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Cloning and Expression of McDFR gene in the Different Foliar Color Cultivars of Maluscrabapple

苹果属观赏海棠McDFR的克隆及不同叶色品种间的表达差异


以苹果属观赏海棠品种‘王族’叶片总RNA为模板,通过RT-PCR与RACE扩增,获得1个1 247 bp的二氢黄酮醇-4-还原酶基因的cDNA序列,其基因编码区共1 021 bp,存在3个ORF,编码348个氨基酸,命名为McDFR。基因序列全长2 396 bp,有5个内含子,所有内含子的剪切位点均符合真核生物“GT-AG”规则。使用实时荧光定量PCR和紫外可见光分光光度计,对4种不同叶色类型的观赏海棠品种‘火焰’(绿色类叶片)、‘绚丽’(新叶有色类红色叶片)、‘高原之火’(新叶有色类红色叶片)和‘王族’(常色类紫色叶片)幼叶和功能叶中的McDFR表达及其花色苷和类黄酮的含量进行测定分析,结果表明: McDFR在4个品种的幼叶和功能叶中均有表达,McDFR表达量与花色苷积累有一定的相关性,McDFR在幼叶中表达量高于功能叶; 在4个品种中,McDFR 在‘高原之火’幼叶中表达量最大。幼叶中的类黄酮含量高于功能叶,McDFR表达量也大于功能叶。在功能叶中,除绿色叶品种‘火焰’外,类黄酮含量越高,McDFR的表达量越大,说明McDFR对苹果属观赏海棠叶片花色苷、类黄酮代谢途径及色泽形成具有重要作用。

Dihydroflavonol-4-reductase (DFR)is the first key enzyme in the later procedure of anthocyanins biosynthesis. With the total RNA drived from leaves of Malus crabapple‘Royalty’ as the template, the full cDNA of DFR gene (1 247 bp) was cloned by reverse transcription polymerase chain reaction (RT-PCR) and rapid-amplification of cDNA ends(RACE).The gene is named as McDFR, containing three open reading frames (ORF, 1 021 bp), and encoding a protein of 348 amino acids. DNA sequence has 2 396 bp, containing five introns, and all the cleave sites obey with the GT-AG rule. The expression of McDFR and the content of anthocyanin and flavonoids were determined respectively by real-time quantitative PCR and spectrophotometer in the mature and young leaves of M.‘Flame’(green young and mature leaf), M.‘Radiant’( red young leaf and green mature leaf), M. ‘Prairifire’ (red young leaf and green mature leaf)and M.‘Royalty’( purple young and mature leaf). The results showed that McDFR was expressed in both mature and young leaves of the above four cultivars.The trends of anthocyanin content were consistent with that of the relative expression of McDFR gene. The expression levels of McDFR in the young leaves were higher than that in the mature leaves. Among the four cultivars, the M. ‘Prairifire’ in the young leaves showed the highest expression levels of McDFR. Flavonoid content in young leaves was higher than that in the mature leaves, and the expression of McDFR was also higher than in the mature leaves. In the mature leaves, except for the green leaf variety M.‘Flame’, the higher content the flavonoid the higher expression level McDFR .These results have determined that McDFR plays an important role in anthocyanin and flavonoid metabolic pathways and the color formation in the leaves.


全 文 :第 !" 卷 第 ## 期
$ % # % 年 ## 月
林 业 科 学
&’()*+(, &(-.,) &(*(’,)
./01!"!*/1##
*/23!$ % # %
苹果属观赏海棠 H"L’K的克隆及不同叶色
品种间的表达差异!
文樵夫4沈红香4姚允聪4田4佶4宋婷婷
"北京农学院植物科技学院4北京 #%$$%"$
摘4要!4以苹果属观赏海棠品种,王族-叶片总 A*,为模板!通过 A+^k’A与 A,’)扩增!获得 # 个# $!: ZS的二
氢黄酮醇 >! >还原酶基因的 RK*,序列!其基因编码区共# %$# ZS!存在 5 个 oA@!编码 5!7 个氨基酸!命名为
H"L’K& 基因序列全长$ 56" ZS!有 8 个内含子!所有内含子的剪切位点均符合真核生物*O+^,O+规则& 使用实时
荧光定量 k’A和紫外可见光分光光度计!对 ! 种不同叶色类型的观赏海棠品种,火焰- "绿色类叶片$%,绚丽- "新
叶有色类红色叶片$%,高原之火-"新叶有色类红色叶片$和,王族- "常色类紫色叶片$幼叶和功能叶中的 H"L’K
表达及其花色苷和类黄酮的含量进行测定分析!结果表明’ H"L’K在 ! 个品种的幼叶和功能叶中均有表达!
H"L’K表达量与花色苷积累有一定的相关性!H"L’K在幼叶中表达量高于功能叶# 在 ! 个品种中!H"L’K在,高
原之火-幼叶中表达量最大& 幼叶中的类黄酮含量高于功能叶!H"L’K表达量也大于功能叶& 在功能叶中!除绿
色叶品种,火焰-外!类黄酮含量越高!H"L’K的表达量越大!说明 H"L’K对苹果属观赏海棠叶片花色苷%类黄酮
代谢途径及色泽形成具有重要作用&
关键词’4苹果属观赏海棠# 叶片# 二氢黄酮醇 >! >还原酶基因# 花色苷# 实时荧光定量 k’A
中图分类号! &:#71!"" ?6!51$444文献标识码!,444文章编号!#%%# >:!77#$%#%$## >%%#" >%6
收稿日期’ $%%6 >%7 >5## 修回日期’ $%%6 >#% >%5&
基金项目’ 北京市人才强教)))拔尖创新人才计划项目"k[]$%%:t%#!$%:t%!!8"%$ !北京市农业科技项目"$%%:%#%#$ !北京市科技新星
人才培养项目"$%%"C$8$ &
!姚允聪为通讯作者&
*%")()6 &)"0!"#$%-,&8&##%.
LMI ?DG/XE4&=MI F/IJ_DGIJ4BG/BEIR/IJ4+DGI \D4&/IJ+DIJTDIJ
"?%/0+!"4)0")/01 F)"#0$%$6,@$%)6)! A)4B406 7048)(*4+,$&36(4"5%+5()4A)4B406 #%$$%"$
78/’,&-’’4 KD=NUV/X0G2/I/0^! V^MUERTGWM " K@A$ DWT=MXDVWTdMNMI‘N;MDI T=M0GTMVSV/RMUEVM/XGIT=/RNGIDIW
ZD/WNIT=MWDW3LDT= T=MT/TG0A*,UVD2MU XV/;0MG2MW/XH/%5*RVGZGSS0M,A/NG0TN- GWT=MTM;S0GTM! T=MXE0RK*,/XL’K
JMIM"# $!: ZS$ YGWR0/IMU ZNVM2MVWMTVGIWRVDSTD/I S/0N;MVGWMR=GDI VMGRTD/I "A+^k’A$ GIU VGSDU G^;S0DXDRGTD/I /X
RK*,MIUW"A,’)$3+=MJMIMDWIG;MU GWH"L’K! R/ITGDIDIJT=VMM/SMI VMGUDIJXVG;MW"oA@! # %$# ZS$! GIU
MIR/UDIJGSV/TMDI /X5!7 G;DI/GRDUW3K*,WMQEMIRM=GW$ 56" ZS! R/ITGDIDIJXD2MDITV/IW! GIU G0T=MR0MG2MWDTMW/ZMN
YDT= T=MO+^,O VE0M3+=MM_SVMWWD/I /XH"L’K GIU T=MR/ITMIT/XGIT=/RNGIDI GIU X0G2/I/DUWYMVMUMTMV;DIMU
VMWSMRTD2M0NZNVMG0^TD;MQEGITDTGTD2Mk’AGIU WSMRTV/S=/T/;MTMVDI T=M;GTEVMGIU N/EIJ0MG2MW/XHI,@0G;M- "JVMMI
N/EIJGIU ;GTEVM0MGX$! HI,AGUDGIT- " VMU N/EIJ0MGXGIU JVMMI ;GTEVM0MGX$! HI,kVGDVDXDVM- "VMU N/EIJ0MGXGIU
JVMMI ;GTEVM0MGX$GIU HI,A/NG0TN-" SEVS0MN/EIJGIU ;GTEVM0MGX$3+=MVMWE0TWW=/YMU T=GTH"L’KYGWM_SVMWWMU DI
Z/T= ;GTEVMGIU N/EIJ0MG2MW/XT=MGZ/2MX/EVRE0TD2GVW3+=MTVMIUW/XGIT=/RNGIDI R/ITMITYMVMR/IWDWTMITYDT= T=GT/XT=M
VM0GTD2MM_SVMWWD/I /XH"L’KJMIM3+=MM_SVMWWD/I 0M2M0W/XH"L’KDI T=MN/EIJ0MG2MWYMVM=DJ=MVT=GI T=GTDI T=M
;GTEVM0MG2MW3,;/IJT=MX/EVRE0TD2GVW! T=MHI,kVGDVDXDVM- DI T=MN/EIJ0MG2MWW=/YMU T=M=DJ=MWTM_SVMWWD/I 0M2M0W/X
H"L’K3@0G2/I/DU R/ITMITDI N/EIJ0MG2MWYGW=DJ=MVT=GI T=GTDI T=M;GTEVM0MG2MW! GIU T=MM_SVMWWD/I /XH"L’KYGW
G0W/=DJ=MVT=GI DI T=M;GTEVM0MG2MW3(I T=M;GTEVM0MG2MW! M_RMSTX/VT=MJVMMI 0MGX2GVDMTNHI,@0G;M-! T=M=DJ=MV
R/ITMITT=MX0G2/I/DU T=M=DJ=MVM_SVMWWD/I 0M2M0H"L’K3+=MWMVMWE0TW=G2MUMTMV;DIMU T=GTH"L’KS0GNWGI D;S/VTGIT
V/0MDI GIT=/RNGIDI GIU X0G2/I/DU ;MTGZ/0DRSGT=YGNWGIU T=MR/0/VX/V;GTD/I DI T=M0MG2MW3
9.: ;",4第 ## 期 文樵夫等’ 苹果属观赏海棠 H"L’K的克隆及不同叶色品种间的表达差异
44大量研究表明!植物的色泽发育和植物类黄酮代
谢紧密有关& 花色苷是广泛存在于被子植物中的一
类重要的类黄酮化合物& 它是植物花朵%叶片和果实
中几乎所有色泽形成的物质基础"\/WMS= )+/%3!#667#
OD0DGI! $%%#$& 植物中基本的花色苷有 5 种!即花葵
素%花青素%花翠素!以及这些花色素的甲基化衍生物
等"徐纪尊等!$%%"$& 二氢黄酮醇 >! >还原酶
"K@A$是花色素苷合成途径中后期表达的第 # 个关
键酶!它以二氢黄酮醇类"KFl!KF?!KF]$为底物!
在辅因子 *,KkF的作用下将 ! 位的羰基还原为羟
基!产生上述 5 种无色原花色素 "F/0T/I )+/%3!#668$&
K@A是 # 个短链还原酶!属于二氢黄酮醇 >! >还原
酶超家族"]GVTMIW)+/%3!$%%$$& o-AMD0N等"#678$
采用转座子标签技术第 # 次从玉米"])/ =/,*$分离
克隆出 L’K基因!随后从金鱼草"30+4((#405==/B5*$
"o-AMD0N)+/%3!#678$和矮牵牛 "?)+504/ #,;(41/$
"CM0U )+/%3!#676$中克隆到了 L’K基因& 随着深入
研究!人们发现 L’K对于花色的改变具有重要的作
用& ,DUG等 "$%%%$将反义 L’K基因导入蝴蝶草
"F$()04/ "$0"$%$($!发现转化株的花色素苷合成减少!
黄酮和黄酮醇"此二者为助色素$含量显著提高!获
得了开蓝色花的蝴蝶草!表明调控花色素苷的助色素
含量是花色改变的途径之一# 还分别将正义的 L’K
和 @9! 转入蓝猪耳"F$()04/ &$5(04)($中!转基因株系
的花冠花色素苷含量均呈不同程度的减少&
苹果属"H/%5*$观赏海棠是苹果属植物中最具
观赏价值的类型!树形优美!花色丰富多彩!其叶色
有绿色叶类%新叶有色类和常色紫叶类!是园林景观
中不可缺少的彩叶树种资源& 然而!在这一多色型
植物资源中!叶片色泽形成的遗传机制%L’K基因
结构和功能及其品种间差异至今还未见报道& 本文
在克隆获得苹果属观赏海棠叶片查尔酮合成酶
"H"@9!$%查尔酮异构酶"H"@9>$和黄烷酮 5 >羟
化酶 "H"’S9$ 基 因 "OMICGId 登 陆 号 分 别 为’
@\866:"5!@\7#:!78 和 @\7#:!7"$!并对不同叶色品
种基因表达差异分析的基础上!拟从常色紫叶品种
中克隆 L’K基因! 并对基因及其编码蛋白序列进
行分析!采用实时荧光定量 k’A技术检测不同叶色
品种中 L’K表达量!并与花色苷含量进行对比分
析!为观赏海棠不同品种间叶色差异的分子机制研
究提供理论基础与试验证据&
#4材料与方法
=C=>试验材料
选取苹果属观赏海棠中具有典型叶色的 ! 个品
种叶片为试材!即’ 绿色叶类品种 ,火焰 - "H3
,@0G;M-$%新叶有色类"幼叶红色%功能叶为绿色$
品种,绚丽- "HI,AGUDGIT-$ 和 ,高原之火- "HI
,kVGDVDXDVM- $% 常 色 紫 叶 类 品 种 , 王 族 - " HI
,A/NG0TN-$& $%%7 年春季!在北京农学院海棠种质
资源圃采集 ! 个品种相同自然条件下 ! 年生树体萌
芽后 : 天的幼叶和萌芽后 8% 天的功能叶!液氮速冻
后 >7% j保存备用&
=CB>总 IN7的提取及 -EN7第 = 链的合成
用改良热硼酸法"陆旺金等!$%%5$提取,王族-
幼叶总 A*,& 以提取 的 总 A*,为模 板! 利用
’0/ITMR= &],A++]-DZVGVN试剂盒 "购自 ’0/ITMR= 生
物有限公司$合成 5- A^,’)和 8- A^,’)RK*,第 #
链& 采 用 ’+,C 法 提 取 , 王 族 - 叶 片 总 K*,
"LD0DG;W/I )+/%3!#66!$&
=CD>观赏海棠 !0123序列的克隆
以上述提取得到的,王族-叶片 RK*,为模板!
根据 OMICGId 上登录的近缘植物二氢黄酮醇 >! >
还原酶基因保守区段序列!设计 5-端引物 L’Kk#’
’,’,+’’+’,O’,OO,,’+O!扩增 H"L’K基因的
5- 端序列# 设计 8 - 端引物 L’Kk$’ O’++O,+
O,+O’’,+,,+O+O! L’Kk5’ ’,+++’++,,O,+’
OO’O,,,O+’!扩增 H"L’K基因的 8 - 端序列&
pk]通用引物由 A,’)试剂盒提供!根据试剂盒说
明!转录产物的 5-末端和 8-末端分别用 L’Kk# 和
L’Kk$ 及 pk]引物扩增!其 k’A反应条件为 6! j
预变性 8 ;DI# 6! j变性 # ;DI!"! j和 "7 j退火
5% W!:$ j延伸 $ ;DI!5% 个循环# :$ j延伸 8 ;DI&
将第 # 轮 k’A产物稀释# %%%倍!取 # --作为模板!
以 L’Kk5 和 pk]为引物!进行巢式 k’A反应!k’A
反应条件与第 # 轮相同& 经回收%纯化!与 S]K#6 +^
.MRT/V"购自宝生物工程有限公司$连接!转化 KF8/
感受态细胞!蓝白斑筛选后测序 "上海生工生物工
程技术服务有限公司$& 用 K*,],*81$1$ 软件拼
接以上序列得到观赏海棠叶片二氢黄酮醇 >! >还
原酶基因全长 RK*,序列&
=CO>观赏海棠 !0123基因 -EN7和 EN7全长序
列的获得
以上述提取得到的 ,王族-叶片 RK*,和 K*,
为模板!设计全长引物 L’K@’ ,+OOO,+’’O,O+’
’O,,+’ 和 L’KA’ ,’’+,’+++O,’,+’,,’O,
OO!扩增二氢黄酮醇 >! >还原酶基因的全长序列&
k’A反应条件’ 6! j预变性 8 ;DI# 6! j变性 #
;DI!8: j退火 5% W!:$ j延伸 5 ;DI!5% 个循环# :$
j延伸 8 ;DI& k’A产物经回收%纯化!与 S]K#6 +^
:#
林 业 科 学 !" 卷4
.MRT/V"购自宝生物工程公司$连接!转化 KF8/感
受态细胞!蓝白斑筛选后测序 "上海生工生物工程
技术服务有限公司$&
图 #4H"L’K基因的克隆及结构分析
@DJ3#4’0/IDIJGIU K*,WMQEMIRMWTVERTEVM/XH"L’K
]1# dZ K*,0GUUMV3
,1H"L’K基因的 A,’)末端扩增结果# C1H"L’K基因的 RK*,和对应基因组 K*,扩增# ’1H"L’K基因 K*,序列的结构&
,3A,’)MIUWG;S0DXDRGTD/I /XH"L’K# C1+=MXE0^0MIJT= G;S0DXDRGTD/I /XRK*,GIU JMI/;DRK*,# ’1+=MK*,WMQEMIRMWTVERTEVM/XH"L’KI
=CP>实时荧光定量 !*I分析
分别提取,绚丽-%,火焰-%,高原之火-% ,王
族- ! 个品种的幼叶和功能叶 A*,"陆旺金等!
$%%5$!使用 ]^]E-.@DVWTRK*,&NIT=MWDWlDT"购自
kV/;MJG公司$合成第 # 链 RK*,备用& 按照 AMG0
]GWTMV]D_"&BCAOVMMI$k’A试剂盒"购自天根生
化科技有限公司 $操作指南!采用实时荧光定量
k’A"VMG0^TD;MQEGITDTGTD2Mk’A!A+^Qk’A$的方法!
检测基因的相对表达量& 扩增目标基因 H"L’K的
引物设计为 L’K^@’ OO++OO,+O+,’++’O+’+’和
L’K^A’ +O,+O,OO’++OO+OO’,+!预测产物长度
是 #!8 ZS!适用于荧光定量 k’A# 以苹果属的杂交
种 "H/%5*m1$=)*+4"/ $ #7& (4;$*$=/%KO3基 因
"OMICGId 序列号’ K?5!#57$$作为内参基因!其引
物 #7&A^@’ ,’,’OOOO,OO+,O+O,’,,和 #7&A^
A’ ’’+’’,,+OO,+’’+’O++,!预测产物长度是
7% ZS!适用于荧光定量 k’A&
对反转录所得的 RK*,按体积分别进行 8 倍梯
度稀释"#!#i#%!# i#%%!#i# %%%!#i#% %%%$!实施荧
光定量反应!然后绘制相对标准曲线& 反应程序为’
6! j预变性 $ ;DI# 6! j变性 $% W!8: j 退火 5% W!
:$ j延伸 5% W!!% 次循环!每次循环第 5 步进行荧
光采集# 最后 68 j变性 # ;DI!退火至 88 j"每隔
#% W上升 %1#8 j$后保温 # ;DI!接着检测其荧光
值!绘制熔点曲线& 内参基因反应程序同 H"L’K的
反应程序基本相同!退火温度为 88 j& 标准品
RK*,和待测样品均设置 5 次重复&
=CR>花色苷和类黄酮含量测定
花色苷和类黄酮相对含量的提取根据何亦昆等
"#668$的方法略有改动& 称取 #1% J叶片剪碎"$ 9
5 ;;$!置于 8% ;-离心管中!加入 #% ;-#a的盐
酸甲醇!常温下浸泡 $% =& 取上清液!以提取液作空
白!采用 p*(’op.^$#%% 型紫外可见分光光度计在
85% I;处和 5$8 I;处测定吸光度& 以每克鲜质量
叶片的提取液的光密度变化值 oK85% u%1# 作为 #
个花色苷单位& 类黄酮含量以每克鲜质量叶片的提
取液的光密度变化值 oK5$8 u# 作为 # 个类黄酮
单位&
$4结果与分析
B?=>!0123的克隆与序列比较
依据得到的保守片断设计 8 - 和 5 - 末端的
A,’)引物& 用引物对 pk]iL’Kk$%L’Kk5 进行
H"L’K的 8-末端的扩增反应!在琼脂糖凝胶电泳
中显现出 :%% ZS 左右 $ 条目的条带"图 #,!左$!将
:%% ZS 左右的条带回收%测序!获得到 # 条 L’K的
8-RK*,末端& 用引物 pk]iL’Kk# 进行 H"L’K
的 5-末端扩增!获得 # 条约 78% ZS 的带 "图 #C!
右$!克隆入 +>载体!挑选 " 个长度有代表性的单
克隆测序!获得 # 条 L’K的 5-RK*,末端& 以上述
片断进行 C0GWT分析!确认其与其他植物 L’K基因
同源& 根据 5-A,’)和 8-A,’)测序结果拼读出
苹果属观赏海棠 L’K基因!全长序列为# $!: ZS!命
名该基因为 H"L’K"登陆号’ @\7#:!7:$& 基因组
扩增得到约$ !%% ZS的条带!拼接后得到全长序列
$ 56" ZS"图 #’$& 分析发现!H"L’K存在 8 个内含
子!将起始密码子 ,+O定义为 q# 位!则 8 个内含
7#
4第 ## 期 文樵夫等’ 苹果属观赏海棠 H"L’K的克隆及不同叶色品种间的表达差异
子分别位于 q##6 9q$57 ZS! q!%6 9q# #": ZS!
q# 5"5 9q# "$% ZS! q# :78 9q# 77: ZS! q$ %7# 9
q$ $%% ZS&结果与大多数物种一致!且内含子 >外
图 $4苹果属观赏海棠 H"L’K全长 RK*,的核苷酸序列及推测的氨基酸序列
@DJ3$4+=MXE0^0MIJT= RK*,WMQEMIRMGIU T=MUMUERMU G;DI/GRDU WMQEMIRM/XH"L’K
起始密码子和终止密码子用下划线表示!阴影处是功能结构域!黑框表示保守域&
+=MWTGVTR/U/I GIU T=MWT/S R/U/I GVMEIUMV0DIMU!T=MXEIRTD/IG0U/;GDIWGVMW=GUMU!GIU T=MR/IWMV2MU U/;GDIWGVMZ/_MU3
显子边界均符合*O+^,O+规则& 第 # 个内含子有多
个直接重复序列!如 q#$!! q#$7 ZS 处分别存在 #
个 7 ZS 的直接重复序列 "+’’’+’’’$! q#!%!
q#!$ ZS处分别存在 # 个 6 ZS 的直接重复序列
"+++++++++$等# 只存在 # 个 7 ZS 的镜像重复序
列!为 q#::! q$$$ ZS 处的 +,,O+,++# 不存在反
向重复序列& 第 $ 个内含子则散布着多个重复序
列!如 q""7! q"65 ZS 处分别存在 # 个 #% ZS 的直
接重复序列 ",OO,,O,+++$! q!::! q68# ZS 处
分别存在 # 个 6 ZS 镜像重复序列",++,+,,,+$!
q76!! q# %$6 ZS 处 的 #! ZS 反 向 重 复 序 列
",,++,,,,,,++O+$等& 第 5 个内含子也同样散
布着多个重复序列!如 q# !#8! q# !#: ZS处分别存
在 # 个 ## ZS 的直接重复序列 ",+,+,+,+,+,$!
q# 57!! q# !7% ZS处分别存在 # 个 6 ZS 镜像重复
序列",++,,,,,,$! q# 57"! q# 8!6 ZS处的7 ZS
反向重复序列 "+,,,,,,,$等& 第 ! 个内含子存
在 $ 个镜像重复序列!为 q# 7#%! q# 7!! ZS处的
,,+,,++,++ 和 q# 75#! q# 7:8 ZS 处 的
++O++,,++!还存在 $ 个反向重复序列!为 q# 7%#!
q# 7$8 ZS处的 ,,+,,,,+和 q# 75$! q# 78: ZS
处的 +O++,,++,& 第 8 个内含子只存在 # 个反向
重 复 序 列! 为 q$ ##:! q$ #$7 ZS 处 的
,,++O,++,&
对该基因的序列进行分析表明!其含有 # 个编
码 5!7 个氨基酸的完整阅读框架!包括起始密码子
和终 止 密 码 子& 利 用 K*,],*81$1$ 软 件! 对
H"L’K编码的氨基酸序列分析!认为该基因具有起
始密码子",+O$和终止密码子"+,,$!是苹果属观
赏海棠 L’K基因的 oA@序列"图 $$&
根据 (ITMVkV/&RGI 和 &],A+在线软件对编码
氨基酸分子质量%编码蛋白的结构域和功能位点进
行分析表明!H"L’K;GDI oA@编码 5!7 个氨基酸
"S(8165$的分子质量约为 !#16:5 dE!其编码的蛋白
具有典型的 K@A蛋白功能结构域’ 短链的脱氢酶
和还原酶" &KA$家族"从 )" 到 L#"# $!大多数已知
是 *,K^或者 *,Kk^依赖的还原酶& 其中大多数脱
6#
林 业 科 学 !" 卷4
氢酶具有至少 $ 个结构域!第 # 个结构域通常结合
*,K^的辅酶!第 $ 个结构域决定底物的特异性并且
决定氨基酸是否具有催化作用& 还包括 *;V,区
域!这是 # 个反式作用调控区域!参与转录因子
,VM,转录后的修饰& 该结构域还包括差向酶和霍
霍巴酰基辅酶 ,还原酶等&
用 &ok],对 蛋 白 的 二 级 结 构 预 测 表 明!
]RK@A蛋白与草莓 "’(/6/(4/ m/0/0/**/$ 和葡萄
" 4^+4*8404&)(/$"&ok],预测$之间的二级结构十分
相似& 它们主要由 />螺旋 " /^=M0D_$%随机卷曲
"VGIU/;R/D0$%0>转角"0^TEVI$和延伸链"M_TMIUMU
WTVGIU$组成& 在二级结构中!/>螺旋均匀分布在
整个蛋白中& ]RK@A蛋白由 !$17$a的 />螺旋%
#!1%7a的延伸链%:1!:a的 0>转角和 581"5a的
随机卷曲组成"图 5,$&
以 .2K@A" $R$6@$为模型!用 &YDWW^]/UM0对
]RK@A蛋白进行三级结构的同源建模!所得到结果
都与已知结构和功能的葡萄 K@A蛋白的三级结构
很类似"图 5C$!水桶状!上端表面有一个缺口!与底
物特异结合催化的部位正好位于水桶底部裂口所对
位置!而与 *,KkF结合的部位位于水桶外表面&
由于 .2K@A的结构和功能是已知的!故而推断
]RK@A与其有类似的功能&
BCB>苹果属观赏海棠 !0123的同源性及进化
分析
利用 K*,],*81$1$ 软件进行多重序列比对
"图 !$发现!H"L’K含有与其他同源基因相似的中
央编码区!显示了二氢黄酮醇 >! >还原酶进化的保
守性& 同时还发现不同物种的 L’K氨基酸序列在
很多区域有较高的相似性& 在不同的物种中
*.+O,,O@(O&L-(]A--)AOB+是高度保守区!是
L’K与 *,Kk结合位点 "\/=IW/I )+/%1! #666 $!
H"L’K具有该结合位点"从 .#%到 B5%$&
为了进一步了解 L’K的进化关系!选择部分植
物的 K@A蛋白利用 ])O,!1% 软件!对 ]RK@A与
已知植物 K@A结构域蛋白进行进化树分析!可以看
出 H"L’K编码的氨基酸序列与其他物种来源的
L’K具 有 较 高 相 似 性& 其 与 西 洋 梨 " ?,(5*
"$==504*$ " ,B$$::5# $ 和 月 季 " K$*/ #,;(41/ $
",C!6%%:$ $ 的 相 似 性 最 高! 分 别 为 6718:a!
7$17#a& 基于氨基酸序列的系统进化树可以看出
其氨基酸的进化与植物的进化基本一致!同科植物
在进化树上处于同一分支 "图 8$ &
BCD>!0123在不同叶色品种中的表达差异分析
由 D’NR0MVD?+]自动测出的苹果属内参基因
XV! (KO3的回归方程%k’A扩增效率和相关系数分
别为’ Ru>51!%6C q58178:!6"18a和 %166:! #
测出的苹果属 H"L’K的回归方程%k’A扩增效率
和相关系数分别为’ Ru >515$$ $ Cq$61"#!
#%%1%a和%166: "! &说明该试验具有良好的重复性
和较高扩增效率& 熔点曲线分析出的 XV! (KO3和
H"L’K均只有 # 个 F; 值!分别为 77 j和 78 j!
表明 XV! (KO3和 H"L’K所用引物具有高度特异
性!其 k’A扩增产物均为目的片段!不含引物二
聚体&
H"L’K在 ! 个苹果属观赏海棠品种叶片中的
表达模式如图 "& 以表达量最高的,高原之火-幼叶
的表达量为 *#+!按照相对定量公式 $ >’’@T作图&
由图 " 可以看出!H"L’K在 ! 个观赏海棠品种的幼
叶和功能叶中均有表达& 就叶龄而言!供试品种除
绿色叶品种,火焰-外!幼叶中的花色苷含量均高于
功能叶!并且幼叶中 H"L’K表达量也大于功能叶&
就不同叶色品种而言!新叶有色类品种,高原之火-
在幼叶中花色苷含量最高!H"L’K的表达量也最
大# 在功能叶中 H"L’K的表达量最高!花色苷含量
仅次于,王族-& 新叶有色类品种,绚丽-花色苷含
量与 H"L’K的表达量在各个时期都居中& 常色紫
叶品种,王族-在幼叶期花色苷含量与 H"L’K的表
达量无明显的对应关系# 而在功能叶中花色苷含量
最高!H"L’K的表达量仅次于,绚丽-& 绿色叶类品
种,火焰-幼叶和功能叶中的 H"L’K表达量最低!
花色苷积累量最低!在功能叶中几乎没有表达& 对
不同品种中类黄酮含量进行分析可以看出!幼叶中
的类黄酮含量高于功能叶!并且幼叶中 H"L’K表达
量也大于功能叶& 在幼叶中!类黄酮含量与 H"L’K
的表达量无明显相关性# 在功能叶中!除绿色叶品
种,火焰 -外!类黄酮含量越高!H"L’K的表达量
越大&
对花色苷和类黄酮含量的多重比较分析还表
明’ 花色苷含量在不同时期由于品种的不同表现出
显著差异& 类黄酮含量在功能叶时期随着品种的不
同表现出显著差异# 而在幼叶时期常色紫叶品种
,王族-与绿色叶品种,火焰-和新叶有色类品种存
在显著差异!绿色叶品种,火焰-与新叶有色类存在
显著差异!而新叶有色类的 $ 个品种间不存在显著
差异&
54结论与讨论
K@A是花色素苷合成途径中后期表达的第 #
个关键酶!对于植物器官色泽形成具有十分重要的
%$
4第 ## 期 文樵夫等’ 苹果属观赏海棠 H"L’K的克隆及不同叶色品种间的表达差异
444
图 54]RK@A蛋白结构
@DJ354+=MSV/TMDI WTVERTEVM/X]RK@A
A1随机卷曲 AGIU/;R/D0# ’1’端4’^TMV;DIG0# /1/>螺旋 /^=M0D_# )1延伸链 )_TMIUMU WTVGIU# *1*端 *^TMV;DIG0# 010>折叠 0^TEVI3
,1]RK@A与 .2K@A"B##:!6$和 @GK@A",@%$6"78$二级结构预测!/>螺旋%延伸链%0>折叠和随机卷曲分别用蓝色%红色%绿色和紫色
表示# C1预测的 ]RK@A蛋白三级结构和 .2K@A蛋白结构!/>螺旋%0>折叠%随机卷曲%延伸链分别用红色%蓝色%白色和黄色表示&
,1&MR/IUGVNWTVERTEVMW/X]RK@A! @GK@A",@%$6"78$ GIU .2K@A"B##:!6$ SVMUDRTMU ZN&ok],1+=MTY/^UD;MIWD/IG0;/UM0W/X]RK@A! @GK@A
",@%$6"78$ GIU .2K@A"B##:!6$1/^=M0D_DWDIUDRGTMU DI Z0EM! 0^TEVI DI JVMMI! VGIU/;R/D0DI SEVS0MGIU M_TMIUMU WTVGIU DI VMU# C3+=MT=VMM^UD;MIWD/IG0
;/UM0W/X.2K@A"$R$6@$GIU T=MUMUERMU ]RK@A3/^=M0D_DWDIUDRGTMU DI VMU! 0^TEVI DI Z0EM! VGIU/;R/D0DI Y=DTMGIU M_TMIUMU WTVGIU DI NM0/Y3
图 !4苹果属观赏海棠 H"L’K基因中央编码区推导的氨基酸序列的多重比对分析
@DJ3!4,0DJI;MIT/XT=MSVMUDRTMU G;DI/GRDU WMQEMIRMW/XH"L’K;GDI oA@DI H/%5*RVGZGSS0MWGIU /T=MVS0GITW
#1观赏海棠H/%5*RVGZGSS0M# $3西洋梨?,(5*"$==504*# 53月季K$*/ #,;(41/# !3大豆E%,"40)=/G# 83蒺藜苜蓿 H)14"/6$+(50"/+5%/# "3甜橙 @4+(5*
*40)0*4*# :3毛果杨 ?$25%5*+(4"#$"/(2/# 73菠菜 !240/"4/ $%)(/")/# 63金荞麦 ’/6$2,(5=",=$*5=##%3杜鹃 K#$1$1)01($0 *4=*4###3烟草 O4"$+4/0/
+/;/"5=##$3蓝灰石竹 L4/0+#5*6(/+4/0$2$%4+/05*# #53缕丝花E,2*$2#4%/ )%)6/0*# #!3斑点矢车菊@)0+/5()/ =/"5%$*/# #83桃?(505*2)(*4"/I
#$
林 业 科 学 !" 卷4
图 84苹果属观赏海棠 H"L’K与其他物种 L’K*的分子进化树聚类分析
@DJ384,S=N0/JMIMTDRTVMM/XH"L’KGIU /T=MVWSMRDMWL’K*
图 "4苹果属观赏海棠叶片中 H"L’K基因相对表达量与花色苷%类黄酮含量的关系
@DJ1"4+=MVM0GTD/IW=DS ZMTYMMI VM0GTD2MM_SVMWWD/I 0M2M0W/XH"L’KGIU T=MR/ITMIT/XGIT=/RNGIDI GIU X0G2/I/DU
DI T=M0MG2MW/XUDXMVMITH/%5*RVGZGSS0MRE0TD2GVW
,1不同品种幼叶中 H"L’K基因相对表达量与花色苷%类黄酮含量的关系# C1不同品种功能叶中 H"L’K基因相对表达量与花色苷%类黄
酮含量的关系& 差异显著水平分析数据采用 KEIRGI 新复极差法进行方差分析!不同小写字母表示在 %1%8 水平上差异显著&
,1+=MVM0GTD/IW=DS ZMTYMMI VM0GTD2MM_SVMWWD/I 0M2M0W/XH"L’KGIU T=MR/ITMIT/XGIT=/RNGIDI GIU X0G2/I/DU DI T=MN/EIJ0MG2MW/XUDXMVMITRE0TD2GVW#
C3+=MVM0GTD/IW=DS ZMTYMMI VM0GTD2MM_SVMWWD/I 0M2M0W/XH"L’KGIU T=MR/ITMIT/XGIT=/RNGIDI GIU X0G2/I/DU DI T=M;GTEVM0MG2MW/XUDXMVMITRE0TD2GVW3
+=MWDJIDXDRGIRMYGWZN2G0EM/XKEIRGI(WIMY;E0TDS0MVGIJM;MT=/U3-MTMVWDI 0/YMVRGWMDIUDRGTMWDJIDXDRGITUDXMVMIRM0M2M0"?e%1%8$3
意义"刘娟等!$%%8$& o-AMD0N等"#678$采用转座
子标签技术首次从玉米分离%克隆出 L’K基因!其
后研 究 人 员 相 继 从 金 鱼 草% 矮 牵 牛% 拟 南 芥
"3(/;41$2*4*+#/%4/0/$%大麦"9$(1)5=85%6/()$%非洲
菊 " E)(;)(/ B/=)*$04$% 香 石 竹 " L4/0+#5*
"/(,$2#,%5*$%野百合".4%45=;($Q04$等多种植物中
克隆到了 L’K基因"刘娟等!$%%8$& 对 L’K基因
结构分析表明!大多数植物 L’K都由 " 个外显子和
8 个内含子组成!如裂叶牵牛 ">2$=$)/ #)1)(/")/$%
圆叶牵牛 ">I25(25()/$%金鱼草%矮牵牛%拟南芥
"(IGJGdD)+/%I!#666# LDIdM0^&=DV0MN)+/%I!#66$$等的
K@A!并且它们内含子剪切位点相同& 但在玉米%大
麦和高粱" !$(6#5=;4"$%$($ " &R=YGVT‘^&/;;MV)+/%I!
#67:# lVDWTDGIWMI )+/%I!#66## ’=MI )+/%I!#667$中!
L’K基因结构则由 ! 个外显子和 5 个内含子组成!
玉米和大麦的内含子剪切位点相同!与金鱼草和矮
牵牛的 L’K基因的前 5 个内含子相对应& 本研究
从,王族-中克隆得到了 H"L’K的 RK*,和 K*,全
$$
4第 ## 期 文樵夫等’ 苹果属观赏海棠 H"L’K的克隆及不同叶色品种间的表达差异
长序列!含有 " 个外显子和 8 个内含子& H"L’K具
有植物 L’K典型的结构特点!其编码的蛋白具有典
型 K@A蛋白的功能结构域’ 短链的脱氢酶和还原
酶"&KA$家族"从 )" 到 L#"# $!大多数已知是 *,K^
或者 *,Kk^依赖的还原酶!大多数脱氢酶具有至少
$ 个结构域!第 # 个结构域通常结合 *,K^的辅酶!
第 $ 个结构域决定底物的特异性并且决定氨基酸是
否具有催化作用& 通过多重序列比对!发现 H"L’K
具有与 *,Kk的结合位点"从 .#%到 B5% $& \/=IW/I
等"$%%#$发现!结合区中的 #5! 位与 #!8 位的氨基
酸可直接影响酶的底物特异性!大多数物种在 #5!
位含有 K"天冬氨酸$或 *"天冬酞胺$!而 H"L’K
在此位点则是 ."缬氨酸$!因而其 K@A酶作用底物
仅限于 KF?& 仅与 KF?结合将会生成花青素 >
5 >葡萄糖苷!表现为红色!这与观赏海棠的叶片紫
红色相对应& 对 ]RK@A进行二级结构预测发现!
/>螺旋均匀分布在蛋白内部!与草莓和葡萄的二
级结构类似& 对 H"L’K基因编码蛋白的三级结构
进行建模后发现!]RK@A与已知结构和功能的葡萄
.2K@A"$R$6@$蛋白的高级结构非常相似!故而推
断 ]RK@A蛋白功能与 .2K@A功能类似& 与已知其
他植物 K@A蛋白相比! H"L’K编码的氨基酸序列
与其他物种来源的 L’K具有较高相似性& 其与西
洋梨和月季的相似性最高!分别为 6718:a 和
7$17#a& 所以推断 H"L’K具有典型的 L’K的生
物学功能& 这为进一步研究 H"L’K的遗传转化和
揭示观赏海棠器官色泽形成的分子机制提供了
基础&
结合实时定量 k’A和花色苷含量测定的数据
对不同时期不同叶色品种进行分析发现!H"L’K均
有表达!而且与叶色密切相关& 叶色越红的品种!其
花色苷含量越高!而 H"L’K表达量也相应比较高&
供试品种中除绿色叶品种,火焰-外!幼叶中的花色
苷含量均高于功能叶!并且幼叶中 H"L’K表达量也
大于功能叶& 随着新叶有色类品种在功能叶时期变
为绿色!常色紫叶品种,王族-叶片红色变浅!花色
苷含量与 H"L’K表达量在功能叶中也明显降低#
绿色叶品种,火焰-幼叶和功能叶中的 H"L’K表达
量最低!花色苷积累量也最低!在功能叶中几乎没有
表达# 这些结果都说明叶片的红着色与 H"L’K的
表达量存在一定的相关性& 而就不同叶色品种而
言!新叶有色类品种,高原之火-在幼叶中花色苷含
量最高!H"L’K的表达量也最大# 在功能叶中
H"L’K的表达量最高!而花色苷含量次于,王族-&
H"L’K的表达量又不是完全与花色苷的含量相对
应& 对 L’K基因表达的大量研究表明!不同物种的
L’K基因在不同发育期与不同部位的时空表达特
性也有所不同!调控方式十分复杂& 金鱼草和拟南
芥的 L’K基因的表达受多个转录调控因子的调控
"F/0T/I )+/%I!#668# *MWD)+/%I! $%%#$& 作者曾应用
同样的方法研究过观赏海棠 H"@9! 基因在叶片发
育过程中的变化及与花色苷积累的关系!发现
H"@9! 的表达量与花色苷的积累在叶片发育早期
密切相关!而功能叶期的这一变化特点不明显!由此
看来!在观赏海棠叶片类黄酮代谢过程中叶片
H"@9! 和 H"L’K各自的表达阶段不同!也可能存
在着某种程度的协同表达作用"宋婷婷等!$%#%$&
在各个品种中!对不同品种中类黄酮含量进行
分析可以看出!幼叶中的类黄酮含量高于功能叶!并
且幼叶中 H"L’K表达量也大于功能叶& 这个结果
与花色苷的含量与 H"L’K表达量关系相一致& 花
色苷的含量与类黄酮的含量却没有明显的相关性&
在幼叶中!类黄酮含量与 H"L’K的表达量无明显相
关性# 在功能叶中!除绿色叶品种,火焰-外!类黄酮
含量越高!H"L’K的表达量越大& 由此推测类黄酮
含量与 H"L’K的表达量有一定的相关性& 通过对
类黄酮含量进行多重比较统计分析!不同叶色品种
的类黄酮含量在不同时期的差异性不同!因此类黄
酮的含量受不同时期和不同品种的影响!与 H"L’K
的表达量不是表现为简单的对应关系& 作者用相同
的方法研究 H"3O! 发现其与类黄酮也无明显的相
关性& 类黄酮的生物合成途径很复杂!受到发育和
多种外界环境因素的调控!有待于进一步的研究&
作者期望找到苹果属观赏海棠不同叶色类型的
品种和不同发育时期的叶片中 H"L’K及花色苷生
物合成途径中的相关酶基因的表达与花色苷和类黄
酮积累的对应关系!用于解释花色苷积累对叶色形
成的作用!进而了解花色苷积累的调控机制& 在本
试验中!新叶有色类品种,高原之火-在各个时期中
的 H"L’K表达量都是最高的!而在功能叶中花色苷
含量却不是最高的& 这可能是由于花色苷的生物合
成受多种诱导因子影响!例如光诱导!各种花色苷的
相对含量受光敏素的调控"]/0)+/%I! #66" $# 低温
也可以诱导一些植物体内花色苷的合成!如拟南芥
"OVG=G;! #667$%玉米 "’=VDWTDM)+/%I! #66!$%高粱
幼苗"&=DR=DP/)+/%I! #665$等& 诱导因子除上述因
子外!其他一些内在的和外界环境因子也与植物花
色素苷的诱导%积累和抑制有关"]/0)+/%I! #66"$&
从二氢黄酮醇转变成花色素苷的反应非常复杂!需
要几个不同酶的作用& 其中一些已被证实& 由于这
5$
林 业 科 学 !" 卷4
个过程的复杂性和中间产物的不稳定!精确的反应
过程还没有完全搞清楚!有待于进一步研究& 葡萄
L’K基因启动子与 Op& 融合后!在葡萄幼苗中的表
达分析表明! 8^L’K基因在幼苗的根%茎和叶中都
有表达!受光%盐和糖的诱导!其启动子区具有多个
调控元件"O/0/S )+/%I! $%%$ $!所以花色苷含量与
H"L’K的表达量不仅仅表现出简单的对应关系&
今后的工作中!对于叶色相关的 L’K基因来讲!其
转基因研究不仅能了解其功能!而且有助于用各种
方法"启动子的克隆及功能验证%反义 A*,%共抑制
或 A*,D等$实现叶色的修饰!继续深入研究具有重
要意义&
参 考 文 献
何亦昆!代庆阳!苏学辉3#6683雁来红叶色转变与超微结构及色素
含量的关系3四川师范学院学报’ 自然科学版!#" " 5 $ ’ #68
>#6:3
刘4娟!冯群芳!张4杰3$%%83二氢黄酮醇 ! >还原酶基因"L’K$
与花色的修饰3植物生理学通讯!!#""$ ’ :#8 >:#"3
陆旺金!蒋跃明3$%%53荔枝果实两个膨大素基因的克隆与序列分
析3中国农业科学!5""#$$ ’ #8$8 >#8$63
宋婷婷!沈红香!姚允聪!等3$%#%3苹果属观赏海棠 H"@9! 基因的
克隆及实时定量表达研究3园艺学报!5:"$$ ’ $"6 >$:"3
徐纪尊!王丽辉!潘庆玉3$%%"3观赏植物花色基因转化的研究进展3
中国农业科技导报! 7"8$ ’ 8" >"%3
,DUGA! lDW=D;/T/&! +GIGdGB! )+/%3$%%%3]/UDXDRGTD/I /XX0/YMV
R/0/VDI T/VMIDG"F$()04/ &$5(04)(4-DIU3$ ZNJMIMTDRTVGIWX/V;GTD/I3
k0GIT&RD! #85"#!$ ’ 55 >!$3
CM0U ]! ]GVTDI ’! FEDTWF! )+/%3#6763@0G2/I/DU WNIT=MWDWDI ?)+504/
#,;(41/’ kGVTDG0R=GVGRTMVD‘GTD/I /XUD=NUV/X0G2/I/0! V^MUERTGWM
JMIMW3k0GIT]/TCD/0! #5"8$ ’ !6# >8%$3
’=MI ]! &GI]DJEM0k! CMIIMT‘MI \-3#6673&MQEMIRM/VJGID‘GTD/I GIU
R/IWMV2GTD/I DI W=$iG# =/;/0/J/EWVMJD/IW/XW/VJ=E; GIU VDRM3
OMIMTDRW! #!7"#$ ’ !58 >!!53
’=VDWTDMk\! ,0XMIDT/]A! LG0Z/T.3#66!3(;SGRT/X0/Y^TM;SMVGTEVM
WTVMWW/I JMIMVG0S=MIN0SV/SGI/DU GIU GIT=/RNGIDI SGT=YGNW’
MI=GIRM;MIT/XTVGIWRVDSTGZEIUGIRMGIU GIT=/RNGIDI SDJ;MITGTD/DI
;GD‘MWMMU0DIJW3k0GITG! #6!"$$ ’ 8!# >8!63
OD0DGI ,3$%%#3’/ITVDZETD/IW/XPMXVMN=GVZ/;MGIU R/^Y/VdMVWT/T=M
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(IGJGdDB! \/=‘EdG^FDWGT/;DB! ]/VD+! )+/%3 #6663 OMI/;DR
/VJGID‘GTD/I /XT=MJMIMWMIR/UDIJUD=NUV/X0G2/I/0! V^MUERTGWMX/V
X0/YMVSDJ;MITGTD/I DI T=M\GSGIMWMGIU R/;;/I ;/VIDIJJ0/VDMW3
OMIM! $$""$$ ’ #7# >#773
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GRDU R=GIJMWT=MWEZWTVGTMWSMRDXDRDTN/XUD=NUV/X0G2/I/0! V^MUERTGWM3
k0GIT\! $8"5$ ’ 5$8 >5553
\/=IW/I ) +! BDF! &=DI C! )+/%3 #6663 @,=;4145= #,;(41/
UD=NUV/X0G2/I/0! V^MUERTGWMU/MWI/TMXDRDMIT0NVMUERMUD=NUV/dGM
;SXMV/0T/SV/UERMSM0GVJ/IDUDI T^NSMGIT=/RNGIDIW3k0GIT\! #6"5$ ’
7# >783
\/WMS= ]! )VDR= O! A/IG0U l3#6673F/YJMIMWSGDITX0/YMVWGIU
WMMUW3+VMIUWk0GIT&RDMIRM! 5""$ ’ $#$ >$#73
lVDWTDGIWMI l*! A/=UML3#66#3&TVERTEVM/XT=M9$(1)5=85%6/()JMIM
MIR/UDIJUD=NUV/X0G2/I/0! V^MUERTGWMGIU ;/0MRE0GVGIG0NWDW/XGIT#7
;ETGITWZ0/RdMU DI X0G2/I/DU WNIT=MWDW3]/0OMIM! $5% " $ $ ’ !6
>863
]GVTMIW&! +MMVD+! @/Vd;GII O3$%%$3FMTMV/0/J/EWM_SVMWWD/I /X
UD=NUV/X0G2/I/0! V^MUERTGWMWXV/;2GVD/EWS0GITW3@)C& -MT! 85#
"5$ ’ !85 >!873
]/0\! \MIdDIWO \! &R=GXMV)! )+/%3#66"3 &DJIG0SMVRMSTD/I!
TVGIWUERTD/I! GIU JMIM M_SVMWWD/I DI2/02MU DI GIT=/RNGIDI
ZD/WNIT=MWDW3’VDTAM2k0GIT&RD! #8"8$ ’ 8$8 >88:3
*MWD*! \/IU ’! KMZMGEP/I (! )+/%3$%%#3+=M3(/;41$2*4*++$ JMIM
MIR/UMWGI A$A5 ]BC U/;GDI SV/TMDI T=GTGRTWGWG dMN
UMTMV;DIGITX/VSV/GIT=/RNGIDUDI GRRE;E0GTD/I DI UM2M0/SDIJWMMU3
k0GIT’M0! #5"5$ ’ $%66 >$##!3
o(AMD0N’! &=MS=MVU *&! kMVMDVG,3#6783]/0MRE0GVR0/IDIJ/XT=M
G0/REWDI ])/ =/,*EWDIJT=MTVGIWS/WGZ0MM0M;MITW)I GIU ]E03
)]Co\! !"5$ ’ 7:: >77$3
&R=YGVT‘^&/;;MVH! &=MS=MVU *! +GRdM)! )+/%3#67:3(IX0EMIRM/X
TVGIWS/WGZ0MM0M;MITW/I T=MWTVERTEVMGIU XEIRTD/I /XT=M3X JMIMW
/X])/ =/,*I)]Co\! ""$$ ’ $7: >$6!3
&=DR=DP/’! FG;GUG+! FDVG/dG]! )+/%3#6653)I=GIRM;MIT/XVMU^
0DJ=T^DIUERMU GIT=/RNGIDI WNIT=MWDWDI W/VJ=E; XDVWTDITMVI/UMWZN
;/UMVGTM0/YTM;SMVGTEVMJD2MI DI T=MDVVGUDGTD/I RE0TEVMSMVD/U3
k0GITG! #6#"$$ ’ $57 >$!83
LD0DG;W/I .]! F/\B! LE @@! )+/%3#66!3,k’AZGWMU ;GVdMV
TDJ=T0N0DIdMU T/T=MIM;GT/UMVMWDWTGIRMJMIM! H4! DI T/;GT/3
+=M/VMTDRG0GIU ,SS 0DMU OMIMTDRW! 7:":$ ’ :8: >:"53
LDIdM0^&=DV0MNC! FGI0MN&! O//U;GI F ]3#66$3)XMRTW/XD/IDIJ
VGUDTD/I /I GS0GIT’ JMI/;MGIG0NWDW/XTY/3(/;41$2*4*TVGIWSGVMIT
TMWTG;ETGTD/IW3k0GIT’M0! !"5$ ’ 555 >5!:3
!责任编辑4徐4红"
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