全 文 ：作物学报 ACTA AGRONOMICA SINICA 2014, 40(1): 166−173 http://zwxb.chinacrops.org/
ISSN 0496-3490; CODEN TSHPA9 E-mail: xbzw@chinajournal.net.cn

本研究由国家自然科学基金项目(30470114)和植物生物学黑龙江省高校重点实验室(哈尔滨师范大学)开放基金项目资助。
* 通讯作者(Corresponding author): 申家恒, E-mail: hsdshenjiaheng@163.com
第一作者联系方式: E-mail: hsdliwei@163.com
Received(收稿日期): 2013-07-22; Accepted(接受日期): 2013-09-16; Published online(网络出版日期): 2013-10-22.
URL: http://www.cnki.net/kcms/detail/11.1809.S.20131022.1731.019.html
DOI: 10.3724/SP.J.1006.2014. 00166
栽培甜菜中央细胞受精前后的超微结构
李 伟 1,2 申家恒 2,* 郭德栋 3
1 东北林业大学盐碱地生物资源环境研究中心 / 东北油田盐碱植被恢复与重建教育部重点实验室, 黑龙江哈尔滨 150040; 2 哈尔滨
师范大学 / 黑龙江省普通高等学校植物生物学重点实验室; 3黑龙江大学生命科学学院, 黑龙江哈尔滨 150070
摘 要: 应用透射电镜技术比较栽培甜菜(Beta vulgaris)中央细胞受精前后的超微结构特征, 以完善甜菜生殖生物学研
究, 并为相关研究提供基本资料。结果表明, 中央细胞在受精前后的超微结构变化主要表现于核及核周围胞质。中央细
胞的 2 个极核融合较早, 在花蕾时期即以次生核形式存在, 具双相核仁, 可明显分辨纤维区和颗粒区; 有的有额外小核
仁和核仁液泡。核周围的细胞质中具丰富的细胞器且功能活跃, 包括线粒体、质体(含或不含淀粉粒)、高尔基体、核糖
体和粗面内质网。受精后, 形成初生胚乳核, 核周围胞质中变化最大的是质体, 形成众多变形质体, 形态多样, 且富含
淀粉粒。初生胚乳核分裂过程中, 核仁消失, 核膜崩解为囊泡状结构, 粗面内质网减少, 滑面内质网增加。分裂形成 2
个胚乳游离核, 核周围胞质与初生胚乳核相似。总之, 中央细胞在受精前后的超微结构特征均呈现代谢活跃状态。
关键词: 栽培甜菜; 中央细胞; 受精; 超微结构
Ultrastructure of Central Cell before and after Fertilization in Sugar Beet (Beta
vulgaris)
LI Wei1,2, SHEN Jia-Heng2,* , and GUO De-Dong3
1 Alkali Soil Natural Environmental Science Center, Northeast Forestry University / Key Laboratory of Saline-alkali Vegetation Ecology Restoration
in Oil Field, Ministry of Education, Harbin 150040, China; 2 Key Laboratory of Plant Biology, College of Heilongjiang Province / Harbin Normal
University, Harbin 150025; 3 College of Life Science, Heilongjiang University, Harbin 150070, China
Abstract: The ultrastructural changes of central cell before and after fertilization were observed with TEM to provide more in-
formation for reproductive biology of sugar beet and relative research. The results indicated that the changes of central cell before
and after fertilization mainly occurred in nucleus and cytoplasm around. Fusion of polar nuclei took place early at bud stage. The
nucleolus of secondary nucleus was bipolar with notable fibrous and particle core. Sometimes, there was extra small nucleolus and
nucleolus vacuole. Cytoplasm surrounding secondary nucleus was rich in organelles, including mitochondria, plastids with or
without starch grain, Golgi body, ribosomes and rough endoplasmic reticulum (rER). After fertilization, a striking feature of cyto-
plasm surrounding nucleus was the well developed amoeboid plastids, which were numerous and various, filling with starch gains.
Soon after that, primary endosperm nucleus divided into two free nuclei. During division, nucleolus disappeared and nuclear
membrane disintegrated into small vesicles. Also, there was an obvious decrease in rER and an increase in smooth endoplasmic
reticulum (sER). Overall, central cell was active before and after fertilization.
Keywords: Sugar beet (Beta vulgaris); Central cell; Fertilization; Ultrastructure
中央细胞是被子植物胚囊中体积最大的细胞, 含有 2
个极核或一个次生核, 受精后形成初生胚乳核, 进而发育
为胚乳。对中央细胞受精前后超微结构的研究, 将为进一
步开展生殖生物学和分子细胞生物学研究发挥重要作用。
迄今, 已在油菜[1]、向日葵[2-3]、玉米[4]、水稻[5]等一些植
物中报道了中央细胞受精前后的超微结构特点[6-9]。然而,
对同一种植物中央细胞受精前后超微结构的对比研究较
少, 仅在打碗花[10]、荠菜[11]和向日葵[12]中描述过。栽培
甜菜为重要的糖料作物 , 目前对其生殖生物学的亚显
微水平研究包括大孢子发生 [13]、雌配子体发育 [14]、花
粉 [15-16]、成熟胚囊[17]、卵细胞、合子及二细胞原胚[18]; 显
微水平的研究有大、小孢子发生和雌、雄配子体发育[19]
第 1期 李 伟等: 栽培甜菜中央细胞受精前后的超微结构 167


及受精作用[20]。本研究在前人工作基础上详细描述了栽
培甜菜中央细胞受精前后的超微结构变化, 包括次生核、
初生胚乳核及其分裂、胚乳游离核时期的超微结构特点,
以期完善甜菜生殖生物学研究 , 并为相关研究提供基础
资料。
1 材料与方法
将栽培甜菜双丰 1号(Beta vulgaris Shuangfeng 1)种
植于黑龙江大学植物园。2004—2006年, 每年 6月末至 7
月中旬, 取直径为 1.5~3.0 mm 的花蕾及刚开放的小花,
剥离胚珠并迅速投入 3%戊二醛(pH 7.2 二甲胂酸钠缓冲
液配制)固定; 每天清晨 8:00 对刚开放的花朵人工异花授
粉, 授粉后 13~27 h内, 每 2 h取雌蕊 50个, 剥离胚珠并
用 3%戊二醛固定。以缓冲液冲洗 4次, 再用 1%锇酸室温
下固定 2~4 h, 缓冲液冲洗后, 系列乙醇脱水, 经环氧丙
烷置换, Spurr树脂渗透包埋。使用 Leica Ultracut R型超
薄切片机切片(厚度 70 nm), 经醋酸双氧铀-柠檬酸铅双重
染色后, 在 JEOL-1230型透射电镜下观察并拍照。
2 结果与分析
栽培甜菜雌配子体发育类型为蓼型。成熟的中央细胞
高度液泡化 , 通过液泡的细胞质索使核周区细胞质与周
缘细胞质连接。中央细胞在受精前后分别经历 2个极核、
次生核、初生胚乳核和胚乳游离核阶段, 其超微结构发生
如下变化。
2.1 两个极核阶段
胚囊细胞化时期, 中央细胞内存在上、下 2个极核(图
版 I-A)。此时期, 胚囊珠孔端细胞呈楔形, 尚未分化, 无
法区分卵细胞和助细胞(图版 I-E); 合点端存在 3 个反足
细胞(图版 I-I); 中间为中央细胞, 其上极核紧邻珠孔端细
胞(图版 I-B, E), 下极核靠近反足细胞(图版 I-H, I)。各细
胞之间均以完整的细胞壁相隔, 壁上存在胞间连丝(图版
I-F, G, I)。胞质中粗面内质网的潴泡呈索状延伸于细胞壁
或细胞核旁(图版 I-C, D, G)。
2.2 次生核阶段
中央细胞的 2 个极核融合较早, 在花蕾时期——胚囊
刚成熟时即以次生核形式存在(图版 II-A)。次生核的电子
密度高, 被胞质索包围, 悬在细胞中央。核呈球形, 核仁双
相, 内部由一些无定形物质及纤维状物质交织在一起, 而
外部是类似核糖体大小的致密颗粒(图版 II-B)。核周围的胞
质浓厚, 细胞器丰富。线粒体数目众多, 且内嵴明显, 偶见
DNA 纤丝; 质体小, 不易分辨; 粗面内质网的潴泡相互联
结, 大量存在于胞质中; 核糖体浓度大(图版 II-C, D)。
花蕾刚开放时期, 胚囊纵向延长, 形成盲囊(图版 II-E)。
次生核呈橄榄形, 贴在中央细胞的一侧(图版 II-F, G)。核大
且双相核仁异常显著, 外部的致密颗粒大量存在(图版 II-G,
H), 少量颗粒物质正在向核外输出(图版 II-J)。核周围的胞质
变稀薄, 高尔基体活跃地分泌小泡(图版 II-I)。
开花后的胚囊中(图版 III-A), 次生核内出现分散的
染色质和小的核仁液泡(图版 III-B)。核周围的细胞质明显
增多, 细胞器也随之增多且功能活跃, 包括线粒体、质体、
粗面内质网和高尔基体(图版 III-C~F)。
授粉后 13 h (受精前)的胚囊中(图版 III-G, H), 次生核
呈不规则形状(图版 III-I), 连续切片显示次生核内除一个
大核仁外还有 2个额外小核仁, 大、小核仁内均存在核仁
液泡(图版 III-J)。质体中出现淀粉粒(图版 III-K, M); 线粒
体内可见 DNA 纤丝(图版 III-L)。整个次生核阶段, 中央
细胞呈现代谢活跃状态。
2.3 初生胚乳核阶段
授粉后约 17 h, 中央细胞受精形成初生胚乳核(图版
IV-A)。初生胚乳核的体积较次生核明显增大, 为浓厚的
胞质所包围(图版 IV-B)。初生胚乳核的核仁显著, 核膜不
规则, 呈裂瓣状, 大大地增加了核膜的表面积; 不规则的
核膜包围部分胞质, 其中线粒体多且内嵴明显(图版 IV-C,
D)。核周围的胞质中富含细胞器, 包括线粒体、质体、粗
面内质网、高尔基体, 且功能活跃(图版 IV-C)。质体较受
精前变化大, 形成众多变形质体, 形态多样, 呈哑铃型、
弓形、杯状等, 电子染色深, 有的含淀粉核(图版 IV-E), 有
的杯状质体包围线粒体。从超微结构上看, 初生胚乳核阶
段细胞的代谢相当活跃。
2.4 初生胚乳核分裂
胚乳发育类型为核型 , 初生胚乳核只分裂而不形成
细胞壁。授粉后约 20 h, 初生胚乳核分裂中期, 染色体排
列在赤道面上(图版 IV-F)。核仁消失, 核膜崩解为许多小
囊泡状结构(图版 IV-H)。周围的胞质较初生胚乳核期没有
明显变化。变形质体仍然数目众多, 形态各异(图版 IV-G);
粗面内质网大量潴泡呈池状在胞质中延伸; 高尔基体较
多, 活跃地分泌小泡(图版 IV-H)。
初生胚乳核分裂后期, 染色体位于两极, 核膜尚未重
建(图版 IV-I)。细胞质中粗面内质网减少, 而滑面内质网
迅速增多, 潴泡呈管状或囊泡状, 表明脂类物质合成活跃,
为核膜的重建作准备(图版 IV-J)。
2.5 胚乳游离核阶段
初生胚乳核分裂形成 2 个胚乳游离核, 呈椭球形, 核
膜不规则, 核内有分散的染色质, 除一个大核仁外还有额
外的核仁(图版 IV-K)。核周围的胞质与初生胚乳核时期相
似。细胞器丰富且功能活跃(图版 IV-L, M)。质体和粗面内
质网数量恢复, 滑面内质网减少。细胞处于代谢活跃状态。
3 讨论
3.1 中央细胞 2个极核的融合时间
大多数被子植物在胚囊成熟过程中, 中央细胞的 2个
极核相互靠近 , 并最终在受精前融合成为一个二倍体的
次生核[21], 如向日葵[3]、荠菜[11]等。有些植物的极核在受
精前已经开始局部融合, 直到受精时才完成融合, 如打碗
花[10]、棉花[22]、小麦[23]、大豆[24]等。本研究中, 中央细
168 作 物 学 报 第 40卷


胞的 2 个极核融合较早, 在花蕾时期(胚囊刚形成时)的胚
囊中即以次生核状态存在。这与申家恒等[19]在甜菜光镜
水平研究中“开花前 , 两极核已融合为次生核”的描述相
同, 也与 Bruun [17]在甜菜成熟超微结构研究中所认为的
“两极核的融合似乎发生于胚囊成熟过程的早期”相吻合。
3.2 中央细胞受精前后的超微结构变化
中央细胞受精前后的变化主要体现在核及核周围胞
质上。中央细胞的次生核具明显的双相核仁, 内部由无定
形物质及纤维状物质交织在一起形成大而浓密的纤维区,
外部由类似核糖体大小的致密颗粒组成明显的颗粒状区,
推测有大量的前核糖体分子积累。这与油菜[1]和打碗花[10]
中报道的极核的核仁相似。有的次生核具额外的小核仁,
且有明显的核仁液泡。而次生核周围的胞质, 正如其他植
物中报道的一样 [2-5,22,25-26], 其内细胞器丰富且功能活跃,
含大量的线粒体、质体(含或不含淀粉粒)、高尔基体、粗
面内质网和核糖体。由超微结构特点来看, 栽培甜菜的中
央细胞是代谢非常活跃的细胞 , 这无疑与其受精前的营
养功能和为受精后胚乳的发育作准备有关[2]。
次生核与精核融合后形成体积较大的初生胚乳核 ,
核膜不规则, 呈裂瓣状, 包围部分胞质, 此胞质中含线粒
体多且内嵴明显, 而杯状变形质体也将线粒体包含其内,
其功能和意义尚不清楚。初生胚乳核经核分裂形成 2个较
小的胚乳游离核。我们仅捕捉到初生胚乳核分裂的中期、
后期相, 发现核仁消失, 核膜崩解为许多囊泡状结构, 粗
面内质网减少, 滑面内质网增加。这与矮生菜豆胚乳细胞
形成时的描述相似[9]。囊泡状结构的成分及是否参与核膜
的重建尚待进一步研究。
中央细胞受精后 , 初生胚乳核及胚乳游离核周围胞
质中, 变化最大的是质体, 受精后形成众多变形质体, 形
态多样, 呈哑铃型、弓形、杯状等, 电子染色深, 有的含
淀粉核; 而其他细胞器未见明显变化。这与荠菜[11]相似,
但与玉米[6]和矮牵牛[7]中描述的受精后内质网、核糖体、
高尔基体大量增加不同 , 推测与栽培甜菜中央细胞次生
核阶段本身代谢已经相当活跃有关。
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图版说明
所有图片均为珠孔端朝上。A: 反足细胞; CC: 中央细胞; Chr: 染色体; CW: 细胞壁; E: 卵细胞; End: 胚乳; G: 高尔基体; Gv: 高尔基
体的小泡; M: 线粒体; N: 核; Nu: 核仁; Nv: 核仁液泡; P: 质体; PN: 极核; RER: 粗面内质网; S: 淀粉粒; SER: 滑面内质网; SNu: 次
生核; Sy: 助细胞; V: 液泡; Ve: 小泡; Zy: 合子。
Explaination of plate
The micropyle is upward position in each panel. A: antipodal cell; CC: central cell; Chr: chromosome; CW: cell wall; E: egg; End: endosperm;
G: golgi body; Gv: golgi vesicle; M: mitochondrium; N: nucleus; Nu: nucleolus; Nv: nucleolus vacuole; P: plastid; PN: polar nucleus; RER:
rough endoplasmic reticulum; S: starch grain; SER: smooth endoplasmic reticulum; SNu: secondary nucleus; Sy: synergid; V: vacuole; Ve:
vesicle; Zy:zygote.
170 作 物 学 报 第 40卷



图版 I 两个极核阶段中央细胞的结构
Plate I Structure of central cell at the stage of two polar nuclei
A: 细胞化时期胚囊的半薄切片, 示中央细胞的上、下极核(Bar = 5 μm); B~D: 上极核的超微结构, 图 B示上极核(Bar = 1 μm); 图 C、
D示上极核周围胞质中的内质网和高尔基体(Bar = 500 nm); E~G: 胚囊珠孔端的超微结构, 图 E示中央细胞与珠孔端细胞
(Bar = 2 μm); 图 F、G示中央细胞与珠孔端细胞之间的细胞壁(箭头示胞间连丝)(图 F, Bar = 1 μm; 图 G, Bar = 500 nm)。H: 下极核的
超微结构(Bar = 1 μm); I: 反足细胞的超微结构(Bar = 2 μm)。
A: semi-thin section of cellularization embryo sac, showing the upper and lower polar nuclei (Bar = 5 μm); B–D: ultrastructure of upper polar
nuclei; B: upper polar nuclei (Bar = 1 μm); C–D: endoplasmic reticulum and Golgi around upper polar nuclei (Bar = 500 nm); E–G: ultra-
structure of embryo sac at micropyle end; E: central cell and cells at micropylar end (Bar = 2 μm); F–G: cell wall between the central cell and
the cells at micropylar end, plasmodesmata is shown by arrows (F, Bar = 1 μm; G, Bar = 500 nm); H: ultrastructure of lower polar nuclei
(Bar = 1 μm); I: ultrastructure of antipodal cell (Bar = 2 μm).
第 1期 李 伟等: 栽培甜菜中央细胞受精前后的超微结构 171



图版 II 花蕾时期次生核阶段中央细胞的结构
Plate II Structure of central cell at secondary nucleus stage during bud period
A: 花蕾时期胚囊的半薄切片, 示中央细胞的次生核(Bar = 5 μm); B~D: 花蕾时期中央细胞的超微结构, 图 B示次生核(Bar = 2 μm);
图 C、D示次生核周围胞质中的线粒体、内质网和高尔基体(Bar = 500 nm); E~F: 花蕾刚开放时胚囊的相邻半薄切片, 图 E示反足细
胞, 图 F示中央细胞的次生核(Bar = 10 μm); G~J: 花蕾刚开放时中央细胞的超微结构, 图 G示次生核(Bar = 2 μm); 图 H示双相核仁
(Bar = 1 μm); 图 I 示次生核周围胞质中的线粒体、内质网和高尔基体(Bar = 500 nm); 图 J 箭头示颗粒状物质正向核外输出
(Bar = 200 nm)。
A: semi-thin section of embryo sac during bud period, showing secondary nucleus (Bar = 5 μm); B–D: ultrastructure of central cell during bud
period. B: secondary nucleus (Bar = 2 μm); C–D: mitochondria, endoplasmic reticulum and the Golgi around secondary nuclear (Bar =
500 nm); E–F: semi-thin sections of embryo sac at the beginning of flowering; E: antipodal cell; F: secondary nucleus (Bar = 10 μm); G–J:
ultrastructure of central cell at the beginning of flowering. G: secondary nucleus (Bar = 2 μm); H: bipolar nucleolus (Bar = 1 μm); I: mito-
chondria, endoplasmic reticulum and the Golgi around secondary nuclear (Bar = 500 nm); J: particle material is being output from nuclear
(Bar = 200 nm).
172 作 物 学 报 第 40卷



图版 III 开花后次生核阶段中央细胞的结构
Plate III Structure of central cell at secondary nucleus stage after flowering
A: 开花后胚囊的半薄切片, 示中央细胞的次生核(Bar = 10 μm); B~F: 开花后中央细胞的超微结构, 图 B示次生核(Bar = 5 μm); 图
C~F示核周围胞质中的线粒体、内质网、高尔基体和质体(图 C、D、F, Bar = 1 μm; 图 E, Bar = 500 nm); G~H: 授粉后约 13 h 胚囊的
相邻半薄切片, 示中央细胞的次生核(Bar = 10 μm); I~M: 授粉后约 13 h中央细胞的超微结构, 图 I、J为相邻切片, 示次生核及核仁液
泡(Bar = 2 μm); K~M: 核周围胞质中的内质网、线粒体和质体(Bar = 1 μm)。
A: semi-thin section of embryo sac after flowering, showing secondary nucleus (Bar = 10 μm); B–F: ultrastructure of central cell after flow-
ering; B: secondary nucleus (Bar = 5 μm); C–F: mitochondria, endoplasmic reticulum, the Golgi and plastids around secondary nuclear (C, D,
F, Bar = 1 μm; E, Bar = 500 nm); G–H: semi-thin sections of embryo sac approximately 13 hours after pollination, showing secondary nucleus
(Bar = 10 μm); I–M: ultrastructure of central cell approximately 13 hours after pollination; I–J: secondary nucleus and vacuole of
nucleolus(adjacent sections, Bar = 2 μm); K–M: endoplasmic reticulum, mitochondria and plastids around secondary nuclear (Bar = 1 μm).

第 1期 李 伟等: 栽培甜菜中央细胞受精前后的超微结构 173



图版 IV 初生胚乳核及胚乳游离核阶段中央细胞的结构
Plate IV Structure of central cell at the stage of primary endosperm nucleus and free nuclei
A: 授粉后约 17 h胚囊的半薄切片, 示初生胚乳核(Bar = 10 μm); B~E: 授粉后约 17 h中央细胞的超微结构, 图 B示初生胚乳核
(Bar = 2 μm); C~D: 核膜包围部分细胞质(图 C, Bar = 1 μm; 图 D, Bar = 500 nm); E: 核周围胞质中的质体(Bar = 1 μm)。F~H: 初生胚
乳核分裂中期的超微结构, 图 F示初生胚乳核分裂中期(Bar = 5 μm); 图 G示周围胞质中的质体、线粒体和高尔基体(Bar = 1 μm); 图
H示核膜崩解为许多囊泡状结构(Bar = 500 nm); I~J: 初生胚乳核分裂后期的超微结构, 图 I示初生胚乳核分裂后期(Bar = 2 μm); 图 J
示周围胞质中滑面内质网增多(Bar = 500 nm); K~M: 胚乳游离核阶段的超微结构, 图K示胚乳游离核(Bar = 2 μm); 图 L示核周围胞质,
质体含淀粉粒(Bar = 1 μm); 图 M示核周围胞质中的内质网, 高尔基体分泌小泡(Bar = 200 nm)。
A: semi-thin section of embryo sac approximately 17 hours after pollination, showing primary endosperm nucleus (Bar = 10 μm). B–E: Ul-
trastructure of central cell approximately 17 hours after pollination; B: primary endosperm nucleus (Bar = 2 μm); C–D: cytoplasm surrounded
by nuclear membrane (C, Bar = 1 μm; D, Bar = 500 nm); E: plastid around primary endosperm nuclear (Bar=1 μm); F–H: ultrastructure of
primary endosperm nucleus during metaphase division; F: metaphase division (Bar = 5 μm); G: plastids, mitochondria and Golgi in the sur-
rounding cytoplasm (Bar = 1 μm); H: nuclear membrane disintegrated into small vesicles (Bar = 500 nm); I–J: ultrastructure of primary en-
dosperm nucleus during anaphase; I: anaphase division (Bar = 2 μm); J: smooth endoplasmic reticulum increase (Bar = 500 nm); K–M: ultra-
structure of free nuclei stage; K: free nuclei (Bar = 2 μm); L: cytoplasm surrounding nucleus, plastids containing starch grain (Bar =1 μm); M:
endoplasmic reticulum and Golgi secretory vesicles (Bar = 200 nm).