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The impact factors on differentiation of somatic compatibility of Rhizoctonia solani AG-1-IA

影响水稻纹枯病菌营养体亲和性分化的因子



全 文 :植物病理学报
ACTA PHYTOPATHOLOGICA SINICA  45(3): 225 ̄231(2015)
收稿日期: 2014 ̄07 ̄10ꎻ 修回日期: 2015 ̄01 ̄10
基金项目: 国家自然科学基金资助项目(30860159ꎻ 31101122)ꎻ 广西科技基础平台建设基金项目(10 ̄046 ̄11)ꎻ 广西自然科学基金(桂科
青 0728030ꎻ2011GXNSFA018076)ꎻ 广西农科院公益维持项目(桂农科 2012GW06)
通讯作者: 黎起秦ꎬ教授ꎬ主要从事植物病理学研究ꎻE ̄mail: qqli5806@gxu.edu.cn
胡春锦ꎬ研究员ꎬ主要从事农业微生物研究ꎻE ̄mail: chunjin ̄hu@126.com
第一作者: 余功明ꎬ河南商城人ꎬ博士研究生ꎬ主要从事水稻纹枯病菌遗传分化研究ꎻE ̄mail: yugongming2004@163.comꎮ
doi:10.13926 / j.cnki.apps.2015.03.001
影响水稻纹枯病菌营养体亲和性分化的因子
余功明1ꎬ2ꎬ3ꎬ 史国英2ꎬ 魏源文3ꎬ 岑贞陆2ꎬ 黄思良4ꎬ 胡春锦2∗ꎬ 黎起秦1∗
( 1广西大学农学院ꎬ南宁 530004ꎻ 2广西农业科学院微生物研究所ꎬ南宁 530007ꎻ
3广西作物遗传改良生物技术重点开放实验室ꎬ南宁 530007ꎻ 4南阳师范学院生命科学与技术学院ꎬ南阳 473061)
摘要:为了探明影响水稻纹枯病菌营养体亲和性分化的因子ꎬ将水稻纹枯病菌菌株 cx ̄2在不同水稻品种继代接种ꎬ并在含
不同杀菌剂、具不同 pH及不同温度条件的 PDA 平板上继代培养ꎬ用对峙法测定继代菌株与原始接种菌株的营养体亲和
性ꎮ 此外ꎬ对营养体亲和性分化菌株与原始菌株的 AFLP指纹图谱进行比较ꎮ 结果显示ꎬ在供试的 30个水稻品种上连续接
种 4次后ꎬ从 9个水稻品种中分离出与原始菌株营养体不亲和的菌株ꎮ 菌株在不同 pH值的 PDA平板继代培养 4次后ꎬ在
pH偏碱性端(pH 10、pH 11)开始出现营养体亲和性分化的菌株ꎮ 在不同农药和温度条件下继代培养 10 次的菌株中没有
分离到营养体亲和性分化的菌株ꎮ 营养体亲和性分化菌株与原始菌株的 AFLP指纹图谱没有差异ꎮ
关键词:水稻ꎻ 水稻纹枯病菌ꎻ 营养体亲和性ꎻ AFLP
The impact factors on differentiation of somatic compatibility of Rhizoctonia solani
AG ̄1 ̄IA  YU Gong ̄ming1ꎬ2ꎬ3ꎬ SHI Guo ̄ying2ꎬ WEI Yuan ̄wen3ꎬ CEN Zhen ̄lu2ꎬ HUANG Si ̄liang4ꎬ HU
Chun ̄jin2ꎬ LI Qi ̄qin1   ( 1College of Agricultureꎬ Guangxi Universityꎬ Nanning 530004ꎬ Chinaꎻ 2Microbiology Research Insti ̄
tuteꎬ Guangxi Academy of Agricultural Sciencesꎬ Nanning 530007ꎬ Chinaꎻ 3Guangxi Crop Genetic Improvement and Biotechnology
Labꎬ Nanning 530007ꎬ Chinaꎻ 4School of Life Sciences and Technologyꎬ Nanyang Normal Universityꎬ Nanyang 473061ꎬ China)
Abstract: To clarify the factors influencing differentiation of somatic compatibility in Rhizoctonia solani
AG ̄1 ̄IA causing rice sheath blightꎬ the pathogen strain cx ̄2 was consecutively inoculated into different rice va ̄
rieties and subcultured on PDA plates with different fungicides / pHs or at different temperatures. The comparison
of somatic compatibility was made between the recovered / subcultured isolates and their original strain (cx ̄2)
based on barrage zone formation on the face ̄to ̄face cultures. Meanwhileꎬ amplified fragment length polymor ̄
phism (AFLP) was used to determine genetic difference between the recovered / subcultured isolates with altera ̄
tions in somatic compatibility and their original strain (cx ̄2) . The results showed that the isolates with altera ̄
tions in somatic compatibility were recovered from 9 out of 30 rice varieties tested after four consecutive inocula ̄
tions. The subcultured isolates with alterations in somatic compatibility were also detected after four consecutive
transfers on the PDA plates with alkaline pH levels 10 and 11. Howeverꎬ no subcultured isolates with alterations
in somatic compatibility were found even after ten consecutive transfers on the PDA plates containing different
fungicides or at different temperatures. The isolates with alterations in somatic compatibility showed the same
AFLP fingerprint patterns with their original strain (cx ̄2) .
Key words: riceꎻ Rhizoctonia solani AG ̄1 ̄IAꎻ somatic compatibilityꎻ AFLP
 
植物病理学报 45卷
中图分类号: S432.44          文献标识码: A          文章编号: 0412 ̄0914(2015)03 ̄0225 ̄07
    真菌的营养体不亲和(vegetative incompatibili ̄
ty)又称为体细胞不亲和( somatic incompatibility)
或异核体不亲和(heterokaryon incompatibility)ꎬ可
阻止遗传上明显差异的个体间的融合ꎬ以保持真菌
遗传上的稳定性ꎮ 营养体不亲和性在子囊菌、担子
菌等真菌中普遍存在[1]ꎮ 真菌营养体亲和性菌群
分化已成为研究病原真菌遗传变异、种群地理分
布、病害流行规律、生理小种鉴定、病原菌致病性变
异以及病害生物防治的重要手段[2]ꎮ
    纹枯病是世界性的水稻三大病害之一ꎬ对水稻
的为害日趋严重ꎬ可导致水稻产量减少 50%以
上[3~4]ꎮ 种植抗病品种是一般植物病害防治的主
要措施ꎬ但是ꎬ对水稻纹枯病的遗传育种研究在多
数水稻生产国未能有效地开展起来ꎬ虽然也发掘了
一批具有一定抗性的抗源[5]、对抗性基因进行了
定位并发现了一些主效基因[6]ꎬ但能在水稻生产
上推广种植的抗水稻纹枯病的品种未见报道ꎮ 造
成这种现象的主要原因之一是水稻纹枯病的致病
菌具有强腐生性和宽寄主范围[7]ꎮ
    水稻纹枯病菌(Rhizoctonia solani AG ̄1 ̄IA)是
一类半腐生的植物病原真菌[6]ꎬ对外界环境具有
较强的适应能力ꎬ研究表明外界营养环境对该菌的
生长和菌核形成都具有非常大的影响[8]ꎮ 水稻纹
枯病菌在田间存在复杂的遗传分化ꎬ来源于不同作
物或不同地理区域的菌株均存在显著的遗传分
化[9~12]ꎬ同一融合群甚至同一融合亚群的菌株间
也存在致病力分化[13~14]或营养体亲和性分化现
象[15]ꎮ 作者前期研究发现分离自同一水稻田的水
稻纹枯病菌菌株两两之间存在高比例的营养体不
亲和现象ꎮ 阐明该菌营养体不亲和性的分化机理ꎬ
是了解病原菌种群遗传变异规律及其可持续防控
的重要基础ꎮ 本文通过对不同环境因子影响水稻
纹枯病菌营养体亲和性的分化进行分析ꎬ拟明确水
稻纹枯病菌的适应性变异情况ꎬ为解释该菌田间复
杂的遗传结构提供依据ꎬ同时也为进一步研究水稻
纹枯病菌演替的遗传规律ꎬ尤其为剖析病原菌与寄
主互作在演替中的作用奠定基础ꎮ
1  材料与方法
1.1  供试水稻纹枯病菌
    原始接种菌株为水稻纹枯病菌强致病力菌株
cx ̄2ꎬ属于 R. solani 的 AG ̄1 ̄IA融合群ꎮ 该菌株于
2006年从广西水稻病株上分离获得ꎬ风干菌核保
存于广西农业科学院微生物研究所菌种贮藏室
-40℃冰箱备用ꎮ
1.2  营养体亲和性测定
    水稻纹枯病菌营养体亲和性鉴定参考 Mccabe
等[16]的方法ꎬ将供试菌株与原始接种菌株在马铃
薯葡萄糖琼脂培养基(PDA:土豆 200 g、葡糖糖
10 g、琼脂 10 g、水 1 000 mL)平板上进行对峙培
养ꎬ置 28℃恒温ꎬ以原始菌株的菌丝块对峙培养为
对照ꎬ每处理 3次重复ꎬ72 h 后观察两两菌株菌落
交界处菌株间的亲和性反应ꎮ 两菌株交接处出现
明显隔离带的为营养体不亲和性菌株ꎬ没有出现隔
离带的为营养体亲和性菌株ꎮ
1.3  不同水稻品种继代接种及再分离菌株的营养
体亲和性检测
    供试的水稻品种见表 1ꎮ 水稻的种植采用直
播法进行盆栽ꎬ种植前对土壤进行消毒处理ꎬ以保
证土壤不带病原菌菌核ꎮ 所有水稻品种均在同一
时间种植ꎬ水稻盆栽后置于温室内(昼温 28℃ ±
2℃ꎬ夜温 22℃ ±2℃)并按常规栽培措施进行管
理ꎮ 水稻种植 40 d后进行第一次接种ꎬ以菌株cx ̄2
在 PDA上培养 2 d的菌丝块(d = 5 mm)作为原始
接种体接种于水稻倒 2叶的叶鞘内侧ꎬ每盆接种一
株ꎬ接种后用灭菌水喷湿接种部位再用灭菌的塑料
袋包裹ꎬ每个水稻材料接种 3 盆ꎬ以同一盆未接种
的植株为对照ꎬ5 d 后检查确认未接种的植株是否
发病ꎬ收集接种部位典型的病斑一分为二ꎬ一半用
于病原菌的分离ꎬ另一半作为接种体接种到另一盆
相同水稻品种上ꎬ以此类推ꎬ每 5 d 进行下一轮的
接种和病原菌再分离ꎬ共进行 5次ꎮ 分别收集保存
再分离菌株ꎬ参照 1.2的方法测定再分离菌株与原
始菌株的营养体亲和性ꎮ
1.4  不同杀菌剂胁迫对稻纹枯病菌连续继代菌株
营养体亲和性的影响
    将菌株 cx ̄2 分别接种到含有井冈霉素、甲基
硫菌灵、丙环唑、苯醚甲环唑 4种农药的 PDA平板
上培养ꎬ4种农药在 PDA平板的浓度均为菌株cx ̄2
622
 
  3期 余功明ꎬ等:影响水稻纹枯病菌营养体亲和性分化的因子
的抑制中浓度(EC50)ꎬ分别为 9. 81 mg / L、10. 23
mg / L、0.05 mg / L和 0.04 mg / Lꎬ每处理 3 次重复ꎬ
5 d继代一次ꎬ连续培养 10 代ꎬ用 1.2 的方法测试
各继代菌株与原始菌株间的营养体亲和性ꎮ
1.5  不同培养温度对稻纹枯病菌连续继代菌株营
养体亲和性的影响
    将菌株 cx ̄2 接种到 PDA 平板上ꎬ分别置于
5℃、10℃、15℃、20℃、25℃、30℃、35℃和 40℃的
恒温下培养ꎬ5 d传代一次ꎬ连续培养 10代ꎬ每处理
3次重复ꎮ 用 1.2的方法测试各继代菌株与原始菌
株间的营养体亲和性ꎮ
1.6  不同 pH值对稻纹枯病菌连续继代菌株营养
体亲和性的影响
    将菌株 cx ̄2接种到 pH3、pH4、pH5、pH6、pH7、
pH8、pH9、pH10 和 pH11 的 PDA 平板上ꎬ在 28℃
下 5 d 传代一次ꎬ连续培养 10 代ꎬ每处理 3 次重
复ꎮ 用 1.2 的方法测试各继代菌株与原始菌株间
的营养体亲和性ꎮ
1.7  AFLP分析
    对分离自不同水稻材料和不同 pH 培养基的
营养体亲和性分化菌株与原始菌株进行 AFLP 分
析ꎮ 菌株总 DNA 的提取参考 Vos 等[17]的方法ꎮ
内切酶选用 Taq I 和 Ase I (购自 MBI Fermantas
公司)ꎬ基因组 DNA 先用 Taq I [10×tango buffer
3.0 μL、DNA(100 ng / μL)4.0 μL、 Taq I (10 U /
μL) 1.0 μL、 ddH2O 22.0 μL] 在 65℃下水浴酶切
3~4 hꎬ然后在 Taq I 酶切体系中加入 Ase I 酶切液
[10×tango buffer 1.0 μL、 Ase I(10 U / μL) 1.0 μL、
ddH2O 8.0 μL]ꎬ37℃恒温水浴继续酶切 4 ~ 5 hꎮ
酶切结束后ꎬ在 Ase I 酶切体系中加 10 μL 接头反
应连接液(Ase I 接头 1.0 μL、Taq I 接头 1.0 μL、
T4 DNA连接酶 1.0 μL、10×tango buffer 1.0 μL、
ddH2O 6.0 μL)ꎬ16℃恒温水浴连接过夜ꎮ 将酶切
连接产物稀释 10倍用于预扩增ꎮ
    预扩增采用 T+1 引物(5′ ̄GACGATGAGTC ̄
CTGACCGAC ̄3′)和 A + 1 引物 ( 5′ ̄GTAGACT ̄
GCGTACCTAATA ̄3′)ꎮ 预扩增产物稀释 15 倍用
于选择性扩增ꎬ选择性扩增采用 8条 T+2引物(T+
CAAꎬ T+CACꎬ T+CAGꎬ T+CATꎬ T+CTAꎬ T+
CTCꎬ T+CTGꎬ T+CTT)和 8 条 A+2 引物(A+
AACꎬA+AAGꎬA+ACAꎬ A+ACTꎬ A+ACCꎬ A+
ACGꎬ A+AGCꎬ A+GG)ꎬ 反应产物采用 6%的变
性聚丙烯酰胺凝胶电泳检测ꎮ
2  结果与分析
2.1  不同水稻品种对菌株 cx ̄2 营养体亲和性分
化的影响
    菌株 cx ̄2在 30 个水稻品种上连续接种 5 代
后ꎬ分离获得 450 株子代菌株ꎬ经过与原始菌株
对峙培养ꎬ发现 12 株子代菌株与原始菌株在对
峙培养时菌落交界处有明显的隔离带ꎬ为营养体
亲和性分化菌株(图 1、表 1)ꎬ12 株营养体亲和性
分化菌株分别来自 9 个不同水稻品种上连续接
种 4 次后的再分离菌株ꎬ且这 9 个水稻品种每次
接种的 3 株植株中ꎬ只有 1 株分离到营养体亲和
性分化菌株ꎮ
Fig. 1  Somatic compatibility test of original
strain cx ̄2 and recovered isolates
A: CK(somatic compatibility)ꎻ B: Somatic incompatibility.
2.2  供试杀菌剂和温度对菌株 cx ̄2 营养体亲和
性分化的影响
    在供试杀菌剂和不同温度处理中ꎬ菌株 cx ̄2
除在含有井冈霉素 PDA 平板上菌丝体生长异常
(菌丝分枝异常ꎬ无气生菌丝ꎬ菌丝体质地变硬)
外ꎬ在其他杀菌剂和不同温度 PDA 平板上菌丝体
生长正常ꎮ 本试验共获得 480 株继代分离物ꎮ 营
养体亲和性鉴定结果表明ꎬ所有继代分离物与原始
菌株 cx ̄2进行对峙培养时均表现营养体亲和反应
(数据未示)ꎬ说明温度和供试杀菌剂对该菌的营
养体亲和性没有影响ꎮ
722
 
植物病理学报 45卷
2.3  pH对菌株 cx ̄2营养体亲和性分化的影响
    不同 pH的 PDA平板上培养ꎬ共获得 270株继
代分离物ꎮ 营养体亲和性测定结果表明ꎬ其中 30
株继代分离物与原始菌株 cx ̄2进行对峙培养时表
现营养体不亲和性反应(表 2)ꎬ且这 30 株继代分
离物均培养于 pH10 和 pH11 的 PDA 平板上ꎮ 该
结果表明ꎬ水稻纹枯病菌菌株 cx ̄2 在碱性条件下
生长时容易发生营养体亲和性分化ꎮ
Table 1  Somatic compatibility tests of original strain cx ̄2 and recovered isolates
from different rice varieties
Rice variety
Reaction∗
1 2 3 4 5
Ⅰ Ⅱ Ⅲ Ⅰ Ⅱ Ⅲ Ⅰ Ⅱ Ⅲ Ⅰ Ⅱ Ⅲ Ⅰ Ⅱ Ⅲ
Tetep + + + + + + + + + + + + + + +
Guichao2# + + + + + + + + + + + + + + +
Guangzhongai + + + + + + + + + + + + + + +
Youzhiximi + + + + + + + + + + + + + + +
Guixiang2# + + + + + + + + + + + + + + +
Boxiangzhan3# + + + + + + + + + + + + + + +
Qiguizhan + + + + + + + + + + + - + + -
Youzhan8# + + + + + + + + + + + + + + -
Liushayouzhan + + + + + + + + + + + + + + +
Guihuazhan + + + + + + + + + + + + + - +
Jinxiangsimiao + + + + + + + + + + + + + + +
Jufengzhan + + + + + + + + + + + + + + +
Hongxiangdao823 + + + + + + + + + + + + + + +
Yumeizhan + + + + + + + + + + + + + + +
Yutai209 + + + + + + + + + - + + - + +
Liushazhan + + + + + + + + + + + - + + -
Zhaohezhan + + + + + + + + + + + + + + +
Fengxiang3# + + + + + + + + + + + + + + +
Zhaohexiang + + + + + + + + + + + + + + +
Efeng28 + + + + + + + + + + + + + + +
Huagan6# + + + + + + + + + + + + + + -
Lvxiangzhan + + + + + + + + + + + + + + +
Yuhuaxiang1# + + + + + + + + + + + + + + +
Yufeng3# + + + + + + + + + + + + + - +
Guizhao1# + + + + + + + + + + + + + + +
Liusha310 + + + + + + + + + + + + + + +
Liuyuzhan + + + + + + + + + + + + - + +
Zhaoxiang1# + + + + + + + + + + + + + + +
Zhongguangyou2# + + + + + + + + + + + + + - +
Yalin9# + + + + + + + + + + + + + + +
Control + + + + + + + + + + + + + + +
  “∗”:The numbers 1-5 denote the time of consecutive inoculationⅠꎬ Ⅱ and Ⅲ represent the time of replicates. “+” and “-”
represent somatic compatibility and somatic incompatibility reactionsꎬ respectively.
822
 
  3期 余功明ꎬ等:影响水稻纹枯病菌营养体亲和性分化的因子
Table 2  Somatic compatibility tests of original strain cx ̄2 and subcultured strains
grown on PDA plates with diverse pHs
pH
Reaction∗
1 2 3 4 5 6 7 8 9 10
ⅠⅡⅢ ⅠⅡⅢ ⅠⅡⅢ ⅠⅡⅢ ⅠⅡⅢ ⅠⅡⅢ ⅠⅡⅢ ⅠⅡⅢ ⅠⅡⅢ ⅠⅡⅢ
3 + + + + + + + + + + + + + + + + + + + + + + + + + + + + + +
4 + + + + + + + + + + + + + + + + + + + + + + + + + + + + + +
5 + + + + + + + + + + + + + + + + + + + + + + + + + + + + + +
6 + + + + + + + + + + + + + + + + + + + + + + + + + + + + + +
7 + + + + + + + + + + + + + + + + + + + + + + + + + + + + + +
8 + + + + + + + + + + + + + + + + + + + + + + + + + + + + + +
9 + + + + + + + + + + + + + + + + + + + + + + + + + + + + + +
10 + + + + + + + + + + + - + + - + - - + - - + - - - - - - - -
11 + + + + + + + + + - - + - - + - - + - - + - - + - - - - - -
Control + + + + + + + + + + + + + + + + + + + + + + + + + + + + + +
“∗”:The numbers 1 ̄10 denote the time of consecutive subculture. Ⅰꎬ Ⅱ and Ⅲ represent the time of replicates. “+” and “-”
represent somatic compatibility and somatic incompatibility reactionsꎬ respectively.
2.4  营养体不亲和菌株的 AFLP图谱分析
    对分离自不同水稻材料和不同 pH 培养基的
营养体亲和性分化菌株与原始菌株进行 AFLP 分
析ꎮ 结果表明ꎬ从 8 条 A 引物和 8 条 T 引物的 64
对组合中共筛选出 6 对扩增效果较好的引物对组
合ꎬ经 6%的变性聚丙烯酰胺凝胶电泳检测ꎬ各引
物对均能扩增出 40 ~ 60 个大小在 0.05 kb ~ 0.5 kb
的清晰条带ꎬ但营养体亲和性分化菌株与原始菌株
在各引物对扩增产物的 AFLP 指纹图谱上没有差
异ꎮ
3  讨论
    营养体亲和性最早是 Grindle 于 1963 年在研
究曲霉(Aspergillus nidulans)时报道的[18]ꎬ通常认
为营养体亲和性是由营养体不亲和基因(vic)控制
的ꎮ 该基因代表了一种识别真菌个体的方法ꎬ菌丝
的亲和特性间接地反映了真菌在某些位点上等位
基因的异同[2]ꎮ 为揭示真菌遗传多样性和探讨真
菌个体异核体形成及基因流动的潜力提供了便利
的标记[19]ꎮ 本研究首次发现水稻纹枯病菌在碱性
(pH≥10)条件下培养的继代分离菌株和与 9 个水
稻品种互作后的再分离菌株中ꎬ部分继代分离菌株
的营养体亲和性发生了改变ꎬ即特定的环境条件可
诱导水稻纹枯病菌营养体亲和性发生分化ꎮ 本研
究结果为水稻纹枯病菌营养体亲和性分化机理研
究提供了新思路ꎬ也为进一步研究水稻纹枯病菌演
替的遗传规律奠定了基础ꎮ
    据报道ꎬ菌株间营养体亲和性反应可能会因所
选用的鉴定培养基不同而得出不同结果[20]ꎮ 本研
究对所有再分离菌株与原始菌株的营养体亲和性
鉴定均选用 PDA 培养基ꎬ排除了鉴定结果受营养
条件影响的可能性ꎮ
    在担子菌中通常认为营养体不亲和的菌株间
存在着遗传差异ꎬ营养体亲和的菌株间具有相同的
基因型[21]ꎮ 关于水稻纹枯病菌不同菌株间的营养
体亲和性分化已有报道[22ꎬ23]ꎮ Qu 等[24] 通过
R. solani AG ̄1 ̄IC 和 AG ̄2 ̄2 IV 的担孢子进行配
对ꎬ并对所获得的菌株与亲代菌株进行营养体亲和
性鉴定ꎬ发现新配对形成的异核体与亲代菌株发生
了营养体不亲和现象ꎬ认为新异核体的形成是 R.
solani分化出新的营养体亲和群( somatic compati ̄
bility group)的机制ꎮ Mccabe 等[16]对 2 株立枯丝
核菌 AG ̄4进行先端菌丝的分离培养ꎬ发现部分菌
株与亲代菌株发生了营养体亲和性分化ꎬ但未对分
化菌株与亲代菌株遗传差异进行分析ꎮ 关于营养
体不亲和性分化机制目前不是十分清楚ꎬ通常认为
有两种可能ꎬ一种是细胞核的异核性(heterokaryo ̄
sis)ꎻ另一种是细胞质因素ꎬ例如病毒的携带、质粒
以及线粒体的异宗性等引起的同种菌丝间不亲
和[25]ꎮ 本研究结果证明了水稻纹枯病菌 cx ̄2 菌
922
 
植物病理学报 45卷
株在碱性培养条件下会发生营养体亲和性分化ꎬ但
营养体亲和性分化菌株与原始菌株的 AFLP 指纹
图谱却没有差异ꎬ表明营养体亲和性分化菌株在基
因组水平可能未发生变异ꎬ在碱性条件引起的菌株
cx ̄2营养体亲和性分化是否与细胞质遗传有关ꎬ有
待进一步研究ꎮ
    在不同水稻品种连续继代接种试验中ꎬ虽然分
离到了 12株营养体亲和性发生改变的菌株ꎬ但 3
个重复中只有其中一个重复分离到此类菌株ꎬ这些
菌株发生营养体亲和性分化的原因是否与水稻品
种或水稻的生育期有关ꎬ尚待进一步研究ꎮ
    在真菌中因营养体不亲和而形成的隔离带
(barrage)会阻碍菌丝间细胞质和细胞核的交
换[21]ꎬ本研究发现的影响营养体亲和性分化的因
子(如ꎬ碱性环境ꎬ病原菌与一些水稻品种互作)与
先前发现的同一田间 R. solani 菌群存在高比例的
营养体不亲和现象是否有关ꎬ也待进一步研究ꎮ
参考文献
[1]   Saupe S J. Molecular genetics of heterokaryon incom ̄
patibility in filamentous ascomycetes[J] . Microbiology
and Molecular Biology Reviewsꎬ 2000ꎬ 64: 489-502.
[2]   Yu Z Dꎬ Cao Z Mꎬ Gao A Qꎬ et al. Advances in the
studies of fungi vegetative compatibility group( in Chi ̄
nese) [ J] . Journal of Northwest Forestry University
(西北林学院学报)ꎬ 2002ꎬ 17(3): 80-85.
[3]   Groth D E. Effects of cultivar resistance and single
fungicide application on rice sheath blightꎬ yieldꎬ and
quality[ J] . Crop Protectionꎬ 2008ꎬ 27 ( 7): 1125 -
1130.
[4]   Bernardes ̄de ̄Assis Jꎬ Storari Mꎬ Zala Mꎬ et al. Ge ̄
netic structure of populations of the rice ̄infecting
pathogen Rhizoctonia solani AG ̄1 ̄IA from China[ J] .
Phytopathologyꎬ 2009ꎬ 99(9): 1090-1099.
[5]   E Z Gꎬ Zhang L Jꎬ Huang S Wꎬ et al. Resesrch
progress of rice resistance to sheath blight ( in Chi ̄
nese) [ J] . Journal of Nuclear Agricultural Sciences
(核农学报)ꎬ 2009ꎬ 23(6): 997-1000.
[6]   Zeng Y Xꎬ Li X Mꎬ Ma L Yꎬ et al. Research progress
on mapping of gene conferring resistance to sheath
blight and exploitation of resistance resources in rice
( in Chinese) [J] . Chinese Journal of Rice Science(中
国水稻科学)ꎬ 2010ꎬ 24(5): 544-550.
[7]   Zhang K Zꎬ Li Pꎬ Li Nꎬ et al. Research progress in
germplasmꎬ heredity and breeding of resistance to rice
sheath blight ( in Chinese ) [ J ] . Molecular Plant
Breeding(分子植物育种)ꎬ 2006ꎬ l4(5): 713-720.
[8]   Zhou E Xꎬ Yang Mꎬ Li Lꎬ et al. The effects of media
on the mycelial growth and sclerotial formation of Rhi ̄
zoctonia solani AG ̄1 ̄IA ( in Chinese) [J] . Journal of
South China Agricultural University(华南农业大学学
报) ꎬ 2002ꎬ 23(3): 33-35.
[9]   Zhou Q Xꎬ Chang K Fꎬ Hwang S Fꎬ et al. Pathogenic ̄
ity and genetic diversity of Rhizoctonia solani isolates
from lupin and other crops in Albertaꎬ Canada [ J] .
Canadian Journal of Plant Pathologyꎬ 2009ꎬ 31(3):
340-347.
[10] Khodayari Mꎬ Safaie Nꎬ Shamsbakhsh M. Genetic
diversity of Iranian AG1 ̄IA isolates of Rhizoctonia
solaniꎬ the cause of rice sheath blightꎬ using morpho ̄
logical and molecular markers[J] . Journal of Phytopa ̄
thologyꎬ 2009ꎬ 157: 708-714.
[11] Taheri Pꎬ Gnanamanickam Sꎬ Hoefte M. Characteriza ̄
tionꎬ genetic structureꎬ and pathogenicity of Rhizocto ̄
nia spp. associated with rice sheath diseases in India
[J] . Phytopathologyꎬ 2007ꎬ 97(3):373-383.
[12] He X Xꎬ Cao Q Qꎬ Peng Z Kꎬ et al. Comparison of
differences in biological characteristics of Rhizoctonia
spp. isolated from three kinds of crops ( in Chinese)
[J] . Journal of Huazhong Agricultural University(华
中农业大学学报)ꎬ 2012ꎬ 31(1): 55-61.
[13] Huang W Wꎬ Wang Lꎬ Liu L Mꎬ et al. Preliminary
study on the pathogenic differentiation and genetic
diversity of rice sheath blight pathogen strains from
Anhui Province ( in Chinese) [ J] . Acta Agriculturae
Zhejiangensis(浙江农业学报)ꎬ 2011ꎬ 23(1): 111-
116.
[14] Zou C Jꎬ Tang Fꎬ Yang Mꎬ et al. Studies on biological
characteristics and pathogenicity differentiation of rice
sheath blight pathogen from three provinces in South
China ( in Chinese) [ J] . Chinese Journal of Rice
Science(中国水稻科学)ꎬ 2011ꎬ 25(2):206-212.
[15] Hu C J. Studies on genetic differentiation of the patho ̄
gens causing rice sheath blight in Guangxi( in Chinese)
032
 
  3期 余功明ꎬ等:影响水稻纹枯病菌营养体亲和性分化的因子
[D] . Nanning: Guangxi University (南宁:广西大
学)ꎬ 2007. 
[16] Mccabe P Aꎬ Gallacher M Pꎬ Deacon J W. Evidence
for segregation of somatic incompatibility during
hyphal tip subculture of Rhizoctonia solani AG 4[ J] .
Mycological Researchꎬ 1999ꎬ 103(10): 1323-1331.
[17] Vos Pꎬ Hogers Rꎬ Bleeker Mꎬ et al. AFLP: a new
technique for DNA fingerprinting [ J] . Nucleic Acids
Researchꎬ 1995ꎬ 23(21): 4407-4414.
[18] Anwar M Mꎬ Croft J Hꎬ Dales R B. Analysis of
heterokaryon incompatibility between heterokaryon ̄
compatibility ( h ̄c ) groups R and GL provides
evidence that at least eight het loci control somatic
incompatibility in Aspergillus nidulans [ J ] . General
Microbiologyꎬ 1993ꎬ 139(7): 1599-2202.
[19] Chen Yꎬ Chen C Jꎬ Wang J Xꎬ et al. Genetic study on
JS399 ̄19 resistance in hyphal fusion of Fusarium
graminearum by using nitrate nonutilizing mutants as
genetic markers [ J ] . Journal of Genetics and
Genomicsꎬ 2007ꎬ 34(5): 469-76.
[20] Deng Z Sꎬ Guo Q Yꎬ Zhao Z Y. A study on the
mediums select for identificate vegetive compatibility
group of Rizoctonia spp. ( in Chinese) [ J] . Xinjiang
Agricultural Sciences(新疆农业科学)ꎬ 2004ꎬ41(1):
10-12.
[21] Worrall J J. Somatic incompatibility in basidiomycetes
[J] . Mycologiaꎬ 1997ꎬ 89(1): 24-36.
[22] Inagaki K. Dispersal of rice sheath blight fungusꎬ
Rhizoctonia solani AG ̄1( IA)ꎬ and subsequent disease
development in paddy fieldsꎬ from survey of vegetative
compatibility groups [ J ] . Mycoscienceꎬ 1998ꎬ 39
(4): 391-397.
[23] Julian M Cꎬ Debets Fꎬ Keijer J. Independence of
sexual and vegetative incompatibility mechanisms of
Thanatephorus cucumeris (Rhizoctonia solani) anasto ̄
mosis Group 1 [ J] . Phytopathologyꎬ 1996ꎬ 86 ( 6):
566-574.
[24] Qu Pꎬ Saldajeno M G Bꎬ Hyakumachi M. Mechanism
of the generation of new somatic compatibility groups
within Thanatephorus cucumeris (Rhizoctonia solani)
[ J] . Microbes and Environmentsꎬ 2013ꎬ 28(3): 325-
335.
[25] Bégueret Jꎬ Turcq Bꎬ Clavé C. Vegetative incompati ̄
bility in filamentous fungi: het genes begin to talk[J] .
Trends in Geneticsꎬ 1994ꎬ 12 :441-446.
责任编辑:于金枝
   
   
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