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Effect of arbuscular mycorrhizal colonization on broad bean straw degradation in a split root experiment

分根装置中丛枝菌根真菌影响蚕豆秸秆降解作用研究



全 文 :分根装置中丛枝菌根真菌影响蚕豆秸秆降解作用研究
郭涛1,2,石孝均1,朱敏1,罗珍1
(1.西南大学资源环境学院,重庆400716;2.国家紫色土肥力与肥料效益监测基地,重庆400716)
摘要:为了研究丛枝菌根对植物凋落物降解的作用,采用四室分根装置即土壤室、根室、菌根室和菌丝室,分室间用
37.4μm尼龙网和有机板分隔,尼龙网袋包埋蚕豆秸秆于不同分室内,以玉米为宿主植物,接种丛枝菌根真菌犌犾狅
犿狌狊犿狅狊狊犲犪犲。试验分别在移栽后第20、30、40、50、60天时取样,通过比较不同分室内在降解过程中土壤中酸性磷
酸酶、蛋白酶和过氧化氢酶活性的动态变化、微生物量碳和氮及土壤呼吸的动态变化。研究结果表明:经60d的培
养后,与非根际土壤室(S)相比,根室(R)、菌根室(M)和菌丝室(H)蚕豆秸秆降解量分别提高了15.61%,20.54%
和7.74%,降解系数分别提高了25.87%、35.00%和12.17%。M室中土壤酸性磷酸酶、蛋白酶、过氧化氢酶活性
较其他三室都有显著提高,同时菌根室(M)和菌丝室的微生物量碳、氮与土壤呼吸作用也显著增加。因此,丛枝菌
根真菌和宿主植物形成共生体系后,通过提高土壤酶活性、增加微生物量的大小和活性来作用于蚕豆秸秆的降解
过程,成为造成玉米秸秆降解加快的重要原因,这也表明了丛枝菌根真菌土壤碳氮循环中的重要作用。
关键词:分根装置;降解;土壤酶活性;土壤呼吸
中图分类号:S643.6;S432.4+4  文献标识码:A  文章编号:10045759(2014)05026308
犇犗犐:10.11686/cyxb20140531  
  植物凋落物是生态系统中养分的基本载体,是连接植物与土壤养分循环的“纽带”,也是陆地生态系统物质循
环和能量转换的主要途径,对生态系统生产力至关重要[1]。凋落物的降解过程是生态系统的养分循环中重要的
一环,对整个生态系统的生物群落构建具有重要的作用[2]。植物凋落物的降解过程包括一系列的生物、物理、化
学的作用及它们之间协同作用,既受植物本身物质组成的影响,还受人为活动及环境等因素的影响,其过程十分
复杂,但本质上是一个微生物驱动的过程[3]。因此,微生物既是土壤的重要组成部分,又是参与凋落物降解的最
活跃的生物因素。
在许多陆地生态系统中,丛枝菌根(arbuscularmycorrhizal,AM)真菌是重要的一类微生物,能与80%以上
的陆生植物形成共生体,在各类植物共生微生物中,丛枝菌根真菌是唯一直接联系土壤和植物根系的一类,丛枝
菌根共生体在生态系统中可以提高植物对土壤矿质营养元素的吸收和累积、促进植物的抗旱、抗涝、抗盐、抗病、
耐受重金属胁迫等方面的作用已经得到普遍认同[45],近年来,丛枝菌根共生体在养分循环和陆地生态过程中的
作用受到越来越多的关注,研究AM真菌影响植物凋落物的降解成为研究的主要切入点[6]。虽然真菌通常被认
为是有机物最主要的分解者,但关于AM真菌降解植物残体的研究很少,主要缘于以往的研究普遍认为AM 真
菌专性活体共生,依靠宿主植物提供碳源,不具腐生性,在 Hodge等[7]的里程碑式研究中发现犌犾狅犿狌狊犺狅犻的根
外菌丝能利用复杂的有机质中的氮,以13C和15N双标记的研磨后的黑麦草叶作为氮源,并没有发现13C随15N一
起转移,说明了AM真菌促进丛枝菌根菌丝具有促进凋落物降解的能力,拓展了AM 真菌在生态系统物质循环
中的作用。
然而丛枝菌根真菌(AMF)如何参与凋落物降解过程的尚不清楚,由于AMF不能像外生菌根真菌和欧石楠
科菌根真菌一样直接分泌胞外酶[8],菌丝单独存在时并不能矿化有机质[9],因此丛枝菌根真菌可能通过增加促进
微生物活性或改变微生物群落来促进有机质的降解。AM真菌侵染宿主建立共生体系后,一方面菌根菌丝能释
第23卷 第5期
Vol.23,No.5
草 业 学 报
ACTAPRATACULTURAESINICA   
263-270
2014年10月
收稿日期:20130927;改回日期:20131118
基金项目:国家科技支撑计划(2012BAD05B03)和中央高校基本科研业务费专项资金(XDJK2010B012)资助。
作者简介:郭涛(1978),男,山东泰安人,副教授,博士。
通讯作者。Email:guotaosd@swu.edu.cn
放出多种酶和分泌物,分布于土壤中;另一方面,AM真菌可能增加促进微生物活性或改变微生物群落,形成明显
有别于根际的微生物区系[10]。土壤微生物和酶可能直接或间接的参与到植物残体的降解过程,据此推测,在植
物残体降解过程中,AM真菌可直接导致土壤微环境的优化。
目前为止,国内外关于AM真菌对植物残体降解的影响研究还不深入,因此,研究过程中采用了四室分根装
置,将植物的根系、菌根以及根外菌丝隔开,通过分别比较其对蚕豆(犞犻犮犻犪犳犪犫犪)秸秆降解的影响,以及土壤中微
生物和酶活性的变化动态,旨在植物生长状况相同的前提下,对植物根系、菌根和菌丝及根外菌丝降解蚕豆秸秆
的作用进行量化比较。深入理解AM真菌在促进植物凋落物降解中的作用。研究AM 真菌对植物凋落物降解
的影响,初步揭示AM真菌在植物残体降解过程中的作用,对理解AM 真菌在生态系统的物质循环中有重要意
义,也为进一步阐述其在生态系统中的作用提供理论依据。
1 材料与方法
1.1 试验材料
试验在西南大学资源环境学院植物营养实验室进行。供试土壤为中性紫色土,其基本理化性状为:pH6.9、
有机质21.5g/kg、全氮0.6g/kg、全磷1.0g/kg、全钾15.4g/kg、碱解氮84.2mg/kg、有效磷27.6mg/kg、速效
钾73.0mg/kg。土壤经湿热灭菌处理,风干后备用。
供试植物:玉米(犣犲犪犿犪狔狊)“精科糯2000”,种子以10%浓度的 H2O2 表面消毒10min,去离子水浸泡5h,
于25℃暗室催芽30h后,在盛有石英砂的培养盆中育苗,随时补充水分和养分,待根系长出8~10cm时进行分
根。
供试AM 真菌菌种:犌犾狅犿狌狊犿狅狊狊犲犪犲(犌.犿),来自中国农业大学资源环境学院,经三叶草(犜狉犻犳狅犾犻狌犿狉犲
狆犲狀狊)、玉米盆栽繁殖,接种剂含有AM真菌孢子、根外菌丝和侵染的根段,每克菌剂含有20~30个孢子。
蚕豆秸秆尼龙网袋制备:试验材料为蚕豆成熟后的地上部秸秆,用去离子水漂洗,于60℃下烘干至恒量,磨
碎后过筛,使粒径为0.5~2mm。称取2.00g材料分别装入孔径为75μm,长9cm,宽5cm的尼龙网袋中。封
口后称整个网袋重量,用万分之一天平精确到小数点后4位。其初始元素含量为:全碳457.3g/kg、全氮20.74
g/kg、碳氮比22.05。
1.2 试验设计
本试验所用装置参照彭思利等[11]的四室隔板分室系统,分别称之为菌根室(M)、菌丝室(H)、非根际土壤室
(S)、根室(R)。此装置采用3mm 厚的有机玻璃板加工而成,每个室的长×宽×高均为:5cm×10cm×15cm。
M 室和 R室用长14cm,宽10cm,厚3mm 的有机玻璃隔板隔开,而S室和 R室以及 H 室和 M 室则由37.4
μm(400目)的尼龙网隔开,菌丝和溶液能透过此尼龙网,而根系则不能。每盆土重共计3.6kg,每室盛土0.9
kg,试验进行时,先分别向4个分室中加0.20kg灭菌土壤,然后分别竖放置一个尼龙网袋,然后在 M 室加入与
接种剂均匀混合的0.5kg土壤,接种量为10%,R室则加入等量灭菌的菌种与土壤混合,以保持土壤理化性质一
致(不接种的对照处理)。将植物根系平均分为2份置于中间两室中,每盆定植2株玉米,上面再覆盖0.20kg灭
菌土壤。S室与 H室加入的土壤与R、M室相同。试验过程中采用称重法保持水分含量,使每室土壤含水量保
持在田间持水量的60%~70%。试验共设置15个分室装置,每个处理5个重复。试验过程中土壤未施肥。试
验于2012年3月至2012年6月在西南大学植物营养网室进行。
根据AM真菌侵染规律,将取样时间分别设定在移栽后第20、30、40、50、60天时,每处理收获3盆,根室与
菌根室中根系分开收获,取洗净、混匀的鲜根1g用于侵染率的测定,取出的尼龙网袋于40℃烘干至恒重,用万分
之一天平称重。土壤风干后待测。
1.3 测定项目及方法
每个尼龙网袋单独测定:降解量=犅0-犅t。式中,犅0 为蚕豆秸秆初始重量,犅t为蚕豆秸秆剩余重量。网袋
内剩余蚕豆秸秆的C含量测定方法为重铬酸钾-硫酸法,N含量测定方法为凯氏定氮法[12];C释放量与N释放
量参照申艳等[13]的方法计算;应用Olson的指数模型犅t/犅0=e-犽狋计算玉米秸秆的降解系数犽值[14]。玉米根系
462 ACTAPRATACULTURAESINICA(2014) Vol.23,No.5
的菌根侵染率采用方格交叉法测定[15]。土壤菌丝密度按照Abbott等[16]的方法进行。
土壤过氧化氢酶活性测定采用高锰酸钾滴定法,活性单位以30min后1g土壤消耗0.1mol/LKMnO4 的
毫升数表示(U);蛋白酶活性测定采用茚三酮比色法,活性单位以24h后1g土壤中氨基氮的毫克数表示
(U)[17];酸性磷酸酶活性测定采用磷酸苯二钠比色法,活性单位以3h后100g土壤中酚的毫克数表示(U)[18];
土壤呼吸强度测定采用碱吸收法;微生物量碳、氮测定采用氯仿熏蒸-K2SO4 浸提法[19]。
1.4 数据处理
原始数据在Excel中进行标准化处理,应用SAS软件(Version9.13;SASInstitute,Cary,NC)对试验数据
进行方差分析,5%水平下LSD多重比较检验各处理平均值之间的差异显著性。
2 结果与分析
2.1 植物与菌根结构生长情况
从表1可以看出,接种犌.犿的 M室形成了良好的菌根共生体,并且随着时间的延长,侵染率和菌丝密度不
断增加,根系侵染率在60d时为78.85%,而不接种的R室均未形成菌根共生体。由于AM 真菌根外菌丝可以
通过 M室和H室之间的尼龙网到达H室,在 M室和 H室均有大量的菌丝,60d时菌丝密度在76.27~102.63
cm/g之间,M室最高,R室和S室没有菌丝存在。M室和R室根系生物量除60d时差异均不显著(表2)。
表1 分根装置中接种菌根真菌的宿主植物根系侵染率及菌丝密度
犜犪犫犾犲1 犐狀狅犮狌犾犪狋犻狅狀狉犪狋犲犪狀犱犺狔狆犺犪犾犱犲狀狊犻狋狔狅犳狀狅狀犿狔犮狅狉狉犺犻狕犪犾犪狀犱犿狔犮狅狉狉犺犻狕犪犾犺狅狊狋狆犾犪狀狋狊犻狀狋犺犲狊狆犾犻狋狉狅狅狋犱犲狏犻犮犲
处理
Treatment
侵染率Rateofinoculation(%)
20d 30d 40d 50d 60d
菌丝密度 Hyphaldensity(cm/g)
20d 30d 40d 50d 60d
S — — — — — — — — — —
R 0b 0b 0b 0b 0b — — — — —
M 36.13aE 48.78aD 61.10aC 70.53aB 78.85aA 21.93a 36.41a 60.63a 82.34a 102.63a
H — — — — — 10.67bE 16.91bD 46.23bC 58.97bB 76.27bA
 注:表中结果为5个重复的平均值。同一列中不同小写字母表示同一取样时间的不同接种处理在犘<0.05水平差异显著。同一行中的不同大写
字母表示不同取样时间的平均数在犘<0.05水平差异显著。下同。
 Notes:Datainthetablearetheaverageof5replicates.Withineachcolumn,valueswithdifferentlowercasewithinasamplingtimearesignificantly
differentat犘<0.05.Withineachrow,differentcapitalletterdenotethemeanvaluesfordifferentsamplingtimesaresignificantlydifferentat犘<0.
05.Thesamebelow.
表2 分根装置中接种菌根真菌的宿主植物地上部、根系干重
犜犪犫犾犲2 犛犺狅狅狋犱狉狔狑犲犻犵犺狋,狉狅狅狋犱狉狔狑犲犻犵犺狋狅犳狀狅狀犿狔犮狅狉狉犺犻狕犪犾犪狀犱犿狔犮狅狉狉犺犻狕犪犾犺狅狊狋狆犾犪狀狋狊犻狀狋犺犲狊狆犾犻狋狉狅狅狋犱犲狏犻犮犲 g
处理
Treatment
根系干重 Rootdryweight
20d 30d 40d 50d 60d
地上部干重Shootdryweight
20d 30d 40d 50d 60d
R 0.11a 0.18a 0.41a 0.61a 0.88a
0.96 2.42 5.18 6.87 8.46
M 0.12aE 0.20aD 0.46aC 0.66aB 0.99aA
2.2 接种AM真菌对蚕豆秸秆降解的影响
如表3所示,各室降解量随着培养时间的增加而增加。在相同取样时间,各室的蚕豆秸秆降解量有显著差
异,且均表现为:M室>R室>H室>S室,即同一宿主植物条件下,与根系相比,前期菌根系土壤环境对蚕豆秸
秆的降解有明显优势,而后期这一优势变缓;60d时,与S室相比,R室、M室和H室蚕豆秸秆降解量分别提高了
15.61%,20.54%和7.74%。由此可见,接种犌.犿的 M室不仅有提高蚕豆秸秆降解率的趋势,而且当一定数量
的根外菌丝进入到H室后,也加快了蚕豆秸秆降解,但菌丝的作用仍不及根系。
562第23卷第5期 草业学报2014年
  降解系数是衡量分解速率的一个指标,降解系数
越大其分解速度就越快。由图1可以看出,各室蚕豆
秸秆的降解系数随时间的增加逐渐减小,即蚕豆秸秆
的降解速度到后期越来越缓慢;且同一取样时期,各室
降解系数均为:M 室>R室>H 室>S室;植物生长
到60d时,R室、M室和H室的降解系数比S室分别
高出25.87%、35.00%和12.17%。说明接种AM 真
菌能加快蚕豆秸秆的降解速度,并带动菌丝的作用,但
根系的影响却不容忽视,这与表3中接种AM 真菌处
理增加蚕豆秸秆降解量结果相一致。
表3 接种犃犕真菌对蚕豆秸秆降解量的影响
犜犪犫犾犲3 犈犳犳犲犮狋狅犳犃犕犳狌狀犵犻犻狀狅犮狌犾犪狋犻狅狀狅狀
犱犲犵狉犪犱犪狋犻狅狀犿犪狊狊狅犳狏犻犮犻犪犳犪犫犪狊狋狉犪狑 g
处理
Treatment
20d 30d 40d 50d 60d
S 0.8751c 0.9720c 0.9900c 1.0446c 1.0623c
R 0.9739b 1.1268b 1.1889a 1.2109ab1.2281a
M 1.0510a 1.2006a 1.2074a 1.2712a 1.2805a
H 0.9122bcD0.9802cC1.0746bB1.1357bA1.1445bA
图1 接种犃犕真菌对蚕豆秸秆降解系数的影响
犉犻犵.1 犈犳犳犲犮狋狅犳犃犕犳狌狀犵犻犻狀狅犮狌犾犪狋犻狅狀狅狀
犱犲犵狉犪犱犪狋犻狅狀犮狅犲犳犳犻犮犻犲狀狋狅犳狏犻犮犻犪犳犪犫犪狊狋狉犪狑
 
2.3 接种AM 真菌对蚕豆秸秆C、N释放量及C/N
的影响
如表4所示,各室蚕豆秸秆中碳素随时间延长表
现为净释放特性,即 C释放量不断增加;60d时,R
室、M 室和 H 室较 S 室相比,C 释放量增加了
16.06%、21.09%、8.35%,以 M 室为最高;对于C释
放量,同一取样时期四室均表现出相同的趋势:M 室
>R室>H室>S室。在整个培养过程中,氮素释放
规律也表现为随时间逐渐增加。60d时,R室、M 室
和H室较S室相比,N释放量提高了6.17%、7.46%、
1.10%,以 M室为最高。由此可见,接种AM 真菌对
蚕豆秸秆中碳、氮释放均有促进作用。
  蚕豆秸秆中碳素与氮素释放量的不同必然引起
C/N的变化。图2反映了蚕豆秸秆降解过程中C/N
的变化动态。可以看出,整个降解过程中,除S室外,
包埋与其他分室中的蚕豆秸秆C/N与初始值相比,都
显著下降,尤以 M室下降最多。
2.4 接种AM真菌对土壤中酶活性的影响
图3分别为土壤中酸性磷酸酶、蛋白酶和过氧化
氢酶的活性。结果显示,AM 真菌菌丝能通过与细菌
的协同作用来提高磷酸酶活性,促进有机磷化合物的
水解,以活化植物通常不能直接利用的有机磷源。整
个过程中各处理的酸性磷酸酶活性均表现为先升高后
下降的趋势,以40d时 M 室为最高;在相同取样时
期,四室中 M室始终显著高于其他三室,且 H室高于
S室。
蛋白酶是水解酶类的一种,它参与土壤中氨基酸、
表4 接种犃犕真菌对蚕豆秸秆犆、犖释放量的影响
犜犪犫犾犲4 犈犳犳犲犮狋狅犳犃犕犳狌狀犵犻犻狀狅犮狌犾犪狋犻狅狀狅狀犆狉犲犾犲犪狊犲
犪狀犱犖狉犲犾犲犪狊犲狅犳狏犻犮犻犪犳犪犫犪狊狋狉犪狑
处理
Treatment
20d 30d 40d 50d 60d
C释放量Crelease(g)
 S 0.3664d 0.4271c 0.4296c 0.4732b 0.4826c
 R 0.4445b 0.5033b 0.5329a 0.5520ab 0.5601a
 M 0.4790a 0.5374a 0.5511a 0.5691a 0.5844a
 H 0.4075cD0.4308cC0.4831bB 0.4929abA0.5229bA
N释放量 Nrelease(mg)
 S 16.97b 18.83b 19.57b 20.36a 20.90a
 R 19.77a 20.67a 21.78a 21.80a 22.19a
 M 18.49ab 20.60a 21.12ab 21.36a 22.46a
 H 16.90bD 17.72bC 20.20abB 20.45aAB 21.13aA
蛋白质及含氮有机化合物的酶解,可将蛋白质水解为肽,最终形成氨基酸为植物提供氮源。如图3所示,蛋白酶
活性总体表现为波浪式变化,且在30d时均有一定程度下降;但在相同取样时期,四室均表现为相同的趋势,M
室>R室>H室>S室。
过氧化氢酶能解除由生物呼吸和生物化学反应而产生的过氧化氢的毒害,参与土壤中物质和能量转化,其活
性表示土壤腐质化强度大小和有机质积累程度。图3可以看出,对于过氧化氢酶活性,在相同取样时期四室均表
662 ACTAPRATACULTURAESINICA(2014) Vol.23,No.5
现为相同的趋势,M室>R室>H室>S室。
图2 接种犃犕真菌对蚕豆秸秆犆/犖的影响
犉犻犵.2 犈犳犳犲犮狋狅犳犃犕犳狌狀犵犻犻狀狅犮狌犾犪狋犻狅狀狅狀
犆/犖狉犪狋犻狅狅犳狏犻犮犻犪犳犪犫犪狊狋狉犪狑
 
2.5 接种AM真菌蚕豆秸秆降解过程中土壤微生物
量碳、氮的动态变化
表5数据可以看出,接种与否对土壤微生物量碳、
氮产生很大影响。整个培养过程中,同一时期四室的
微生物量碳均表现为 M 室最高,60d时比S室、R室
和H室分别高出109.70%、59.75%和59.19%。微
生物量氮也是如此,60d时接种犌.犿 的 M 室最高,
比S室、R室和 H 室分别高出64.02%、23.38%和
29.44%。
2.6 接种AM真菌蚕豆秸秆降解过程中土壤呼吸与
呼吸熵的动态变化
土壤呼吸(soilrespiration)是评价土壤基质中碳
稳定性的重要指标,同时也反映了土壤微生物的活性。表6数据表明,同一取样时间下,接种犌.犿 的菌根室土
壤呼吸均高于相应不接种的根室。因此可以认为,接种AM真菌相对提高了土壤中的微生物活性。对土壤呼吸
熵(respirationquotient,狇CO2)而言,接种犌.犿的菌根室有所下降,均低于相应不接种的根室。
图3 分根装置中接种犃犕真菌对土壤酶活性的影响
犉犻犵.3 犈犳犳犲犮狋狅犳犃犕犳狌狀犵犻犻狀狅犮狌犾犪狋犻狅狀狅狀狊狅犻犾
犲狀狕狔犿犪狋犻犮犪犮狋犻狏犻狋狔犻狀狋犺犲狊狆犾犻狋狉狅狅狋犱犲狏犻犮犲
 
表5 分根装置中接种犃犕真菌对土壤微生物量碳、氮的影响
犜犪犫犾犲5 犈犳犳犲犮狋狅犳犃犕犳狌狀犵犻犻狀狅犮狌犾犪狋犻狅狀狅狀狊狅犻犾犿犻犮狉狅犫犻犪犾犫犻狅犿犪狊狊犮犪狉犫狅狀犪狀犱狀犻狋狉狅犵犲狀犻狀狋犺犲狊狆犾犻狋狉狅狅狋犱犲狏犻犮犲 mg/kg
处理
Treatment
微生物量碳 Microbialbiomasscarbon
20d 30d 40d 50d 60d
微生物量氮 Microbialbiomassnitrogen
20d 30d 40d 50d 60d
S 26.32c 28.38d 35.10d 52.84d 45.76c 17.54d 21.08d 27.81d 40.40d 31.66c
R 35.84b 69.16b 67.54b 75.60c 60.07b 26.85b 40.39b 46.40b 51.27b 42.09b
M 57.19a 94.53a 105.39a 107.68a 95.96a 38.93a 56.52a 78.33a 64.95a 51.93a
H 38.18bD 40.06cC 54.00cB 81.37bA 60.28bB 22.96cE 31.99cD 35.69cB 47.67cA 40.12bC
762第23卷第5期 草业学报2014年
表6 分根装置中接种犃犕真菌对土壤呼吸及呼吸熵的影响
犜犪犫犾犲6 犈犳犳犲犮狋狅犳犃犕犳狌狀犵犻犻狀狅犮狌犾犪狋犻狅狀狅狀狊狅犻犾狉犲狊狆犻狉犪狋犻狅狀犪狀犱狇犆犗2犻狀狋犺犲狊狆犾犻狋狉狅狅狋犱犲狏犻犮犲
处理
Treatment
土壤呼吸Soilrespiration(mgC/kg·h)
20d 30d 40d 50d 60d
呼吸熵 Respirationquotient(狇CO2)
20d 30d 40d 50d 60d
S 5.78c 6.18c 5.75c 5.98c 6.21c 0.221a 0.218a 0.164a 0.113a 0.136a
R 6.51b 7.26b 7.62a 8.08a 8.18a 0.182b 0.105c 0.113b 0.107a 0.136a
M 7.39a 8.18a 7.89a 8.25a 8.64a 0.129c 0.087c 0.075c 0.077c 0.090c
H 6.28bD 6.60cBC 6.60bC 7.03bAB 7.23bA 0.165bA 0.166bB 0.123bC 0.086bD 0.120bC
3 讨论
本试验采用四室分根装置,在同一宿主植物的前提下,通过比较非根际土壤室(S)、根际土壤室(R)、菌根际
土壤室(M)和菌丝际土壤室(H)中土壤酶活性、微生物量碳、氮以及土壤呼吸的变化动态,分析了其对蚕豆秸秆
降解的影响。
结果表明,接种犌.犿的 M室与S室、R室和 H 室相比,显著促进了蚕豆秸秆的降解,已有的研究也发现
AM真菌侵染形成共生体系后,会引起植物残体降解速率发生变化[2022]。在本试验为期60d的试验过程中,根
室的降解作用均高于只有菌丝的H室,但显著低于 M室,在一定程度上说明根系在植物残体降解过程中的作用
超过了单独的菌丝作用,但还是小于菌丝和根系共同的作用(表3)。
由于AM真菌不能像外生菌根真菌和欧石楠科菌根真菌一样直接分泌胞外酶[8],菌丝单独存在时并不能矿
化植物的凋落物[9],因此丛枝菌根真菌可能通过增加参与有机质降解过程中的各种土壤的酶活性来促进有机质
的降解[6,2325]。本研究数据表明,接种AMF后,显著提高了 M 室中土壤中酸性磷酸酶、蛋白酶和过氧化氢酶活
性,且H室的酶活性相对于S室也有显著提高,这些酶可能参与蚕豆秸秆的降解过程,进而影响了秸秆的降解。
作为土壤中生化反应的调控者,土壤酶在土壤氮素循环和有机质的形成扮演着重要角色[26],影响土壤中的各种
代谢过程和能量转化,并能参与土壤中有机物质的分解和转化,这是AM 真菌加快植物残体降解的原因。另外,
AM真菌还促使某些腐生微生物在植物残体附近快速繁殖[27],并缓慢释放易利用的有机碳辅助其生长[28]。因此
接种AM真菌会引起土壤微生物量、区系组成以及代谢过程发生变化[29],主要表现为 M 室微生物量碳、氮和土
壤呼吸相对于其他三室均有增加(表6),且H室相比S室,微生物量的大小和活性均有提高,利于土壤微生物质
量的稳定与提高[30],可能成为蚕豆秸秆降解加快的重要驱动力。
菌根室土壤呼吸(表6)相对于根室均明显增加。土壤呼吸熵,又称微生物代谢熵(狇CO2),能够反映土壤微
生物种群利用土壤有机成分的效率,还可以同时表示微生物量的大小和活性[31]。狇CO2 值越低表明微生物碳利
用效率就越高[32]。这些数据证实菌根室中的微生物量大小和活性相对根室均有提高,进而对蚕豆秸秆的降解产
生影响。
植物凋落物的C/N是影响秸秆降解的重要因素[33],一般认为,较低的C/N有利于凋落物中矿质态养分的释
放[34]。结果显示,包埋于M室的蚕豆秸秆降解速率最快,同时C/N与初始值相比,显著下降,说明了随着降解的
进行,接种AM真菌的 M室显著降低了玉米秸秆C/N,使其更易于降解。原因可能有两个,一是秸秆中碳素与
氮素不同程度释放,进而影响了秸秆C/N的变化;二是在分室装置的 M 室中分布着大量的菌丝,而菌丝的氮含
量可高达5%[21],加之AM真菌具有在有机质斑块中富集生长的特性[35],造成包埋于 M室中的蚕豆秸秆氮总量
的增加,从而降低了C/N。
本研究结果表明接种丛枝菌根真菌能够显著加快蚕豆秸秆降解,源于 AM 真菌和宿主植物形成共生体系
后,通过提高土壤酶活性、增加微生物量的大小和活性作用于蚕豆秸秆的降解过程,成为导致蚕豆秸秆降解加快
的重要原因,同时菌丝的大量生长造成局部C/N的下降从而有利于蚕豆秸秆的进一步降解也是一个重要的因
素;在进一步的研究过程中,将重点研究菌根际或者菌丝际参加植物凋落物降解的微生物功能群落的变化[25],以
进一步阐明丛枝菌根影响凋落物降解的作用机制及其在生态系统碳氮循环中的作用。
862 ACTAPRATACULTURAESINICA(2014) Vol.23,No.5
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犈犳犳犲犮狋狅犳犪狉犫狌狊犮狌犾犪狉犿狔犮狅狉狉犺犻狕犪犾犮狅犾狅狀犻狕犪狋犻狅狀狅狀犫狉狅犪犱犫犲犪狀狊狋狉犪狑犱犲犵狉犪犱犪狋犻狅狀犻狀犪狊狆犾犻狋狉狅狅狋犲狓狆犲狉犻犿犲狀狋
GUOTao1,2,SHIXiaojun1,ZHUMin1,LUOZhen1
(1.ColegeofResourcesandEnvironment,SouthwestUniversity,Chongqing400716,China;2.TheNational
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犃犫狊狋狉犪犮狋:Thedecompositionofplantresiduesplaysanimportantroleinthecyclingofnutrientsandsub
strates,especialythecarbonnitrogencycle,whichisinfluencedbymanymicroorganismsthatactinaroleof
consumerordecomposeranddirectlyorindirectlyacceleratethedegradationprocess.Thegroupofmicroorgan
ismsknownas,mycorrhizaearerecognizedasbeingofspecialimportanceastheyhaveaspecialmicrohabitat
andauniquerole.Arbuscularmycorrhizal(AM)fungicanformmutualisticsymbiosiswithmorethan80%of
thehigherplantspecies.ThecontributionofAMtotheprocessofdegradationofplantresiduesvariedatdiffer
enthierarchicallevels(plantroot,mycorrhizaewithintherootandthesoilmycelium),althoughhitshouldbe
notedthataccompanyingbacteriaalsoaffecttheprocess.Inpreviousstudies,mostexperimentswerecarried
outwithpotorothersinglecompartmenttechniques,andthismadeitdifficulttoclarifytheeffectsofmycorhi
zalsymbiosisondegradationofplantresidues.Inthepresentstudy,asplitroottechniquewithfourcompart
mentswasusedtoquantitativelycomparethedegradationprocess..Inthisexperiment,maize(犣犲犪犿犪狔狊)was
usedasthehostplantandwasinoculatedwiththeAMfungus,犌犾狅犿狌狊犿狅狊狊犲犪犲(犌.犿)andcultivatedinthe
splitrootdevicewithfourcompartmentswhichwerethemycorrhizosphere(M),rhizosphere(R),hyphas
phere(H)andbulksoil(S).Broadbean(犞犻犮犻犪犳犪犫犪)strawwasusedasatestplantresidueandembeddedin
thefourcompartments.Plantswereharvestedrespectivelyat20,30,40,50and60daysandplantresiduedeg
radationrate,soilenzymaticactivity,soilmicrobialbiomasscarbonandnitrogen,andsoilrespirationwere
measuredinthefourcompartments.Inoculationwitharbuscularmycorrhizalfungiacceleratedthebroadbean
strawdegradationinR,MandHwith15.61%,20.54%and7.74%comparewithintheScompartment.The
catalase,protease,andacidphosphataseactivitieswerehigherintheR,MandHcompartmentsthantheS
compartment,aswassoilmicrobialbiomasscarbonandnitrogenandsoilrespiration.Thehighermicrobialac
tivityinthecompartmentswithAMfungifacilitatedandacceleratedtheprocessofplantresiduedegradation.
EnchancementofresiduedecompositionbymycorrhizaehassignificantimplicationsforunderstandingofsoilC
andplantNacquisitioninfutureresearch.
犓犲狔狑狅狉犱狊:splitrootdevice;degradation;soilenzymaticactivity;soilrespiration
072 ACTAPRATACULTURAESINICA(2014) Vol.23,No.5