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Analysis of MYB Transcription Factor Involved in Development of Secondary Vascular System in Tobacco and Populus tomentosa

烟草和毛白杨次生维管发育相关MYB转录因子分析



全 文 :林业科学研究 2016,29(1):25 33
ForestResearch
  文章编号:10011498(2016)01002509
烟草和毛白杨次生维管发育相关 MYB
转录因子分析
郭 伟,赵树堂,卢孟柱
(中国林业科学研究院林业研究所,国家林业局林木培育重点实验室,北京 100091)
收稿日期:20130514
基金项目:“十二·五”863计划课题“林木优质、速生性状调控基因的分离及育种技术研究(2013AA102702)”。
作者简介:郭 伟(1983—),男,博士研究生.主要研究方向:林木遗传育种.Email:wwwguoweinet@163.com
 通讯作者:研究员,博士生导师.从事分子生物学研究.Email:Lumz@caf.ac.cn
摘要:[目的]烟草具有典型的次生维管发育过程,为了阐明烟草可用于次生维管发育相关基因功能的研究,[方法]
通过高通量测序技术获得了烟草维管组织发育的相关MYB转录因子,比对毛白杨基因组数据库,得到烟草和杨树
的直系同源基因。利用烟草和毛白杨的基因表达谱,分析了MYB基因表达量变化,并进一步采用荧光定量 PCR进
行了不同组织的表达分析。[结果]分析得到48对烟草和毛白杨的 MYB直系同源基因,可分为23个亚组。15对
MYB同源基因在烟草和毛白杨中的表达模式相似。[结论]可以利用烟草所建立的快速基因鉴定系统分析MYB转
录因子在维管发育过程中的调控作用。
关键词:烟草;毛白杨;MYB;次生生长
中图分类号:S792.117;S572 文献标识码:A
AnalysisofMYBTranscriptionFactorInvolvedinDevelopmentofSecondary
VascularSysteminTobaccoandPopulustomentosa
GUOWei,ZHAOShutang,LUMengzhu
(KeyLaboratoryofTreeBreedingandCultivation,StateForestryAdministration,ResearchInstituteofForestry,
ChineseAcademyofForestry,Beijing 100091,China)
Abstract:Tobaccoplantshavetypicalsecondaryvasculardevelopmentprocessandcanbeusedtostudythefunc
tionofgenesrelatedtosecondaryvasculardevelopment.48pairsofMYBorthologousgenesobtainedfromtobacco
andpoplarwereidentifiedbysearchingintheentirepoplargenomesequencewithMYBtranscriptionfactorobtained
fromtranscriptomeoftobaccovasculartissuesasprobes,andweredividedinto23subgroups.Theanalysisofgene
expressionlevelsobtainedusingRNAseqintobaccoandpoplarsuggestedthat15pairsofMYBorthologousgenes
sharedsimilarexpressionpaternsbothintobaccoandpoplar.TheresultsofexpressionanalysisusingrealtimeRT
PCRindiferenttissuesoftobaccoandpoplarindicatedthattheMYBorthologousgenessharedsimilarexpression
paternsbothintobaccoandpoplar.ItisthusfeasibletorapidlyanalyzethefunctionofMYBtranscriptionfactorsin
vasculardevelopmentprocesswithtobacco.
Keywords:tobacco;Populustomentosa;MYB;secondarygrowth
木材是地球上重要的天然资源,是木本植物历
年径向生长所产生的次生维管组织的总称[1]。木材
的形成是维管植物的一个重要的发育过程,涉及木
质部不同细胞类型的分化、木纤维的合成以及在细
胞壁上的沉积,是一个复杂的基因调控过程[1-2]。
这些生物学过程的分子调控都是分子生物学研究的
林 业 科 学 研 究 第29卷
重要问题,也是木材形成调控的关键。研究木材形
成的分子机制对于丰富次生维管发育的理论基础,
了解木材形成的生物学过程,采用分子育种手段定
向培育材性优良的树木新品种具有重要的应用价
值。因为木本植物生长周期长,遗传分析困难,又缺
少突变体,所以研究难度较大。许多关于维管组织
发育的基因调控是由模式草本植物中获得的,导致
林木木材形成的调控机制研究仍然属于初始阶
段[1]。因此,对于木本植物维管形成层的分子调控
机制仍需要大量的研究工作[3]。随着生物技术和基
因 组 学 的 发 展,毛 白 杨 (Populustomentosa
Car.)[4,5]、海岸松(PinuspinasterAit.)[6]、刺槐
(RobiniapseudoacaciaL.)[7]、冈尼桉 (Eucalyptus
gunniHook.f.)[8]和白云杉(Piceaglauca(Moench)
Voss)[9]等木本植物均采用基因组学技术进行了维
管发育的相关研究。如从杨树维管再生系统中鉴定
了大量的相关基因,迫切需要对它们进行功能鉴
定[4,10],其中,MYB转录因子是一类重要的参与植
物细胞次生壁形成的调控因子。
MYB转录因子广泛分布于所有的真核生物中,
并且组成了植物界中较大的转录因子家族。MYB
蛋白在N末端具有高度保守的MYBDNA结合结构
域[11]。MYB结构域在动物、酵母、植物中高度保
守,并且由1 4个不完全的重复组成(R0、R1、R2
和R3),每个重复由大约50 53个氨基酸组成,编
码3个α螺旋,第2和第3个螺旋形成一个螺旋转
角螺旋(HTH)结构。HTH结构通过插入到 DNA
双螺旋结构的大沟中与 DNA结合[12]。另外,MYB
转录因子包含3个被间隔开的色氨酸残基,它们在
每一个重复的疏水性内核中形成一个簇,稳定 DNA
结合结构域的结构[13]。MYB蛋白的 C末端是激活
结构域,它的高特异性导致了MYB基因家族调控作
用的不同[12]。在植物细胞次生壁形成的分子调控
网络中,MYB转录因子基因起着重要的作用[1415]。
虽然对少数MYB转录因子基因的功能进行了鉴定,
但是大部分MYB基因家族成员功能未知,迫切需要
一种快速的基因鉴定手段进行进一步的分析。
拟南芥(Arabidopsisthaliana(L.)Heynh)虽然
具有较小的体积、较快的生长速度和容易进行遗传
转化等优点,但拟南芥却不具备典型的次生生长特
征,同时缺少某些木材形成的基因和相关的生物学
过程[16]。烟草(NicotianatabacumL.cv.SR1)是一
种具有典型的次生维管发育特征的1年生草本植
物[17],具有遗传转化效率较高、生长速度较快、生命
周期较短等优点[18],并且烟草的病毒诱导基因沉默
(VIGS)系统为研究者进行高通量的基因功能研究
提供了平台[19,20],为大规模筛选、鉴定相关基因提
供了有效手段。本文分析了烟草和毛白杨维管组织
相关MYB转录因子,得到了48对直系同源基因,通
过基因表达谱测序(RNAseq)和相对荧光定量 PCR
对烟草和毛白杨 MYB同源基因的表达异同进行分
析,旨在为进一步通过烟草VIGS系统进行杨树次生
维管发育相关基因的功能研究,揭示木材形成过程
中MYB转录因子的调控机制。
1 材料与方法
1.1 植物材料
烟草和毛白杨为中国林科院林业所生物技术室
保存并繁殖。烟草实生苗和1年生毛白杨扦插苗于
3月份在直径为15cm的塑料花盆中种植,盆中含营
养土和蛭石(1∶1混合),于温室中进行培养,每5d
浇自来水1次。
分别选取生根期(4片展开叶)、抽薹期(6片展
开叶)、团棵期(8片展开叶)、旺长期(14片展开叶)
和现蕾期(20片展开叶)烟草的第1 4、1 6、1
8、1 8、1 8节间进行取材,作为烟草转录组高通
量测序的实验材料。
对旺长期的烟草和扦插4个月的毛白杨的顶端
分生组织、第1节间、第2节间、第3节间、第4节
间、第5节间、第6节间、从顶端起第5片展开叶、根
进行取材,分别标记为 TS、TIN1、TIN2、TIN3、TIN4、
TIN5、TIN6、TL、TR和 PS、PIN1、PIN2、PIN3、PIN4、
PIN5、PIN6、PL、PR,作为基因表达谱高通量测序和
相对荧光定量PCR的实验材料。
下午4:00—5:00取材。每个样本均取自5个
植株的混合样本,液氮速冻后放置在 -80℃的超低
温冰箱里储存。
1.2 实验方法
1.2.1 烟草转录组的高通量测序 选取烟草在生
根期、抽薹期、团棵期、旺长期和现蕾期植株的节间,
用Qiagen的 RNA提取试剂盒(RNeasyPlantMini
kit)进行提取RNA,用Qiagen的RNasefreeDNaseⅠ
进行去除 DNA,通过 Agilent2100Bioanalyzer检测
RNA样本的浓度和纯度。华大基因公司负责 cDNA
文库构建、Solexa测序(IluminaHiSeqTM 2000)和数
据处理,使用SOAPdenovo拼接软件对 shortreads进
62
第1期 郭 伟,等:烟草和毛白杨次生维管发育相关MYB转录因子分析
行数据组装。
1.2.2 烟草与毛白杨之间的MYB直系同源基因的鉴
定 用基因注释与MYB保守基序进行本地BLASTP
搜索相结合的方法,在烟草维管发育的转录组数据
库中对MYB基因进行搜索,然后通过 BLASTX程序
(Evalue≤1e-10)比对到烟草基因组数据库(ht
tp://solgenomics.net/,版本 v0.4.4)得到全长蛋白
序列,再通过BLASTP程序(Evalue≤1e-10)比对
到毛白杨基因组数据库(htp://www.phytozome.
net/,版本v3.0)。
1.2.3 MYB蛋白序列比对及系统树构建 运用
ClustalX1.83软件对烟草和毛白杨的 MYB基因的
蛋白全长序列进行多重序列比对,用MEGA5.10软
件构建系统树,采用遗传距离建树法的相邻连接法
NJ建树,并且进行1000次重复比对校正,最终生成
系统树。
1.2.4 基因表达谱(RNAseq)高通量测序 选取
烟草样本(TIN1、TIN2、TIN3)和毛白杨样本(PIN1、
PIN2、PIN3),分别提取 RNA、检测 RNA、构建 cDNA
文库、Solexa测序(方法同1.2.1)。通过 ERANGE
软件 (htp://woldlab.caltech.edu/gitweb/,版 本
40)进行基因表达水平(RPKM)的归一化计算[21]。
1.2.5 相对荧光定量PCR分析MYB基因表达量 
提取烟草和毛白杨不同组织样本的RNA,进行 DNA
的去除(同上),抽取800ngRNA作模板,使用 In
vitrogen的反转录试剂盒(SuperscriptⅢ FirstStrand
SynthesisSystem)合成单链cDNA,稀释20倍作为相
对荧光定量 PCR的模板。
使用ABI7500实时定量 PCR仪进行相对荧光
定量 PCR反应,反应体系为:cDNA2μL,2×SYBR
PremixExTaqⅡ(TliRnaseHPlus)10μL,50×ROX
ReferenceDyeⅡ0.4μL,上下游引物(表1)各0.8
μL,灭菌超纯水6μL。反应程序:95℃ 30s;95℃ 5
s,60℃34s,40个循环。每个实验设4次重复,选取
NtEF1α(Accessionnumber:AF120093)andPtUBQ
(Accessionnumber:BU879229)分别作为烟草和毛
白杨的内参基因。利用 SequenceDetectionSoftware
软件(2-ΔΔCt法)[22]和 SigmaPlot12.0软件进行数据
分析。
表1 荧光定量PCR的引物序列
基因名称 引物序列(正向/反向) 
NtEF1α TGAGATGCACCACGAAGCTC/CCAACATTGTCACCAGGAAGTG
NtMYB15 GGAATTGCAGCAAGGTTACCAG/TTGACGTTTCCATGGTTTGTTG
NtMYB42 CAAGATTACCGGGAAGGACAGA/TGTAACAGGATCAATCCCCATC
NtMYB50 AGCTGGAATTCGGATGACAAGA/CCAACGCATGGATACTGAAACA
NtMYB521 ATTGGCATGTCCTAATGGCAAG/TCCGTCTTCGAAAACCATAGGA
NtMYB522 GCTGAAAACTTGCAAGGCAGAT/TCCTCTTCTGTGAATGGGCTTC
NtMYB611 AAGCTTCTGAAGGCTCCAGTGA/TCGCTGAAGATGGTTTTGGTTT
NtMYB10351 ATTTTGGAACAAAGCCCCAAGT/TGTGTCTTGGAACAACGAGCTG
NtMYB1091 ATTGCAAAGTTGCTCCCTGGTA/ACCTTTCTAAGCCCAGCAAACC
PtUBQ GTTGATTTTTGCTGGGAAGC/GATCTTGGCCTTCACGTTGT
PtMYB15 GCACTGAGCCACAACTTCAA/TAGTGATCCCCCAGCTCTTG
PtMYB42 GCAGCTAGATTGCCTGGAAG/TTGTGCAAGGGTTCATGTGT
PtMYB50 AAGTGGGGGTGAAAGAGGAG/TACGATCGGCAACCCTTTAG
PtMYB521 TTCACATGCAGGGAAATCAA/GCGAAATTCCAAGAAGGTGA
PtMYB522 ACAGCTTGGTGGTGTGTCAA/ATTTCTTTTGGCCAATGCAG
PtMYB611 GGTTCAGAACTGGGAAGCAA/AGAAAGCGCTGCTCTCGTAG
PtMYB10351 TGACACGAGTACCTCGCTTG/ATGTTCAAGCTTGCCGAATC
PtMYB1091 AGCCCCCAGAAGTGAGAGAT/GTGGGATTTCCATGTGGTTC
2 结果与分析
2.1 烟草和毛白杨MYB基因家族同源基因的鉴定
从烟草维管组织转录组数据库中鉴定到了48个
MYB转录因子家族成员基因,其中,44个是 R2R3
MYB基因,3个是 3RMYB基因,1个是 4RMYB基
因;然后将烟草的MYB基因的蛋白序列作为探针在
杨树基因组数据库中进行BLASTP搜索,选择比对结
果中分值最高并且 Evalue<e10的序列作为烟草
MYB基因在毛白杨中的直系同源基因(表2)。
72
林 业 科 学 研 究 第29卷
表2 烟草和毛白杨木材形成相关一对一的直系同源MYB基因
毛白杨基因名称 毛白杨基因编号 烟草基因名称 烟草基因编号 分类 基因描述
PtMYB3R1 Potri.018G038000.1 NtMYB3R1 NbS00013812g0010.1 3R ATMYB3R1,MYB3R1
PtMYB3R4 Potri.006G241700.1 NtMYB3R4 NbS00038812g0010.1 3R AtMYB3R4,MYB3R4
PtMYB3R5 Potri.006G085600.1 NtMYB3R5 NbS00007819g0018.1 3R ATMYB3R5,MYB3R5
PtMYB4R1 Potri.015G041500.3 NtMYB4R1 NbS00044393g0007.1 4R AtMYB4R1,MYB4R1
PtMYBCDC5 Potri.019G018400.1 NtMYBCDC5 NbS00000867g0143.1 R2R3 ATMYBCDC5,CDC5
PtMYB3 Potri.002G173900.1 NtMYB3 NbS00019249g0010.1 R2R3 ATMYB3,MYB3
PtMYB41 Potri.004G174400.1 NtMYB41 NbS00059969g0007.1 R2R3 ATMYB4,MYB4
PtMYB42 Potri.009G134000.2 NtMYB42 NbS00036063g0001.1 R2R3 ATMYB4,MYB4
PtMYB7 Potri.014G100800.1 NtMYB7 NbS00020975g0001.1 R2R3 ATY49,MYB7
PtMYB9 Potri.019G118800.1 NtMYB9 NbS00008719g0006.1 R2R3 AtMYB9,MYB9
PtMYB14 Potri.002G038500.1 NtMYB14 NbS00027904g0003.1 R2R3 ATMYB14,MYB14
PtMYB15 Potri.005G224100.1 NtMYB15 NbS00034285g0012.1 R2R3 ATMYB15,MYB15
PtMYB17 Potri.002G157600.1 NtMYB17 NbS00022028g0005.1 R2R3 AtMYB17,MYB17
PtMYB21 Potri.017G071500.1 NtMYB21 NbS00055891g0003.1 R2R3 ATMYB3,MYB21
PtMYB36 Potri.004G215100.1 NtMYB36 NbS00045529g0003.1 R2R3 AtMYB36,MYB36
PtMYB40 Potri.001G336700.1 NtMYB40 NbS00014139g0009.1 R2R3 AtMYB40,MYB40
PtMYB42 Potri.001G118800.1 NtMYB42 NbS00051737g0004.1 R2R3 AtMYB42,MYB42
PtMYB43 Potri.017G130300.1 NtMYB43 NbS00005264g0006.1 R2R3 AtMYB43,MYB43
PtMYB48 Potri.009G027300.1 NtMYB48 NbS00050602g0005.1 R2R3 ATMYB48,MYB48
PtMYB50 Potri.015G082700.1 NtMYB50 NbS00010663g0014.1 R2R3 AtMYB50,MYB50
PtMYB521 Potri.005G186400.1 NtMYB521 NbS00012046g0005.1 R2R3 ATMYB52,MYB52
PtMYB522 Potri.012G039400.1 NtMYB522 NbS00003846g0006.1 R2R3 ATMYB52,MYB52
PtMYB523 Potri.015G033600.1 NtMYB523 NbS00057968g0006.1 R2R3 ATMYB52,MYB52
PtMYB56 Potri.013G067000.1 NtMYB56 NbS00016266g0004.1 R2R3 AtMYB56,MYB56
PtMYB611 Potri.005G001600.1 NtMYB611 NbS00038614g0005.1 R2R3 ATMYB61,MYB61
PtMYB612 Potri.013G001000.1 NtMYB612 NbS00008992g0004.1 R2R3 ATMYB61,MYB61
PtMYB62 Potri.008G122100.1 NtMYB62 NbS00002598g0015.1 R2R3 AtMYB62,MYB62
PtMYB65 Potri.001G224500.3 NtMYB65 NbS00024794g0017.1 R2R3 ATMYB65,MYB65
PtMYB67 Potri.001G075400.1 NtMYB67 NbS00004718g0002.1 R2R3 ATMYB67,ATY53
PtMYB68 Potri.002G113700.2 NtMYB68 NbS00008336g0002.1 R2R3 ATMYB68,MYB68
PtMYB731 Potri.002G122600.1 NtMYB731 NbS00056660g0001.1 R2R3 ATMYB73,MYB73
PtMYB732 Potri.005G142600.1 NtMYB732 NbS00038953g0003.1 R2R3 ATMYB73,MYB73
PtMYB733 Potri.014G035100.1 NtMYB733 NbS00037687g0002.1 R2R3 ATMYB73,MYB73
PtMYB82 Potri.018G127700.1 NtMYB82 NbS00017553g0008.1 R2R3 AtMYB82,MYB82
PtMYB83 Potri.001G267300.1 NtMYB83 NbS00023412g0010.1 R2R3 AtMYB83,MYB83
PtMYB88 Potri.010G093000.1 NtMYB88 NbS00004262g0006.1 R2R3 AtMYB88,MYB88
PtMYB911 Potri.006G085900.1 NtMYB911 NbS00022303g0002.1 R2R3 ATMYB91,ATPHAN
PtMYB912 Potri.017G112300.1 NtMYB912 NbS00000683g0009.1 R2R3 ATMYB91,ATPHAN
PtMYB94 Potri.017G082500.1 NtMYB94 NbS00017916g0019.1 R2R3 ATMYB94,MYB94
PtMYB96 Potri.004G126700.1 NtMYB96 NbS00055631g0003.1 R2R3 ATMYB96,MYB96
PtMYB102 Potri.004G033100.1 NtMYB102 NbS00015624g0009.1 R2R3 ATMYB102,MYB102
PtMYB103 Potri.001G099800.1 NtMYB103 NbS00000532g0010.1 R2R3 AtMYB103,MYB103
PtMYB1061 Potri.010G165700.1 NtMYB1061 NbS00000115g0004.1 R2R3 AtMYB106,MYB106
PtMYB1062 Potri.017G086300.2 NtMYB1062 NbS00002367g0011.1 R2R3 AtMYB106,MYB106
PtMYB108 Potri.008G101400.1 NtMYB108 NbS00027211g0002.1 R2R3 AtMYB108,BOS1
PtMYB1091 Potri.008G062700.1 NtMYB1091 NbS00002711g0003.1 R2R3 AtMYB109,MYB109
PtMYB1092 Potri.010G195000.1 NtMYB1092 NbS00029060g0017.1 R2R3 AtMYB109,MYB109
PtMYB111 Potri.002G198100.1 NtMYB111 NbS00038665g0001.1 R2R3 ATMYB111,MYB111
  注:毛白杨基因编号来自 phytozome网站 htp://www.phytozome.net/,版本 v3.0;烟草基因编号来自 solgenomicsnetwork网站 htp://sol
genomics.net/,版本v0.4.4。
82
第1期 郭 伟,等:烟草和毛白杨次生维管发育相关MYB转录因子分析
2.2 烟草和毛白杨的MYB同源基因的系统树分析
运用 ClustalX1.83软件对烟草和毛白杨的
MYB基因的蛋白全长序列进行多重序列比对,用
MEGA5.10软件采用 NeighborJoining(NJ)方法进
行系统树构建(图1)。96个烟草和毛白杨的 MYB
基因划分为23个亚组(G1 23)。烟草和毛白杨的
直系同源基因在系统树中属于同一个亚组。G4包
含3个烟草3RMYB基因和3个毛白杨3RMYB基
因,G5包含 1个烟草 4RMYB基因和 1个毛白杨
4RMYB基因,其余的亚组全部是 R2R3MYB基因。
拟南芥的 R2R3MYB基因分为 25个亚组(S1
S25)[12,23],其中,S23、S22、S21、S18、S13、S4、S7、S9、
S1、S10、S4和S9亚组分别对应烟草和毛白杨的G1、
G2、G3、G9、G13、G14、G15、G16、G17、G18、G21和G22
亚组;而G16和G22对应的拟南芥同源基因在S9亚
组,G14和G21对应的拟南芥同源基因在S4亚组,说
明烟草和毛白杨与拟南芥直系同源基因在序列上发
生了分化,导致在系统发育树中分别属于不同的
亚组。
2.3 烟草和毛白杨的MYB同源基因在维管发育过
程中的表达分析
  早期研究发现,旺长期的烟草和扦插4个月的
毛白杨在第1 3节间完成了从初生生长到次生生
长的转变,分别对烟草和毛白杨的第1 3节间的
样本进行了高通量测序,得到从初生生长到次生生
长过程中相关基因的表达谱(图2)。在48对烟草
和毛白杨的MYB同源基因中,15对基因(MYB3R5、
MYB7、MYB42、MYB50、MYB521、MYB522、MYB61
1、MYB612、MYB732、MYB733、MYB83、MYB88、
MYB911、MYB912和 MYB1091)在烟草和毛白杨
的3个节间的表达模式相似。
MYB3R1、MYB3R4、MYB56、MYBCDC5、MYB42、
MYB14、MYB21、MYB48、MYB523、MYB4R1、MYB67、
MYB68、MYB1062、MYB111、MYB731、MYB1061这
16对基因在烟草和毛白杨中的表达差异较大,其
中,MYB4R1、MYBCDC5、MYB42、MYB14、MYB21、
MYB48、MYB523、MYB67、MYB68、MYB1062和
MYB11111对 MYB同源基因中的毛白杨基因在 3
个节间均没有发生表达,而相应的烟草的同源基因
却发生了表达。MYB1061在毛白杨中表达而在烟
草中没有表达,说明上述基因在烟草和毛白杨的进
化过程中发生了组织特异表达的改变。MYB21同
源基因在烟草和毛白杨茎的前3个节间没有表达。
  通过ClustalX1.83软件对烟草和毛白杨MYB基因的全长
蛋白序列进行比对,用 MEGA5.10软件中的 NeighborJoining
(NJ)方法采用1000次重复比对进行系统树的构建,并进行了
亚组(G)划分。图的最右侧是对应拟南芥 MYB基因的亚组
(S)。比例尺表示0.05个氨基酸的进化距离。
图1 烟草和毛白杨的MYB基因的系统树分析
92
林 业 科 学 研 究 第29卷
  从左到右分别是 PIN1、PIN2、PIN3、TIN1、TIN2、
TIN3的RPKM值。热图的制作是通过 Matrix2png网站
(英属哥伦比亚大学,htp://chibi.ubc.ca/matrix2png).
RPKM的值由不同的颜色表示:最小值0.4,最大值20。
图2 烟草和毛白杨MYB直系同源基因
在前3个节间的表达分析
2.4 烟草和毛白杨MYB同源基因在不同组织中的
表达分析
  选择在烟草和毛白杨中都发生表达并且在毛白
杨中没有研究的8对MYB基因,在烟草和毛白杨的
第1 6节间以及顶端分生组织、叶片、根中通过荧
光定量PCR进行表达分析(图3)。对比荧光定量
PCR结果与基于测序的数字表达谱,发现烟草和毛
白杨在不同组织中具有相同的变化趋势。这 8对
MYB同源基因在烟草和毛白杨的不同组织中的表
达模式也基本一致(图3)。
MYB42、MYB521、MYB522的同源基因在烟草
和毛白杨的顶端分生组织(SAM)和叶片中的表达量
最低,在远离顶端的节间中的表达量比靠近顶端的
节间高,说明基因表达水平随茎的木质化程度的提
高而相应提高。MYB521和 MYB1091在根中的表
达量最高,MYB522和MYB42在第6节间的表达量
最高,说明 MYB521和 MYB522的相似性较高(图
1),但是表达模式却不同,说明这2个基因在进化过
程中组织表达及作用发生了分化。MYB611的表达
模式与 MYB42、MYB521、MYB522和 MYB1091相
反,在远离顶端的节间比靠近顶端的节间表达量低,
而叶片中的表达量比根高,说明 MYB611的表达量
变化与茎的木质化程度成反比,可能更多的参与了
初生维管组织的形成。MYB103在 SAM、叶片和根
中的表达量很低,在茎不同节间中的表达量先升高
后降低,在第1和第6节间的表达量最低,却在维管
组织分化过程(第2 5节间)中的表达量较高,说
明它们更多的参与到初生到次生生长的转换。
MYB15在SAM和前3个节间中的表达量较高,而在
后3个节间、叶片和根中的表达量却很低,说明
MYB15主要参与初生维管组织的形成和初生到次
生生长的转换。MYB50在第1 6节间的表达量较
高,却在根中的表达量最低,说明 MYB50特异参与
了茎的初生生长、初生到次生生长的转换以及次生
生长的整个维管组织发育过程。
3 结论与讨论
随着生命科学和生物技术的迅猛发展,一些木
本植物的基因组测序已经完成,测序结果大多是存
储在公用数据库的服务器中,研究人员经过生物信
息学的初步分析,已经获得了大量有关木材形成过
程的相关基因。随着高通量测序成本的降低、质量
的提高,过去几年中在世界范围内产生了大量的测
序结果。虽然公用服务器已经对普通研究人员开
放,并且能够提供高效、新颖的分析方法,但是由于
生物信息学相关知识并没有很好的普及,使大量测序
03
第1期 郭 伟,等:烟草和毛白杨次生维管发育相关MYB转录因子分析
  柱形图表示从荧光定量 RTPCR中得到的转录丰度(相对表达量);TIN1 6为烟草的1 6节间;TL为烟草的叶片;TR为烟草的根;
TS为烟草的SAM;PIN1-6为毛白杨的1 6节间;PL为毛白杨的叶片;PR为毛白杨的根;PS毛白杨的SAM;RPKM为基因在相应组织中
的RNAseq的表达值。
图3 烟草和毛白杨的MYB直系同源基因在不同组织的表达分析
13
林 业 科 学 研 究 第29卷
结果没有得到合理的使用;而在得到的分析结果中,
注释信息(基因结构、推定的功能等)大多是通过与
拟南芥基因组进行比对推测,而拟南芥本身不存在
典型的次生生长特征,缺少某些木材形成基因和相
关的生物学过程[16],显然这些基因的功能需要进一
步鉴定。
本文将烟草维管组织转录组数据库中的 MYB
转录因子基因与毛白杨基因组数据库进行比对,得
到48对MYB同源基因(表2)。得到的这种一一对
应关系,与拟南芥与毛白杨同源基因往往是一对二
的关系不同,说明毛白杨和烟草更具有相同的进化
背景,如可能是在染色体加倍后毛白杨和烟草才发
生分化,二者更具有相同的生物学特征。通过对烟
草和毛白杨的第1 3节间的样本进行基因表达谱
高通量测序,得到每个同源基因在不同节间的表达
量,找到了15对表达模式相似的同源基因。选取8
对烟草和毛白杨中都发生表达并且在毛白杨中没有
研究的MYB同源基因,在烟草和毛白杨的第1 6
节间和根、叶和顶端分生组织中通过相对荧光定量
PCR进行表达分析,结果不仅证明与表达谱结果一
致,并且这8对MYB同源基因在烟草和毛白杨中具
有相似的表达模式,说明通过研究烟草的MYB转录
因子来揭示相应的毛白杨的维管发育相关基因的作
用具有可行性。
MYB42、MYB521和 MYB522的同源基因在烟
草和毛白杨中的表达量与茎的木质化程度成正比,
在远离顶端的节间中的表达量比靠近顶端的节间
高,与其直系同源基因 AtMYB42和 AtMYB52在拟南
芥中的表达模式相似,其在茎的基部的表达量比中
部和上部高[15]。MYB521在烟草和毛白杨的根中
具有最高的表达量,而AtMYB52在拟南芥的根中表
达量却很低,说明虽然 MYB521、MYB522与
AtMYB52的相似性很高,但是表达模式有区别,
MYB521可能在植物生长发育中参与了不同于
MYB522的作用。AtMYB42和 AtMYB52在次生细
胞壁的合成中即在纤维素、木聚糖和木质素合成中
行使 功 能[15],可 以 推 测 MYB42、MYB521和
MYB522在烟草和毛白杨中可能会在不同器官的细
胞壁合成中发挥作用,需要进一步加以阐明。
MYB61的同源基因在烟草和毛白杨中的表达量与
茎的木质化程度成反比,即在远离顶端的节间中的
表达量比靠近顶端的节间低。有研究表明,At
MYB61的非正常表达是 det3拟南芥突变体表现出
异位木质化的充分和必要条件[24],所以,可以推测
MYB61可能在维管组织发育过程中行使功能。
MYB103同源基因在烟草和毛白杨维管组织分化的
过程(第2 5节间)中具有较高的表达量,而 At
MYB103在拟南芥茎的基部的表达量比中部和上部
高[15],说明烟草和毛白杨中的 MYB103同源基因与
拟南芥AtMYB103都在植株的茎的快速伸长区的表
达水平较高。AtMYB103是 SND1、NST1、VND6、
VND7、NST1和NST2的下游靶基因,在次生细胞壁
的合成中行使功能[15],因此,可以推测烟草和毛白
杨中的MYB103同源基因具有相似的功能。MYB15
同源基因在烟草和毛白杨的SAM和第1 3节间的
表达量较高,而AtMYB15能够在ABA调节的响应环
境信号途径和耐寒性中起作用[25],说明 MYB15可
能具有多种功能,即能够在维管组织分化、信号转导
和抗性中起作用,需要进一步阐明。目前没有关于
MYB50和MYB109基因功能的报道,MYB50同源基
因在烟草和毛白杨的第1 6节间中具有较高的表
达水平,而MYB109的同源基因在烟草和毛白杨叶
片和根中的表达量都比较高,在茎中同样表现出与
木质化程度成正比的模式,说明 MYB50和 MYB109
能够在维管发育过程中起作用,有待进一步深入研
究。总之,根据表达模式可以推测这8对MYB基因
都能够在维管发育中起重要作用,有必要利用烟草
的研究系统对其进行深入的功能鉴定。
病毒诱导的基因沉默(VIGS)是一种能够快速
的通过RNAi来介导基因沉默的技术,不需要对植物
进行遗传转化,能够对植物基因功能进行快速分
析[1920]。烟草的VIGS系统是一个快速、可靠的基因
功能分析系统,已在研究植物细胞壁形成相关基因
的功能中得到成功应用[20]。纤维素、木聚糖和木质
素合成的相关基因,通过VIGS介导的烟草植株与在
其它不同物种中不同基因沉默系统的表型相似[20]。
因此,上述获得的烟草和毛白杨MYB同源基因可以
通过烟草的VIGS系统,研究它们在次生维管发育中
的作用。
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