, 至叶片不
含叶绿素, 脱色后观察。
2.8 数据分析
采用SPSS13.0软件统计差异显著性。
实验结果
1 子叶平展期淹水6 d和去水后7 d WR-4和WR-24
的植株形态和死苗率
淹水6 d处理且在去水后7 d, WR-24的多数植
株干枯萎蔫, 仅有少数植株新叶鲜绿; 而WR-4多
数植株能维持生长, 虽然子叶枯萎, 但是真叶仍正
常生长(图1)。统计结果(图2)显示, WR-4的存活率
为75%, 而WR-24存活率仅为17.5%。表明WR-4幼
苗期的耐淹能力显著高于WR-24。
图2 WR-4和WR-24在淹水6 d和去水后7 d的存活率
Fig.2 Survival rate of WR-4 and WR-24 after 6 d
submergence and 7 d recovery
不同品系柱形上有不同小写字母表示差异显著(P<0.05)。
图1 WR-4和WR-24淹水6 d和去水后7 d的植株形态
Fig.1 Morphology of WR-4 and WR-24 after 6 d
submergence and 7 d recovery
植物生理学报962
2 三叶期淹水处理后WR-4和WR-24的植株形态
以及干重和根长
对三叶期WR-4进行T3处理后, 植株形态上无
明显的伤害, 叶片鲜绿色, 根系较为发达, 根系较
粗, 且有较多支细根发生; 而WR-24的叶片萎蔫、
叶片出现部分缺绿呈透明状, 根系纤细且呈暗褐
色(图3-A、B)。表明淹水胁迫下WR-4和WR-24地
上部和根系均受到了不同程度的伤害, 但对WR-4
的伤害远轻于WR-24。另外, 在T1处理后, WR-4地
上部和根系的干重比对照有所增加, 虽然增加的
幅度较小; 而WR-24地上部和根系的干重在T1处
理后几乎没有增加 , 说明淹水6 d严重抑制了
WR-24的生长。在T2处理后, 两个油菜品系地上
部和根系的干重继续增加 , 尤其在T3处理后 ,
WR-4地上部和根系的干重相对于对照分别增加了
135%和84.6%, 而WR-24的干重仅增加了31.9%和
50%, 增长幅度明显低于WR-4, 两者差异显著(图
4-A、B)。表明WR-4在淹水胁迫解除后, 恢复生
长较快, 耐淹性强。同样, 在T1处理后, WR-4的根
长相对于对照增加了9.4%, 而WR-24的根长几乎
没有增加, 表明WR-24在淹水胁迫下, 根系生长受
到了明显的抑制。T2和T3处理后, WR-4和WR-24
的根长均没有增加(图4-C), 但是从形态来看(图
3-A), T3处理后WR-4发生较多的支细根, 且根系变
粗, 而WR-24根系纤细变黑, 可能WR-4通过增加支
图3 淹水6 d和去水后3 d WR-4和WR-24的植株形态
Fig.3 Morphology of WR-4 and WR-24 after 6 d
submergence and 3 d recovery
A: 正常条件(CK)及淹水6 d+去水后3 d (T3)处理下WR-4和
WR-24的地上部(上排)和根系(下排)形态; B: T3处理下WR-4和
WR-24的叶片形态。
图4 淹水处理下WR-4和WR-24的植株干重和根长
Fig.4 Dry weight and root length of WR-4 and WR-24 after
submergence treatment
CK: 未进行淹水处理; T1: 淹水6 d; T2: 淹水6 d+去水后1 d;
T3: 淹水6 d+去水后3 d。不同品系和不同处理的柱形上有不同小
写字母表示差异显著(P<0.05), 下图同。
吕艳艳等: 不同耐淹油菜品种的耐淹性生理差异 963
细根和根毛的发生来增强其耐淹性, 而WR-24对淹
水的耐性相对较弱。
3 三叶期淹水处理后WR-4和WR-24中可溶性糖
和脯氨酸含量的变化
在T1处理后, WR-4和WR-24的叶片和根系中
可溶性糖的含量与对照相比均没有明显的变化。
可能是由于淹水期间, 植株光合能力减弱, 产生有
机物的速度降低, 而植株在受到淹水胁迫时, 代谢
缓慢, 因此, 可溶性糖的含量变化不大。T2处理后,
两者叶片和根系中可溶性糖的含量均明显上升,
因为植株在淹水胁迫解除后, 需要恢复正常生长,
因此, 光合作用加强, 产生的可溶性糖含量增加,
其中, WR-4叶片中的可溶性糖的含量[0.079 mg·g-1
(DW)]是WR-24 [0.043 mg·g-1 (DW)]的2倍。表明
解除淹水胁迫后WR-4比WR-24能更有效地恢复生
长。T3处理后, WR-4叶片中糖含量开始下降, 而
WR-24叶片中糖含量仍有升高的趋势; WR-4和
WR-24根系中糖含量均呈增加趋势, 这说明淹水胁
迫对根系的伤害较大(图5), 此结果进一步表明解
除淹水胁迫后WR-4通过增加糖含量来恢复生长的
能力强于WR-24。两个品系叶片中脯氨酸含量在
T1处理后显著上升, 其中WR-4叶片中脯氨酸的含
量达0.22 mg·g-1 (FW), 约是对照的6倍, 而WR-24中
脯氨酸含量仅为0.091 mg·g-1 (FW), 仅为对照的2倍
(图6), 随着淹水胁迫解除(去水)后时间的延长,
WR-4叶片中脯氨酸含量逐渐降低, 而WR-24脯氨
酸含量依旧维持较高的水平, 两个品系根系中脯
氨酸的含量与叶片中的趋势相同。此结果同样说
明在受到淹水胁迫时WR-4的耐淹性和淹水胁迫解
除(去水)后通过增加脯氨酸的含量启动修复伤害
的能力均高于WR-24。
4 三叶期淹水处理后WR-4和WR-24中MDA的含
量变化
MDA是植物细胞膜脂受到氧化伤害的产物。
WR-4和WR-24三叶幼苗期淹水处理后植株体内
MDA的含量发生变化。T1处理后, 两个品系叶片
中MDA的含量均有增加。WR-4叶片中MDA的含
量是对照的1.4倍, WR-24叶片中MDA的含量为对
照的1.5倍, 两者之间差异不显著。T2处理后, 两个
品系叶片中MDA的含量差异显著。WR-4叶片中
MDA含量开始下降 , 下降幅度达10.9 μmol·g -1
(FW), 接近对照水平, 而WR-24中MDA含量仍在增
加, 增加幅度达18.1 μmol·g-1 (FW), 相当于对照的2
倍。T3处理后, WR-24叶片中的MDA含量仍维持
较高的水平, 而WR-4维持在较低水平(图7-A)。T1
处理后, 两个品系的根系MDA的含量均有所增加,
T2处理后, WR-4根系中的MDA含量有所降低, 而
图5 淹水处理后WR-4和WR-24植株中的可溶性糖含量
Fig.5 Soluble sugar content of WR-4 and WR-24 after
submergence treatment
图6 淹水处理后WR-4和WR-24植株中的脯氨酸含量
Fig.6 Proline content of WR-4 and WR-24 after submergence
treatment
植物生理学报964
WR-24 MDA含量没有明显变化, T3处理后, WR-4
根系中的MDA含量维持低水平, 而WR-24根系中
的MDA含量维持在一个相对较高水平(图7-B)。
上述结果表明, 淹水处理下WR-24受到的氧化伤害
远远高于WR-4。
5 三叶期淹水处理后WR-4和WR-24植株叶片中
O2¯· 和H2O2的积累
对三叶期淹水处理幼苗应用NBT对植株体内
的O2¯·进行组织化学染色(图8-A), 结果显示T1处理
后, WR-4和WR-24叶片内紫色斑点相对于对照都
有所增加; T2和T3两个处理后, WR-4和WR-24叶
片内紫色斑点继续增加, 明显多于对照水平, 同时,
WR-24整个叶片均被染成紫色, 而WR-4的紫色斑
点未布满整个叶片, 表明WR-4叶片中氧化产物O2¯·
产生的量明显少于WR-24。应用DAB对植株体内
的H2O2进行组织化学染色结果(图8-B)显示, T1处
理后, WR-4和WR-24叶片中褐色相对于对照显著
增加, 且WR-24染色明显深于WR-4; T2处理后, 两
者叶片中均积累较多的H2O2, 说明两者均受到较
大的氧化伤害; T3处理后, 两者H2O2的积累开始减
少, 染色变浅, 但是两者之间没有显著的差异, 可
能是因为H2O2在植株体内不稳定, 容易被抗氧化
物所分解, 因此, 去水后3 d两者均能恢复正常生
长, 所以差异不显著。通过染色结果, 说明淹水胁
迫下, WR-24对O2¯·和H2O2的积累相对于WR-4较多,
受到淹水带来的氧化伤害明显高于WR-4, 而WR-4
对于淹水带来的氧化伤害抗性更强。
6 三叶期淹水处理后WR-4和WR-24植株抗氧化
酶的活性差异
三叶期淹水处理条件下, T1处理后WR-4和
WR-24叶片中SOD的活性都有所增强, WR-4比对
照增加了25%, 而WR-24比对照增加了50%。淹水
逆境下, 植株受到氧化伤害越大, 需要启动的抗氧
化酶活性越高, 可知, 淹水逆境下WR-4受到的氧化
图8 O2¯·
(A)和H2O2 (B)的NBT和DAB组织化学染色
Fig.8 Histochemical localization of O2¯·
(A) and H2O2 (B) by NBT and DAB staining, respectively
图7 淹水处理后WR-4和WR-24植株中的MDA含量
Fig.7 MDA content of WR-4 and WR-24 after submergence treatment
吕艳艳等: 不同耐淹油菜品种的耐淹性生理差异 965
伤害低于WR-24。T2处理后, WR-4中SOD的活性
降到对照水平, 为30.2 U·mg-1 (蛋白), 而WR-24中
SOD的活性虽然有所下降, 但依然高于对照。T3
处理后, 两者叶片中SOD活性分别恢复到对照水
平。T1和T2处理后, WR-4根系中SOD的活性分别
为35.28和33.67 U·mg-1 (蛋白), 比对照增强, 而
WR-24根系中SOD的活性较低, 分别为22.6和18.9
U·mg-1 (蛋白), 与对照相比呈下降趋势, 其中T2、
T3处理后, SOD活性比对照明显降低。表明淹水
胁迫下根系首先受到伤害, 而WR-24根系受到的伤
害程度明显大于WR-4, 从而使根系活力下降, SOD
活性也随之降低, 而WR-4所受到的相对较小的伤
害可以通过增强抗氧化酶的活性来缓解(图9)。
CAT可以将H2O2分解为水和氧气, 而T1处理后, 氧
化伤害直接产生的H2O2以及由SOD催化O2¯·产生的
H2O2使植株体内H2O2含量骤增, 消耗较多的抗氧
化酶, 使植株体内蛋白酶浓度短时间降低, 因此,
WR-4和WR-24叶片中CAT的活性都有所下降。T2
处理后, 两者的CAT活性随之升高, 但是两者之间
没有显著性差异, T3处理后, WR-4中CAT的活性稳
定, 而WR-24中CAT活性开始下降, 且低于WR-4。
在根系中, 各个处理下, WR-4和WR-24中CAT活性
都呈不断下降趋势, 而且两者之间没有差异(图10),
原因可能是由于根系是淹水胁迫的首要伤害器官,
受到的伤害较大, 因此根系活力降低而导致CAT活
性降低。上述结果表明, 在受到相对较轻的伤害
时, 不耐淹品系需要启动更多的酶活性来参与抗
氧化防御, 而耐性品系受到的伤害相对较轻, 因此
无需启动更多的抗氧化酶系统; 而在受到相对较
大的伤害时, 耐性品系的抗氧化防御能力则明显
高于不耐品系。
讨  论
目前国内油菜耐湿性研究主要集中在湿害对
油菜的生理生化过程、产量和品质的影响以及耐
湿油菜品种的鉴定和筛选等方面(张学昆等2007;
曾建军和时明芝2004; 谭筱玉等2011), 其中有些研
究直接通过对种子淹水或缺氧处理来进行耐湿性
鉴定(程勇等2010; 范其新等2005), 有些则通过对
幼苗期进行缺氧处理来筛选耐湿材料(张学昆等
2007; 张雪花等2011), 本实验室前期建立了油菜苗
期耐淹性快速筛选的方法 , 筛选出了耐淹品系
WR-4和不耐淹品系WR-24 (李云等2012), 在本研
究中, 通过对三叶期幼苗进行淹水处理进一步分
析两者的耐淹性差异。
首先对子叶平展期淹水6 d和去水后7 d的存
活率进行统计, 结果表明WR-4的存活率为75%, 远
远高于WR-24 17.5%的存活率, 说明了WR-4在子
图9 淹水处理后WR-4和WR-24植株中的SOD活性
Fig.9 Activity of SOD of WR-4 and WR-24 after
submergence treatment
图10 淹水处理后WR-4和WR-24植株中的CAT活性
Fig.10 Activity of CAT of WR-4 and WR-24 after
submergence treatment
植物生理学报966
叶期表现出耐淹性较强的特点。之后在两个油菜
品系三叶幼苗期进行淹水处理, 植株形态上的变
化可以反映出植物受到淹水伤害的程度(张学昆等
2007)。通过形态上观察, WR-4在形态上没有受到
明显的伤害, 其叶片鲜绿色、根系较为发达、且
有较多不定根的发生等特点, 相对于WR-24出现老
叶萎蔫凋落、新叶部分出现透明状、根系纤细且
呈暗褐色等表观现象, 说明WR-24在淹水胁迫下,
地上部和根系均受到了较为严重的伤害, 而WR-4
受到的伤害较轻。
MDA是由于植物衰老或在逆境条件下受到
伤害后其组织或器官膜脂质发生过氧化反应而产
生的。MDA的含量与植物逆境伤害有密切关系,
一般可作为植物受到氧化伤害的指标(Marnett 2002;
Choudhary等2007)。在淹水6 d时, WR-24叶片和根
系中MDA的含量随着淹水以及去水时间的延续而
逐渐增加, 且明显高于耐淹油菜。说明不耐淹油
菜在淹水处理下, 受到的膜脂过氧化伤害大于耐
淹油菜, 而本研究中两者可溶性糖和脯氨酸的含
量也同时说明了WR-4更能通过调节植株相应生理
过程来增强其耐淹性。逆境条件下, 可溶性糖一
方面可以通过调节渗透压来增强植物的耐逆性,
另一方面, 可以为植物提供能量。Qi等(2012)对两
种生态型栎树的根系进行缺氧处理后, 通过DGE
(digital gene expression)分析, 发现耐湿型栎树糖酵
解中的β-淀粉酶、丙酮酸激酶以及乙醇发酵途径
中的乙醇脱氢酶等相关酶基因的表达上调, β-淀粉
酶可以将淀粉转化为可溶性碳水化合物, 乙醇脱
氢酶进一步将糖酵解产物转化为乙醇, 产生ATP。
而植物在受到淹水带来的缺氧胁迫时, 有氧呼吸
被抑制, 糖酵解及乙醇发酵成为植物产生能量的
主要途径, 在相关酶基因表达上调时, 植株体内可
溶性糖的含量升高。而脯氨酸亲水性强, 能稳定
细胞内原生质胶体的代谢, 防止细胞脱水, 因此,
可溶性糖和脯氨酸的含量也可以作为植物耐逆性
的生理指标(Sánchez等1998), 而本研究中, 淹水作
为一种逆境胁迫, 同样使耐淹油菜可溶性糖和脯
氨酸含量增加, 以增强抗逆能力, 其中WR-4可溶性
糖和叶片中脯氨酸的含量相对于对照显著增加,
且明显高于WR-24。因此, 本研究中WR-4相对于
WR-24, 植株受到的淹水伤害较轻, 这与耐淹油菜
可以及时通过调节增加可溶性糖和脯氨酸的含量
等生理过程来参与对湿害的防御有着密切的关系,
而WR-24的抗逆能力则较弱。相关研究也分析了
不同基因型植株在生理上表现出的不同耐湿能力
(张雪花等2011; 张学昆等2007)。
湿害作为一种逆境胁迫, 同样会打破油菜活
性氧产生与清除的平衡, 使植物体内积累大量的
活性氧。通过染色发现, 淹水处理后, WR-4叶片中
积累的O2¯·和H2O2明显低于WR-24, 说明WR-4受到
的氧化伤害较WR-24轻, 而抗氧化酶系统在清除活
性氧的过程中起着重要的作用(Hossain等2009;
Kumutha等2009)。本研究中, 在淹水6 d, 去水后1
d和去水后3 d时, WR-4中SOD的活性明显高于
WR-24。SOD是植物抗氧化防护的第一道防线,
SOD可以将超氧阴离子自由基转化为过氧化氢和
氧气, 结果表明WR-4启动SOD活性的能力大于
WR-24。而CAT可以将过氧化氢分解为水和氧气,
但是CAT的活性在两者之间没有明显的差异, 因为
不同品系植株在受到胁迫后的防御机制有所不同,
除了抗氧化酶系统, 像非酶系统如谷胱甘肽、抗坏
血酸等也在抗氧化防御过程中起着一定的作用,
WR-4可能通过其他途径将氧化产物过氧化氢分解。
另外, 植物在抗逆过程中的相关生理生化过
程同时也是受到某些调控因子的调节作用, 相关
研究通过DGE技术(Qi等2012; Provost等2012; Zou
等2013)和双向电泳技术(Alam等2010)对黄瓜、不
同生态型栎树、油菜、大豆等进行分析, 发现湿
害等逆境胁迫下, 转录因子相关基因表达上调, 可
能转录因子通过进一步调节下游基因的表达来抵
御逆境胁迫带来的伤害。如烟草过量表达JERF3
后, 渗透调节有机物、碳代谢相关酶、活性氧的
产生与清除过程中的相关基因表达都有所上调,
共同参与到对逆境胁迫的防御过程中(Wu等2008)。
因此, 本研究的后续研究拟以耐淹油菜WR-4为材
料, 筛选耐淹相关功能基因, 希望能更详细的探明
耐淹油菜的耐湿机制。
参考文献
陈洁, 张学昆, 谌利, 晁国红, 李加纳(2006). 甘蓝型油菜耐湿种质资
源的快速筛选. 中国油料作物学报, 28 (2): 138~143
程勇, 顾敏, 丛野, 邹崇顺, 张学昆, 王汉中(2010). 淹水胁迫条件下
甘蓝型油菜发芽期耐湿性的配合力分析. 中国农业科学, 43
(7): 1339~1345
范其新, 张学昆, 谌利, 李加纳(2005). 缺氧对甘蓝型黄籽与黑籽油
吕艳艳等: 不同耐淹油菜品种的耐淹性生理差异 967
菜发芽的影响. 中国油料作物学报, 27 (3): 84~87
李玲, 李俊, 张春雷, 张树杰, 马霓, 李光明(2012). 外源ABA和BR
在提高油菜幼苗耐渍性中的作用. 中国油料作物学报, 34 (5):
489~495
李云, 付三雄, 戚存扣(2012). 油菜苗期耐淹性快速筛选方法的建立
及验证. 中国油料作物学报, 34 (3): 256~261
谭筱玉, 程勇, 郑普英, 张学昆, 周广生(2011). 油菜湿害及耐湿性机
理研究进展. 中国油料作物学报, 33 (3): 306~310
曾建军, 时明芝(2004). 植物涝害生理研究进展. 聊城大学学报(自
然科学版), 17 (3): 54~56
张学昆, 范其新, 陈洁, 李加纳, 王汉中(2007). 不同耐湿基因型甘
蓝型油菜苗期对缺氧胁迫的生理差异响应. 中国农业科学, 40
(3): 485~491
张雪花, 李浩杰, 张锦芳, 蒲晓斌, 蒋俊, 牛应泽, 蒋梁材(2011). 甘蓝
型油菜耐湿性初步评价和主成分分析. 中国油料作物学报, 33
(2): 98~103
Alam I, Lee DG, Kim KH, Park CH, Sharmin SA, Lee H, Oh KW,
Yun BW, Lee BH (2010). Proteome analysis of soybean roots
under waterlogging stress at an early vegetative stage. J Biosci,
35 (1): 49~62
Ashraf M, Mehmood S (1990). Effects of waterlogging on growth and
some physiological parameters of four Brassica species. Plant
Soil, 121: 203~209
Aebi H (1984). Catalase in vitro. Method Enzymol, 105: 121~126
Bradford MM (1976). A rapid and sensitive method for the
quantitation of microgram quantities of protein utilizing the
principle of protein-dye binding. Anal Biochem, 72: 248~254
Cao YF, Song FM, Goodman RM, Zheng Z (2006). Molecular
characterization of four rice genes encoding ethylene-responsive
transcriptional factors and their expressions in response to biotic
and abiotic stress. J Plant Physiol, 163: 1167~1178
Choudhary M, Jetley UK, Khan MA, Zutshi S, Fatma T (2007).
Effect of heavy metal stress on proline, malondialdehyde, and
superoxide dismutase activity in the cyanobacterium Spirulina
platensis-S5. Ecotox Environ Safe, 66 (2): 204~209
Dennis ES, Dolferus R, Ellis M, Rahman M, Wu Y, Hoeren FU,
Grover A, Ismond KP, Good AG, Peacock WJ (2000). Molecular
strategies for improving waterlogging tolerance in plants. J Exp
Bot, 51 (342): 89~97
Fukao T, Xu K, Ronald PC, Bailey-Serres J (2006). A variable cluster
of ethylene response factor-like genes regulates metabolic and
developmental acclimation responses to submergence in rice.
Plant Cell, 18: 2021~2034
Fukao T, Bailey-Serres J (2008). Submergence tolerance conferred by
Sub1A is mediated by SLR1 and SLRL1 restriction of gibberellin
responses in rice. Proc Nat Acad Sci USA, 105: 16814~16819
Giannopolitis CN, Ries SK (1977). Superoxide dismutases. I.
Occurrence in higher plants. Plant Physiol, 59: 309~314
Grichko VP, Glick BR (2001). Ethylene and flooding stress in plants.
Plant Physiol Biochem, 39: 1~9
Heath RL, Packer L (1968). Photoperoxidation in isolated
chloroplasts. I. Kinetics and stoichiometry of fatty acid
peroxidation. Arch Biochem Biophys, 125: 189~198
Hossain Z, López-Climent MF, Arbona V, Pérez-Clemente RM,
Gómez-Cadenas A (2009). Modulation of the antioxidant system
in citrus under waterlogging and subsequent drainage. J Plant
Physiol, 166 (13): 1391~1404
Jackson MB, Colmer TD (2005). Response and adaption by plants to
flooding stress. Ann Bot, 96: 501~505
Kumutha D, Ezhilmathi K, Sairam RK, Srivastava GC, Deshmukh
PS, Meena RC (2009). Waterlogging induced oxidative stress
and antioxidant activity in pigeonpea genotypes. Biol Plant, 53
(1): 75~84
Marnett LJ (2002). Oxy radicals, lipid peroxidation and DNA damage.
Toxicology, 181–182: 219~222
Mohanty B, Krishnan SPT, Swarup S, Bajic VB (2005). Detection
and preliminary analysis of motifs in promoters of anaerobically
induced genes of different plant species. Ann Bot, 96: 669~681
Nakano T, Suzuki K, Fujimura T, Shinshi H (2006). Genome-wide
analysis of the ERF gene family in Arabidopsis and rice. Plant
Physiol, 140: 411~432
Provost GL, Sulmon C, Frigerio JM, Bodénès C, Kremer A, Plomion
C (2012). Role of waterlogging-responsive genes in shaping
interspecific differentiation between two sympatric oak species.
Tree Physiol, 32: 119~134
Qi XH, Xu XW, Lin XJ, Zhang WJ, Chen XH (2012). Identification of
differentially expressed genes in cucumber (Cucumis sativus L.)
root under waterlogging stress by digital gene expression profile.
Genomics, 99: 160~168
Sánchez FJ, Manzanares M, de Andres EF, Tenorio JL, Ayerbe L
(1998). Turgor maintenance, osmotic adjustment and soluble
sugar and proline accumulation in 49 pea cultivars in response to
water stress. Field Crops Res, 59 (3): 225~235
Sharoni AM, Nuruzzaman M, Satoh K, Shimizu T, Kondoh H, Sasaya T,
Choi I. Omura T, Kikuchi S (2011). Gene structures, classification
and expression models of the AP2/EREBP transcription factor
family in rice. Plant Cell Physiol, 52 (2): 344~360
Wu LJ, Zhang ZJ, Zhang HW, Wang XC, Huang RF (2008).
Transcriptional modulation of ethylene response factor protein
JERF3 in the oxidative stress response enhances tolerance of
tobacco seedlings to salt, drought, and freezing. Plant Physiol,
148: 1953~1963
Xu K, Xu X, Fukao T, Canlas P, Mashirang-Rodriguez R, Heuer S,
Ismail AM, Bailey-Serres J, Ronald PC, Mackill DJ (2006).
Sub1A is an ethylene-response-factor-like gene that confers
submergence tolerance to rice. Nature, 442: 705~708
Zhang XK, Chen J, Chen L, Wang HZ, Li JN (2008). Imbibition
behavior and flooding tolerance of rapeseed seed (Brassica
napus L.) with different testa color. Genet Resour Crop Evol, 55:
1175~1184
Zhuang J, Chen JM, Yao QH, Xiong F, Sun CC, Zhou XR, Zhang J,
Xiong AS (2011). Discovery and expression profile analysis of
AP2/ERF family genes from Triticum aestivum. Mol Biol Rep,
38: 745~753
Zou XL, Tan XY, Hu CW, Zeng L, Lu GY, Fu GP, Cheng Y, Zhang
XK (2013). The transcriptome of Brassica napus L. roots
under waterlogging at the seedling stage. Int J Mol Sci, 14:
2637~2651