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Effect of silicon addition on seedling morphological and physiological indicators of Glycyrrhiza uralensis under salt stress

盐胁迫下甘草幼苗形态及生理指标的影响



全 文 :书犇犗犐:10.11686/犮狔狓犫2014445 犺狋狋狆://犮狔狓犫.犾狕狌.犲犱狌.犮狀
崔佳佳,张新慧,李月彤,周达,张恩和.外源Si对盐胁迫下甘草幼苗形态及生理指标的影响.草业学报,2015,24(10):214220.
CUIJiaJia,ZHANGXinHui,LIYueTong,ZHOUDa,ZHANGEnHe.Effectofsiliconadditiononseedlingmorphologicalandphysiologicalindi
catorsof犌犾狔犮狔狉狉犺犻狕犪狌狉犪犾犲狀狊犻狊undersaltstress.ActaPrataculturaeSinica,2015,24(10):214220.
外源犛犻对盐胁迫下甘草幼苗形态及生理指标的影响
崔佳佳1,张新慧2,3,4,5,李月彤2,周达2,张恩和1
(1.甘肃农业大学农学院,甘肃 兰州730070;2.宁夏医科大学药学院,宁夏 银川750004;3.宁夏回药现代化工程技术研究中心,宁夏 银川
750004;4.宁夏回医药协同创新中心,宁夏 银川750004;5.宁夏医科大学回医药现代化省部共建教育部重点实验室,宁夏 银川750004)
摘要:为深入了解Si对盐胁迫下甘草幼苗的影响,本实验采用培养皿滤纸床进行发芽试验,以乌拉尔甘草幼苗为试
验材料,在两种浓度NaCl溶液胁迫下设置不同浓度的硅溶液对甘草幼苗进行处理,通过测定幼苗形态(胚根、胚
芽)及生理(质膜相对透性、丙二醛和过氧化物酶)指标,以探讨在盐胁迫下外源硅对甘草幼苗形态及生理指标的影
响。结果表明,在NaCl胁迫下,加入硅(Si)溶液后可以有效增加幼苗胚芽和胚根的长度及重量。在低盐(100
mmol/L)胁迫下,Si浓度为0.4mmol/L时对胚根生长的促进最强;在高盐(200mmol/L)胁迫下,Si浓度为0.8
mmol/L时对胚根生长的促进作用最强。外源Si也不同程度提高了过氧化物酶活性、渗透调节物质脯氨酸含量,
以及丙二醛含量和质膜相对透性。由此可见,在盐胁迫条件下,加入适宜浓度的外源硅,可以通过保持一定的抗渗
透胁迫能力和清除活性氧的能力,进而保持膜的稳定,来缓解盐胁迫对甘草幼苗生长的抑制作用。
关键词:甘草;硅;盐胁迫;幼苗;生理特性  
犈犳犳犲犮狋狅犳狊犻犾犻犮狅狀犪犱犱犻狋犻狅狀狅狀狊犲犲犱犾犻狀犵犿狅狉狆犺狅犾狅犵犻犮犪犾犪狀犱狆犺狔狊犻狅犾狅犵犻犮犪犾犻狀犱犻犮犪狋狅狉狊狅犳
犌犾狔犮狔狉狉犺犻狕犪狌狉犪犾犲狀狊犻狊狌狀犱犲狉狊犪犾狋狊狋狉犲狊狊
CUIJiaJia1,ZHANGXinHui2,3,4,5,LIYueTong2,ZHOUDa2,ZHANGEnHe1
1.犆狅犾犾犲犵犲狅犳犃犵狉狅狀狅犿狔,犌犪狀狊狌犃犵狉犻犮狌犾狋狌狉犪犾犝狀犻狏犲狉狊犻狋狔,犔犪狀狕犺狅狌730070,犆犺犻狀犪;2.犆狅犾犾犲犵犲狅犳犘犺犪狉犿犪犮狔,犖犻狀犵狓犻犪犕犲犱犻犮犪犾犝
狀犻狏犲狉狊犻狋狔,犢犻狀犮犺狌犪狀750004,犆犺犻狀犪;3.犖犻狀犵狓犻犪犈狀犵犻狀犲犲狉犻狀犵犪狀犱犜犲犮犺狀狅犾狅犵狔犚犲狊犲犪狉犮犺犆犲狀狋犲狉狅犳犎狌犻犕犲犱犻犮犻狀犲犕狅犱犲狉狀犻狕犪狋犻狅狀,
犢犻狀犮犺狌犪狀750004,犆犺犻狀犪;4.犖犻狀犵狓犻犪犆狅犾犾犪犫狅狉犪狋犻狏犲犐狀狀狅狏犪狋犻狅狀犆犲狀狋犲狉狅犳犎狌犻犕犲犱犻犮犻狀犲,犢犻狀犮犺狌犪狀750004,犆犺犻狀犪;5.犓犲狔犔犪犫狅狉犪
狋狅狉狔狅犳犎狌犻犕犲犱犻犮犻狀犲犕狅犱犲狉狀犻狕犪狋犻狅狀,犕犻狀犻狊狋狉狔狅犳犈犱狌犮犪狋犻狅狀,犢犻狀犮犺狌犪狀750004,犆犺犻狀犪
犃犫狊狋狉犪犮狋:Inthisstudy,awatercultureexperimentwasconductedtoinvestigatetheeffectofsiliconadditionon
themorphologicalindicators(radicle,seedgerm)andphysiologicalindicators[membranepermeability,ma
londialdehyde(MDA)levelandperoxidaseactivities]of犌犾狔犮狔狉狉犺犻狕犪狌狉犪犾犲狀狊犻狊seedlingsundersaltstress.Two
NaClconcentrations(100and200mmol/L)andsixSilevels(0,0.4,0.8,1.2,1.6and2.0mmol/L)were
setastreatmentsintheexperiment.Potassiumsilicate(K2SO4)wasusedasthesourceofSi.TheSiaddition
caneffectivelyincreasethelengthanddryweightofgermandradicleof犌.狌狉犪犾犲狀狊犻狊seedlingsundersalt
stress.Under100mmol/LNaCl,the0.4mmol/LSitreatmentpromotedradiclegrowththemostamongal
theSitreatments,whileunder200mmol/LNaCl,the0.8mmol/LSitreatmentpromotedradiclegrowththe
most.ExogenousSiadditionwasalsoabletoincreasetheperoxidaseactivityandprolinecontent,andreduce
thelevelsofMDAundersaltstress.Inconclusion,犌.狌狉犪犾犲狀狊犻狊showedenhancedosmoticstressresistanceand
第24卷 第10期
Vol.24,No.10
草 业 学 报
ACTAPRATACULTURAESINICA
2015年10月
Oct,2015
收稿日期:20141030;改回日期:20150107
基金项目:宁夏教育厅项目(NGY2012062)和国家自然科学基金项目(31260304和31460330)资助。
作者简介:崔佳佳(1991),女,甘肃兰州人,在读硕士。Email:573377977@qq.com
通讯作者Correspondingauthor.Email:zhangeh@gsau.edu.cn
reactiveoxygenscavengingcapacityundersaltstresswhenexogenousSiwasaddedtotheculturemediumand
Siadditionaleviatedgrowthsuppressionof犌.狌狉犪犾犲狀狊犻狊seedlingscausedbysaltstress.
犓犲狔狑狅狉犱狊:犌犾狔犮狔狉狉犺犻狕犪狌狉犪犾犲狀狊犻狊;silicon;saltstress;growthparameters;physiologicalparameters
甘草(犌犾狔犮狔狉狉犺犻狕犪狌狉犪犾犲狀狊犻狊)为多年生豆科草本植物,主要以干燥的根及根状茎入药,药材名为甘草。甘草
性平、味甘,具有润肺、清热解毒、调和诸药等功效。其地下根和根茎发达,具有较强的抗旱、抗寒、耐盐碱和防风
固沙的能力[1]。甘草野生资源主要适合在含盐量0.1%~0.2%的土壤中生长,能忍耐含盐量0.3%~0.6%的盐
化条件,在含盐量1%~2%的盐土上生长不良[13]。然而,近年来研究表明盐分胁迫对栽培甘草生长发育有一定
的抑制作用,当NaCl浓度达到50mmol/L或0.3%时就显著抑制甘草幼苗或一年生移栽苗的生长,且这种抑制
效应具有浓度效应[46]。目前土壤盐渍化已成为困扰人工栽培甘草的重大问题之一,因此,如何提高栽培甘草的
耐盐性就成为目前研究的热点。
Si是植物生长发育的有益元素,更是一种环境友好型元素[7]。近年来大量研究表明,Si不仅能促进植物生
长发育[811],也可以降低盐分胁迫对植物体的伤害[11],提高作物对盐环境胁迫的抗性。目前有关盐胁迫下外源
Si对植物的影响主要集中在水稻(犗狉狔狕犪狊犪狋犻狏犪)、玉米(犣犲犪犿犪狔狊)、大麦(犎狅狉犱犲狌犿狏狌犾犵犪狉犲)等籽粒类作物
上[1215],而在像甘草等根及根茎类作物上尚未见报道。
本课题组前期研究发现硅直接参与了甘草种子萌发出苗和幼苗生长的生理生化过程,且较低浓度的外源硅
对甘草的盐害有一定的缓解作用[16]。因此,本试验在前期研究基础上,进一步以发芽的乌拉尔甘草幼苗为研究
对象,通过研究外源Si对盐胁迫下甘草幼苗的形态结构及生理指标的影响,以期从抗氧化角度阐明硅缓解甘草
盐胁迫的生理生化机制,对提高人工栽培甘草的耐盐性提供科学依据。
1 材料与方法
1.1 供试材料
试验材料为乌拉尔甘草种子,种子收获于2012年,收获并净种后,将种子装入牛皮纸袋放置冰箱冷藏室贮
藏,于2013年8月开始试验。
1.2 种子预处理
在自然环境下,由于甘草种子种皮较厚而抑制发芽,导致甘草种子自然萌发率为10%~20%[17]。为了提高
种子萌发率,在人工种植播种前通常要进行甘草种子预处理(种皮打磨或酸处理)。本试验选取籽粒饱满、大小一
致的甘草种子,用85%的浓H2SO4 处理45min(打破因种皮抑制而导致的种子休眠)后,用无菌水冲洗3遍,再
用0.1%的 H2O2 消毒10min,最后用无菌水冲洗。洗净后置于玻璃杯中用无菌水浸泡8h后待用。
1.3 试验方法
通过前期实验结果确定适宜的盐溶液与Si元素的浓度梯度范围:盐分设置为NaCl单盐溶液,浓度设置为
100mmol/L(Na1)、200mmol/L(Na2)两个盐分处理,外源Si采用 K2SiO3 溶液,浓度设置为0mmol/L(Si0)、
0.4mmol/L(Si1)、0.8mmol/L(Si2)、1.2mmol/L(Si3)、1.6mmol/L(Si4)、2.0mmol/L(Si5)6个梯度,试验中
因加入K2SiO3 引入K+,用KCl来平衡其误差。采用培养皿纸上发芽法,将种子用无菌滤纸吸去种子表皮多余
的水分,均匀摆放在铺有被混合溶液浸湿的2层无菌滤纸的培养皿中,每皿81粒,每个处理设置3个重复,称量
培养皿重量后置于恒温25℃的人工气候培养箱中黑暗培养。为避免水分蒸发,盐分在滤纸上积累,每天早晚(早
上10点,下午16点)定量加入无菌水至恒重,以保证各处理中盐及硅浓度一致。
1.4 测定方法
待种子发芽后(以胚根露出2mm为发芽标准)第10天结束发芽实验,然后统计其胚根胚芽长度、重量以及
次生根个数,并取样测定各项生理指标。质膜透性测定采用电导率法[18],过氧化物酶(POD)活性的检测参照
Rao等[19]的愈创木酚氧化法,以每分钟A值的变化值表示酶活性大小,即以ΔA470 U/(g·min)表示。丙二醛
(MDA)采用硫代巴比妥酸法,单位用μmol/L来表示。
512第10期 崔佳佳 等:外源Si对盐胁迫下甘草幼苗形态及生理指标的影响
1.5 统计方法
试验数据采用Excel2010和SPSS11.5软件进行方差分析和显著性检验,方差分析多重比较用Duncan法
(犘<0.05),各图表中的数据均为3次重复平均值。
2 结果与分析
2.1 Si对盐胁迫下甘草幼苗形态特征的影响
2.1.1 Si对甘草胚芽和胚根长度的影响  由图1可看出,在Na1 胁迫下,外源Si对甘草幼苗胚芽长度和胚根
长度均没有显著影响。在Na2 胁迫下,Si2 处理显著增加了胚根长度,较Si0 增加了25.45%。
图1 犛犻对盐胁迫下甘草胚芽和胚根长度的影响
犉犻犵.1 犈犳犳犲犮狋狅犳狊犻犾犻犮狅狀犪犱犱犻狋犻狅狀狅狀犾犲狀犵狋犺狅犳犵犲狉犿犪狀犱狉犪犱犻犮犾犲犌.狌狉犪犾犲狀狊犻狊狊犲犲犱犾犻狀犵狌狀犱犲狉狊犪犾狋狊狋狉犲狊狊
不同小写字母表示差异显著(犘<0.05),下同。Thedifferentsmallettersmeanthesignificantdifferencesat犘<0.05,thesamebelow.
 
2.1.2 Si对甘草次生根数量的影响  由图2可看
图2 犛犻对盐胁迫下甘草幼苗次生根数量的影响
犉犻犵.2 犈犳犳犲犮狋狅犳狊犻犾犻犮狅狀犪犱犱犻狋犻狅狀狅狀狋犺犲狀狌犿犫犲狉狅犳狊犲犮狅狀犱犪狉狔
狉狅狅狋狅犳犌.狌狉犪犾犲狀狊犻狊狊犲犲犱犾犻狀犵狌狀犱犲狉狊犪犾狋狊狋狉犲狊狊
出,Si处理显著影响了盐胁迫下甘草幼苗的次生根数
量。在Na1 胁迫下,与Si0 相比,Si5 处理的甘草幼苗
次生根数量提高了67.43%,差异达到显著水平。在
Na2胁迫下,甘草幼苗次生根个数随Si浓度的增加呈
现先增加后减少的趋势,但均与Si0 没有显著差异。
2.1.3 Si对甘草胚芽和胚根干重的影响  由图3
可看出,在Na1 胁迫下,胚芽干重随着Si浓度的增加
呈现逐渐下降的趋势,而胚根干重随着Si浓度的增加
呈现逐渐上升的趋势。与Si0 相比,Si1、Si3、Si4 和Si5
处理胚芽干重分别降低了6.71%,7.29%,9.23%和
9.07%,差异均达到显著水平;Si1、Si2、Si3、Si4 和Si5 处理胚根干重分别提高了17.31%,23.72%,33.77%,
30.87%和38.84%。在Na2 胁迫下,除Si1 处理显著降低胚芽干重外,其他浓度Si处理对胚芽干重均没有显著
影响;所有浓度Si处理的胚根干重显著增加,Si1、Si2、Si3、Si4 和Si5 处理分别较Si0 增加了26.73%,29.66%,
20.70%,25.88%和16.27%。
2.2 Si对盐胁迫下甘草幼苗生理指标的影响
2.2.1 Si对盐胁迫下甘草幼苗保护酶POD的影响  由图4可以看出,外源Si处理显著影响盐胁迫下甘草幼
苗POD活性,且影响趋势因盐胁迫程度和Si浓度而异。在Na1 胁迫下,在Si4 处理下甘草幼苗POD活性显著
提高,较Si0 提高了35.92%;在Na2 胁迫下,Si1、Si2、Si4 和Si5 处理均显著降低POD活性,分别较Si0 降低了
40.91%,48.57%,42.45%和31.85%。
2.2.2 Si对盐胁迫下甘草幼苗游离脯氨酸含量的影响  由图5可以看出,在盐胁迫下,甘草幼苗游离脯氨酸
612 草 业 学 报 第24卷
含量均随Si浓度的增加呈现出先增加后减少的趋势。在Na1 胁迫下,与Si0 处理相比,在Si2 处理下甘草幼苗游
离脯氨酸含量显著增加,较Si0 增加了30.79%。在Na2 胁迫下,甘草幼苗游离脯氨酸含量在Si3 处理下显著高
于Si0 处理,较Si0 增加了71.91%。
图3 犛犻对盐胁迫下甘草幼苗胚芽和胚根干重的影响
犉犻犵.3 犈犳犳犲犮狋狅犳狊犻犾犻犮狅狀犪犱犱犻狋犻狅狀狅狀狋犺犲犱狉狔狑犲犻犵犺狋狅犳犵犲狉犿犪狀犱狉犪犱犻犮犾犲狅犳
犌.狌狉犪犾犲狀狊犻狊狊犲犲犱犾犻狀犵狌狀犱犲狉狊犪犾狋狊狋狉犲狊狊
 
图4 犛犻对盐胁迫下甘草幼苗犘犗犇活性的影响
犉犻犵.4 犈犳犳犲犮狋狅犳狊犻犾犻犮狅狀犪犱犱犻狋犻狅狀狅狀狋犺犲犘犗犇犪犮狋犻狏犻狋狔狅犳
犌.狌狉犪犾犲狀狊犻狊狊犲犲犱犾犻狀犵狌狀犱犲狉狊犪犾狋狊狋狉犲狊狊
 
图5 犛犻对盐胁迫下甘草幼苗中游离脯氨酸含量的影响
犉犻犵.5 犈犳犳犲犮狋狅犳狊犻犾犻犮狅狀犪犱犱犻狋犻狅狀狅狀狋犺犲狆狉狅犾犻狀犲犮狅狀狋犲狀狋狅犳
犌.狌狉犪犾犲狀狊犻狊狊犲犲犱犾犻狀犵狌狀犱犲狉狊犪犾狋狊狋狉犲狊狊
 
2.2.3 Si对盐胁迫下甘草幼苗 MDA含量的影响  由图6可以看出,在Na1 胁迫下,所有浓度Si处理除Si4
外显著降低甘草幼苗 MDA含量,且随Si浓度的增加呈现先降低后升高的趋势。与Si0 相比,Si1、Si2、Si3、Si4 和
Si5 处理MDA含量分别降低了5.14%,29.45%,21.79%,-3.85%和6.41%,差异均显著。在Na2 胁迫下,Si1、
Si2、Si3、Si4 和Si5 处理均显著降低 MDA活性,分别较Si0 降低了13.63%,14.77%,5.68%,1.14%和15.91%。
图6 犛犻对盐胁迫下甘草幼苗 犕犇犃含量的影响
犉犻犵.6 犈犳犳犲犮狋狅犳狊犻犾犻犮狅狀犪犱犱犻狋犻狅狀狅狀狋犺犲犕犇犃犮狅狀狋犲狀狋狅犳
犌.狌狉犪犾犲狀狊犻狊狊犲犲犱犾犻狀犵狌狀犱犲狉狊犪犾狋狊狋狉犲狊狊
 
图7 犛犻对盐胁迫下甘草幼苗质膜相对透性的影响
犉犻犵.7 犈犳犳犲犮狋狅犳狊犻犾犻犮狅狀犪犱犱犻狋犻狅狀狅狀狋犺犲狉犲犾犪狋犻狏犲狆犾犪狊犿犪犿犲犿犫狉犪狀犲
狆犲狉犿犲犪犫犻犾犻狋狔狅犳犌.狌狉犪犾犲狀狊犻狊狊犲犲犱犾犻狀犵狌狀犱犲狉狊犪犾狋狊狋狉犲狊狊
 
712第10期 崔佳佳 等:外源Si对盐胁迫下甘草幼苗形态及生理指标的影响
2.2.4 Si对盐胁迫下甘草幼苗质膜相对透性的影响  由图7可以看出,在盐胁迫下,Si处理显著影响了甘草
幼苗的质膜相对透性。在Na1 胁迫下,甘草幼苗的质膜相对透性随Si浓度的增加呈现先后升高降低的趋势。与
Si0 处理相比,在Si2 处理下甘草幼苗质膜相对透性显著增加,较Si0 增加了8.75%。在Na2 胁迫下,甘草幼苗质
膜相对透性在Si5 处理下显著高于Si0 处理,较Si0 增加了8.43%。
3 结论与讨论
3.1 Si对盐胁迫下甘草幼苗形态特征的影响
盐胁迫对植物个体形态发育具有显著的影响,不同浓度盐胁迫对植物最普遍和最显著的效应就是抑制生
长[20]。Matoh等[21]和Ahmad等[12]的试验结果表明,硅提高水稻和小麦(犜狉犻狋犻犮狌犿犪犲狊狋犻狏狌犿)的抗盐性和干物
质量。本试验结果表明,Si对盐胁迫下甘草幼苗生长有明显的促进作用。在Na1(100mmol/LNaCl)胁迫下,
2.0mmol/LSi使不定根的个数增加了67.43%,胚根干重提高 了38.84%,但是观察其形态发现在2.0mmol/L
时甘草根部较粗短,尖端发黑有坏死现象,生长潜力不够好;而在0.4mmol/L时显著提高根干重,且对根长和次
生根数量已有一定的促进作用。在Na2(200mmol/LNaCl)盐胁迫下,0.8mmol/LSi明显提高甘草幼苗胚根的
长度及干重,分别增加了25.45%和29.66%。由以上结果可以看出Si对盐胁迫下甘草幼苗根系的生长具有一
定的促进作用,但这种促进作用因盐胁迫程度和硅浓度而异。
3.2 Si对盐胁迫下甘草幼苗保护酶活性和渗透调节物质的影响
在盐胁迫下,细胞活性氧的产生与清除这一动态平衡将会被打破[22]。因此,植物在逆境胁迫下会在一定程
度上提高其自身的抗氧化能力,从而提高植物对逆境的适应性。樊哲仁等[23]实验证明Si可显著提高盐胁迫下
麻疯树(犑犪狋狉狅狆犺犪犮狌狉犮犪狊)幼苗叶片 POD活性。本试验结果表明,在 Na1(100mmol/LNaCl)胁迫下,1.6
mmol/LSi显著提高POD活性,较Si0 提高了35.92%;而在Na2(200mmol/LNaCl)胁迫下,加入外源Si后使
得POD活性显著下降,与Si0 相比,0.8mmol/LSi处理POD活性下降了48.57%。
植物在正常条件下游离脯氨酸含量很低,但是在逆境条件下便会大量积累,大量的脯氨酸会使植物渗透胁迫
耐性增加。从本试验的数据可以发现Si可显著提高植物体内游离脯氨酸含量。在Na1(100mmol/LNaCl)胁迫
下,0.8mmol/LSi处理较Si0 处理中游离脯氨酸含量提高30.79%;在 Na2(200mmol/LNaCl)胁迫下,1.2
mmol/LSi处理中游离脯氨酸含量增加71.91%。由此可见添加外源硅可通过增加幼苗游离脯氨酸含量而提高
甘草的耐盐性,进而缓解盐胁迫对甘草幼苗的伤害。
3.3 Si对盐胁迫下甘草幼苗膜脂过氧化作用的影响
植物在逆境下遭受伤害与活性氧积累诱发的膜脂过氧化作用密切相关,过多的活性氧会导致膜脂过氧化、膜
的选择通透性丧失。MDA是植物膜脂过氧化的最终产物,是检测植物膜伤害的一个重要指标,其量可以用来表
示植物质膜过氧化的程度[24]。在本试验中,Na1(100mmol/LNaCl)胁迫下加入Si后显著降低 MDA含量,0.8
mmol/LSi较Si0 处理降低29.45%。武俊英等[25]在燕麦(犃狏犲狀犪)上的研究发现植物在逆境下会提高细胞液的
渗透压和细胞质的粘滞性,使得质膜的调节作用增加,透性降低。本试验中,Si处理可显著增加甘草幼苗质膜相
对透性,使其 Na1(100mmol/LNaCl)、Na2(200mmol/LNaCl)胁迫下分别在Si2、Si5 处理升高8.75%和
8.43%。说明Si可以通过缓解盐胁迫下甘草幼苗细胞膜系统所受到的伤害,增加甘草幼苗细胞膜的稳定性,使
其能适应一定的盐渍环境。
综上所述,外源硅可促进盐胁迫下甘草幼苗的生长,但这种促进作用因盐胁迫程度和硅浓度而异。在 Na1
(100mmol/LNaCl)胁迫下,Si浓度为0.4mmol/L时对甘草幼苗生长的促进作用最强;在 Na2(200mmol/L
NaCl)胁迫下,Si浓度为0.8mmol/L时对甘草幼苗生长的促进作用最强。且硅对盐胁迫下甘草生长的促进可
能是通过提高甘草幼苗保护酶POD活性,增加渗透调节物质脯氨酸含量,调控其膜脂过氧化作用而实现的。
犚犲犳犲狉犲狀犮犲狊:
[1] YangJS,ZhangEH,HuangGB,犲狋犪犾.TheinfluenceofH2O2,NaClandSAsandgrindongerminationcharacteristicsof
812 草 业 学 报 第24卷
liquoriceseeds.JournalofGansuAgriculturalUniversity,2009,44(5):8891.
[2] LiXY.Theresearchofclassificationsystemandnewtaxaabout犌犾狔犮狔狉狉犺犻狕犪.BuletinofBotanicalResearch,1993,13(1):
1443.
[3] GuHY.StudyonResourcesEcologyofChineseLicorice[D].Harbin:NortheastForestryUniversity,2001.
[4] WeiZZ,LiJZ.Effectofharvesttimeanddepthonqualityandproductionefficiencyof犌犾狔犮狔狉狉犺犻狕犪狌狉犪犾犲狀狊犻狊.Pratacultural
Science,2006,23(8):2123.
[5] YangFL,LiKC,HuCL.Thebeginningreportonthestudyofartificialbreedingandcultivationtechniquesofseedsat犌犾狔
犮狔狉狉犺犻狕犪狌狉犪犾犲狀狊犻狊.PrataculturalScience,2004,21(12):9094.
[6] ShaoXL,DuB,ZhangY,犲狋犪犾.Artificialcultivationtechniqueof犌犾狔犮狔狉狉犺犻狕犪狌狉犪犾犲狀狊犻狊.GansuRuralScienceandTechnolo
gy,2003,(4):3435.
[7] WangJL,HuangXJ,ZhongTY,犲狋犪犾.Theoverviewaboutsustainableutilizationofsalinealkalisoil.ActaGeographica
Sinica,2011,66(5):673684.
[8] AndoH,KakudaK,FujiH,犲狋犪犾.GrowthandcanopystructureofriceplantsgrownunderfieldconditionsasaffectedbySi
application.SoilScienceandPlantNutrition,2002,48(3):429432.
[9] GaoX,ZouC,WangL,犲狋犪犾.Siliconimproveswateruseefficiencyinmaizeplants.JournalofPlantNutrition,2005,27(8):
14571470.
[10] HossainMT,MoriR,SogaK,犲狋犪犾.Growthpromotionandanincreaseincelwalextensibilitybysiliconinriceandsome
otherPoaceaeseedlings.JournalofPlantResearch,2002,115(1):00230027.
[11] InanagaS,HiguchiY,ChishakiN.Effectofsiliconapplicationonreproductivegrowthofriceplant.SoilScienceandPlant
Nutrition,2002,48(3):341345.
[12] AhmadR,ZaheerS,IsmailS.Roleofsiliconinsalttoleranceofwheat(犜狉犻狋犻狌犿犪犲狊狋犻狏狌犿L.).PlantScience,1992,85:43
50.
[13] LiangYC.EffectsofSionleafultrastructure,chlorophylcontentandphotosyntheticactivityinbarleyundersaltstress.
Pedosphere,1998,8:289296.
[14] YuBJ,ZhangW H,LiuYL.EffectsofNaClonproteinandcontentoffreeaminoacidsinrootsofbarley.ActaBotanica
BorealiOccidentaliaSinica,1997,17(4):439445.
[15] MaCC,LiQF,ShuLZ,犲狋犪犾.Preliminaryexplanationofthemechanismabouteffectsofsilicononmaizeseedgermination
andseedlinggrowth.ActaAgronomicaSinica,2002,9(5):665669.
[16] ZhangXH,LangDY,BaiCC,犲狋犪犾.Effectsofsiliconadditiononseedgerminationandseedlinggrowthof犌犾狏犪狉狉犺犻狕犪
狌狉犪犾犲狀狊犻狊undersaltstress.ChineseTraditionalandHerbalDrugs,2014,7(45):20752079.
[17] WangYX,ChenHY,XieLQ,犲狋犪犾.Theexperimentsofimprovingthegerminationandseeklingratioof犌犾狔犮狔狉狉犺犻狕犪.
Seed,2004,10(23):2729.
[18] HaoJJ,LiuYJ.TheExperimentTechnologyofPlantPhysiology[M].Shenyang:LiaoningScienceandTechnologyPress,
2001.
[19] RaoMV,PaliyathG,OrmrodDP.UltravioletBandozoneinducedbiochemicalchangesinantioxidantenzymesof犃狉犪犫犻
犱狅狆狊犻狊狋犺犪犾犻犪狀犪.PlantPhysiology,1996,110(1):125136.
[20] QinW,HanJ,Karim·ali.GrowthandItsphysiologicalcharacteristicsof犆狔犱狅狀犻犪狅犫犾狅狀犵犪tissueculturedplantwithsalt
stress.ActaBotanicaBorealiOccidentaliaSinica,2008,28(12):24672471.
[21] MatohT,KairusmeeP,TakahashiE.Saltinduceddamagetoriceplantsandaleviationeffectofsilicate.SoilSciencePlant
Nutrition,1986,32:295304.
[22] YuBJ,LiuYL.Effectsofsaltonthemetabolismofactiveoxygeninseedlingsofannualhalophyte犌犾狔犮犻狀犲狊狅犼犪.ActaBo
tanicaBorealiOccidentaliaSinica,2003,23(1):1822
[23] FanZR,WangXD,TangL.Effectsofsiliconon犑犪狋狉狅狆犺犪犮狌狉犮犪狊L.germinationandseedlinggrowthundersaltstress.
ChineseJournalofOilCropSciences,2010,32(2):217221.
[24] LiuAR,ZhangYB,ChenDK.Effectsofsaltstressonthegrowthandtheantioxidantenzymeactivityof犜犺犲犾犾狌狀犵犻犲犾犾犪
犺犪犾狅狆犺犻犾犲.BuletinofBotanicalResearch,2006,26(2):216220.
[25] WuJY,LiuJH,LiQ,犲狋犪犾.Effectofsaltstressonoatseedgerminationandseedingmembranepermeability.Journalof
TriticeaeCrops,2009,29(2):341345.
参考文献:
[1] 杨江山,张恩和,黄高宝,等.H2O2,NaCl,SA处理对磨砂后甘草种子发芽特性的影响.甘肃农业大学学报,2009,44(5):
8891.
912第10期 崔佳佳 等:外源Si对盐胁迫下甘草幼苗形态及生理指标的影响
[2] 李学禹.甘草属分类系统与新分类群的研究.植物研究,1993,13(1):1443.
[3] 谷会岩.中国甘草资源生态学研究[D].哈尔滨:东北林业大学,2001.
[4] 魏昭智,李剑中.采挖期和采挖深度对人工甘草品质和产量效益的影响.草业科学,2006,23(8):2123.
[5] 杨发林,李克昌,胡崇礼.甘草种子人工繁育暨配套栽培技术研究初报.草业科学,2004,21(12):9094.
[6] 邵晓林,杜彪,张瑛,等.甘草人工栽培技术.甘肃农村科技,2003,(4):3435.
[7] 王佳丽,黄贤金,钟太洋,等.盐碱地可持续利用研究综述.地理学报,2011,66(5):673684.
[14] 於丙军,章文华,刘友良.NaCl对大麦幼苗根系蛋白质和游历氨基酸的影响.西北植物学报,1997,17(4):439445.
[15] 马成仓,李清芳,束良佐,等.硅对玉米种子萌发和幼苗生长作用机制初探.作物学报,2002,9(5):665669.
[16] 张新慧,郎多勇,白长财,等.外源硅对不同程度盐胁迫下甘草种子萌发和幼苗生长发育的影响.中草药,2014,7(45):
20752079.
[17] 王咏星,陈海洋,谢丽琼,等.提高甘草种子的发芽率和出苗率试验.种子,2004,10(23):2729.
[18] 郝建军,刘延吉.植物生理学实验技术[M].沈阳:辽宁科学技术出版社,2001.
[20] 秦伟,韩晶,克热木·伊力.盐胁迫对组培苗生长及其生理特征的影响.西北植物学报,2008,28(12):24672471.
[22] 於丙军,刘友良.盐处理对一年生盐生野大豆幼苗活性氧代谢的影响.西北植物学报,2003,23(1):1822.
[23] 樊哲仁,王晓东,唐琳.硅对盐胁迫下麻疯树种子萌发及幼苗生长的影响.中国油料作物学报,2010,32(2):217221.
[24] 刘爱荣,张远兵,陈登科.盐处理对盐芥(犜犺犲犾犾狌狀犵犻犲犾犾犪犺犪犾狅狆犺犻犾犪)生长和抗氧化酶活性的影响.植物研究,2006,26(2):
216220.
[25] 武俊英,刘景辉,李倩,等.盐胁迫对燕麦种子萌发、幼苗生长及叶片质膜透性的影响.麦类作物学报,2009,29(2):341
345.
022 草 业 学 报 第24卷