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Cloning and expression analysis of a high-affinity K+ transporter gene SsHAK2 in Suaeda salsa

盐地碱蓬高亲和性K+转运蛋白基因SsHAK2的克隆与表达模式分析



全 文 :书犇犗犐:10.11686/犮狔狓犫2015182 犺狋狋狆://犮狔狓犫.犾狕狌.犲犱狌.犮狀
段慧荣,王锁民.盐地碱蓬高亲和性K+转运蛋白基因犛狊犎犃犓2的克隆与表达模式分析.草业学报,2016,25(2):114123.
DUANHuiRong,WANGSuoMin.CloningandexpressionanalysisofahighaffinityK+transportergene犛狊犎犃犓2in犛狌犪犲犱犪狊犪犾狊犪.ActaPratacul
turaeSinica,2016,25(2):114123.
盐地碱蓬高亲和性犓+转运蛋白基因
犛狊犎犃犓2的克隆与表达模式分析
段慧荣,王锁民
(兰州大学草地农业科技学院,草地农业生态系统国家重点实验室,甘肃 兰州730020)
摘要:盐地碱蓬在高盐生境中可以有效吸收K+,并维持细胞内K+浓度的相对稳定。高亲和性K+转运蛋白KT/
HAK/KUP家族成员在植物K+吸收过程中发挥重要作用。本研究从盐地碱蓬中克隆到一个KT/HAK/KUP家
族成员犎犃犓2的同源基因犛狊犎犃犓2,并对其进行生物信息学分析和表达模式分析。SsHAK2编码788个氨基酸,
与不同植物的 HAK2类蛋白具有较高的同源性(80%~92%)。系统进化分析表明,SsHAK2属于 KT/HAK/
KUP家族亚族Ⅱ成员,与拟南芥AtKUP2位于同一进化分枝。实时定量qPCR分析显示,犛狊犎犃犓2在盐地碱蓬的
根和叶中均有高丰度表达,且叶中的表达丰度显著高于根中。犛狊犎犃犓2的表达受外界不同浓度 K+(2.5和0.01
mmol/L)的诱导。2.5mmol/LK+ 处理下,根和叶中犛狊犎犃犓2的表达受25mmol/LNaCl的显著诱导;0.01
mmol/LK+处理下,25和150mmol/LNaCl的添加抑制根中犛狊犎犃犓2的表达,却显著促进其在叶中的表达。以
上研究结果表明,SsHAK2可能参与盐地碱蓬K+吸收及转运过程,在根和叶中发挥不同的功能。
关键词:盐地碱蓬;犛狊犎犃犓2;克隆;表达分析  
犆犾狅狀犻狀犵犪狀犱犲狓狆狉犲狊狊犻狅狀犪狀犪犾狔狊犻狊狅犳犪犺犻犵犺犪犳犳犻狀犻狋狔犓+狋狉犪狀狊狆狅狉狋犲狉犵犲狀犲犛狊犎犃犓2犻狀
犛狌犪犲犱犪狊犪犾狊犪
DUANHuiRong,WANGSuoMin
犛狋犪狋犲犓犲狔犔犪犫狅狉犪狋狅狉狔狅犳犌狉犪狊狊犾犪狀犱犃犵狉狅犲犮狅狊狔狊狋犲犿狊,犆狅犾犾犲犵犲狅犳犘犪狊狋狅狉犪犾犃犵狉犻犮狌犾狋狌狉犲犛犮犻犲狀犮犲犪狀犱犜犲犮犺狀狅犾狅犵狔,犔犪狀狕犺狅狌犝狀犻狏犲狉狊犻
狋狔,犔犪狀狕犺狅狌730020,犆犺犻狀犪
犃犫狊狋狉犪犮狋:犛狌犪犲犱犪狊犪犾狊犪,atypicalsaltaccumulatinghalophyte,iscapableofabsorbingK+ withhighefficiency,
andthusmaintainsarelativelystableK+levelincels,andgrowswel,eveninhighlysalinesoil.Membersof
theKT/HAK/KUPgenefamilyhaveanimportantroleinK+ uptakeinplants.Inthisstudy,wecloned
犛狊犎犃犓2in犛.狊犪犾狊犪andanalyzedtheexpressionpatternsof犛狊犎犃犓2whentheplantswereexposedtodiffer
entconcentrationsofKClandNaCl.Resultsrevealedthat犛狊犎犃犓2codedfor788aminoacidresiduesand
sharedahighhomology(80%-92%)withtheidentifiedmembersofKT/HAK/KUPfamilyfromother
plants.Phylogeneticanalysisshowedthat犛狊犎犃犓2belongedtoasubgroupofthefamilyknownasgroupII,
andformedacladewithAtKUP2of犃狉犪犫犻犱狅狆狊犻狊狋犺犪犾犻犪狀犪,indicatingcloserelationship.犛狊犎犃犓2washighly
expressedinrootsandleaves,andwasinducedbywidelydifferingK+concentrations(2.5and0.01mmol/L).
Under2.5mmol/LK+conditions,theexpressionof犛狊犎犃犓2inrootsandleaveswasinducedby25mmol/L
114-123
2016年2月
   草 业 学 报   
   ACTAPRATACULTURAESINICA   
第25卷 第2期
Vol.25,No.2
收稿日期:20150408;改回日期:20150520
基金项目:教育部博士点基金优先发展领域项目(20130211130001)和国家自然科学基金项目(31072073)资助。
作者简介:段慧荣(1987),女,山西长治人,在读博士。Email:duanhuirong514@163.com
通信作者Correspondingauthor.Email:smwang@lzu.edu.cn
Na+application.However,inthemediumcontaining0.01mmol/LK+,theexpressionof犛狊犎犃犓2inroots
wasdownregulatedbyNa+(25and150mmol/L)application,butupregulatedinleaves.Theresultstherefore
indicatethat犛狊犎犃犓2mightmediateK+uptakeandtransportin犛.狊犪犾狊犪,andfunctioneddifferentlyinroots
andleaves.
犓犲狔狑狅狉犱狊:犛狌犪犲犱犪狊犪犾狊犪;犛狊犎犃犓2;clone;expressionanalysis
K+是植物中含量最为丰富的阳离子,也是植物生长发育所必需的营养元素,占植物总干重的2%~10%[1]。
作为重要的无机渗透调节剂和酶促剂,K+在细胞渗透调节、膨压维持、细胞伸长、气孔运动、氮代谢、脂肪代谢、蛋
白质合成及细胞膜的极化等过程中均发挥着重要作用[2]。土壤盐碱化是引起植物体内K+亏缺现象的主要非生
物因素之一,土壤中高浓度的Na+会限制植物体内K+的吸收和转运,使植物生长受抑,甚至死亡[3]。盐生植物
在长期进化过程中形成了多种有效机制来抵御盐胁迫[46],例如维持细胞内K+浓度的稳定。
盐地碱蓬(犛狌犪犲犱犪狊犪犾狊犪)又名蓬子菜、盐蒿,是藜科碱蓬属一年生多汁草本盐生植物,生于盐渍化土壤、湖
滨、河岸和沿海地带[7]。盐地碱蓬的幼嫩茎叶营养丰富,是很好的绿色蔬菜,也可用作动物饲料,其种子中富含不
饱和脂肪酸和亚油酸等,可压榨食用油,具有很好的经济价值;盐地碱蓬在盐碱地的改良、污染地的植被修复和有
毒金属的吸附方面效果显著,具有很好的生态价值[8]。盐地碱蓬可在400mmol/L的盐浓度下完成其生活史,是
典型的盐碱地指示植物,它通过将根部吸收的大量Na+运输至地上部并区域化进液泡以减轻Na+毒害,也是极
具代表性的积盐型植物[9]。Mori等[10]的研究发现,盐地碱蓬K+、Na+选择性吸收能力(SAk)随外界NaCl浓度
(5~50mmol/L)的增加显著提高,且植株体内K+吸收速率和K+浓度能维持相对稳定。可见,有效吸收K+并
维持体内K+浓度的相对稳定可能是盐地碱蓬适应高盐生境的重要策略之一。
大量研究表明,KT/HAK/KUP转运蛋白、HKT转运蛋白和ShakerK+通道主要参与植物根系K+吸收过
程[11]。Shao等[12]研究发现,盐地碱蓬HKT转运蛋白家族成员SsHKT1;1参与根系K+吸收过程,在盐胁迫下
维持植株体内K+营养稳态,从而提高植物耐盐性。此外,Duan等[13]克隆并鉴定了盐地碱蓬ShakerK+通道成
员SsAKT1,推测其可能参与盐地碱蓬根中的K+吸收过程,并在耐盐性中发挥重要作用。可见,盐地碱蓬体内
存在多基因网络调控的K+吸收途径,然而,KT/HAK/KUP家族成员的相关研究尚未见报道。
植物KT/HAK/KUP家族蛋白具有高亲和转运K+的特性,与细菌中的K+吸收透性酶KUP及真菌中的高
亲和性 K+ 转运蛋白 HAKs的同源性极高,最早从大麦 (犎狅狉犱犲狌犿狏狌犾犵犪狉犲)中克隆到了该家族成员
HvHAK1[14]。在植物中,KT/HAK/KUP家族成员能够恢复酵母或细菌K+吸收缺陷突变体的K+吸收,在植
物根和地上部K+稳态平衡中发挥重要作用[15]。此外,亦有研究表明,KT/HAK/KUP家族部分成员可以介导
Na+从土壤进入植物根部[1617]。Wang等[16]的研究发现,拟南芥根中仅存在AtHKT1;1和AtHAK5两条主要
的低亲和性Na+吸收途径,且当AtHKT1;1功能丧失后,AtHAK5成为唯一主要的低亲和性Na+吸收途径,并
且在低K+条件下,其作用更为重要。Zhang等[17]对海滨碱蓬(犛狌犪犲犱犪犿犪狉犻狋犻犿犪)的研究发现,KT/HAK/KUP
家族可能参与95~200mmol/LNa+条件下的植株根系低亲和性Na+吸收过程。可见,KT/HAK/KUP家族成
员在植物K+、Na+吸收及转运过程中可能发挥重要作用。
本研究以盐地碱蓬为材料,克隆KT/HAK/KUP家族成员基因犛狊犎犃犓2的cDNA全长并对其进行生物信
息学分析,采用实时定量qPCR的方法分析犛狊犎犃犓2在不同浓度K+(0.01和2.5mmol/L)和NaCl(25和150
mmol/L)处理下的表达模式,以期为进一步研究SsHAK2的功能提供分子基础。
1 材料与方法
1.1 材料培养
2013年3月,挑选籽粒饱满无缺损的盐地碱蓬种子,用蒸馏水冲洗2~3遍,在直径9cm的培养皿上铺滤纸
润湿后播种于其上,种子密度约为4粒/cm2,28℃下催芽,待发芽后,挑选均匀一致的幼苗移至装有灭菌红沙的
塑料穴盘(5cm×5cm×5cm)中,4株/穴,在温室中浇灌调整后的Hoagland营养液进行植物材料培养。调整后
的 Hoagland营养液(pH=5.7)包括2mmol/LKNO3,0.5mmol/LKH2PO4,0.5mmol/LMgSO4·7H2O,
511第25卷第2期 草业学报2016年
0.25mmol/LCa(NO3)2·4H2O,1.25mmol/LCaCl2·2H2O,0.06mmol/LFecitrate,50μmol/LH3BO3,10
μmol/LMnCl2·4H2O,1.6μmol/LZnSO4·7H2O,0.6μmol/LCuSO4·5H2O,0.05μmol/LNa2MoO4·
2H2O。温室的昼夜温度为(28±2)℃/(23±2)℃,光照16h/d,光强度约600μmol/(m
2·s),相对湿度60%~
80%。
1.2 犛狊犎犃犓2的全长克隆
3周龄盐地碱蓬幼苗用0.01mmol/LKCl处理6
h后取样,参照Trizol试剂盒说明书(上海生工)从根
中提取总RNA,按照PrimeScriptTM1ststrandcDNA
SynthesisKit反转录试剂盒说明书(大连宝生物)合成
cDNA第1链。通过对已知植物的 HAK2类核苷酸
序列进行同源性比较,找出高度保守区域,根据同源性
高和简并性低的原则,利用DNAMAN和Primer6.0
软件设计1对简并引物P1 和P2(表1),用于扩增盐地
碱蓬 犎犃犓2基因核心片段,推测目的片段的长度为
474bp。根据已测得的核心片段序列设计5′端特异引
物P3(外侧引物)、P4(巢式引物)(表1)及3′端特异引
物P5(外侧引物)、P6(巢式引物)(表1),分别与Gen
eRacerTM试剂盒(Invitrogen,USA)提供的5′Primer
表1 引物序列
犜犪犫犾犲1 犜犺犲狊犲狇狌犲狀犮犲狊狅犳狆狉犻犿犲狉狊
 引物名称Primername 引物序列 (5′3′)Primersequence(5′3′)
P1 GGAACWTCYATGGTCATYGGTGATGG
P2 GCYACYACAAATGTTGGCCAGTA
P3 GAGAAGTGTCCTAAATCAGCAAAC
P4 GCCAGAAACAGCAGTGAAAACAGAAAT
P5 GATGACCCACGAGAATCACCAATATGCT
P6 TCTTTGGGAGGTGTTCTGCTGTGC
P7 ACCAGTAGTTTTGATCTGGCTCCT
P8 CACCTCCCAAAGACATCCATC
A1 CAGGAATCAGAGACTGCCAAGA
A2 AAGAACCTCTGGACAACGGAAC
(5′P)、5′NestedPrimer(5′NP)及3′Primer(3′P)、3′NestedPrimer(3′NP)配对,用于外侧和巢式PCR扩
增,推测5′cDNA和3′cDNA碱基序列的长度约为801bp和1250bp左右。引物由上海生工生物工程有限公司
合成。PCR扩增反应体系:在200μLPCR管中依次加入10×PCRBuffer5μL、25mmol/LMgCl23.5μL、10
mmol/LdNTP1μL、10μmol/LP11μL、10μmol/LP21μL、TaqDNApolymerase(5U/μL)0.5μL、cDNA2
μL,加纯水至50μL。核心片段PCR反应条件:94℃预变性2min;94℃变性30s、56℃退火50s、72℃延伸50s,
30个循环;最后72℃延伸10min;5′RACE的PCR反应条件:94℃预变性2min;94℃变性30s、58℃退火50s、
72℃延伸80s,30个循环;最后72℃延伸10min;3′RACE的PCR反应条件:94℃预变性2min;94℃变性30s、
58℃退火50s、72℃延伸130s,30个循环;最后72℃延伸10min;PCR扩增产物用1.2%的琼脂糖凝胶检测,目
的片段的回收和纯化按照UNIQ10柱式DNA胶回收试剂盒(上海生工)操作说明进行。回收的PCR产物连接
到TransTM T5载体,转化TransTM1T1感受态细胞,送至上海生工测序。将这些片段拼接得到了犛狊犎犃犓2的
全长cDNA。
1.3 生物信息学分析
在NCBI(www.ncbi.nlm.nih.gov/BLAST)网站上,将测序得到的犛狊犎犃犓2基因序列和氨基酸序列与
GenBank数据库中序列进行Blastn和Blastp分析;序列的翻译、开放阅读框分析在DNAMAN6.0生物软件上
进行,氨基酸序列与其他序列的同源比较用Bioedit软件进行,氨基酸的跨膜区预测用在线生物学软件TMHMM
(http://www.cbs.dtu.dk/services/TMHMM/)进行。系统进化树用 MEGA6.0软件的最大似然法(Maxi
mumlikelihoodmethod)进行构建。
1.4 犛狊犎犃犓2的表达模式分析
采用实时定量qPCR方法分析盐地碱蓬犛狊犎犃犓2的表达模式。材料处理方案如下:(1)正常K+加盐处理:
待盐地碱蓬幼苗生长至30d,向Hoagland营养液中加25或150mmol/LNaCl处理0,6,24h。(2)低K+(0.01
mmol/L)加盐处理:待盐地碱蓬幼苗生长至23d时,转入低K+(0.01mmol/L)(2mmol/LKNO3 用2mmol/L
HNO3 代替,0.5mmol/LKH2PO4 用0.5mmol/LH3PO4 代替,加入0.01mmol/LKCl,用1mol/LTris调整
营养液pH值为5.7)营养液中处理7d,随后向低K+ Hoagland营养液中加入25或150mmol/LNaCl处理0,
611 ACTAPRATACULTURAESINICA(2016) Vol.25,No.2
6,24h。处理液每天更换。处理结束后,分别收集根和叶,经无菌水冲洗后,置于消毒滤纸上迅速吸干表面水分,
于液氮中快速冷冻用于RNA的提取。不同处理下盐地碱蓬根和叶总RNA的提取参照Trizol试剂盒说明书(上
海生工)进行,按照PrimeScriptTM RTMasterMix(PerfectRealTime)试剂盒操作说明(大连宝生物)合成cD
NA第1链。荧光定量qPCR反应在ABI7500荧光定量PCR仪(ABI,America)中进行,用于表达分析的特异
性引物由大连宝生物工程有限公司设计,分别为P7 和P8(表1),待扩增目的片段长度为155bp,以犛狊犃犆犜犐犖
(GenBank登录号为EU429457)为内参基因,引物为A1 和A2(表1),待扩增目的片段长度为111bp。PCR反应
条件如下:95℃30s,40个循环(95℃5s,60℃34s)。采用2-△△ct法[18]计算犛狊犎犃犓2的相对表达量,以无处理
的根样作为对照。每个处理设3个重复,每个样品重复3次。
1.5 数据分析
采用SPSS17.0对数据进行分析,运用Duncan多重比较进行差异显著性分析,最小差异显著性水平为犘<
0.05。用Excel2010、MEGA6.0等软件作图。
2 结果与分析
图1 盐地碱蓬犛狊犎犃犓2基因犚犜-犘犆犚产物电泳检测图
犉犻犵.1 犃犵犪狉狅狊犲犵犲犾犲犾犲犮狋狉狅狆犺狅狉犲狊犻狊犪狀犪犾狔狊犻狊狅犳犚犜-犘犆犚
狆狉狅犱狌犮狋狊狅犳犛狊犎犃犓2犻狀犛.狊犪犾狊犪
   a:核心片段RT-PCR产物;b:5′RACERT-PCR产物;c:3′RACE
RT-PCR产物;M1:DL2000DNA标记;M2:DL10000DNA标记。a:
theRT-PCRproductofthepartialfragment;b:theRT-PCRprod
uctofthe5′RACE;c:theRT-PCRproductofthe3′RACE;M1:DL
2000DNAmarker;M2:DL10000DNAmarker.
2.1 盐地碱蓬犛狊犎犃犓2全长cDNA的克隆及生物
信息学分析
以总RNA反转录所得到的第1链cDNA 为模
板,利用简并性引物P1 和P2 进行 RT-PCR扩增。
扩增产物经凝胶电泳检测发现约在474bp处有1条
亮带,且上下无杂带(图1a),测序结果经BLAST检测
表明该cDNA片段与其他高等植物的 HAK2序列具
有较高的同源性(78%~88%),其中与空心莲子草
(犃犾狋犲狉狀犪狀狋犺犲狉犪狆犺犻犾狅狓犲狉狅犻犱犲狊)犃狆犓犝犘2基因(Gen
Bank登录号:JN635515)核苷酸序列的同源性高达
88%,可见该片段是盐地碱蓬犎犃犓2类基因片段。根
据此核心片段进一步设计了特异引物进行5′端和3′
端的RT-PCR扩增,分别得到801bp的5′RACE产
物和1250bp的3′RACE产物(图1b和c),将5′端、核
心片段和3′端的序列进行拼接,得到全长2890bp的cDNA(图2)。该cDNA包含一个228bp的5′非翻译区(5′
UTR)、2367bp的开放阅读框(ORF)以及296bp的3′非翻译区(3′UTR),有12个高度保守的跨膜区 (图3),编
码788个氨基酸,推测其分子量为107.3kDa。本研究将其命名为犛狊犎犃犓2。
多重比较分析结果表明,盐地碱蓬SsHAK2与其他植物的 HAK2类转运蛋白具有很高的同源性(图4),其
中与甜菜(犅犲狋犪狏狌犾犵犪狉犻狊)、空心莲子草、冰叶日中花(犕犲狊犲犿犫狉狔犪狀狋犺犲犿狌犿犮狉狔狊狋犪犾犾犻狀狌犿)和葡萄(犞犻狋犻狊狏犻狀犻犳犲狉犪)
HAK2的同源性分别为92%,87%,86%和80%。系统进化分析进一步表明,SsHAK2属于KT/HAK/KUP家
族的亚族Ⅱ成员,与拟南芥AtKUP2、AtKUP6和AtKUP8的进化关系较近,而与其他亚族成员的进化关系较远
(图5)。
2.2 盐地碱蓬犛狊犎犃犓2的表达分析
将合成的盐地碱蓬cDNA用特异性表达引物P7 和P8、A1 和 A2 进行实时定量qPCR,得到犛狊犎犃犓2和
犛狊犃犆犜犐犖 的qPCR反应产物,经电泳检测,条带单一,无引物二聚体(图6),表明引物的特异性较高,反应条件较
好,可用于犛狊犎犃犓2的表达模式分析。
组织特异性分析结果表明,犛狊犎犃犓2在盐地碱蓬根和叶中均有高丰度表达,在不同浓度K+条件下,叶中的
表达量显著高于根中(图7)。此外,不同浓度 K+(0.01和2.5mmol/L)处理均诱导犛狊犎犃犓2的表达,但2.5
mmol/LK+处理下犛狊犎犃犓2的表达显著高于低K处理(0.01mmol/L)(图7)。
711第25卷第2期 草业学报2016年
图2 盐地碱蓬犓+转运蛋白犛狊犎犃犓2的犮犇犖犃核酸序列及其推测的氨基酸序列
犉犻犵.2 犖狌犮犾犲狅狋犻犱犲狊犲狇狌犲狀犮犲狊犪狀犱犱犲犱狌犮犲犱犪犿犻狀狅犪犮犻犱狉犲狊犻犱狌犲狊狅犳犛狊犎犃犓2犻狀犛.狊犪犾狊犪
 左侧的数字分别代表核苷酸和氨基酸的位点,画线处为起始密码子(ATG)和终止密码子(TGA)。图中1、2、3阴影位置为与水稻 KT/HAK/
KUP家族成员对比的3个较为保守区域。Thenucleotidesequencesandaminoacidresiduesareindicatedbynumbersoftheleft.Thestartcodon
(ATG)andthestopcodon(TGA)areunderlined.Therelativeconversedregionsof1,2and3comparedwithmembersoftheKT/HAK/KUPfam
ilyin犗狉狔狕犪狊犪狋犻狏犪areshadowed. 
811 ACTAPRATACULTURAESINICA(2016) Vol.25,No.2
图3 犛狊犎犃犓2的跨膜区预测
犉犻犵.3 犜狉犪狀狊犿犲犿犫狉犪狀犲犱狅犿犪犻狀狊狆狉犲犱犻犮狋犻狅狀狅犳犛狊犎犃犓2犻狀犛.狊犪犾狊犪
图4 盐地碱蓬犛狊犎犃犓2与其他植物犎犃犓2类氨基酸的多重比较
犉犻犵.4 犛犲狇狌犲狀犮犲犪犾犻犵狀犿犲狀狋狅犳犛狊犎犃犓2犻狀犛.狊犪犾狊犪狑犻狋犺犎犃犓2犾犻犽犲狆狉狅狋犲犻狀狊犳狉狅犿犺犻犵犺犲狉狆犾犪狀狋狊
 K+转运蛋白 HAK2类氨基酸序列的来源和GenBank登录号分别为:冰叶日中花 McHAK2p(AAK53759)和甜菜BvKUP2(AFM94015)。图中
划线区为GVVYGDLSISPLY序列,在各种植物中均高度保守。SourcesofHAK2likeK+transporterandtheirGenBankaccessionnumbersareas
folows:McHAK2p(犕犲狊犲犿犫狉狔犪狀狋犺犲犿狌犿犮狉狔狊狋犪犾犾犻狀狌犿,AF267753)andBvKUP2(犅犲狋犪狏狌犾犵犪狉犻狊,AFM94015).ThemotifofGVVYGDLSISPLY
isunderlinedwhichishighlyconversedinmanykindsofplants.
911第25卷第2期 草业学报2016年
图5 盐地碱蓬犛狊犎犃犓2与拟南芥和水稻犓犜/犎犃犓/犓犝犘
家族成员的系统进化分析
犉犻犵.5 犘犺狔犾狅犵犲狀犲狋犻犮犪狀犪犾狔狊犻狊狅犳犛狊犎犃犓2犻狀犛.狊犪犾狊犪犪狀犱犿犲犿犫犲狉狊狅犳
犓犜/犎犃犓/犓犝犘犳犪犿犻犾狔犳狉狅犿犃狉犪犫犻犱狅狆狊犻狊狋犺犪犾犻犪狀犪犪狀犱犗狉狔狕犪狊犪狋犻狏犪
 图中I、II、III和IV代表不同的亚族分类,●表示SsHAK2所在位置。K+
转运蛋白氨基酸序列在 GenBank中的登录号分别为:拟南芥 AtHAK5
(AT4G13420)、AtKUP1(AT2G30070)、AtKUP2(AT2G40540)、AtKUP3
(AT3G02050)、AtKUP4(AT4G23640)、AtKUP5(AT4G33530)、AtKUP6
(AT1G70300)、AtKUP7(AT5G09400)、AtKUP8(AT5G14880)、AtKUP9
(AT4G19960)、AtKUP10(AT1G31120)、AtKUP11(AT2G35060)、AtKUP12
(AT1G60160);水稻 OsHAK1(NC_008397)、OsHAK2(BAF07234)、Os
HAK3(AJ427974)、OsHAK4(AK071698)、OsHAK5(AP003272)、OsHAK6
(NP_001045298)、OsHAK7(AJ427976)、OsHAK8(Q8VXB5)、OsHAK9
(AJ427978)、OsHAK10(AJ427979)、OsHAK11(AJ427980)、OsHAK12
(AJ427981)、OsHAK13(BAF20244)、OsHAK14(AJ427983)、OsHAK15
(AJ427984)、OsHAK16(BAF12444)、OsHAK17(AJ427975)、OsHAK18(NP_
001063938)、OsHAK19(BAF08880)、OsHAK20(BAF08882)、OsHAK21
(BAH92235)、OsHAK22(EEC81370)、OsHAK23(BAF24960)、OsHAK24
(BAF19271)、OsHAK25(EEC73938)、OsHAK26(BAF24119)、OsHAK27
(BAF12443)。I,II,IIIandIVinthefigureindicatediferentsubfamilies,
SsHAK2isshownas●.SourcesofK+transportersandtheirGenBankacces
sionnumbersareasfolows:犃狉犪犫犻犱狅狆狊犻狊狋犺犪犾犻犪狀犪:AtHAK5(AT4G13420),
AtKUP1(AT2G30070),AtKUP2(AT2G40540),AtKUP3(AT3G02050),
AtKUP4(AT4G23640),AtKUP5(AT4G33530),AtKUP6(AT1G70300),
AtKUP7(AT5G09400),AtKUP8(AT5G14880),AtKUP9(AT4G19960),
AtKUP10(AT1G31120),AtKUP11(AT2G35060),AtKUP12(AT1G60
160);犗狉狔狕犪狊犪狋犻狏犪:OsHAK1(NC_008397),OsHAK2(BAF07234),Os
HAK3(AJ427974),OsHAK4(AK071698),OsHAK5(AP003272),OsHAK6
(NP_001045298),OsHAK7(AJ427976),OsHAK8(Q8VXB5),OsHAK9
(AJ427978),OsHAK10(AJ427979),OsHAK11(AJ427980),OsHAK12
(AJ427981),OsHAK13(BAF20244),OsHAK14(AJ427983),OsHAK15
(AJ427984),OsHAK16(BAF12444),OsHAK17(AJ427975),OsHAK18
(NP_001063938),OsHAK19(BAF08880),OsHAK20(BAF08882),Os
HAK21(BAH92235),OsHAK22(EEC81370),OsHAK23(BAF24960),Os
HAK24(BAF19271),OsHAK25(EEC73938),OsHAK26(BAF24119),Os
HAK27(BAF12443).
图6 实时定量狇犘犆犚产物电泳检测图
犉犻犵.6 犃犵犪狉狅狊犲犵犲犾犲犾犲犮狋狉狅狆犺狅狉犲狊犻狊犪狀犪犾狔狊犻狊
狅犳狉犲犪犾狋犻犿犲狇犘犆犚狆狉狅犱狌犮狋狊
    1、2和3:犛狊犎犃犓2实时定量qPCR产物;4、5和6:犛狊犃犆犜犐犖 实
时定量qPCR产物;M:DL4000DNA标记。1,2and3:thereal
timeqPCRproductof犛狊犎犃犓2;4,5and6:therealtimeqPCR
productof犛狊犃犆犜犐犖;M:DL4000DNAmarker.
  图7 犛狊犎犃犓2的组织特异性分析
  犉犻犵.7 犜犻狊狊狌犲狊狆犲犮犻犳犻犮犻狋狔狅犳犛狊犎犃犓2犲狓狆狉犲狊狊犻狅狀犻狀犛.狊犪犾狊犪
    数值为平均值±SE(狀=3)。柱上不同字母代表在犘<0.05水
平上差异显著(Duncan检验)。犛狊犃犆犜犐犖 为内参基因。实验重复
3次。下同。Thedataaremeans±SE(狀=3).Columnswithdif
ferentlettersindicatesignificantdifferencesat犘<0.05(Duncan’s
test).犛狊犃犆犜犐犖isusedasaninternalcontrol.Theexperiments
arerepeatedforthreetimes.Thesamebelow.
  进一步分析不同浓度 K+ 下添加 NaCl对
犛狊犎犃犓2表达的影响,结果见图8。在含有2.5
mmol/LK+的介质中,根和叶中犛狊犎犃犓2的表达
受25mmol/LNaCl处理的显著诱导,且随处理时
间延长,分别在24和6h处表达量达到最高,较各
自对照(0h)增加了25%和169%;高 Na+ (150
mmol/L)处理对根中犛狊犎犃犓2的表达无影响,但
抑制了叶中的表达(图8A 和B)。0.01mmol/L
K+条件下,25和150mmol/LNaCl的加入均抑制
根中犛狊犎犃犓2的表达,且随处理时间延长,在24h
处表达量较对照(0h)分别降低38%和58%;然
而,25 和 150 mmol/L NaCl 的 加 入 使 叶 中
犛狊犎犃犓2的表达显著增加,且在处理6h后,较对
021 ACTAPRATACULTURAESINICA(2016) Vol.25,No.2
图8 不同浓度犓+和犖犪+处理0、6和24犺后犛狊犎犃犓2的相对表达量
犉犻犵.8 犈狓狆狉犲狊狊犻狅狀犪狀犪犾狔狊犻狊狅犳犛狊犎犃犓2犻狀犛.狊犪犾狊犪狌狀犱犲狉犱犻犳犳犲狉犲狀狋犓+ 狆犾狌狊犱犻犳犳犲狉犲狀狋犖犪+犮狅狀犮犲狀狋狉犪狋犻狅狀狊犳狅狉0,6犪狀犱24犺
 A和B:2.5mmol/LK+处理;C和D:0.01mmol/LK+处理。AandB:thetreatmentof2.5mmol/LK+;CandD:thetreatmentof0.01
mmol/LK+.
照(0h)分别增加了80%和51% (图8C和D)。以上结果表明,犛狊犎犃犓2的表达受介质中 K+和 Na+的共同
调节。
3 讨论
迄今为止,已经从很多植物如大麦[14]、玉米(犣犲犪犿犪狔狊)[19]、胡椒(犘犻狆犲狉狀犻犵狉狌犿)[20]、冰叶日中花[21]、葡
萄[22]、番茄(犛狅犾犪狀狌犿犾狔犮狅狆犲狉狊犻犮狌犿)[23]等中克隆到KT/HAK/KUP家族部分成员基因,然而,该家族的结构仍
未研究清楚。虽然KT/HAK/KUP家族并不具备完全相同的功能保守域,但在氨基酸序列上都含有1个明显的
特征犌VVY犌犇LGT犛犘犔犢(加粗字母为在所有基因中都十分保守)[24]。本研究得到的SsHAK2氨基酸序列中同
样包含这一保守序列(图4)。此外,Gupta等[25]的研究发现,水稻KT/HAK/KUP家族成员(除OsHAK22外)
中都含有3个很保守的区域,经过对比,在盐地碱蓬中,同样有这样的保守区域存在(图2),表明SsHAK2与水稻
中这些蛋白的结构和功能可能存在相似之处。研究表明,高等植物中KT/HAK/KUP家族蛋白成员含有10~
14个跨膜区域[26]。经过TMHMM在线软件分析可见,SsHAK2含有12个跨膜区(图3),与大麦和水稻等中的
研究结果一致。KT/HAK/KUP家族根据系统发生分析可划分为4个亚族:亚族Ⅰ包括拟南芥AtHAK5、水稻
OsHAK1和大麦 HvHAK1等,主要介导高亲和性K+转运过程;大麦 HvHAK2、拟南芥AtKUP1和AtKUP2
属于亚族Ⅱ成员,在单子叶植物中经常转运低亲和性K+吸收,而在双子叶植物中表现出不同的转运活性[24];亚
族Ⅲ和Ⅳ成员的研究相对较少。本研究中,我们将拟南芥13个和水稻27个KT/HAK/KUP家族成员与盐地碱
蓬SsHAK2进行了系统进化分析(图5),结果显示,SsHAK2属于亚族Ⅱ成员,与拟南芥 AtKUP2、水稻 Os
HAK8和OsHAK9位于同一进化分枝,表明SsHAK2可能具有与AtKUP2等类似的K+转运功能和特征。以
上结果均表明,本研究克隆到的犛狊犎犃犓2编码KT/HAK/KUP家族K+转运蛋白。
Ahn等[27]对拟南芥KT/HAK/KUP家族13个成员进行组织表达特异性分析发现,亚族Ⅱ基因成员犃狋犓
犝犘1、犃狋犓犝犘2、犃狋犓犝犘4、犃狋犓犝犘6和犃狋犓犝犘8在根和叶中均有高丰度表达。Su等[21]发现,亚族Ⅱ基因成员
犕犮犎犃犓1和犕犮犎犃犓4在冰叶日中花根、茎叶中有高丰度表达。与这些结果相一致,本研究中,犛狊犎犃犓2在盐地
碱蓬的根和叶中均表达(图7),表明其可能在根和叶中发挥重要的作用。研究表明,KT/HAK/KUP家族的亚族
121第25卷第2期 草业学报2016年
Ⅱ成员在不同的双子叶植物中表现出不同的转运活性。Rigas等[28]发现,AtKUP4介导拟南芥高亲和性K+吸
收过程。然而,AtKUP6和AtKUP2则被证实介导拟南芥低亲和性K+吸收过程[27,29]。更有趣的是,AtKUP1
介导兼性K+吸收过程,在酵母K+吸收缺陷突变株中表达时,于不同K+浓度条件下均增加菌株的K+吸收能
力,当外部K+浓度在100~200μmol/L之间时发生从高亲和性到低亲和性K
+吸收的相变[30]。然而,Osakabe
等[31]对拟南芥三突变体犪狋犽狌狆2/6/8的研究发现,KT/HAK/KUP家族的亚族Ⅱ成员AtKUP2、AtKUP6和At
KUP8可能参与拟南芥的K+外流过程。本研究中,0.01和2.50mmol/LK+处理均诱导根和叶中犛狊犎犃犓2的
表达(图7),表明SsHAK2在盐地碱蓬体内K+吸收及转运过程中可能发挥重要作用。
Li等[32]在研究K+营养对盐胁迫下盐地碱蓬幼苗生长影响的过程中,发现100和400mmol/LNaCl处理
下,提高介质中K+浓度可明显增加植株的水分、干鲜重、生长速率,表明K+对盐地碱蓬的耐盐性至关重要。本
研究初步分析了不同浓度K+和Na+处理下盐地碱蓬犛狊犎犃犓2表达模式的变化(图8)。不同浓度Na+处理对盐
地碱蓬犛狊犎犃犓2表达的影响受介质中K+浓度的调节(图8),表明SsHAK2可能参与盐处理下的盐地碱蓬体内
K+吸收及转运过程。Rubio等[33]对拟南芥的研究发现,K+缺失引起根中犃狋犎犃犓5的表达下调,却显著增加其
在叶中的表达,可见,AtHAK5可能在不同的组织部位中发挥不同的作用,但是具体的原因尚不清楚。Su等[21]
研究发现,高盐处理(400mmol/LNa+)显著诱导冰叶日中花犕犮犎犃犓1和犕犮犎犃犓4的表达,利用原位杂交在
成熟根和叶的脉管组织中观测到极强的 McHAK1和 McHAK4的杂交信号,推测它们可能会通过脉管组织中的
装载/卸载影响植物K+的长距离运输,从而调节根中的K+吸收过程。本研究中,低K+(0.01mmol/L)条件下,
不同浓度Na+(25和150mmol/L)的添加抑制盐地碱蓬根中犛狊犎犃犓2的表达,却显著诱导叶中犛狊犎犃犓2的表
达;2.5mmol/LK+处理下,不同浓度Na+(25和150mmol/L)的添加也引起根和叶中犛狊犎犃犓2表达的变化不
同。我们推测,盐处理下,犛狊犎犃犓2在盐地碱蓬根和叶中发挥不同的功能,且可能在叶中发挥的作用更大,具体
机制有待更深一步研究。
综上所述,犛狊犎犃犓2编码KT/HAK/KUP家族K+转运蛋白,在根和叶中均有高丰度表达,转录丰度受外界
K+和Na+浓度的调节,可能参与盐地碱蓬体内K+的吸收和转运过程,且根和叶中可能发挥不同的功能。该研
究为进一步分析SsHAK2在盐地碱蓬中的功能提供了分子基础。
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321第25卷第2期 草业学报2016年