全 文 ：植物保护学报 Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ Ｐｌａｎｔ Ｐｒｏｔｅｃｔｉｏｎ， ２０１５， ４２（６）： １０３６ － １０４３ ＤＯＩ： １０􀆰 １３８０２ ／ ｊ． ｃｎｋｉ． ｚｗｂｈｘｂ． ２０１５􀆰 ０６􀆰 ０２７
基金项目：国家现代农业（玉米）产业技术体系（ＣＡＲＳ⁃０２），河北省科技支撑计划项目（１３２２６５０６Ｄ）
∗通讯作者（Ａｕｔｈｏｒｓ ｆｏｒ ｃｏｒｒｅｓｐｏｎｄｅｎｃｅ）， Ｅ⁃ｍａｉｌ： ｌｉｕｙｉｎｇｃｈａｏ＠ ｈｅｂａｕ． ｅｄｕ． ｃｎ， ｄｏｎｇｊｉｎｇａｏ＠ １２６． ｃｏｍ
收稿日期： ２０１５ － ０７ － １７
杀菌剂对玉米穗腐病菌的毒力及毒素产生的影响
郭聪聪１，２ 　 付　 萌１，２ 　 庞民好１ 　 刘颖超１，２∗　 董金皋２∗
（１．河北农业大学植物保护学院， 保定 ０７１００１； ２．河北农业大学， 河北省植物生理与分子病理学重点实验室， 保定 ０７１００１）
摘要： 为筛选防治玉米穗腐病同时减少病原菌毒素积累的化学药剂，采用菌丝生长速率法、涂布平
板法分别测定了 ４ 种药剂多菌灵、百菌清、吡唑醚菌酯和氰烯菌酯对玉米穗腐病的 ３ 种主要致病镰
孢菌拟轮生镰孢菌、层出镰孢菌和禾谷镰孢菌菌丝生长和孢子萌发的影响，并采用高效液相色谱法
测定了 ４ 种药剂对其毒素积累的影响。 结果表明：层出镰孢菌菌株 １２７⁃１ 和禾谷镰孢菌菌株 １２５⁃３
的最佳产毒时间为第 １０ 天。 供试 ４ 种药剂对 ３ 种镰孢菌菌丝生长的 ＥＣ５０值范围为 ０􀆰 １８ ～ ５􀆰 ７１
μｇ ／ ｍＬ，对孢子萌发的 ＥＣ５０值范围为 ０􀆰 ０２ ～ ８􀆰 １４ μｇ ／ ｍＬ，均表现出一定的抑制作用。 但对 ３ 种镰
孢菌产伏马毒素、玉米赤霉烯酮和脱氧雪腐镰孢菌烯醇的影响不尽相同，吡唑醚菌酯浓度在 １ ～
５００ μｇ ／ ｍＬ时能够抑制拟轮生镰孢菌和层出镰孢菌产生伏马毒素，氰烯菌酯能够在 ０􀆰 ０５ ～ ０􀆰 ８ μｇ ／
ｍＬ浓度范围内显著抑制禾谷镰孢菌产生玉米赤霉烯酮，当多菌灵浓度为 ０􀆰 ０５ ～ ０􀆰 ５ μｇ ／ ｍＬ时，几
乎可以完全抑制禾谷镰孢菌产生脱氧雪腐镰孢菌烯醇。
关键词： 镰孢菌； 杀菌剂； 菌丝生长； 孢子萌发； 真菌毒素
Ｅｆｆｅｃｔｓ ｏｆ ｆｕｎｇｉｃｉｄｅｓ ｏｎ ｇｒｏｗｔｈ ａｎｄ ｍｙｃｏｔｏｘｉｎｓ ｏｆ Ｆｕｓａｒｉｕｍ ｓｐｅｃｉｅｓ
ｃａｕｓｉｎｇ ｍａｉｚｅ ｅａｒ ｒｏｔ
Ｇｕｏ Ｃｏｎｇｃｏｎｇ１，２ 　 Ｆｕ Ｍｅｎｇ１，２ 　 Ｐａｎｇ Ｍｉｎｈａｏ１ 　 Ｌｉｕ Ｙｉｎｇｃｈａｏ１，２∗ 　 Ｄｏｎｇ Ｊｉｎｇａｏ２∗
（１． Ｃｏｌｌｅｇｅ ｏｆ Ｐｌａｎｔ Ｐｒｏｔｅｃｔｉｏｎ， Ａｇｒｉｃｕｌｔｕｒａｌ Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｙ ｏｆ Ｈｅｂｅｉ， Ｂａｏｄｉｎｇ ０７１００１， Ｈｅｂｅｉ Ｐｒｏｖｉｎｃｅ， Ｃｈｉｎａ；
２． Ｔｈｅ Ｋｅｙ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ ｏｆ Ｈｅｂｅｉ Ｐｒｏｖｉｎｃｅ ｆｏｒ Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｐｌａｎｔ⁃Ｍｉｃｒｏｂｅ Ｉｎｔｅｒａｃｔｉｏｎ， Ａｇｒｉｃｕｌｔｕｒａｌ Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｙ ｏｆ Ｈｅｂｅｉ，
Ｂａｏｄｉｎｇ ０７１００１， Ｈｅｂｅｉ Ｐｒｏｖｉｎｃｅ， Ｃｈｉｎａ）
Ａｂｓｔｒａｃｔ： Ｉｎ ｏｒｄｅｒ ｔｏ ｓｃｒｅｅｎ ｆｕｎｇｉｃｉｄｅｓ ｔｏ ｃｏｎｔｒｏｌ ｍａｉｚｅ ｅａｒ ｒｏｔ ａｎｄ ｒｅｄｕｃｅ ｍｙｃｏｔｏｘｉｎ ｃｏｎｔａｍｉｎａｔｉｏｎ ｏｆ
ｍａｉｚｅ ｋｅｒｎｅｌｓ， ｔｈｅ ｅｆｆｅｃｔｓ ｏｆ ｆｏｕｒ ｋｉｎｄｓ ｏｆ ｆｕｎｇｉｃｉｄｅｓ， ｃａｒｂｅｎｄａｚｉｍ， ｃｈｌｏｒｏｔｈａｌｏｎｉｌ， ｐｙｒａｃｌｏｓｔｒｏｂｉｎ ａｎｄ
ＪＳ３９９⁃１９， ｏｎ ｍｙｃｅｌｉａｌ ｇｒｏｗｔｈ ａｎｄ ｃｏｎｉｄｉａｌ ｇｅｒｍｉｎａｔｉｏｎ ｏｆ ｔｈｒｅｅ ｍａｊｏｒ ｃａｕｓａｌ ａｇｅｎｔｓ ｏｆ ｍａｉｚｅ ｅａｒ ｒｏｔ，
ｉｎｃｌｕｄｉｎｇ Ｆｕｓａｒｉｕｍ ｖｅｒｔｉｃｉｌｌｉｏｉｄｅｓ， Ｆ． ｐｒｏｌｉｆｅｒａｔｕｍ， ａｎｄ Ｆ． ｇｒａｍｉｎｅａｒｕｍ， ｗｅｒｅ ｄｅｔｅｒｍｉｎｅｄ ｕｓｉｎｇ
ｍｙｃｅｌｉａｌ ｇｒｏｗｔｈ ｍｅｔｈｏｄ ａｎｄ ｓｐｒｅａｄ ｐｌａｔｅ ｍｅｔｈｏｄ， ｒｅｓｐｅｃｔｉｖｅｌｙ． Ａｎｄ ｔｈｅ ｅｆｆｅｃｔｓ ｏｆ ｔｈｅ ｆｏｕｒ ｆｕｎｇｉｃｉｄｅｓ ｏｎ
ｔｈｒｅｅ Ｆｕｓａｒｉｕｍ ｓｐｅｃｉｅｓ ｓｔｒａｉｎｓ ｗｅｒｅ ｄｅｔｅｒｍｉｎｅｄ ｕｓｉｎｇ ｈｉｇｈ⁃ｐｅｒｆｏｒｍａｎｃｅ ｌｉｑｕｉｄ ｃｈｒｏｍａｔｏｇｒａｐｈｙ． Ｔｈｅ
ａｃｃｕｍｕｌａｔｉｏｎ ｏｆ ｔｏｘｉｎｓ ｐｒｏｄｕｃｅｄ ｂｙ Ｆ． ｐｒｏｌｉｆｅｒａｔｕｍ １２７⁃１ ｓｔｒａｉｎ ａｎｄ Ｆ． ｇｒａｍｉｎｅａｒｕｍ １２５⁃３ ｓｔｒａｉｎ ｗａｓ
ｔｈｅ ｈｉｇｈｅｓｔ ｉｎ ｔｈｅ ｔｅｎｔｈ ｄａｙ． Ａｌｌ ｔｈｅ ｔｈｒｅｅ Ｆｕｓａｒｉｕｍ ｓｐｅｃｉｅｓ ｃｏｕｌｄ ｂｅ ｃｏｎｔｒｏｌｌｅｄ ｂｙ ｔｈｅ ｆｕｎｇｉｃｉｄｅｓ ａｎｄ ｔｈｅ
ｒａｎｇｅｓ ｏｆ ＥＣ５０ ｆｏｒ ｍｙｃｅｌｉａｌ ｇｒｏｗｔｈ ａｎｄ ｃｏｎｉｄｉａｌ ｇｅｒｍｉｎａｔｉｏｎ ｗｅｒｅ ０􀆰 １８ － ５􀆰 ７１ μｇ ／ ｍＬ ａｎｄ ０􀆰 ０２ － ８􀆰 １４
μｇ ／ ｍＬ， ｒｅｓｐｅｃｔｉｖｅｌｙ， ｂｕｔ ｔｈｅ ｅｆｆｅｃｔｓ ｏｆ ｆｕｎｇｉｃｉｄｅｓ ｏｎ ｍｙｃｏｔｏｘｉｎｓ ｗｅｒｅ ｄｉｆｆｅｒｅｎｔ． Ｐｙｒａｃｌｏｓｔｒｏｂｉｎ ｉｎｈｉｂｉｔｅｄ
ｔｈｅ ａｃｃｕｍｕｌａｔｉｏｎ ｏｆ ｆｕｍｏｎｉｓｉｎｓ ｐｒｏｄｕｃｅｄ ｂｙ Ｆ． ｖｅｒｔｉｃｉｌｌｉｏｉｄｅｓ ａｎｄ Ｆ． ｐｒｏｌｉｆｅｒａｔｕｍ ｗｉｔｈ ａ ｃｏｎｃｅｎｔｒａｔｉｏｎ
ｒａｎｇｅ ｏｆ １ － ５００ μｇ ／ ｍＬ， ｗｈｉｌｅ ＪＳ３９９⁃１９ ｓｉｇｎｉｆｉｃａｎｔｌｙ ｄｅｃｒｅａｓｅｄ ｔｈｅ ａｃｃｕｍｕｌａｔｉｏｎ ｏｆ ｚｅａｒａｌｅｎｏｎｅ
ｐｒｏｄｕｃｅｄ ｂｙ Ｆ． ｇｒａｍｉｎｅａｒｕｍ， ｗｉｔｈ ａ ｃｏｎｃｅｎｔｒａｔｉｏｎ ｒａｎｇｅ ｏｆ ０􀆰 ０５ － ０􀆰 ８ μｇ ／ ｍＬ． Ｗｈｅｎ ｔｈｅ ｃｏｎｃｅｎｔｒａｔｉｏｎ
ｏｆ ｃａｒｂｅｎｄａｚｉｍ ｗａｓ ｉｎ ｔｈｅ ｒａｎｇｅ ｏｆ ０􀆰 ０５ － ０􀆰 ５ μｇ ／ ｍＬ， ｄｅｏｘｙｎｉｖａｌｅｎｏｌ ｗａｓ ａｌｍｏｓｔ ｃｏｍｐｌｅｔｅｌｙ ｉｎｈｉｂｉｔｅｄ．
Ｋｅｙ ｗｏｒｄｓ： Ｆｕｓａｒｉｕｍ ｓｐｐ． ； ｆｕｎｇｉｃｉｄｅｓ； ｍｙｃｅｌｉａｌ ｇｒｏｗｔｈ； ｃｏｎｉｄｉａｌ ｇｅｒｍｉｎａｔｉｏｎ； ｍｙｃｏｔｏｘｉｎ
　 　 玉米穗腐病是世界上普遍发生、危害严重的玉
米病害，严重影响玉米的产量和品质。 随着玉米品
种的多样性、栽培措施的改变和种植密度的增加等
为穗腐病的发生和流行创造了有利的环境条件，该
病的发生和危害也越发严重（王晓鸣等，２００６）。 该
病由多种真菌引起，其中镰孢菌是主要致病菌，以拟
轮生镰孢菌 Ｆｕｓａｒｉｕｍ ｖｅｒｔｉｃｉｌｌｉｏｉｄｅｓ、层出镰孢菌 Ｆ．
ｐｒｏｌｉｆｅｒａｔｕｍ和禾谷镰孢菌 Ｆ． ｇｒａｍｉｎｅａｒｕｍ危害最为
普遍和严重，并且这 ３ 种镰孢菌均能产生真菌毒素，
与人畜的多种疾病有关 （Ｍｕｎｋｖｏｌｄ，２００３；Ｍｏｒａｌｅｓ⁃
Ｒｏｄｒíｇｕｅｚ ｅｔ ａｌ． ，２００７）。
拟轮生镰孢菌和层出镰孢菌主要产生伏马毒素
（ｆｕｍｏｎｉｓｉｎｓ），不仅可以引起牲畜的多种疾病，并与
人类的食道癌有关（Ｓｙｄｅｎｈａｍ ｅｔ ａｌ． ，１９９０；Ｗａｎｇ ｅｔ
ａｌ． ，１９９１；Ｎｅｌｓｏｎ ｅｔ ａｌ． ，１９９３）。 禾谷镰孢菌可产生
脱氧雪腐镰孢菌烯醇（ｄｅｏｘｙｎｉｖａｌｅｎｏｌ，ＤＯＮ）和玉米
赤霉烯酮（ ｚｅａｒａｌｅｎｏｎｅ，ＺＥＮ）等多种毒素（Ｓｅｔｙａｂｕｄｉ
ｅｔ ａｌ． ，２０１２）。 人误食 ＤＯＮ后会出现头晕、呕吐、发
烧等急性中毒症状，严重时甚至会导致死亡（Ｃｏｖａ⁃
ｒｅｌｌｉ ｅｔ ａｌ． ，２０１１）；ＺＥＮ可刺激含雌激素受体的乳腺
癌细胞增长，造成乳腺增生（宋伟彬等，２００６）。 随
着人们健康意识的提高，真菌毒素对玉米的污染也
引起公众广泛重视，如何防治玉米穗腐病，减轻真菌
毒素的污染已成为目前的研究热点。
玉米穗腐病的化学防治中，所使用的药剂有甲
基托布津、多菌灵、百菌清、苯菌灵、井冈霉素、丙环
唑等，生产实践发现这些药剂能够有效防治玉米穗
腐病的发生。 如隋韵涵等（２０１４）发现室内条件下
苯醚甲环唑和甲基托布津对拟轮生镰孢菌和禾谷镰
孢菌毒力较强，田间条件下异菌脲和井冈霉素的防
效较好，但未研究室内和田间条件下药剂对菌株产
生毒素的影响；Ｂｏｕｄｒｅａｕ ｅｔ ａｌ． （２０１３）发现一定条件
下使用井冈霉素 Ａ 能够抑制拟轮生镰孢菌产生伏
马毒素，对其它穗腐病致病镰孢菌产生毒素的影响
尚未明确。 因此，筛选有效防止病原菌侵入，减轻或
控制毒素的积累，真正达到既能防控玉米穗腐病，又
能降低玉米籽粒中真菌毒素污染水平的杀菌剂显得
尤为迫切。
我国多数地区使用多菌灵、氰烯菌酯防治小麦
赤霉病菌（韩青梅，２００３；张艳军，２００９），但这些药
剂对玉米上禾谷镰孢菌的防治效果研究报道不多，
对镰孢菌产生毒素的影响尚无报道。 国外研究表
明，杀菌剂在一定程度上能够诱导镰孢菌产生毒素
（Ｆａｌｃãｏ ｅｔ ａｌ． ，２０１１；Ｍａｔｅｏ ｅｔ ａｌ． ，２０１１；Ｄｏｒｓ ｅｔ ａｌ． ，
２０１３），也有报道指出使用杀菌剂后不会诱导毒素
的产生，对毒素积累没有影响，甚至会抑制毒素积累
（Ａｕｄｅｎａｅｒｔ ｅｔ ａｌ． ，２０１０；Ｗｉｌｌｙｅｒｄ ｅｔ ａｌ． ，２０１２）。 不
同种类的杀菌剂对菌株的影响不同，对其产生的
毒素影响也不相同，而且不同剂量的杀菌剂对毒
素的影响也不同（ Ｂａｔｕｒｏ⁃Ｃｉｅｓ′ ｎｉｅｗｓｋａ ｅｔ ａｌ． ，２０１１；
Ｍａｔｅｏ ｅｔ ａｌ． ，２０１３）。 本试验在室内条件下研究了
４ 种不同作用方式的杀菌剂，即多菌灵、百菌清、吡
唑醚菌酯和氰烯菌酯，对拟轮生镰孢菌、层出镰孢
菌和禾谷镰孢菌生长及毒素积累的影响，以便进
一步明确能够有效防控玉米穗腐病并减轻毒素污
染的药剂，以期为大田防治玉米穗腐病提供理论
依据。
１ 材料与方法
１􀆰 １ 材料
供试菌株：拟轮生镰孢菌 Ｆ． ｖｅｒｔｉｃｉｌｌｉｏｉｄｅｓ １２５⁃１
菌株、层出镰孢菌 Ｆ． ｐｒｏｌｉｆｅｒａｔｕｍ １２７⁃１ 菌株、禾谷
镰孢菌 Ｆ． ｇｒａｍｉｎｅａｒｕｍ １２５⁃３ 菌株，由本实验经单
孢分离、形态学及分子生物学鉴定并保存。
药剂：９６％多菌灵（ ｃａｒｂｅｎｄａｚｉｍ）原药、９６％ 百
菌清（ ｃｈｌｏｒｏｔｈａｌｏｎｉｌ）原药，石家庄伊宏化工有限公
司；９７􀆰 ５％吡唑醚菌酯（ｐｙｒａｃｌｏｓｔｒｏｂｉｎ）原药，德国巴
斯夫有限公司；２５％氰烯菌酯（ＪＳ３９９⁃１９）悬浮剂，江
苏农药研究所。
培养基：马铃薯葡萄糖琼脂 （ ｐｏｔａｔｏ ｄｅｘｔｒｏｓｅ
ａｇａｒ，ＰＤＡ）培养基：马铃薯 ２００ ｇ、琼脂粉 １８ ｇ、葡萄
糖 ２０ ｇ、蒸馏水 １ ０００ ｍＬ；２％水琼脂（ｗａｔｅｒ ａｇａｒ，
ＷＡ）培养基：琼脂粉 １８ ｇ、蒸馏水 １ ０００ ｍＬ；Ａｒｍ⁃
ｓｔｒｏｎｇ培养基：葡萄糖 ２０ ｇ、Ｃａ（ＮＯ３）２ ５􀆰 ９ ｇ、ＫＣｌ １􀆰 ６
ｇ、 ＫＨ２ＰＯ４ １􀆰 １ ｇ、 ＭｇＳＯ４ · ７Ｈ２Ｏ ０􀆰 ２ μｇ ／ ｍＬ、
ＦｅＳＯ４ ０􀆰 ２ μｇ ／ ｍＬ、 ＺｎＳＯ４ ０􀆰 ２ μｇ ／ ｍＬ、 ＭｎＳＯ４ ０􀆰 ２
μｇ ／ ｍＬ、蒸馏水 １ ０００ ｍＬ；５％ 绿豆汤 （ ｍｕｎｇ ｂｅａｎ
ｂｒｏｔｈ，ＭＢＢ）培养基：绿豆 ５０ ｇ、蒸馏水１ ０００ ｍＬ。
１􀆰 ２ 方法
１􀆰 ２􀆰 １ 镰孢菌最佳产毒时间的确定
将菌株 １２７⁃１ 在 ＰＤＡ平板上 ２５℃黑暗下培养 ６
ｄ，用打孔器在菌落边缘打取直径 ６ ｍｍ 的菌饼，接
７３０１６ 期 郭聪聪等： 杀菌剂对玉米穗腐病菌的毒力及毒素产生的影响
入 ３０ ｍＬ ＰＤＡ平板上，分别于培养 ６、７、８、９、１０、１１、
１２ ｄ后取样，测定不同培养时间下培养基中伏马毒
素的含量，从而确定产毒的最佳时间；菌株 １２５⁃３ 在
ＰＤＡ平板上 ２５℃培养 ４ ｄ，打取菌饼接入 ３０ ｍＬ
ＰＤＡ平板上，分别于培养 ４、５、６、７、８、９、１０、１１、１２ ｄ
后取样，测定不同培养时间下培养基中玉米赤霉烯
酮和脱氧雪腐镰孢菌烯醇的含量，确定菌株 １２５⁃３
产毒的最佳时间。 每处理 ３ 个重复。 菌株 １２５⁃１ 在
３０ ｍＬ ＰＤＡ平板上 ２５℃黑暗培养条件下的最佳产
毒时间为 １０ ｄ（李世雄，２０１４）。
１􀆰 ２􀆰 ２ 不同药剂对镰孢菌菌丝生长的影响
采用菌丝生长速率法测定（慕立义，１９９４）。 在
ＰＤＡ平板上 ２５℃黑暗条件下，菌株 １２５⁃１ 和 １２７⁃１
培养 ６ ｄ，菌株 １２５⁃３ 培养 ４ ｄ，用打孔器在菌落边缘
打取直径 ６ ｍｍ 的菌饼，分别接入含有不同浓度药
剂的 ３０ ｍＬ ＰＤＡ 平板上，２５℃黑暗条件下，菌株
１２５⁃１ 和 １２７⁃１ 培养 ６ ｄ，菌株 １２５⁃３ 培养 ４ ｄ，采用十
字交叉法测量菌落直径。 多菌灵，菌株 １２５⁃１：０􀆰 ２、
０􀆰 ３、０􀆰 ４、０􀆰 ５、０􀆰 ６ μｇ ／ ｍＬ，菌株 １２７⁃１：０􀆰 ０５、０􀆰 ２、
０􀆰 ４、０􀆰 ５、０􀆰 ６ μｇ ／ ｍＬ，菌株 １２５⁃３：０􀆰 １、０􀆰 ２、０􀆰 ３、０􀆰 ４、
０􀆰 ５ μｇ ／ ｍＬ；百菌清，菌株 １２５⁃１：０􀆰 ０５、０􀆰 ５、１、５、２０
μｇ ／ ｍＬ，菌株 １２７⁃１：０􀆰 ５、１、１０、１００、２００ μｇ ／ ｍＬ，菌株
１２５⁃３：０􀆰 ５、１、１０、５０、１００ μｇ ／ ｍＬ；吡唑醚菌酯，菌株
１２５⁃１ 和 １２７⁃１：０􀆰 １、１、１０、 １００、 ５００ μｇ ／ ｍＬ，菌株
１２５⁃３：０􀆰 １、１、１０、１００、２００ μｇ ／ ｍＬ；氰烯菌酯，菌株
１２５⁃１：１、２、４、８、１６ μｇ ／ ｍＬ，菌株 １２７⁃１：０􀆰 ０５、０􀆰 １、
０􀆰 ２、０􀆰 ４、０􀆰 ８ μｇ ／ ｍＬ，菌株 １２５⁃３：０􀆰 ０５、０􀆰 １、０􀆰 ２、
０􀆰 ８、１􀆰 ６ μｇ ／ ｍＬ。 每处理 ３ 次重复，以不含药剂的
处理为空白对照。 计算不同浓度处理下药剂对菌丝
生长的抑制率。 然后继续培养至各个菌株的最佳产
毒时间，将培养菌株的 ＰＤＡ培养基装入自封袋中并
编号，粉碎混匀，用于毒素的提取及测定。 菌丝生长
抑制率 ＝ （对照组菌落平均直径 －处理组菌落平均
直径） ／对照组菌落平均直径 × １００％ 。
１􀆰 ２􀆰 ３ 不同药剂对镰孢菌分生孢子萌发的影响
采用涂布平板法测定（侯颖等，２０１４）。 在 ＰＤＡ
平板上 ２５℃黑暗条件下，菌株 １２５⁃１ 和 １２７⁃１ 培养 ６
ｄ，菌株 １２５⁃３ 培养 ４ ｄ，用打孔器在菌落边缘打取直
径 ６ ｍｍ的菌饼，菌株 １２５⁃１ 和 １２７⁃１ 接到 Ａｒｍｓｔｒｏｎｇ
培养基，菌株 １２５⁃３ 接到 ５％绿豆汤培养基以促进菌
株产孢，每瓶培养基接种 ３０ 个菌饼，２５℃黑暗条件
下振荡培养 ４ ～ ７ ｄ。 ６ 层无菌纱布过滤除去菌丝，
将滤液在 ４ ０００ ｒ ／ ｍｉｎ 下离心 １０ ｍｉｎ，弃上清，将分
生孢子重悬于灭菌去离子水中，制成浓度为 １０６ 个 ／
ｍＬ的孢子悬浮液。 取 ５０ μＬ 孢子悬浮液涂布于含
有不同浓度药剂的 １０ ｍＬ ＷＡ 平板中，２５℃黑暗培
养，以不含药 ＷＡ平板上孢子萌发率达到 ９０％以上
时，统计不同药剂浓度下的孢子萌发率，计算孢子萌
发抑制率。 孢子萌发抑制率 ＝ （对照组孢子萌发平
均数 －处理组孢子萌发平均数） ／对照组孢子萌发
平均数 × １００％ 。 百菌清与多菌灵浓度设置相同，菌
株 １２５⁃１ 和 １２７⁃１：０􀆰 １、１、１０、１００、５００ μｇ ／ ｍＬ，菌株
１２５⁃３：０􀆰 ００１、０􀆰 ０１、０􀆰 １、１、１０ μｇ ／ ｍＬ；吡唑醚菌酯，
菌株 １２５⁃１ 和 １２７⁃１：０􀆰 １、１、１０、１００、５００ μｇ ／ ｍＬ，菌
株 １２５⁃３：０􀆰 ０１、０􀆰 ０２、０􀆰 ０４、０􀆰 ０８、１ μｇ ／ ｍＬ；氰烯菌酯
均为：０􀆰 ０６２５、０􀆰 ２５、０􀆰 ５、１、２、２０ μｇ ／ ｍＬ。
１􀆰 ２􀆰 ４ 毒素的提取
伏马毒素（ＦＢ１ 和 ＦＢ２）的样品制备：准确称取
１０􀆰 ０ ｇ粉碎混匀的 １􀆰 ２􀆰 ２ 部分所述的各处理培养基
样品，加入 ４０ ｍＬ乙腈 ∶ 水（ｖ ∶ ｖ ＝ ３∶ １），振荡提取 １
ｈ，过滤，准确吸取滤液 ８􀆰 ０ ｍＬ 于刻度试管中，６０℃
水浴氮吹至近干，用乙腈 ∶ 水（ｖ ∶ ｖ ＝ １∶ １）溶解定容
至 ２ ｍＬ，过 ０􀆰 ２２ μｍ微孔滤膜，待测。
ＺＥＮ和 ＤＯＮ 的样品制备：准确称取 １０􀆰 ０ ｇ 粉
碎混匀的样品，加入 ４０ ｍＬ 乙腈 ∶ 水（ ｖ ∶ ｖ ＝ ８４ ∶
１６），使用高速匀浆机 １６ ０００ ｒ ／ ｍｉｎ匀浆 １ ｍｉｎ，静置
１０ ｍｉｎ，过滤至含有 ５ ｇ左右 ＮａＣｌ的具塞量筒中，振
荡 ２ ｍｉｎ，静置分层 ３０ ｍｉｎ，分层后准确吸取上清
８􀆰 ０ ｍＬ于刻度试管中，５０℃水浴氮吹至近干，用色
谱甲醇定容至 ２ ｍＬ，过 ０􀆰 ２２ μｍ 微孔滤膜，待测。
毒素含量用菌落直径校正，校正毒素含量 ＝第 ｎ 天
毒素含量 ／第 ｎ天菌落直径。
１􀆰 ２􀆰 ５ 毒素含量的检测
使用高效液相色谱检测 ＦＢ１、ＦＢ２、ＺＥＮ 和 ＤＯＮ。
参考 Ｆｅｎｇ ｅｔ ａｌ． （２０１１）方法，稍作修改。
ＦＢ１ 和 ＦＢ２ 的检测：以 ｐＨ ４􀆰 ０、０􀆰 ０５ ｍｏｌ ／ Ｌ 的甲
醇 ∶ 柠檬酸缓冲液为流动相；洗脱流程中，０ ～ １０ ｍｉｎ
时甲醇 ∶ 柠檬酸缓冲液为 ５５ ∶ ４５ ～ ６５ ∶ ３５（ｖ ∶ ｖ），
１０ ～２２ ｍｉｎ为 ６５ ∶ ３５ ～ ７０ ∶ ３０（ｖ ∶ ｖ），２２ ～ ２５ ｍｉｎ 为
７０ ∶ ３０（ｖ ∶ ｖ）；进样量 ５０ μＬ；柱温 ４０℃；流速 １ ｍＬ ／
ｍｉｎ；荧光检测器激发波长 ３３５ ｎｍ；发射波长 ４４０ ｎｍ。
ＺＥＮ和 ＤＯＮ 的检测：二者均以甲醇 ∶ 水 ＝ ８０ ∶
２０（ｖ ∶ ｖ）为流动相，进样量 １０ μＬ，柱温 ３０℃，流速
１ ｍＬ ／ ｍｉｎ； ＺＥＮ 检测时荧光检测器激发波长
２７４ ｎｍ，发射波长 ４４０ ｎｍ。 ＤＯＮ检测时二级管阵列
检测器的检测波长为 ２２０ ｎｍ。
１􀆰 ３ 数据分析
使用 ＳＰＳＳ １７􀆰 ０软件进行数据处理，应用 Ｄｕｎｃａｎ
８３０１ 植　 物　 保　 护　 学　 报 ４２ 卷
氏新复极差法检验各处理间的差异显著性检验。
２ 结果与分析
２􀆰 １ 不同药剂对镰孢菌的室内毒力
４ 种药剂对不同菌株的毒力表现不同，对菌株
１２５⁃１、１２７⁃１ 和 １２５⁃３ 菌丝生长的 ＥＣ５０ 分别为
０􀆰 ４１ ～ ４􀆰 ２２、０􀆰 １８ ～ １􀆰 ３４、０􀆰 ２５ ～ ５􀆰 ７１ μｇ ／ ｍＬ，对孢
子萌发的 ＥＣ５０分别为 ０􀆰 ７２ ～ ３􀆰 ６５、０􀆰 ６９ ～ ８􀆰 １４、
０􀆰 ０２ ～ ０􀆰 ０５ μｇ ／ ｍＬ（表 １）。 多菌灵对菌株 １２５⁃１ 和
１２５⁃３ 的菌丝生长抑制作用最强，氰烯菌酯对菌株
１２７⁃１ 菌丝生长的抑制作用最强；而吡唑醚菌酯对
菌株 １２７⁃１ 和 １２５⁃３ 菌丝生长的抑制作用最弱，氰烯
菌酯对菌株 １２５⁃１ 的菌丝生长抑制作用最弱。 氰烯
菌酯对 ３ 个菌株孢子萌发的抑制效果最好，多菌灵
效果最差。 ４ 种药剂均能明显抑制禾谷镰孢菌菌株
１２５⁃３ 孢子的萌发。
表 １ 四种药剂对 ３ 种镰孢菌菌丝生长及孢子萌发的毒力
Ｔａｂｌｅ １ Ｅｆｆｅｃｔｓ ｏｆ ｆｏｕｒ ｋｉｎｄｓ ｏｆ ｆｕｎｇｉｃｉｄｅｓ ｏｎ ｍｙｃｅｌｉａｌ ｇｒｏｗｔｈ ａｎｄ ｃｏｎｉｄｉａｌ ｇｅｒｍｉｎａｔｉｏｎ ｏｆ ｔｈｒｅｅ ｓｐｅｃｉｅｓ ｏｆ Ｆｕｓａｒｉｕｍ
药剂
Ｆｕｎｇｉｃｉｄｅ
菌株
Ｓｔｒａｉｎ
菌丝生长 Ｍｙｃｅｌｉａｌ ｇｒｏｗｔｈ 孢子萌发 Ｃｏｎｉｄｉａｌ ｇｅｒｍｉｎａｔｉｏｎ
毒力回归方程
Ｒｅｇｒｅｓｓｉｏｎ
ｅｑｕａｔｉｏｎ
ＥＣ５０
（μｇ ／ ｍＬ）
相关系数 Ｒ２
Ｃｏｒｒｅｌａｔｉｏｎ
ｃｏｅｆｆｉｃｉｅｎｔ
毒力回归方程
Ｒｅｇｒｅｓｓｉｏｎ
ｅｑｕａｔｉｏｎ
ＥＣ５０
（μｇ ／ ｍＬ）
相关系数 Ｒ２
Ｃｏｒｒｅｌａｔｉｏｎ
ｃｏｅｆｆｉｃｉｅｎｔ
多菌灵
Ｃａｒｂｅｎｄａｚｉｍ
百菌清
Ｃｈｌｏｒｏｔｈａｌｏｎｉｌ
吡唑醚菌酯
Ｐｙｒａｃｌｏｓｔｒｏｂｉｎ
氰烯菌酯
ＪＳ３９９⁃１９
１２５⁃１ ｙ ＝ ４􀆰 １８ｘ ＋ ６􀆰 ６０ ０􀆰 ４１ ０􀆰 ９９６ ｙ ＝ ０􀆰 ４６ｘ ＋ ４􀆰 ７４ ３􀆰 ６５ ０􀆰 ９９３
１２７⁃１ ｙ ＝ ４􀆰 ８２ｘ ＋ ６􀆰 ５３ ０􀆰 ４８ ０􀆰 ９４１ ｙ ＝ ０􀆰 ４９ｘ ＋ ４􀆰 ５５ ８􀆰 １４ ０􀆰 ９５２
１２５⁃３ ｙ ＝ ４􀆰 １３ｘ ＋ ７􀆰 ４７ ０􀆰 ２５ ０􀆰 ９８０ ｙ ＝ １􀆰 ３８ｘ ＋ ６􀆰 ７９ ０􀆰 ０５ ０􀆰 ９５４
１２５⁃１ ｙ ＝ ０􀆰 ７９ｘ ＋ ４􀆰 ９４ １􀆰 １９ ０􀆰 ９２８ ｙ ＝ ０􀆰 ５９ｘ ＋ ５􀆰 ０１ ０􀆰 ９５ ０􀆰 ９８７
１２７⁃１ ｙ ＝ ０􀆰 ５２ｘ ＋ ４􀆰 ８６ １􀆰 ８９ ０􀆰 ９５７ ｙ ＝ ０􀆰 ６６ｘ ＋ ４􀆰 ９２ １􀆰 ３１ ０􀆰 ９７０
１２５⁃３ ｙ ＝ ０􀆰 ４０ｘ ＋ ４􀆰 ８２ ２􀆰 ７９ ０􀆰 ９８９ ｙ ＝ １􀆰 ７８ｘ ＋ ７􀆰 ７９ ０􀆰 ０３ ０􀆰 ９７５
１２５⁃１ ｙ ＝ ０􀆰 ４０ｘ ＋ ４􀆰 ８４ ２􀆰 ４９ ０􀆰 ９５３ ｙ ＝ ０􀆰 ４６ｘ ＋ ５􀆰 ０１ ０􀆰 ９４ ０􀆰 ９７９
１２７⁃１ ｙ ＝ ０􀆰 ４６ｘ ＋ ４􀆰 ９４ １􀆰 ３４ ０􀆰 ９７３ ｙ ＝ ０􀆰 ４４ｘ ＋ ４􀆰 ９３ １􀆰 ４４ ０􀆰 ９５７
１２５⁃３ ｙ ＝ ０􀆰 ６３ｘ ＋ ４􀆰 ５２ ５􀆰 ７１ ０􀆰 ９２５ ｙ ＝ １􀆰 １３ｘ ＋ ６􀆰 ７８ ０􀆰 ０３ ０􀆰 ９５７
１２５⁃１ ｙ ＝ ２􀆰 １０ｘ ＋ ３􀆰 ６９ ４􀆰 ２２ ０􀆰 ９８５ ｙ ＝ ０􀆰 ９６ｘ ＋ ５􀆰 １４ ０􀆰 ７２ ０􀆰 ９６１
１２７⁃１ ｙ ＝ １􀆰 ７２ｘ ＋ ６􀆰 ２７ ０􀆰 １８ ０􀆰 ９５５ ｙ ＝ ０􀆰 ９５ｘ ＋ ５􀆰 １５ ０􀆰 ６９ ０􀆰 ９６５
１２５⁃３ ｙ ＝ ２􀆰 ０８ｘ ＋ ５􀆰 ７０ ０􀆰 ４６ ０􀆰 ９９３ ｙ ＝ １􀆰 ５４ｘ ＋ ７􀆰 ６２ ０􀆰 ０２ ０􀆰 ９８０
２􀆰 ２ 菌株 １２７⁃１ 和 １２５⁃３ 的最佳产毒时间
菌株 １２７⁃１ 培养 ６、７、８、９、１０、１１、１２ ｄ 后，检测
发现伏马毒素含量在第 １０ 天达到最大值，为 ３８􀆰 ６
μｇ ／ ｇ，因此选择第 １０ 天作为菌株 １２７⁃１ 的最佳产毒
时间（图 １）。 菌株 １２５⁃３ 培养 ４、５、６、７、８、９、１０、１１、
１２ ｄ后，检测表明 ＺＥＮ 在第 １０ 天积累量达到最大
值 ２７􀆰 ４ μｇ ／ ｇ，ＤＯＮ在第 ９ 天积累量达到最大值 ３􀆰 ７
μｇ ／ ｇ，而 ＺＥＮ ＋ ＤＯＮ含量则在第 １０ 天最大，为 ２９􀆰 ６
μｇ ／ ｇ。 因此选择第 １０ 天作为菌株 １２５⁃３ 的最佳产
毒时间（图 １）。
２􀆰 ３ 不同药剂对 ３ 种镰孢菌产生毒素的影响
２􀆰 ３􀆰 １ 对菌株 １２５⁃１ 产伏马毒素的影响
除多菌灵外，其它药剂对菌株 １２５⁃１ 产生 ＦＢ１
和 ＦＢ２ 的影响表现为：当药剂浓度高于其 ＥＣ５０时，
均能抑制伏马毒素的产生，且随着浓度的升高，抑制
作用增强（图 ２）。 百菌清在 ０􀆰 ５ μｇ ／ ｍＬ时明显促进
伏马毒素产生，积累量比对照显著提高 ７６􀆰 ９％ （Ｐ ＜
０􀆰 ０５），随着浓度的增大抑制作用增强，在 ２０ μｇ ／ ｍＬ
时伏马毒素积累量比对照少 ９２􀆰 ３％ 。 多菌灵除在
图 １ 不同培养时间对菌株 １２７⁃１ 和 １２５⁃３ 产毒的影响
Ｆｉｇ． １ Ｅｆｆｅｃｔｓ ｏｆ ｃｕｌｔｕｒｅ ｔｉｍｅ ｏｎ ｍｙｃｏｔｏｘｉｎｓ ｐｒｏｄｕｃｅｄ
ｂｙ １２７⁃１ ａｎｄ １２５⁃３ ｓｔｒａｉｎｓ
　
０􀆰 ４ μｇ ／ ｍＬ和 ０􀆰 ６ μｇ ／ ｍＬ 浓度下表现为抑制作用
外，其它浓度下均促进伏马毒素积累。 当氰烯菌酯
浓度高于其 ＥＣ５０时，伏马毒素积累量随着浓度的增
大而减少。 吡唑醚菌酯在 １ μｇ ／ ｍＬ 浓度下伏马毒
素的积累受到显著抑制，积累量比对照低 ９４􀆰 ２％ ，
增大药剂浓度，抑制作用并没有出现明显变化。
９３０１６ 期 郭聪聪等： 杀菌剂对玉米穗腐病菌的毒力及毒素产生的影响
图 ２ 不同药剂对拟轮生镰孢菌菌株 １２５⁃１ 产毒的影响
Ｆｉｇ． ２ Ｅｆｆｅｃｔｓ ｏｆ ｄｉｆｆｅｒｅｎｔ ｆｕｎｇｉｃｉｄｅｓ ｏｎ ｍｙｃｏｔｏｘｉｎｓ ｐｒｏｄｕｃｅｄ ｂｙ １２５⁃１ ｓｔｒａｉｎ ｏｆ Ｆｕｓａｒｉｕｍ ｖｅｒｔｉｃｉｌｌｉｏｉｄｅｓ
Ａ： 百菌清； Ｂ： 多菌灵； Ｃ： 吡唑醚菌酯； Ｄ： 氰烯菌酯。 同色柱上不同小写字母表示经 Ｄｕｎｃａｎ 氏新复极差法检验差
异显著（Ｐ ＜ ０􀆰 ０５）。 Ａ： Ｃｈｌｏｒｏｔｈａｌｏｎｉｌ； Ｂ： ｃａｒｂｅｎｄａｚｉｍ； Ｃ： ｐｙｒａｃｌｏｓｔｒｏｂｉｎ； Ｄ： ＪＳ３９９⁃１９． Ｄｉｆｆｅｒｅｎｔ ｌｅｔｔｅｒｓ ｏｎ ｔｈｅ ｓａｍｅ ｃｏｌｏｒ ｂａｒｓ
ｉｎｄｉｃａｔｅ ｓｉｇｎｉｆｉｃａｎｔｌｙ ｄｉｆｆｅｒｅｎｔ ｂｙ Ｄｕｎｃａｎ’ｓ ｎｅｗ ｍｕｌｔｉｐｌｅ ｒａｎｇｅ ｔｅｓｔ （Ｐ ＜ ０􀆰 ０５）．
　
２􀆰 ３􀆰 ２ 对菌株 １２７⁃１ 产伏马毒素的影响
百菌清在 ２ 个低浓度 ０􀆰 ５、１ μｇ ／ ｍＬ 时对菌株
１２７⁃１ 产伏马毒素表现出一定的抑制作用，当浓度
为 １０ ～ ２００ μｇ ／ ｍＬ时，促进毒素积累。 多菌灵对菌
株 １２７⁃１ 的作用与菌株 １２５⁃１ 的趋势相同，在供试浓
度范围内均促进产生伏马毒素，０􀆰 ６ μｇ ／ ｍＬ 时积累
量最高，是对照的 １０􀆰 ５ 倍（Ｐ ＜ ０􀆰 ０５）。 除 ０􀆰 １ μｇ ／
ｍＬ浓度外，吡唑醚菌酯在其它浓度下均抑制菌株
１２７⁃１ 所产伏马毒素积累；１０ μｇ ／ ｍＬ 浓度下抑制作
用最明显，比对照低 ６７􀆰 ９％ （Ｐ ＜ ０􀆰 ０５），随浓度增大
抑制作用逐渐减弱。 氰烯菌酯浓度在 ０􀆰 ０５ ～ ０􀆰 ２
μｇ ／ ｍＬ时促进菌株 １２７⁃１ 产生伏马毒素，０􀆰 ０５ μｇ ／
ｍＬ时积累量是对照的 １１􀆰 ７ 倍，浓度高于 ０􀆰 ４ μｇ ／
ｍＬ时即可完全抑制伏马毒素的产生（图 ３）。
２􀆰 ３􀆰 ３ 对菌株 １２５⁃３ 产毒素的影响
４ 种药剂在一定浓度范围内均促进菌株 １２５⁃３
产生 ＤＯＮ和 ＺＥＮ（图 ４）。 百菌清在供试浓度范围
内，促进 ＤＯＮ 积累量的增加；浓度为 １ μｇ ／ ｍＬ 时显
著抑制 ＺＥＮ 的积累，同时 ＤＯＮ 和 ＺＥＮ 总量最低。
多菌灵在供试浓度范围内均能有效抑制 ＤＯＮ积累，
却刺激 ＺＥＮ 的产生；当多菌灵浓度为 ０􀆰 ０５ μｇ ／ ｍＬ
时，可抑制菌株 １２５⁃３ 不产生 ＺＥＮ，而 ０􀆰 ４ μｇ ／ ｍＬ时
产生的 ＺＥＮ最多，是对照的 １３３ 倍。 吡唑醚菌酯促
进 ＤＯＮ的产生，随着浓度增大 ＤＯＮ积累量增大；低
浓度（０􀆰 １ ～ １ μｇ ／ ｍＬ）时促进 ＺＥＮ 产生，高于 １０
μｇ ／ ｍＬ时抑制 ＺＥＮ产生，直至未检出。 氰烯菌酯在
０􀆰 ０５ ～ ０􀆰 ８ μｇ ／ ｍＬ 浓度范围内均能抑制菌株产生
ＺＥＮ，０􀆰 ２、０􀆰 ８ μｇ ／ ｍＬ 浓度下抑制作用显著；０􀆰 １ ～
１􀆰 ６ μｇ ／ ｍＬ时，菌株 １２５⁃３ 产生的 ＤＯＮ 含量随着药
剂浓度的增大而增加。
３ 讨论
本试验研究了 ４ 种作用机制不同的杀菌剂对 ３
种镰孢菌菌丝生长、孢子萌发及毒素产生的影响，结
果表明在供试浓度下 ４ 种药剂均能有效抑制菌丝生
长及孢子萌发，但是对毒素产生的影响则不同，并且
同种药剂不同浓度对菌株产生毒素的影响也不相
同。 Ｍａｔｅｏ ｅｔ ａｌ． （２０１３）研究了杀菌剂丁苯吗啉、咪
鲜胺和戊唑醇对镰孢菌产生毒素 Ｔ⁃２ 和 ＨＴ⁃２ 的影
响，发现随着杀菌剂浓度增加，毒素积累量减少，并
且 ３ 种杀菌剂对菌株产生毒素的影响也不相同。
Ｍｅｓｔｅｒｈáｚｙ ｅｔ ａｌ． （２０１１）还提出了杀菌剂的使用方
０４０１ 植　 物　 保　 护　 学　 报 ４２ 卷
图 ３ 不同药剂对层出镰孢菌菌株 １２７⁃１ 产毒的影响
Ｆｉｇ． ３ Ｅｆｆｅｃｔｓ ｏｆ ｄｉｆｆｅｒｅｎｔ ｆｕｎｇｉｃｉｄｅｓ ｏｎ ｍｙｃｏｔｏｘｉｎｓ ｐｒｏｄｕｃｅｄ ｂｙ １２７⁃１ ｓｔｒａｉｎ ｏｆ Ｆｕｓａｒｉｕｍ ｐｒｏｌｉｆｅｒａｔｕｍ
Ａ： 百菌清； Ｂ： 多菌灵； Ｃ： 吡唑醚菌酯； Ｄ： 氰烯菌酯。 同色柱上不同小写字母表示经 Ｄｕｎｃａｎ 氏新复极差法检验差
异显著（Ｐ ＜ ０􀆰 ０５）。 Ａ： Ｃｈｌｏｒｏｔｈａｌｏｎｉｌ； Ｂ： ｃａｒｂｅｎｄａｚｉｍ； Ｃ： ｐｙｒａｃｌｏｓｔｒｏｂｉｎ； Ｄ： ＪＳ３９９⁃１９． Ｄｉｆｆｅｒｅｎｔ ｌｅｔｔｅｒｓ ｏｎ ｔｈｅ ｓａｍｅ ｃｏｌｏｒ ｂａｒｓ
ｉｎｄｉｃａｔｅ ｓｉｇｎｉｆｉｃａｎｔｌｙ ｄｉｆｆｅｒｅｎｔ ｂｙ Ｄｕｎｃａｎ’ｓ ｎｅｗ ｍｕｌｔｉｐｌｅ ｒａｎｇｅ ｔｅｓｔ （Ｐ ＜ ０􀆰 ０５）．
　
图 ４ 不同药剂对禾谷镰孢菌菌株 １２５⁃３ 产毒的影响
Ｆｉｇ． ４ ＦＥｆｆｅｃｔｓ ｏｆ ｄｉｆｆｅｒｅｎｔ ｆｕｎｇｉｃｉｄｅｓ ｏｎ ｍｙｃｏｔｏｘｉｎｓ ｐｒｏｄｕｃｅｄ ｂｙ １２５⁃３ ｓｔｒａｉｎ ｏｆ Ｆｕｓａｒｉｕｍ ｇｒａｍｉｎｅａｒｕｍ
Ａ： 百菌清； Ｂ： 多菌灵； Ｃ： 吡唑醚菌酯； Ｄ： 氰烯菌酯。 同色柱上不同小写字母表示经 Ｄｕｎｃａｎ 氏新复极差法检验差
异显著（Ｐ ＜ ０􀆰 ０５）。 Ａ： Ｃｈｌｏｒｏｔｈａｌｏｎｉｌ； Ｂ： ｃａｒｂｅｎｄａｚｉｍ； Ｃ： ｐｙｒａｃｌｏｓｔｒｏｂｉｎ； Ｄ： ＪＳ３９９⁃１９． Ｄｉｆｆｅｒｅｎｔ ｌｅｔｔｅｒｓ ｏｎ ｔｈｅ ｓａｍｅ ｃｏｌｏｒ ｂａｒｓ
ｉｎｄｉｃａｔｅ ｓｉｇｎｉｆｉｃａｎｔｌｙ ｄｉｆｆｅｒｅｎｔ ｂｙ Ｄｕｎｃａｎ’ｓ ｎｅｗ ｍｕｌｔｉｐｌｅ ｒａｎｇｅ ｔｅｓｔ （Ｐ ＜ ０􀆰 ０５）． 　
１４０１６ 期 郭聪聪等： 杀菌剂对玉米穗腐病菌的毒力及毒素产生的影响
法对毒素积累也有影响，这与本研究结果一致，但具
体影响机制有待深入探讨。
Ｂｏｕｄｒｅａｕ ｅｔ ａｌ． （２０１３）发现一定条件下使用井
冈霉素 Ａ 能够抑制拟轮生镰孢菌产生伏马毒素。
Ｍａｒíｎ ｅｔ ａｌ． （２０１３）发现戊唑醇在一定条件下能够诱
导拟轮生镰孢菌和层出镰孢菌中伏马毒素合成基因
ＦＵＭ１ 的表达。 本研究供试 ４ 种药剂中，吡唑醚菌
酯对拟轮生镰孢菌和层出镰孢菌产生的伏马毒素均
有一定的抑制作用，而且也能抑制菌株菌丝生长及
孢子萌发。 因此可进一步通过田间试验，明确该种
药剂对拟轮生镰孢菌和层出镰孢菌的田间防效及对
玉米籽粒中伏马毒素积累的影响。
Ａｕｄｅｎａｅｒｔ ｅｔ ａｌ． （２０１０）研究表明嘧菌酯不影响
禾谷镰孢菌产生 ＤＯＮ，也不抑制其孢子萌发，而 Ｂａ⁃
ｔｕｒｏ⁃Ｃｉｅｓ′ｎｉｅｗｓｋａ ｅｔ ａｌ． （２０１１）却发现嘧菌酯能够促
进禾谷镰孢菌产生 ＤＯＮ，吡唑醚菌酯与嘧菌酯属同
一类药剂，但本研究结果表明吡唑醚菌酯能够抑制
禾谷镰孢菌孢子萌发，一定浓度范围内对 ＤＯＮ的积
累具有促进作用， 与 Ｂａｔｕｒｏ⁃Ｃｉｅｓ′ｎｉｅｗｓｋａ ｅｔ ａｌ．
（２０１１） 的研究结果相似。 并且 Ａｕｄｅｎａｅｒｔ ｅｔ ａｌ．
（２０１０）和 Ｗｉｌｌｙｅｒｄ ｅｔ ａｌ． （２０１２）均发现三唑类杀菌
剂能够有效抑制禾谷镰孢菌产生 ＤＯＮ，Ｒａｍｉｒｅｚ ｅｔ
ａｌ． （２００４）认为同一药剂在不同环境条件对禾谷镰
孢菌产生 ＤＯＮ的影响不同，表明不同环境条件下，
杀菌剂对菌株产生毒素的影响不同。 这可能是导致
Ａｕｄｅｎａｅｒｔ ｅｔ ａｌ． （２０１０）与 Ｂａｔｕｒｏ⁃Ｃｉｅｓ′ｎｉｅｗｓｋａ ｅｔ ａｌ．
（２０１１）研究结果矛盾的原因之一。 相关文献中仅
研究了药剂对禾谷镰孢菌产生 ＤＯＮ的影响，均未研
究药剂对禾谷镰孢菌产生 ＺＥＮ的影响，ＤＯＮ和 ＺＥＮ
相互之间是否有影响，需要进一步研究。
本试验在室内条件下研究了 ４ 种杀菌剂百菌
清、多菌灵、吡唑醚菌酯和氰烯菌酯对 ３ 种镰孢菌生
长、孢子萌发及毒素产生的影响，发现所有供试药剂
对 ３ 种镰孢菌菌丝生长、孢子萌发均有一定的抑制
作用，吡唑醚菌酯能够抑制拟轮生镰孢菌和层出镰
孢菌产生伏马毒素，氰烯菌酯能够在低范围内显著
抑制禾谷镰孢菌产生 ＺＥＮ，多菌灵对禾谷镰孢菌产
生 ＤＯＮ有一定的抑制作用。 本研究是在室内离体
条件下进行的，还需进行田间试验明确供试药剂对
玉米镰孢菌穗腐病的防效，同时测定玉米籽粒中真
菌毒素的含量，为生产上玉米穗腐病防治药剂的选
择提供理论依据。
参 考 文 献 （Ｒｅｆｅｒｅｎｃｅｓ）
Ａｕｄｅｎａｅｒｔ Ｋ， Ｃａｌｌｅｗａｅｒｔ Ｅ， Ｈöｆｔｅ Ｍ， Ｄｅ Ｓａｅｇｅｒ Ｓ， Ｈａｅｓａｅｒｔ Ｇ．
２０１０． Ｈｙｄｒｏｇｅｎ ｐｅｒｏｘｉｄｅ ｉｎｄｕｃｅｄ ｂｙ ｔｈｅ ｆｕｎｇｉｃｉｄｅ ｐｒｏｔｈｉｏｃｏｎ⁃
ａｚｏｌｅ ｔｒｉｇｇｅｒｓ ｄｅｏｘｙｎｉｖａｌｅｎｏｌ （ ＤＯＮ） ｐｒｏｄｕｃｔｉｏｎ ｂｙ Ｆｕｓａｒｉｕｍ
ｇｒａｍｉｎｅａｒｕｍ． ＢＭＣ Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌｏｇｙ， １０（１）： １１２ － １１４
Ｂａｔｕｒｏ⁃Ｃｉｅｓ′ｎｉｅｗｓｋａ Ａ， Ｌｕｋａｎｏｗｓｋｉ Ａ， Ｋｏｌｅｎｄａ Ｍ． ２０１１． Ｅｆｆｅｃｔ ｏｆ
ｆｕｎｇｉｃｉｄｅ ａｐｐｌｉｃａｔｉｏｎ ｏｎ ｗｈｅａｔ ｈｅａｄ ｂｌｉｇｈｔ， ｏｃｃｕｒｒｅｎｃｅ ｏｆ
Ｆｕｓａｒｉｕｍ ｓｐｐ． ａｎｄ ｍｙｃｏｔｏｘｉｎ ｐｒｏｄｕｃｔｉｏｎ． Ｐｌａｎｔ Ｂｒｅｅｄｉｎｇ ａｎｄ
Ｓｅｅｄ Ｓｃｉｅｎｃｅ， ６３： ２９ － ３８
Ｂｏｕｄｒｅａｕ ＢＡ， Ｌａｒｓｏｎ ＴＭ， Ｂｒｏｗｎ ＤＷ， Ｂｕｓｍａｎ Ｍ， Ｒｏｂｅｒｔｓ ＥＳ，
Ｋｅｎｄｒａ ＤＦ， ＭｃＱｕａｄｅ ＫＬ． ２０１３． Ｉｍｐａｃｔ ｏｆ ｔｅｍｐｅｒａｔｕｒｅ ｓｔｒｅｓｓ
ａｎｄ ｖａｌｉｄａｍｙｃｉｎ Ａ ｏｎ ｃｏｍｐａｔｉｂｌｅ ｓｏｌｕｔｅｓ ａｎｄ ｆｕｍｏｎｉｓｉｎ ｐｒｏｄｕｃ⁃
ｔｉｏｎ ｉｎ Ｆ． ｖｅｒｔｉｃｉｌｌｉｏｉｄｅｓ： ｒｏｌｅ ｏｆ ｔｒｅｈａｌｏｓｅ⁃６⁃ｐｈｏｓｐｈａｔｅ ｓｙｎｔｈａｓｅ．
Ｆｕｎｇａｌ Ｇｅｎｅｔｉｃｓ ａｎｄ Ｂｉｏｌｏｇｙ， ５７： １ － １０
Ｃｏｖａｒｅｌｌｉ Ｌ， Ｂｅｃｃａｒｉ Ｇ， Ｓａｌｖｉ Ｓ． ２０１１． Ｉｎｆｅｃｔｉｏｎ ｂｙ ｍｙｃｏｔｏｘｉｇｅｎｉｃ
ｆｕｎｇａｌ ｓｐｅｃｉｅｓ ａｎｄ ｍｙｃｏｔｏｘｉｎ ｃｏｎｔａｍｉｎａｔｉｏｎ ｏｆ ｍａｉｚｅ ｇｒａｉｎ ｉｎ
Ｕｍｂｒｉａ， ｃｅｎｔｒａｌ Ｉｔａｌｙ． Ｆｏｏｄ ａｎｄ Ｃｈｅｍｉｃａｌ Ｔｏｘｉｃｏｌｏｇｙ， ４９（９）：
２３６５ － ２３６９
Ｄｏｒｓ ＧＣ， Ｃａｌｄａｓ ＳＳ， ｄｏｓ Ｓａｎｔｏｓ Ｈａｃｋｂａｒｔ ＨＣ， Ｐｒｉｍｅｌ ＥＧ， Ｆａｇｕｎ⁃
ｄｅｓ ＣＡＡ， Ｂａｄｉａｌｅ⁃Ｆｕｒｌｏｎｇ Ｅ． ２０１３． Ｆｕｎｇｉｃｉｄｅｓ ａｎｄ ｔｈｅ ｅｆｆｅｃｔｓ
ｏｆ ｍｙｃｏｔｏｘｉｎｓ ｏｎ ｍｉｌｌｉｎｇ ｆｒａｃｔｉｏｎｓ ｏｆ ｉｒｒｉｇａｔｅｄ ｒｉｃｅ． Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ
Ａｇｒｉｃｕｌｔｕｒａｌ ａｎｄ Ｆｏｏｄ Ｃｈｅｍｉｓｔｒｙ， ６１（８）： １９８５ － １９９０
Ｆａｌｃãｏ ＶＣＡ， Ｏｎｏ ＭＡ， ｄｅ Áｖｉｌａ Ｍｉｇｕｅｌ Ｔ， Ｖｉｚｏｎｉ Ｅ， Ｈｉｒｏｏｋａ ＥＹ，
Ｏｎｏ ＥＹＳ． ２０１１． Ｆｕｓａｒｉｕｍ ｖｅｒｔｉｃｉｌｌｉｏｉｄｅｓ： ｅｖａｌｕａｔｉｏｎ ｏｆ ｆｕｍｏｎｉ⁃
ｓｉｎ ｐｒｏｄｕｃｔｉｏｎ ａｎｄ ｅｆｆｅｃｔ ｏｆ ｆｕｎｇｉｃｉｄｅｓ ｏｎ ｉｎ ｖｉｔｒｏ ｉｎｈｉｂｉｔｉｏｎ ｏｆ
ｍｙｃｅｌｉａｌ ｇｒｏｗｔｈ． Ｍｙｃｏｐａｔｈｏｌｏｇｉａ， １７１（１）： ７７ － ８４
Ｆｅｎｇ ＹＺ， Ｔａｏ Ｂ， Ｐａｎｇ ＭＨ， Ｌｉｕ ＹＣ， Ｄｏｎｇ ＪＧ． ２０１１． Ｏｃｃｕｒｒｅｎｃｅ
ｏｆ ｍａｊｏｒ ｍｙｃｏｔｏｘｉｎｓ ｉｎ ｍａｉｚｅ ｆｒｏｍ Ｈｅｂｅｉ Ｐｒｏｖｉｎｃｅ， Ｃｈｉｎａ．
Ｆｒｏｎｔｉｅｒｓ ｏｆ Ａｇｒｉｃｕｌｔｕｒｅ ｉｎ Ｃｈｉｎａ， ５（４）： ４９７ － ５０３
Ｈａｎ ＱＭ． ２００３． Ｃｏｎｔｒｏｌ ｅｆｆｅｃｔ ａｎｄ ｍｅｃｈａｎｉｓｍ ｏｆ ｔｒｉａｚｏｌｅ ｆｕｎｇｉｄｅｓ
Ｆｏｌｉｃｕｒ ａｎｄ Ｃａｒａｍｂａ ｏｎ Ｆｕｓａｒｉｕｍ ｈｅａｄ ｂｌｉｇｈｔ ａｎｄ ｗｈｅａｔ ｓｔｒｉｐｅ
ｒｕｓｔ． Ｐｈ． Ｄ Ｔｈｅｓｉｓ． Ｙａｎｇｌｉｎｇ： Ｎｏｒｔｈｗｅｓｔ Ａ ＆ Ｆ Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｙ （ ｉｎ
Ｃｈｉｎｅｓｅ） ［韩青梅． ２００３． 三唑类杀菌剂 Ｆｏｌｉｃｕｒ 与 Ｃａｒａｍｂａ
对小麦赤霉病和条锈病防治效果及机理的研究． 博士学位
论文． 杨凌： 西北农林科技大学］
Ｈｏｕ Ｙ， Ｘｕ ＪＱ， Ｓｏｎｇ ＹＺ， Ｈｕ ＪＧ， Ｄｕ ＳＦ， Ｋａｎｇ ＹＢ． ２０１４． Ｅｆｆｅｃｔｓ
ｏｆ ｃａｒｂｅｎｄａｚｉｍ， ｄｉｆｅｎｏｃｏｎａｚｏｌｅ ａｎｄ ａｚｏｘｙｓｔｒｏｂｉｎ ｏｎ ｍｙｃｅｌｉａｌ
ｇｒｏｗｔｈ ａｎｄ ｃｏｎｉｄｉａｌ ｇｅｒｍｉｎａｔｉｏｎ ｏｆ Ａｌｔｅｒｎａｒｉａ ｓｕｆｆｒｕｔｉｃｏｓａｅ． Ｊｏｕｒ⁃
ｎａｌ ｏｆ Ｐｌａｎｔ Ｐｒｏｔｅｃｔｉｏｎ， ４１（３）： ３６７ － ３７２ （ ｉｎ Ｃｈｉｎｅｓｅ） ［侯
颖， 徐建强， 宋宇州， 胡建功， 都胜芳， 康业斌． ２０１４． 三
种杀菌剂对牡丹黑斑病菌菌丝生长及分生孢子萌发的影
响． 植物保护学报， ４１（３）： ３６７ － ３７２］
Ｌｉ ＳＸ． ２０１４． Ｔｈｅ ｉｎｆｌｕｅｎｃｅ ｏｆ ｄｉｆｆｅｒｅｎｔ ｅｎｖｉｒｏｎｍｅｎｔａｌ ｆａｃｔｏｒｓ ｏｎ ｔｈｅ
ｆｕｍｏｎｉｓｉｎ ｐｒｏｄｕｃｔｉｏｎ ａｎｄ ＦＵＭ ｇｅｎｅ ｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎ ｉｎ Ｆｕｓａｒｉｕｍ ｖｅｒ⁃
ｔｉｃｉｌｌｉｏｉｄｅｓ． Ｍａｓｔｅｒ Ｔｈｅｓｉｓ． Ｂａｏｄｉｎｇ： Ａｇｒｉｃｕｌｔｕｒａｌ Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｙ ｏｆ
Ｈｅｂｅｉ （ｉｎ Ｃｈｉｎｅｓｅ） ［李世雄． ２０１４． 不同环境因素对拟轮生
镰孢产毒及其 ＦＵＭ 基因表达的影响． 硕士学位论文． 保
定： 河北农业大学］
Ｍａｒíｎ Ｐ， ｄｅ Ｏｒｙ Ａ， Ｃｒｕｚ Ａ， Ｍａｇａｎ Ｎ， Ｇｏｎｚáｌｅｚ⁃Ｊａéｎ ＭＴ． ２０１３．
Ｐｏｔｅｎｔｉａｌ ｅｆｆｅｃｔｓ ｏｆ ｅｎｖｉｒｏｎｍｅｎｔａｌ ｃｏｎｄｉｔｉｏｎｓ ｏｎ ｔｈｅ ｅｆｆｉｃｉｅｎｃｙ ｏｆ
ｔｈｅ ａｎｔｉｆｕｇａｌ ｔｅｂｕｃｏｎａｚｏｌｅ ｃｏｎｔｒｏｌｌｉｎｇ Ｆｕｓａｒｉｕｍ ｖｅｒｔｉｃｉｌｌｉｏｉｄｅｓ
ａｎｄ Ｆｕｓａｒｉｕｍ ｐｒｏｌｉｆｅｒａｔｕｍ ｇｒｏｗｔｈ ｒａｔｅ ａｎｄ ｆｕｍｏｎｉｓｉｎ ｂｉｏｓｙｎｔｈｅ⁃
２４０１ 植　 物　 保　 护　 学　 报 ４２ 卷
ｓｉｓ． Ｉｎｔｅｒｎａｔｉｏｎａｌ Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ Ｆｏｏｄ Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌｏｇｙ， １６５ （ ３ ）：
２５１ － ２５８
Ｍａｔｅｏ ＥＭ， Ｖａｌｌｅ⁃Ａｌｇａｒｒａ ＦＭ， Ｊｉｍéｎｅｚ Ｍ， Ｍａｇａｎ Ｎ． ２０１３． Ｉｍｐａｃｔ
ｏｆ ｔｈｒｅｅ ｓｔｅｒｏｌ⁃ｂｉｏｓｙｎｔｈｅｓｉｓ ｉｎｈｉｂｉｔｏｒｓ ｏｎ ｇｒｏｗｔｈ ｏｆ Ｆｕｓａｒｉｕｍ ｌａｎ⁃
ｇｓｅｔｈｉａｅ ａｎｄ ｏｎ Ｔ⁃２ ａｎｄ ＨＴ⁃２ ｔｏｘｉｎ ｐｒｏｄｕｃｔｉｏｎ ｉｎ ｏａｔ ｇｒａｉｎ ｕｎ⁃
ｄｅｒ ｄｉｆｆｅｒｅｎｔ ｅｃｏｌｏｇｉｃａｌ ｃｏｎｄｉｔｉｏｎｓ． Ｆｏｏｄ Ｃｏｎｔｒｏｌ， ３４ （ ２ ）：
５２１ － ５２９
Ｍａｔｅｏ ＥＭ， Ｖａｌｌｅ⁃Ａｌｇａｒｒａ ＦＭ， Ｍａｔｅｏ Ｒ， Ｊｉｍéｎｅｚ Ｍ， Ｍａｇａｎ Ｎ．
２０１１． Ｅｆｆｅｃｔ ｏｆ ｆｅｎｐｒｏｐｉｍｏｒｐｈ， ｐｒｏｃｈｌｏｒａｚ ａｎｄ ｔｅｂｕｃｏｎａｚｏｌｅ ｏｎ
ｇｒｏｗｔｈ ａｎｄ ｐｒｏｄｕｃｔｉｏｎ ｏｆ Ｔ⁃２ ａｎｄ ＨＴ⁃２ ｔｏｘｉｎｓ ｂｙ Ｆｕｓａｒｉｕｍ ｌａｎ⁃
ｇｓｅｔｈｉａｅ ｉｎ ｏａｔ⁃ｂａｓｅｄ ｍｅｄｉｕｍ． Ｉｎｔｅｒｎａｔｉｏｎａｌ Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ Ｆｏｏｄ Ｍｉ⁃
ｃｒｏｂｉｏｌｏｇｙ， １５１（３）： ２８９ － ２９８
Ｍｅｓｔｅｒｈáｚｙ Á， Ｔóｔｈ Ｂ， Ｖａｒｇａ Ｍ， Ｂａｒｔóｋ Ｔ， Ｓｚａｂó⁃Ｈｅｖéｒ Á， Ｆａｒáｄｙ
Ｌ， Ｌｅｈｏｃｚｋｉ⁃Ｋｒｓｊａｋ Ｓ． ２０１１． Ｒｏｌｅ ｏｆ ｆｕｎｇｉｃｉｄｅｓ， ａｐｐｌｉｃａｔｉｏｎ ｏｆ
ｎｏｚｚｌｅ ｔｙｐｅｓ， ａｎｄ ｔｈｅ ｒｅｓｉｓｔａｎｃｅ ｌｅｖｅｌ ｏｆ ｗｈｅａｔ ｖａｒｉｅｔｉｅｓ ｉｎ ｔｈｅ
ｃｏｎｔｒｏｌ ｏｆ Ｆｕｓａｒｉｕｍ ｈｅａｄ ｂｌｉｇｈｔ ａｎｄ ｄｅｏｘｙｎｉｖａｌｅｎｏｌ． Ｔｏｘｉｎｓ， ３
（１１）： １４５３ － １４８３
Ｍｏｒａｌｅｓ⁃Ｒｏｄｒíｇｕｅｚ Ｉ， ｄｅ Ｙａñｅｚ⁃Ｍｏｒａｌｅｓ ＭＪ， Ｓｉｌｖａ⁃Ｒｏｊａｓ ＨＶ，
Ｇａｒｃíａ⁃ｄｅ⁃ｌｏｓ⁃Ｓａｎｔｏｓ Ｇ， Ｇｕｚｍáｎ⁃ｄｅ⁃Ｐｅñａ ＤＡ． ２００７． Ｂｉｏｄｉｖｅｒ⁃
ｓｉｔｙ ｏｆ Ｆｕｓａｒｉｕｍ ｓｐｅｃｉｅｓ ｉｎ Ｍｅｘｉｃｏ ａｓｓｏｃｉａｔｅｄ ｗｉｔｈ ｅａｒ ｒｏｔ ｉｎ
ｍａｉｚｅ， ａｎｄ ｔｈｅｉｒ ｉｄｅｎｔｉｆｉｃａｔｉｏｎ ｕｓｉｎｇ ａ ｐｈｙｌｏｇｅｎｅｔｉｃ ａｐｐｒｏａｃｈ．
Ｍｙｃｏｐａｔｈｏｌｏｇｉａ， １６３（１）： ３１ － ３９
Ｍｕ ＬＹ． １９９４． Ｔｈｅ ｒｅｓｅａｒｃｈ ｔｅｃｈｎｉｑｕｅ ｏｆ ｐｌａｎｔ ｃｈｅｍｉｃａｌ ｐｒｏｔｅｃｔｉｏｎ．
Ｂｅｉｊｉｎｇ： Ｃｈｉｎａ Ａｇｒｉｃｕｌｔｕｒｅ Ｐｒｅｓｓ， ｐｐ． ７９ － ８１ （ ｉｎ Ｃｈｉｎｅｓｅ）
［慕立义． １９９４． 植物化学保护研究方法． 北京： 中国农业
出版社， ｐｐ． ７９ － ８１］
Ｍｕｎｋｖｏｌｄ ＧＰ． ２００３． Ｅｐｉｄｅｍｉｏｌｏｇｙ ｏｆ Ｆｕｓａｒｉｕｍ ｄｉｓｅａｓｅｓ ａｎｄ ｔｈｅｉｒ
ｍｙｃｏｔｏｘｉｎｓ ｉｎ ｍａｉｚｅ ｅａｒｓ． Ｅｕｒｏｐｅａｎ Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ Ｐｌａｎｔ Ｐａｔｈｏｌｏｇｙ，
１０９（７）： ７０５ － ７１３
Ｎｅｌｓｏｎ ＰＥ， Ｄｅｓｊａｒｄｉｎｓ ＡＥ， Ｐｌａｔｔｎｅｒ ＲＤ． １９９３． Ｆｕｍｏｎｉｓｉｎｓ， ｍｙｃｏ⁃
ｔｏｘｉｎｓ ｐｒｏｄｕｃｅｄ ｂｙ Ｆｕｓａｒｉｕｍ ｓｐｅｃｉｅｓ： ｂｉｏｌｏｇｙ， ｃｈｅｍｉｓｔｒｙ， ａｎｄ
ｓｉｇｎｉｆｉｃａｎｃｅ． Ａｎｎｕａｌ Ｒｅｖｉｅｗ ｏｆ Ｐｈｙｔｏｐａｔｈｏｌｏｇｙ， ３１（１）： ２３３ －
２５２
Ｒａｍｉｒｅｚ ＭＬ， Ｃｈｕｌｚｅ Ｓ， Ｍａｇａｎ Ｎ． ２００４． Ｉｍｐａｃｔ ｏｆ ｅｎｖｉｒｏｎｍｅｎｔａｌ
ｆａｃｔｏｒｓ ａｎｄ ｆｕｎｇｉｃｉｄｅｓ ｏｎ ｇｒｏｗｔｈ ａｎｄ ｄｅｏｘｉｎｉｖａｌｅｎｏｌ ｐｒｏｄｕｃｔｉｏｎ
ｂｙ Ｆｕｓａｒｉｕｍ ｇｒａｍｉｎｅａｒｕｍ ｉｓｏｌａｔｅｓ ｆｒｏｍ Ａｒｇｅｎｔｉｎｉａｎ ｗｈｅａｔ．
Ｃｒｏｐ Ｐｒｏｔｅｃｔｉｏｎ， ２３（２）： １１７ － １２５
Ｓｅｔｙａｂｕｄｉ ＦＭＣＳ， Ｂöｈｍ Ｊ， Ｍａｙｅｒ ＨＫ， Ｒａｚａｚｚｉ ＦＥ． ２０１２． Ａｎａｌｙｓｉｓ
ｏｆ ｄｅｏｘｙｎｉｖａｌｅｎｏｌ ａｎｄ ｄｅ⁃ｅｐｏｘｙ⁃ｄｅｏｘｙｎｉｖａｌｅｎｏｌ ｉｎ ｈｏｒｓｅ ｂｌｏｏｄ
ｔｈｒｏｕｇｈ ｌｉｑｕｉｄ ｃｈｒｏｍａｔｏｇｒａｐｈｙ ａｆｔｅｒ ｃｌｅａｎ⁃ｕｐ ｗｉｔｈ ｉｍｍｕｎｏａｆ⁃
ｆｉｎｉｆｔｙ ｃｏｌｕｍｎ． Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ Ａｎｉｍａｌ ａｎｄ Ｖｅｔｅｒｉｎａｒｙ Ａｄｖａｎｃｅｓ， ２：
２１ － ３１
Ｓｏｎｇ ＷＢ， Ｄｏｎｇ ＨＦ， Ｃｈｅｎ Ｗ， Ｄａｉ ＸＤ， Ｌｉｕ ＣＹ， Ｌｉ ＪＪ， Ｗｕ ＪＹ．
２００５． Ｐｒｏｇｒｅｓｓ ｏｎ ｍａｉｚｅ ｅａｒ ｒｏｔ． Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ Ｈｅｎａｎ Ａｇｒｉｃｕｌｔｕｒａｌ
Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｙ， ３９（４）： ３６８ － ３７６ （ ｉｎ Ｃｈｉｎｅｓｅ） ［宋伟彬， 董华
芳， 陈威， 代小冬， 刘春元， 李晶晶， 吴建宇． ２００５． 玉米
穗粒腐病研究进展． 河南农业大学学报， ３９ （４）： ３６８ －
３７６］
Ｓｕｉ ＹＨ， Ｘｉａｏ ＳＱ， Ｄｏｎｇ Ｘ， Ｘｕｅ ＣＳ， Ｃｈｅｎ Ｊ． ２０１４． Ｔｏｘｉｃｉｔｙ ａｎｄ
ｆｉｅｌｄ ｃｏｎｔｒｏｌ ｅｆｆｅｃｔ ｏｆ ｎｉｎｅ ｆｕｎｇｉｃｉｄｅｓ ａｇａｉｎｓｔ Ｆｕｓａｒｉｕｍ ｅａｒ ｒｏｔ．
Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ Ｍａｉｚｅ Ｓｃｉｅｎｃｅｓ， ２２ （２）： １４５ － １４９ （ ｉｎ Ｃｈｉｎｅｓｅ）
［隋韵涵， 肖淑芹， 董雪， 薛春生， 陈捷． ２０１４． 九种杀菌剂
对 Ｆｕｓａｒｉｕｍ ｖｅｒｔｉｃｉｌｌｉｏｉｄｅｓ和 Ｆ． ｇｒａｍｉｎｅａｒｕｍ毒力及玉米穗腐
病的防治效果． 玉米科学， ２２（２）： １４５ － １４９］
Ｓｙｄｅｎｈａｍ ＥＷ， Ｔｈｉｅｌ ＰＧ， Ｍａｒａｓａｓ ＷＦＯ， Ｓｈｅｐｈａｒｄ ＧＳ， ｖａｎ
Ｓｃｈａｌｋｗｙｋ ＤＪ， Ｋｏｃｈ ＫＲ． １９９０． Ｎａｔｕｒａｌ ｏｃｃｕｒｒｅｎｃｅ ｏｆ ｓｏｍｅ
Ｆｕｓａｒｉｕｍ ｍｙｃｏｔｏｘｉｎｓ ｉｎ ｃｏｒｎ ｆｒｏｍ ｌｏｗ ａｎｄ ｈｉｇｈ ｅｓｏｐｈａｇｅａｌ
ｃａｎｃｅｒ ｐｒｅｖａｌｅｎｃｅ ａｒｅａｓ ｏｆ ｔｈｅ Ｔｒａｎｓｋｅｉ， Ｓｏｕｔｈｅｒｎ Ａｆｒｉｃａ． Ｊｏｕｒ⁃
ｎａｌ ｏｆ Ａｇｒｉｃｕｌｔｕｒａｌ ａｎｄ Ｆｏｏｄ Ｃｈｅｍｉｓｔｒｙ， ３８（１０）： １９００ － １９０３
Ｗａｎｇ Ｅ， Ｎｏｒｒｅｄ ＷＰ， Ｂａｃｏｎ ＣＷ， Ｒｉｌｅｙ ＲＴ， Ｍｅｒｒｉｌｌ ＡＨ Ｊｒ． １９９１．
Ｉｎｈｉｂｉｔｉｏｎ ｏｆ ｓｐｈｉｎｇｏｌｉｐｉｄ ｂｉｏｓｙｎｔｈｅｓｉｓ ｂｙ ｆｕｍｏｎｉｓｉｎｓ： ｉｍｐｌｉｃａ⁃
ｔｉｏｎｓ ｆｏｒ ｄｉｓｅａｓｅｓ ａｓｓｏｃｉａｔｅｄ ｗｉｔｈ Ｆｕｓａｒｉｕｍ ｍｏｎｉｌｉｆｏｒｍｅ． Ｔｈｅ
Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ Ｂｉｏｌｏｇｉｃａｌ Ｃｈｅｍｉｓｔｒｙ， ２６６（２２）： １４４８６ － １４４９０
Ｗａｎｇ ＸＭ， Ｊｉｎ ＱＭ， Ｓｈｉ Ｊ， Ｗａｎｇ ＺＹ， Ｌｉ Ｘ． ２００６． Ｔｈｅ ｓｔａｔｕｓ ｏｆ
ｍａｉｚｅ ｄｉｓｅａｓｅｓ ａｎｄ ｔｈｅ ｐｏｓｓｉｂｌｅ ｅｆｆｅｃｔ ｏｆ ｖａｒｉｅｔｙ ｒｅｓｉｓｔａｎｃｅ ｏｎ
ｄｉｓｅａｓｅ ｏｃｃｕｒｒｅｎｃｅ ｉｎ ｔｈｅ ｆｕｔｕｒｅ． Ａｃｔａ Ｐｈｙｔｏｐａｔｈｏｌｏｇｉｃａ Ｓｉｎｉｃａ，
３６（１）： １ － １１ （ｉｎ Ｃｈｉｎｅｓｅ） ［王晓鸣， 晋齐鸣， 石洁， 王作
英， 李晓． ２００６． 玉米病害发生现状与推广品种抗性对未来
病害发展的影响． 植物病理学报， ３６（１）： １ － １１］
Ｗｉｌｌｙｅｒｄ ＫＴ， Ｌｉ Ｃ， Ｍａｄｄｅｎ ＬＶ， Ｂｒａｄｌｅｙ ＣＡ， Ｂｅｒｇｓｔｒｏｍ ＧＣ，
Ｓｗｅｅｔｓ ＬＥ， ＭｃＭｕｌｌｅｎ Ｍ， Ｒａｎｓｏｍ ＪＫ， Ｇｒｙｂａｕｓｋａｓ Ａ， Ｏｓｂｏｒｎｅ
Ｌ， ｅｔ ａｌ． ２０１２． Ｅｆｆｉｃａｃｙ ａｎｄ ｓｔａｂｉｌｉｔｙ ｏｆ ｉｎｔｅｇｒａｔｉｎｇ ｆｕｎｇｉｃｉｄｅ
ａｎｄ ｃｕｌｔｉｖａｒ ｒｅｓｉｓｔａｎｃｅ ｔｏ ｍａｎａｇｅ Ｆｕｓａｒｉｕｍ ｈｅａｄ ｂｌｉｇｈｔ ａｎｄ ｄｅ⁃
ｏｘｙｎｉｖａｌｅｎｏｌ ｉｎ ｗｈｅａｔ． Ｐｌａｎｔ Ｄｉｓｅａｓｅ， ９６（７）： ９５７ － ９６７
Ｚｈａｎｇ ＹＪ． ２００９． Ｅｆｆｅｃｔ ｏｆ ｆｕｎｇｉｃｉｄｅｓ ｏｎ ＤＯＮ ｐｒｏｄｕｃｔｉｏｎ ｂｙ Ｆｕｓａｒｉ⁃
ｕｍ ｇｒａｍｉｎｅａｒｕｍ ａｎｄ ｗｈｅａｔ ｓｅｎｅｓｃｅｎｃｅ ｐｈｙｓｉｏｌｏｇｙ． Ｐｈ． Ｄ Ｔｈｅ⁃
ｓｉｓ． Ｎａｎｊｉｎｇ： Ｎａｎｊｉｎｇ Ａｇｒｉｃｕｌｔｕｒａｌ Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｙ （ｉｎ Ｃｈｉｎｅｓｅ） ［张
艳军． ２００９． 杀菌剂对禾谷镰孢菌 ＤＯＮ 毒素产生和小麦衰
老生理的影响． 博士学位论文． 南京： 南京农业大学］
（责任编辑：李美娟）
３４０１６ 期 郭聪聪等： 杀菌剂对玉米穗腐病菌的毒力及毒素产生的影响