全 文 ：云南不同产地臭灵丹精油化学成分及抗菌活性∗
顾健龙１ꎬ２ꎬ Ｇｕｙ Ｓ􀆰 Ｓ􀆰 ＮＪＡＴＥＮＧ３ꎬ 李志坚１ꎬ 张红霞１ꎬ
代　 琴１ꎬ２ꎬ 杜芝芝１∗∗
(１ 中国科学院昆明植物研究所植物化学与西部植物资源持续利用国家重点实验室ꎬ 云南 昆明　 ６５０２０１ꎻ
２ 中国科学院大学ꎬ 北京　 １０００４９ꎻ ３ Ｄｓｃｈａｎｇ大学自然科学系微生物学与
抗菌物质实验室ꎬ Ｐ.Ｏ. Ｂｏｘ ６７ Ｄｓｃｈａｎｇꎬ Ｃａｍｅｒｏｏｎ)
摘要: 采用水蒸气蒸馏的方法ꎬ 对采自云南 ４ 个不同地区 (昆明ꎬ 丽江ꎬ 普洱ꎬ 新平) 的臭灵丹叶子进
行挥发油提取ꎬ 并利用 ＧＣ￣ＭＳ 和 ＧＣ￣ＦＩＤ 气相色谱联用技术分析其化学组成ꎬ 分别从中鉴定出 ３９、 ３７、
３３、 ４４个化合物ꎮ 鉴定的化合物各占挥发油总量的 ９３􀆰 ３２％ (昆明)、 ８０􀆰 ５７％ (丽江)、 ９２􀆰 ２４％ (普洱)
和 ９３􀆰 ８５％ (新平)ꎮ 研究结果表明ꎬ 采自这四个地区植物样品提取所得挥发油化学组成不尽相同: 昆明产
臭灵丹挥发油富含芳香族化合物 (３８􀆰 ０６％)ꎻ 而从丽江和普洱样品中获得的挥发油化学成分以倍半萜
(分别为 １９􀆰 ８９％和 ４４􀆰 ６５％) 和氧化倍半萜 (分别为 ４０􀆰 ８５％和 ３５􀆰 １１％) 为主ꎻ 非氧化单萜和非氧化倍半
萜化合物 (分别为 ４２􀆰 ２３％和 ３３􀆰 ２５％) 则是新平产臭灵丹挥发油的主要化合物类型ꎮ 同时ꎬ 对这些不同
产地的臭灵丹挥发油也进行了抗菌活性测试ꎮ 从以上实验研究结果推测环境差异是影响臭灵丹挥发油化学
组成差异的重要因素ꎬ 而不同的化学组成可能是导致 ４种样品抗菌敏感程度不同的原因ꎮ
关键词: 臭灵丹ꎻ 挥发油ꎻ ＧＣ￣ＭＳꎻ 抗菌活性
中图分类号: Ｑ ９４６　 　 　 　 　 　 文献标识码: Ａ　 　 　 　 　 　 　 文章编号: ２０９５－０８４５(２０１４)０１－１１６－０７
Ｃｈｅｍｉｃａｌ Ｃｏｍｐｏｓｉｔｉｏｎ ａｎｄ Ａｎｔｉｍｉｃｒｏｂｉａｌ Ａｃｔｉｖｉｔｉｅｓ ｏｆ Ｅｓｓｅｎｔｉａｌ
Ｏｉｌｓ ｏｆ Ｌａｇｇｅｒａ ｐｔｅｒｏｄｏｎｔａ Ｃｏｌｌｅｃｔｅｄ ｉｎ Ｆｏｕｒ Ｄｉｆｆｅｒｅｎｔ
Ｌｏｃａｔｉｏｎｓ ｉｎ Ｙｕｎｎａｎꎬ Ｃｈｉｎａ∗
ＧＵ Ｊｉａｎ￣Ｌｏｎｇ１ꎬ２ꎬ ＮＪＡＴＥＮＧ Ｇｕｙ Ｓ􀆰 Ｓ􀆰 ３ꎬ ＬＩ Ｚｈｉ￣Ｊｉａｎ１ꎬ ＺＨＡＮＧ Ｈｏｎｇ￣Ｘｉａ１ꎬ
ＤＡＩ Ｑｉｎ１ꎬ２ꎬ ＤＵ Ｚｈｉ￣Ｚｈｉ１∗∗
(１ Ｓｔａｔｅ Ｋｅｙ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ ｏｆ Ｐｈｙｔｏｃｈｅｍｉｓｔｒｙ ａｎｄ Ｐｌａｎｔ Ｒｅｓｏｕｒｃｅｓ ｉｎ Ｗｅｓｔ Ｃｈｉｎａꎬ Ｋｕｎｍｉｎｇ Ｉｎｓｔｉｔｕｔｅ ｏｆ Ｂｏｔａｎｙꎬ Ｃｈｉｎｅｓｅ Ａｃａｄｅｍｙ
ｏｆ Ｓｃｉｅｎｃｅｓꎬ Ｋｕｎｍｉｎｇ ６５０２０１ꎬ Ｃｈｉｎａꎻ ２ Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｙ ｏｆ Ｃｈｉｎｅｓｅ Ａｃａｄｅｍｙ ｏｆ Ｓｃｉｅｎｃｅｓꎬ Ｂｅｉｊｉｎｇ １０００４９ꎬ Ｃｈｉｎａꎻ
３ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ ｏｆ Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌｏｇｙ ａｎｄ Ａｎｔｉｍｉｃｒｏｂｉａｌ Ｓｕｂｓｔａｎｃｅｓꎬ Ｆａｃｕｌｔｙ ｏｆ Ｓｃｉｅｎｃｅꎬ
Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｙ ｏｆ Ｄｓｃｈａｎｇꎬ Ｐ.Ｏ. Ｂｏｘ ６７ Ｄｓｃｈａｎｇꎬ Ｃａｍｅｒｏｏｎ)
Ａｂｓｔｒａｃｔ: Ｅｓｓｅｎｔｉａｌ ｏｉｌｓ ｏｂｔａｉｎｅｄ ｂｙ ｈｙｄｒｏｄｉｓｔｉｌｌａｔｉｏｎ ｆｒｏｍ ｌｅａｖｅｓ ｏｆ Ｌａｇｇｅｒａ ｐｔｅｒｏｄｏｎｔａ ｃｏｌｌｅｃｔｅｄ ｆｒｏｍ ｆｏｕｒ ｄｉｆｆｅｒｅｎｔ
ｌｏｃａｔｉｏｎｓ (Ｋｕｎｍｉｎｇꎬ Ｌｉｊｉａｎｇꎬ Ｐｕｅｒ ａｎｄ Ｘｉｎｐｉｎｇ) ｉｎ Ｙｕｎｎａｎꎬ Ｃｈｉｎａꎬ ｗｅｒｅ ａｎａｌｙｚｅｄ ｕｓｉｎｇ ＧＣ￣ＭＳ ａｎｄ ＧＣ￣ＦＩＤ. Ｔｈｅ
ｎｕｍｂｅｒ ｏｆ ｃｏｍｐｏｕｎｄｓ ｉｄｅｎｔｉｆｉｅｄ ｉｎ ｅａｃｈ ｓａｍｐｌｅ ｗａｓ ３９ꎬ ３７ꎬ ３３ ａｎｄ ４４ꎬ ｒｅｓｐｅｃｔｉｖｅｌｙꎬ ｒｅｐｒｅｓｅｎｔｉｎｇ ９３􀆰 ３２％ (Ｋｕｎ￣
ｍｉｎｇ)ꎬ ８０􀆰 ５７％ (Ｌｉｊｉａｎｇ)ꎬ ９２􀆰 ２４％ (Ｐｕｅｒ) ａｎｄ ９３􀆰 ８５％ (Ｘｉｎｐｉｎｇ) ｏｆ ｔｏｔａｌ ｅｓｓｅｎｔｉａｌ ｏｉｌｓ. Ｃｈｅｍｉｃａｌ ｃｏｍｐｏｓｉｔｉｏｎｓ
ｏｆ ｅｓｓｅｎｔｉａｌ ｏｉｌｓ ｄｉｆｆｅｒｅｄ ｂｅｔｗｅｅｎ ｓａｍｐｌｅ ｌｏｃａｔｉｏｎｓ: ｔｈｕｓꎬ ｔｈｏｓｅ ｆｒｏｍ Ｋｕｎｍｉｎｇ ｗｅｒｅ ｒｉｃｈ ｉｎ ｂｅｎｚｅｎｏｉｄ ｃｏｍｐｏｕｎｄｓ
(３８􀆰 ０６％) ｗｈｉｌｅ ｔｈｏｓｅ ｆｒｏｍ Ｌｉｊｉａｎｇ ａｎｄ Ｐｕｅｒ ｗｅｒｅ ｌａｒｇｅｌｙ ｄｏｍｉｎａｔｅｄ ｂｙ ｓｅｓｑｕｉｔｅｒｐｅｎｅｓ (１９􀆰 ８９％ ａｎｄ ４４􀆰 ６５％ ｒｅ￣
ｓｐｅｃｔｉｖｅｌｙ) ａｎｄ ｓｅｓｑｕｉｔｅｒｐｅｎｅｓ ｏｘｉｄｅ (４０􀆰 ８５％ ａｎｄ ３５􀆰 １１％ꎬ ｒｅｓｐｅｃｔｉｖｅｌｙ)ꎬ ａｎｄ ｔｈｏｓｅ ｆｒｏｍ Ｘｉｎｐｉｎｇ ｃｏｎｔａｉｎｅｄ ａ
植 物 分 类 与 资 源 学 报　 ２０１４ꎬ ３６ (１): １１６~１２２
Ｐｌａｎｔ Ｄｉｖｅｒｓｉｔｙ ａｎｄ Ｒｅｓｏｕｒｃｅｓ　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 ＤＯＩ: １０.７６７７ / ｙｎｚｗｙｊ２０１４１３０１７
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∗∗
基金项目: 云南省自然科学基金项目———两种滇产特色香料植物的应用基础研究 (２００９ＣＤ１１１)
Ａｕｔｈｏｒ ｆｏｒ ｃｏｒｒｅｓｐｏｎｄｅｎｃｅꎻ Ｅ￣ｍａｉｌ: ｄｕｚｈｉｚｈｉ＠ ｍａｉｌ. ｋｉｂ. ａｃ. ｃｎ
Ｒｅｃｅｉｖｅｄ ｄａｔｅ: ２０１３－０２－０１ꎬ Ａｃｃｅｐｔｅｄ ｄａｔｅ: ２０１３－０３－２２
作者简介: 顾健龙 (１９８８－) 男ꎬ 在读硕士研究生ꎬ 主要从事云南特色香料植物挥发性成分研究ꎮ
ｈｉｇｈ ｐｒｏｐｏｒｔｉｏｎ ｏｆ ｍｏｎｏｔｅｒｐｅｎｅ ｈｙｄｒｏｃａｒｂｏｎｓ ａｎｄ ｓｅｓｑｕｉｔｅｒｐｅｎｅ ｈｙｄｒｏｃａｒｂｏｎｓ (４２􀆰 ２３％ ａｎｄ ３３􀆰 ２５％ ｒｅｓｐｅｃｔｉｖｅｌｙ)
(７５􀆰 ４８％). Ｔｈｅ ｒｅｓｕｌｔｓ ｏｆ ｔｅｓｔｓ ｏｎ ｔｈｅ ａｎｔｉｍｉｃｒｏｂｉａｌ ａｃｔｉｖｉｔｉｅｓ ｏｆ ｅｓｓｅｎｔｉａｌ ｏｉｌｓ ｉｎｄｉｃａｔｅｄ ｔｈａｔ ｃｈｅｍｉｃａｌ ｃｏｍｐｏｓｉｔｉｏｎ
ｗａｓ ａｆｆｅｃｔｅｄ ｂｙ ｅｎｖｉｒｏｎｍｅｎｔａｌ ｖａｒｉａｔｉｏｎ ｃａｕｓｉｎｇ ｄｉｆｆｅｒｅｎｃｅｓ ｉｎ ｓｅｎｓｉｔｉｖｉｔｙ ｔｏ ｍｉｃｒｏｂｅｓ ａｍｏｎｇ ｓａｍｐｌｅｓ.
Ｋｅｙ ｗｏｒｄｓ: Ｌａｇｇｅｒａ ｐｔｅｒｏｄｏｎｔａꎻ Ｅｓｓｅｎｔｉａｌ ｏｉｌꎻ ＧＣ￣ＭＳꎻ Ａｎｔｉｍｉｃｒｏｂｉａｌ ａｃｔｉｖｉｔｙ
　 Ｔｈｅ ｇｅｎｕｓ Ｌａｇｇｅｒａ (ｆａｍｉｌｙ Ｃｏｍｐｏｓｉｔａｅ) ｈａｓ ａ￣
ｒｏｕｎｄ ２０ ｓｐｅｃｉｅｓꎬ ｗｈｉｃｈ ｍａｉｎｌｙ ｄｉｓｔｒｉｂｕｔｅ ｉｎ ｔｒｏｐｉｃａｌ
Ａｆｒｉｃａ ａｎｄ Ａｓｉａ. Ｌａｇｇｅｒａ ａｌａｔａ ａｎｄ Ｌ􀆰 ｐｔｅｒｏｄｏｎｔａ ａｒｅ
ｔｈｅ ｏｎｌｙ ｔｗｏ ｓｐｅｃｉｅｓ ｉｎ Ｃｈｉｎａ ｗｈｉｃｈ ａｒｅ ｅｍｐｌｏｙｅｄ ａｓ
ｔｒａｄｉｔｉｏｎａｌ ｈｅｒｂａｌ ｍｅｄｉｃｉｎｅｓ ｂｅｃａｕｓｅ ｏｆ ｔｈｅｉｒ ａｎｔｉ￣ｉｎ￣
ｆｌａｍｍａｔｏｒｙ ａｎｄ ａｎｔｉｂａｃｔｅｒｉａｌ ａｃｔｉｖｉｔｉｅｓ (Ｎｅｗ Ｍｅｄｉｃａｌ
Ｓｃｈｏｏｌ ｏｆ Ｊｉａｎｓｕꎬ １９８５). Ｌ􀆰 ｐｔｅｒｏｄｏｎｔａ (ＤＣ.) Ｂｅｎｔｈ
ｗｈｉｃｈ ｃａｌｌｅｄ ‘Ｃｈｏｕ Ｌｉｎｇ Ｄａｎ’ ａｓ ｉｔ ｐｒｏｄｕｃｅｓ ｓｔｉｍｕ￣
ｌｏｕｓ ｏｄｏｒ ｉｓ ｗｉｄｅｌｙ ｄｉｓｔｒｉｂｕｔｅｄ ｉｎ ｔｈｅ Ｓｏｕｔｈｗｅｓｔｅｒｎ
Ｃｈｉｎａꎬ ｅｓｐｅｃｉａｌｌｙ ｉｎ Ｙｕｎｎａｎ Ｐｒｏｖｉｎｃｅ.
Ｐｒｅｖｉｏｕｓ ｗｏｒｋ ｒｅｖｅａｌｅｄ ｔｈａｔ ｓｅｓｑｕｉｔｅｒｐｅｎｅｓ ａｒｅ
ｔｈｅ ｍａｊｏｒ ｃｏｍｐｏｎｅｎｔｓ ｆｒｏｍ ｔｈｅ ｐｌａｎｔ ａｎｄ ｍａｎｙ ｎｅｗ
ｃｏｍｐｏｕｎｄｓ ｗｅｒｅ ｉｓｏｌａｔｅｄ ｆｒｏｍ ｉｔ ｄｕｒｉｎｇ ｔｈｅ ｌａｓｔ ｔｗｏ
ｄｅｃａｄｅｓ (Ｌｉ ｅｔ ａｌ.ꎬ ２００７ꎻ Ｚｈａｏ ｅｔ ａｌ.ꎬ １９９７ａꎬ ｂ).
Ｏｔｈｅｒ ｔｙｐｅｓ ｏｆ ｔｅｒｐｅｎｏｉｄｓ ａｎｄ ｆｌａｖｏｎｏｉｄｓ ｗｅｒｅ ａｌｓｏ ｉ￣
ｓｏｌａｔｅｄ ｆｒｏｍ ａｅｒｉａｌ ｐａｒｔ ｏｆ ｔｈｅ ｐｌａｎｔ (Ｙａｎｇ ｅｔ ａｌ.ꎬ
２００７). Ｉｎ ｐｒｅｌｉｍｉｎａｒｙ ｉｎｖｅｓｔｉｇａｔｉｏｎｓꎬ ｔｏｔａｌ ｆｌａｖｏｎｉｄｓ
ｆｒｏｍ Ｌ􀆰 ｐｔｅｒｏｄｏｎｔａ ｅｘｈｉｂｉｔｅｄ ａｎｔｉ￣ｉｎｆｌａｍｍａｔｏｒｙ ａｃｔｉｖｉｔｙ
(Ｗｕ ｅｔ ａｌ.ꎬ ２００６) ａｎｄ ａｎｔｉｎｅｏｐｌａｓｔｉｃ ａｃｔｉｖｉｔｙ (Ｃａｏ ｅｔ
ａｌ.ꎬ ２０１０). Ｐｔｅｒｏｄｏｎｔｉｃ ａｃｉｄ ａｎｄ ｐｔｅｒｏｄｏｎｄｉｏｌ ｉｓｏｌａ￣
ｔｅｄ ｆｒｏｍ ｔｈｅ ｐｌａｎｔ ｓｈｏｗｅｄ ａｎｔｉｍｉｃｒｏｂｉａｌ ａｃｔｉｖｉｔｙ ａｓ
ｗｅｌｌ (Ｙａｎｇ ｅｔ ａｌ.ꎬ ２００７). Ｅｓｓｅｎｔｉａｌ ｏｉｌ ｗａｓ ａｌｓｏ ｉｍ￣
ｐｏｒｔａｎｔ ｓｅｃｏｎｄａｒｙ ｍｅｔａｂｏｌｉｔｅｓ ｗｉｔｈ ｂｉｏａｃｔｉｖｉｔｉｅｓ ｉｎ
Ｌ􀆰 ｐｔｅｒｏｄｏｎｔａ ｏｎ ｗｈｉｃｈ ｈａｄ ｆｅｗｅｒ ｒｅｓｅａｒｃｈｅｓ (Ｗｅｉ ｅｔ
ａｌ.ꎬ １９９２ꎻ Ｘｉｎ ｅｔ ａｌ.ꎬ １９９９)ꎬ ａｎｄ ｎｏｎｅ ｏｆ ｔｈｅｓｅ ｒｅ￣
ｓｅａｒｃｈｅｓ ｉｎｖｏｌｖｅｄ ｐｈａｒｍａｃｏｌｏｇｉｃａｌ ｐａｒｔ ｔｏ ｔｈｅ ｂｅｓｔ ｏｆ
ｏｕｒ ｋｎｏｗｌｅｄｇｅ. Ｓｏｍｅ ｏｆ ｅｓｓｅｎｔｉａｌ ｏｉｌｓ ｉｎ ｇｅｎｕｓ Ｌａｇ￣
ｇｅｒａ ｗｅｒｅ ｐｒｏｖｅｄ ｔｏ ｈａｖｅ ｇｏｏｄ ａｎｔｉｍｉｃｒｏｂｉａｌ ａｎｄ ｆｒｅｅ
ｒａｄｉｃａｌ ｓｃａｖｅｎｇｉｎｇ ａｃｔｉｖｉｔｉｅｓ ｓｕｃｈ ａｓ Ｌ􀆰 ｄｅｃｕｒｒｅｎｓ
(Ｍｏｔｈａｎａ ｅｔ ａｌ.ꎬ ２０１１). Ｅｓｓｅｎｔｉａｌ ｏｉｌｓ ｃｏｌｌｅｃｔｅｄ ｉｎ
ｄｉｆｆｅｒｅｎｔ ｐｌａｃｅｓ ｗｅｒｅ ｆｏｕｎｄ ｔｏ ｈａｖｅ ｄｉｆｆｅｒｅｎｔ ｃｌｉｎｉｃａｌ
ａｐｐｌｉｃａｔｉｏｎｓ ａｎｄ ｔｈｅ ｃｈｅｍｉｃａｌ ｃｏｎｓｔｉｔｕｔｅｓ ｏｆ ｔｈｅｓｅ ｅｓ￣
ｓｅｎｔｉａｌ ｏｉｌｓ ａｒｅ ｄｉｖｅｒｓｅ ａｓ ｗｅｌｌ. Ｔｈｅｓｅ ｐｈｅｎｏｍｅｎａ
ｍｅａｎ ｔｈａｔ ｄｉｆｆｅｒｅｎｃｅ ｏｆ ｏｉｌｓ’ ｃｈｅｍｉｃａｌ ｃｏｎｓｔｉｔｕｔｅｓ ｍａｙ
ｌｅａｄ ｔｏ ｄｉｆｆｅｒｅｎｔ ｐｈａｒｍａｃｏｌｏｇｉｃａｌ ａｃｔｉｖｉｔｉｅｓ. Ｉｎ ｔｈｅ
ｐｒｅｓｅｎｔ ｓｔｕｄｙꎬ ｔｈｅ ｅｓｓｅｎｔｉａｌ ｏｉｌｓ ｄｅｒｉｖｅｄ ｆｒｏｍ ｄｒｙ
ｌｅａｖｅｓ ｏｆ Ｌ􀆰 ｐｔｅｒｏｄｏｎｔａ ｉｎ ｆｏｕｒ ｌｏｃａｔｉｏｎｓ ｗｅｒｅ ａｎａｌｙｚｅｄ
ｂｙ ＧＣ￣ＭＳ ａｎｄ ｔｈｅｉｒ ａｎｔｉｍｉｃｒｏｂｉａｌ ａｃｔｉｖｉｔｉｅｓ ａｇａｉｎｓｔ
ｓｅｖｅｒａｌ ｂａｃｔｅｒｉａｌ ａｎｄ ｆｕｎｇａｌ ｓｔｒａｉｎｓ ｗｅｒｅ ｔｅｓｔｅｄ.
１　 Ｍａｔｅｒｉａｌ ａｎｄ ｍｅｔｈｏｄｓ
１􀆰 １　 Ｐｌａｎｔ ｍａｔｅｒｉａｌ
Ａｅｒｉａｌ ｐａｒｔｓ ｏｆ Ｌ􀆰 ｐｔｅｒｏｄｏｎｔａ ｗｅｒｅ ｃｏｌｌｅｃｔｅｄ ｆｒｏｍ
Ｋｕｎｍｉｎｇꎬ Ｌｉｊｉａｎｇꎬ Ｐｕｅｒ ａｎｄ Ｘｉｎｐｉｎｇ ｏｆ Ｙｕｎａｎ
Ｐｒｏｖｉｎｃｅꎬ Ｃｈｉｎａ ｄｕｒｉｎｇ Ｊｕｌｙ ａｎｄ Ａｕｇｕｓｔ ｉｎ ２０１１ ａｎｄ
２０１２. Ａｌｌ ｔｈｅｓｅ ｓａｍｐｌｅｓ ｗｅｒｅ ａｉｒ￣ｄｒｉｅｄ ｉｎ ｔｈｅ ｓｈａｄｅ
ｔｈｅｎ ｓｔｏｒｅ ｉｎ ｃｏｏｌ ａｎｄ ｄａｒｋ ｐｌａｃｅ ｉｎ ｚｉｐｌｏｃｋ ｂａｇｓ ｂｅ￣
ｆｏｒｅ ｕｓｅ. Ｔｈｅ ｐｌａｎｔ ｓａｍｐｌｅｓ ｗｅｒｅ ｉｄｅｎｔｉｆｉｅｄ ｂｙ Ｄｒ.
Ｌｉｕ Ｅｎ￣ｄｅ ｆｒｏｍ Ｈｅｒｂａｒｉｕｍ ｏｆ Ｋｕｎｍｉｎｇ Ｉｎｓｔｉｔｕｔｅ ｏｆ
Ｂｏｔａｎｙꎬ Ｃｈｉｎｅｓｅ Ａｃａｄｅｍｙ ｏｆ Ｓｃｉｅｎｃｅｓ.
１􀆰 ２　 Ｉｓｏｌａｔｉｏｎ ｏｆ ｅｓｓｅｎｔｉａｌ ｏｉｌｓ
Ａｉｒ ｄｒｉｅｄ ａｅｒｉａｌ ｐａｒｔｓ (１００ ｇ) ｗｅｒｅ ｓｕｂｊｅｃｔｅｄ ｔｏ
ｈｙｄｒｏｄｉｓｔｉｌｌａｔｉｏｎ ｆｏｒ ４ ｈ ｕｓｉｎｇ ｔｈｅ ｓｔａｎｄａｒｄ ａｐｐａｒａｔｕｓ
ｄｅｓｃｒｉｂｅｄ ｉｎ ｔｈｅ Ｃｈｉｎｅｓｅ ｐｈａｒｍａｃｏｐｏｅｉａ ( Ｃｈｉｎａ
Ｐｈａｒｍａｃｏｐｅｉａ Ｃｏｍｍｉｓｓｉｏｎꎬ ２０１０). Ｔｈｅ ｅｓｓｅｎｔｉａｌ ｏｉｌ
ｗａｓ ｓｅｐａｒａｔｅｄ ｆｒｏｍ ａｑｕｅｏｕｓ ｐｈａｓｅ ｐｒｏｄｕｃｅｄ ｄｕｒｉｎｇ
ｄｉｓｔｉｌｌａｔｉｏｎ ａｎｄ ｄｒｉｅｄ ｏｖｅｒ ａｎｈｙｄｒｏｕｓ Ｎａ２ ＳＯ４ . Ｔｈｅ
ｙｉｅｌｄｓ ｏｆ ｅｓｓｅｎｔｉａｌ ｏｉｌｓ ｗｅｒｅ ｃａｌｃｕｌａｔｅｄ ａｓ ％ ｂａｓｅｄ ｏｎ
ｔｈｅ ｄｒｙ ｗｅｉｇｈｔ ｏｆ ｔｈｅ ｐｌａｎｔ ｍａｔｅｒｉａｌ. Ｔｈｅ ｅｓｓｅｎｔｉａｌ
ｏｉｌｓ ｗｅｒｅ ｓｔｏｒｅｄ ａｔ ４° ｉｎ ａｉｒｔｉｇｈｔ ｓａｍｐｌｅ ｂｏｔｔｌｅｓ. Ｔｈｅｙ
ｗｅｒｅ ｄｉｌｕｔｅｄ ｉｎ ｈｅｘａｎｅ ｔｏ ２％ ｃｏｎｃｅｎｔｒａｔｉｏｎ ｐｒｉｏｒ ｔｏ
ＧＣ￣ＦＩＤ ａｎｄ ＧＣ￣ＭＳ ａｎａｌｙｓｉｓ.
１􀆰 ３　 ＧＣ ａｎｄ ＧＣ￣ＭＳ ａｎａｌｙｓｉｓ
Ｅｓｓｅｎｔｉａｌ ｏｉｌｓ ｗｅｒｅ ａｎａｌｙｚｅｄ ｏｎ Ａｇｉｌｅｎｔ ７８９０Ａ
ｇａｓ ｃｈｒｏｍａｔｏｇｒａｐｈ ｗｉｔｈ ａ ｆｌａｍｅ ｉｏｎｉｚａｔｉｏｎ ｄｅｔｅｃｔｏｒ
(ＦＩＤ). Ａｎａｌｙｓｉｓ ｏｆ ｔｈｅ ｅｓｓｅｎｔｉａｌ ｏｉｌｓ ｗｅｒｅ ａｌｓｏ ｃａｒｒｉｅｄ
ｏｕｔ ｕｓｉｎｇ ａｎ Ａｇｉｌｅｎｔ ７８９０Ａ ｇａｓ ｃｈｒｏｍａｔｏｇｒａｐｈ ｅ￣
ｑｕｉｐｐｅｄ ｗｉｔｈ ａ Ａｇｉｌｅｎｔ ５９７５Ｃ ｍａｓｓ ｓｐｅｃｔｒｏｍｅｔｅｒꎬ ｆｉｔ￣
ｔｅｄ ｗｉｔｈ ａ ＨＰ￣５ (５％ ｄｉｐｈｅｎｙｌ ｐｏｌｙｓｉｌｏｘａｎｅ) ｃａｐｉｌ￣
ｌａｒｙ ｃｏｌｕｍｎ (５０ ｍ × ０􀆰 ２ ｍｍ ｉ􀆰 ｄ.ꎬ ０􀆰 ３３ μｍ ｆｉｌｍ
ｔｈｉｃｋｎｅｓｓ)ꎬ ｗｉｔｈ ｈｅｌｉｕｍ ｃａｒｒｉｅｒ ｇａｓꎬ ｉｎｉｔｉａｌ ｈｅａｄ
ｐｒｅｓｓｕｒｅ ４６􀆰 ３ ｐｓｉ (１􀆰 ７ ｍＬ􀅰ｍｉｎ－１). Ｔｈｅ ＦＩＤ ｄｅｔｅｃ￣
ｔｏｒ ｔｅｍｐｅｒａｔｕｒｅ ｗａｓ ｈｅｌｄ ａｔ ３００ ℃ ａｎｄ ｔｈｅ ＭＳＤ
ｔｒａｎｓｆｅｒ ｌｉｎｅ ａｔ ２５０ ℃ꎬ ｗｉｔｈ ｔｈｅ ｉｎｊｅｃｔｏｒ ｓｅｔ ａｔ ２５０℃.
７１１１期　 　 ＧＵ Ｊｉａｎ￣Ｌｏｎｇ ｅｔ ａｌ.: Ｃｈｅｍｉｃａｌ Ｃｏｍｐｏｓｉｔｉｏｎ ａｎｄ Ａｎｔｉｍｉｃｒｏｂｉａｌ Ａｃｔｉｖｉｔｉｅｓ ｏｆ Ｅｓｓｅｎｔｉａｌ Ｏｉｌｓ ｏｆ Ｌａｇｇｅｒａ ｐｔｅｒｏｄｏｎｔａ 􀆺　 　
Ｔｈｅ ｏｖｅｎ ｔｅｍｐｅｒａｔｕｒｅ ｗａｓ ｐｒｏｇｒａｍｍｅｄ ｉｓｏｔｈｅｒｍａｌ ａｔ ５０
℃ꎬ ｔｈｅｎ ｒｉｓｉｎｇ ｆｒｏｍ ５０ ℃ ｔｏ ２８０ ℃ ａｔ ２ ℃ / ｍｉｎ ａｎｄ
ｈｏｌｄ ｆｏｒ １０ ｍｉｎ ａｔ ２８０ ℃. Ｔｈｅ ｓｐｌｉｔｌｅｓｓ￣ｉｎｊｅｃｔｉｏｎ ｍｏｄｅ
ｗａｓ ｓｅｌｅｃｔｅｄꎬ ａｎｄ ｔｈｅ ｉｏｎｉｚａｔｉｏｎ ｗａｓ ｃａｒｒｉｅｄ ｏｕｔ ｉｎ ｔｈｅ
ｍａｓｓ ｓｐｅｃｔｒｏｍｅｔｅｒ ｕｎｄｅｒ ｖａｃｕｕｍ ｂｙ ｅｌｅｃｔｒｏｎ ｉｍｐａｃｔ
(７０ ｅＶ). Ｄａｔａ ｗｅｒｅ ａｃｑｕｉｒｅｄ ａｎｄ ｐｒｏｃｅｓｓｅｄ ｕｓｉｎｇ ＭＳＤ
ＣｈｅｍＳｔａｔｉｏｎ ｓｏｆｔｗａｒｅ (ｓｃａｎ ｍｏｄｅꎬ ｍ / ｚ ３０－５００).
Ｔｈｅ ｉｄｅｎｔｉｆｉｃａｔｉｏｎ ｏｆ ｔｈｅ ｃｏｍｐｏｎｅｎｔｓ ｗａｓ ｂａｓｅｄ
ｏｎ ｉ ) ｔｈｅ ｃｏｍｐａｒｉｓｏｎ ｏｆ ｔｈｅｉｒ ｒｅｔｅｎｔｉｏｎ ｉｎｄｉｃｅｓ
(ＲＩｓ) ｄｅｔｅｒｍｉｎｅｄ ｒｅｌａｔｉｖｅｌｙ ｔｏ ｔｈｅ ｔＲ ｖａｌｕｅｓ ｏｆ ａ ｓｅ￣
ｒｉｅｓ ｏｆ ｎ￣ａｌｋａｎｅｓ ( Ｃ７ － Ｃ３０ ) ｗｉｔｈ ｔｈｏｓｅ ｄａｔａ ｆｒｏｍ
ＮＩＳＴ ０８ ｄａｔａｂａｓｅꎬ ｉｉ) ｔｈｅ ｃｏｍｐａｒｉｓｏｎ ｏｆ ｆｒａｇｍｅｎｔａ￣
ｔｉｏｎ ｐａｔｔｅｒｎｓ ｉｎ ｔｈｅ ｍａｓｓ ｓｐｅｃｔｒａ ｗｉｔｈ ｔｈｏｓｅ ｄａｔａ ｆｒｏｍ
ＮＩＳＴ ０８ ｄａｔａｂａｓｅ. Ｃｏｍｐｏｕｎｄ ｃｏｕｌｄ ｂｅ ｉｄｅｎｔｉｆｉｅｄ
ｗｈｅｎ ｂｏｔｈ ｏｆ ｔｈｅｍ ｗｅｒｅ ｍａｔｃｈｅｄ ｗｅｌｌ.
１􀆰 ４　 Ｍｉｃｒｏｂｉａｌ ｓｔｒａｉｎｓ
Ｔｈｅ ａｎｔｉｂａｃｔｅｒｉａｌ ａｃｔｉｖｉｔｙ ｏｆ ｅｓｓｅｎｔｉａｌ ｏｉｌｓ ｆｒｏｍ ４
ｌｏｃａｔｉｏｎｓ ｗｅｒｅ ｅｖａｌｕａｔｅｄ ｕｓｉｎｇ ｎｉｎｅ ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ ｃｏｎ￣
ｔｒｏｌ ｓｔｒａｉｎｓ ｏｆ ｂａｃｔｅｒｉａ ｏｂｔａｉｎｅｄ ｆｒｏｍ ｔｈｅ Ａｍｅｒｉｃａｎ
Ｔｙｐｅ Ｃｕｌｔｕｒｅ Ｃｏｌｌｅｃｔｉｏｎ (Ｒｏｃｋｖｉｌｌｅꎬ ＭＤꎬ ＵＳＡ): Ｇｒａｍ￣
ｐｏｓｉｔｉｖｅ ｂａｃｔｅｒｉａ Ｓｔａｐｈｙｌｏｃｏｃｃｕｓ ａｕｒｅｕｓ (ＡＴＣＣ２５９２２)ꎬ
Ｅｎｔｅｒｏｃｏｃｃｕｓ ｆａｅｃａｌｉｓ ( ＡＴＣＣ １０５４１)ꎬ ａｎｄ Ｇｒａｍ￣
ｎｅｇａｔｉｖｅ ｂａｃｔｅｒｉａ: Ｅｓｃｈｅｒｉｃｈｉａ ｃｏｌｉ (ＡＴＣＣ ８７３９)ꎬ
Ｅ􀆰 ｃｏｌｉ (ＡＴＣＣ １０５３６)ꎬ Ｅ􀆰 ｃｏｌｉ (ＡＴＣＣ １１７７５)ꎬ Ｅｎ￣
ｔｅｒｏｂａｃｔｅｒ ａｅｒｏｇｅｎｅｓ (ＡＴＣＣ １３０４８)ꎬ Ｐｒｏｖｉｄｅｎｃｉａ ｓｔｕ￣
ａｒｔｉｉ ( ＡＴＣＣ ２９９１６ )ꎬ Ｐｓｅｕｄｏｍｏｎａｓ ａｅｒｕｇｉｎｏｓａ
(ＡＴＣＣ ２７８５３)ꎬ Ｓａｌｍｏｎｅｌｌａ ｔｙｐｈｉ (ＡＴＣＣ ６５３９).
Ｔｗｏ ｄｅｒｍａｔｏｐｈｙｔｅｓꎬ ｏｎｅ ｆｒｏｍ “ Ｅｃｏｌｅ Ｎａｔｉｏｎａｌｅ
Ｖéｔéｒｉｎａｉｒｅ ｄ’ Ａｆｏｒｄ” ｉｎ Ｆｒａｎｃｅꎬ Ｔｒｉｃｈｏｐｈｙｔｏｎ ａｊｅｌｏｉ
(Ｅ １５０１) ａｎｄ ｏｎｅ ｃｌｉｎｉｃａｌ ｉｓｏｌａｔｅ Ｔｒｉｃｈｏｐｈｙｔｏｎ ｔｅｒ￣
ｒｅｓｔｒｅꎻ ｆｏｕｒ ｓｔｒａｉｎｓ ｏｆ ｙｅａｓｔ ｉｎｃｌｕｄｉｎｇ Ｃａｎｄｉｄａ ａｌｂｉ￣
ｃａｎｓ ( ＡＴＣＣ１６６３)ꎬ Ｃａｎｄｉｄａ ｇｌａｂｒａｔａ ( ＩＰ ３５)ꎬ
Ｃｒｙｐｔｏｃｏｃｃｕｓ ｎｅｏｆｏｒｍａｎｓ (ＩＰ９５０２６)ꎬ Ｃａｎｄｉｄａ ｇｕｉｌｌｉ￣
ｍｏｎｄｉｉ ｉｎ ｗｈｉｃｈ ｔｗｏ ＩＰ ｓｔｒａｉｎｓ ｆｒｏｍ ｔｈｅ “ Ｉｎｓｔｉｔｕｔｅ
Ｐａｓｔｅｕｒ” (Ｐａｒｉｓꎬ Ｆｒａｎｃｅ) ａｎｄ ｏｎｅ ｃｌｉｎｉｃａｌ ｉｓｏｌａｔｅ.
Ｓｔｏｃｋ ｃｕｌｔｕｒｅｓ ｗｅｒｅ ｍａｉｎｔａｉｎｅｄ ａｔ ４ ℃ ｏｎ ｓｌｏｐｅｓ
ｏｆ Ｍｕｌｌｅｒ Ｈｉｎｔｏｎ Ａｇａｒ ｆｏｒ ｂａｃｔｅｒｉａ ｏｒ ｏｎ Ｓａｂｏｕｒａｕｄ
Ｄｅｘｔｒｏｓｅ Ａｇａｒ ｆｏｒ ｆｕｎｇｉ ａｎｄ ｗｅｒｅ ａｃｔｉｖａｔｅｄ ｆｏｒ ｏｎｅꎬ
ｔｗｏ ｏｒ ｆｉｆｔｅｅｎ ｄａｙｓ ｒｅｓｐｅｃｔｉｖｅｌｙ ｆｏｒ ｂａｃｔｅｒｉａꎬ ｙｅａｓｔｓ
ａｎｄ ｄｅｒｍａｔｏｐｈｙｔｅｓ ｂｅｆｏｒｅ ｕｓｅ ｉｎ ｔｈｅ ｅｘｐｅｒｉｍｅｎｔ.
１􀆰 ５　 Ａｎｔｉｍｉｃｒｏｂｉａｌ ａｃｔｉｖｉｔｙ
Ａ ｂｒｏｔｈ ｍｉｃｒｏ￣ｄｉｌｕｔｉｏｎ ｍｅｔｈｏｄ ｗａｓ ｕｓｅｄ ｔｏ ｄｅ￣
ｔｅｒｍｉｎｅ ｔｈｅ ｍｉｎｉｍｕｍ ｉｎｈｉｂｉｔｏｒｙ ｃｏｎｃｅｎｔｒａｔｉｏｎ (ＭＩＣ)
ａｎｄ ｍｉｎｉｍｕｍ ｂａｃｔｅｒｉｃｉｄａｌ ｃｏｎｃｅｎｔｒａｔｉｏｎ (ＭＢＣ) ａｃ￣
ｃｏｒｄｉｎｇ ｔｏ ｔｈｅ Ｎａｔｉｏｎａｌ Ｃｏｍｍｉｔｔｅｅ ｆｏｒ Ｃｌｉｎｉｃａｌ Ｌａｂｏ￣
ｒａｔｏｒｙ Ｓｔａｎｄａｒｄｓ ( ＮＣＣＬＳꎬ ２００１). Ａｌｌ ｔｅｓｔｓ ｗｅｒｅ
ｐｅｒｆｏｒｍｅｄ ｉｎ Ｍｕｅｌｌｅｒ Ｈｉｎｔｏｎ ｂｒｏｔｈ (ＭＨＢ). Ｔｈｅ ｉｎ￣
ｏｃｕｌａ ｏｆ ｔｈｅ ｂａｃｔｅｒｉａｌ ｓｔｒａｉｎｓ ｗｅｒｅ ｐｒｅｐａｒｅｄ ｆｒｏｍ ２４ ｈ
ｏｌｄ ｃｕｌｔｕｒｅｓ ａｎｄ ｓｕｓｐｅｎｓｉｏｎｓ ｗｅｒｅ ａｄｊｕｓｔｅｄ ｔｏ ０􀆰 ５
ＭｃＦａｒｌａｎｄ ｓｔａｎｄａｒｄ ｔｕｒｂｉｄｉｔｙ. Ｔｈｅ ｓｔａｎｄａｒｄｉｚｅｄ ｉｎｏｃ￣
ｕｌｕｍ ｗａｓ ｄｉｌｕｔｅｄ ｆｉｖｅ ｔｉｍｅｓ ｔｏ ａｃｈｉｅｖｅ ａ ｆｉｎａｌ ｉｎｏｃｕ￣
ｌｕｍ ｃｏｎｃｅｎｔｒａｔｉｏｎ ｏｆ ａｐｐｒｏｘｉｍａｔｅｌｙ １０７ ＣＦＵ / ｍＬ.
Ｔｈｅ ｓａｍｐｌｅｓ ｗｅｒｅ ｄｉｓｓｏｌｖｅｄ ｉｎ １０％ ｄｉｍｅｔｈｙｌｓｕｌｆｏｘ￣
ｉｄｅ (ＤＭＳＯ) ａｎｄ ｄｉｌｕｔｅｄ ｔｏ ｔｈｅ ｈｉｇｈｅｓｔ ｃｏｎｃｅｎｔｒａ￣
ｔｉｏｎｓ (１ ｍｇ􀅰ｍＬ－１). Ｆｕｒｔｈｅｒ ｓｅｒｉａｌ ｄｉｌｕｔｉｏｎｓ ｏｆ ｔｈｅ
ｅｘｔｒａｃｔｓ ｗｅｒｅ ｐｅｒｆｏｒｍｅｄ ｔｏ ｒｅａｃｈ ａ ｆｉｎａｌ ｃｏｎｃｅｎｔｒａ￣
ｔｉｏｎ ｒａｎｇｅ ｂｅｔｗｅｅｎ １ ０００ ａｎｄ ７􀆰 ８ μｇ􀅰ｍＬ－１ . Ｆｏｒ ｅｖ￣
ｅｒｙ ｅｘｐｅｒｉｍｅｎｔꎬ ａ ｓｔｅｒｉｌｉｔｙ ｃｈｅｃｋ ( ｖｏｌｕｍｅ ｆｒａｃｔｉｏｎ
１０％ ａｑｕｅｏｕｓ ＤＭＳＯ ａｎｄ ｍｅｄｉｕｍ)ꎬ ｎｅｇａｔｉｖｅ ｃｏｎｔｒｏｌ
(ｖｏｌｕｍｅ ｆｒａｃｔｉｏｎ １０％ ａｑｕｅｏｕｓ ＤＭＳＯꎬ ｍｅｄｉｕｍ ａｎｄ
ｉｎｏｃｕｌａ) ａｎｄ ｐｏｓｉｔｉｖｅ ｃｏｎｔｒｏｌ (ｖｏｌｕｍｅ ｆｒａｃｔｉｏｎ １０％
ａｑｕｅｏｕｓ ＤＭＳＯꎬ ｍｅｄｉｕｍꎬ ｉｎｏｃｕｌｕｍｓ ａｎｄ ｒｉｆａｍｐｉｃｉｎ
ｒａｎｇｉｎｇ ｆｒｏｍ ５０ ｔｏ ０􀆰 ３９ μｇ􀅰ｍＬ－１) ｗａｓ ｉｎｃｌｕｄｅｄ. Ａｌｌ
ａｓｓａｙｓ ｗｅｒｅ ｐｅｒｆｏｒｍｅｄ ｉｎ ｔｒｉｐｌｉｃａｔｅ. Ａｆｔｅｒ ｉｎｃｕｂａｔｉｏｎ
ａｔ ３７ ℃ ｆｏｒ ２４ ｈꎬ ｇｒｏｗｔｈ ｗａｓ ｍｏｎｉｔｏｒｅｄ ｃｏｌｏｒｉｍｅｔ￣
ｒｉｃａｌｌｙ ｕｓｉｎｇ ｉｏｄｏｎｉｔｒｏｔｅｔｒａｚｏｌｉｕｍ ｃｈｌｏｒｉｄｅ (ＩＮＴ).
Ａｌｌ ｃｏｎｃｅｎｔｒａｔｉｏｎｓ ａｔ ｗｈｉｃｈ ｎｏ ｖｉｓｉｂｌｅ ｃｏｌｏｕｒ
ｃｈａｎｇｅ ｗｅｒｅ ｃｏｎｓｉｄｅｒｅｄ ａｓ ｉｎｈｉｂｉｔｏｒｙ ｃｏｎｃｅｎｔｒａｔｉｏｎｓ
ａｎｄ ｔｈｅ ｌｏｗｅｓｔ ｏｆ ｔｈｅｓｅ ｃｏｎｃｅｎｔｒａｔｉｏｎｓ ｗａｓ ｃｏｎｓｉｄｅｒｅｄ
ａｓ ｔｈｅ ＭＩＣ. Ｔｈｅ ｍｉｃｒｏｂｉｃｉｄａｌ ｃｏｎｃｅｎｔｒａｔｉｏｎｓ ｗａｓ ｄｅ￣
ｔｅｒｍｉｎｅｄ ｂｙ ａｄｄｉｎｇ ５０ μＬ ａｌｉｑｕｏｔｓ ｏｆ ｔｈｅ ｐｒｅｐａｒａｔｉｏｎｓ
(ｗｉｔｈｏｕｔ ＩＮＴ)ꎬ ｗｈｉｃｈ ｄｉｄ ｎｏｔ ｓｈｏｗ ａｎｙ ｖｉｓｉｂｌｅ ｃｏｌｏｕｒ
ｃｈａｎｇｅ ａｆｔｅｒ ｉｎｃｕｂａｔｉｏｎ ｄｕｒｉｎｇ ＭＩＣ ａｓｓａｙｓꎬ ｉｎｔｏ １５０
μＬ ｏｆ ｅｓｓｅｎｔｉａｌ ｏｉｌ ｆｒｅｅ ＭＨＢ. Ｔｈｅｓｅ ｐｒｅｐａｒａｔｉｏｎｓ ｗｅｒｅ
ｆｕｒｔｈｅｒ ｉｎｃｕｂａｔｅｄ ａｔ ｔｈｅ ａｂｏｖｅ ｍｅｎｔｉｏｎｅｄ ｔｅｍｐｅｒａｔｕｒｅ
ａｎｄ ｐｅｒｉｏｄ. Ｌａｔｅｒꎬ ｔｈｅ ｍｉｃｒｏｏｒｇａｎｉｓｍ ｇｒｏｗｔｈ ｗａｓ ｒｅ￣
ｖｅａｌｅｄ ａｓ ｉｎｄｉｃａｔｅｄ ａｂｏｖｅ. Ｔｈｅ ｓｍａｌｌｅｓｔ ｃｏｎｃｅｎｔｒａｔｉｏｎ
ａｔ ｗｈｉｃｈ ｎｏ ｃｏｌｏｕｒ ｃｈａｎｇｅ ｗａｓ ｏｂｓｅｒｖｅｄ ｗａｓ ｃｏｎｓｉｄ￣
ｅｒｅｄ ａｓ ｔｈｅ ｍｉｎｉｍａｌ ｂａｃｔｅｒｉｃｉｄａｌ ｃｏｎｃｅｎｔｒａｔｉｏｎ (ＭＢＣ).
Ｔｈｅ ａｓｓａｙ ｗａｓ ｃａｒｒｉｅｄ ｏｕｔ ｉｎ ｔｒｉｐｌｉｃａｔｅ.
ＭＩＣ ｖａｌｕｅｓ ｗｅｒｅ ｄｅｔｅｒｍｉｎｅｄ ｕｓｉｎｇ ｂｒｏｔｈ ｄｉｌｕｔｉｏｎ
ｔｅｃｈｎｉｑｕｅｓ ａｓ ｄｅｓｃｒｉｂｅｄ ｂｙ ｔｈｅ Ｃｌｉｎｉｃａｌ ａｎｄ Ｌａｂｏｒａｔｏ￣
ｒｙ Ｓｔａｎｄａｒｄｓ Ｉｎｓｔｉｔｕｔｅ (ＣＬＳＩꎬ ｆｏｒｍｅｒｌｙ Ｎａｔｉｏｎａｌ Ｃｏｍ￣
ｍｉｔｔｅｅ ｆｏｒ Ｃｌｉｎｉｃａｌ ａｎｄ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｓｔａｎｄａｒｄｓ ) ｆｏｒ
８１１　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 植 物 分 类 与 资 源 学 报　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 第 ３６卷
ｙｅａｓｔｓ (Ｍ２７￣Ａ２) (ＮＣＣＬＳꎬ ２００２ａ) ａｓ ｗｅｌｌ ｆｏｒ ｆｉｌａ￣
ｍｅｎｔｏｕｓ ｆｕｎｇｉ (Ｍ３８￣Ａ) (ＮＣＣＬＳꎬ ２００２ｂ) ｉｎ ｍｉｃｒｏ￣
ｔｉｔｅｒｓ ｏｆ ９６ ｗｅｌｌｓ ｗｉｔｈ ｓｌｉｇｈｔ ｍｏｄｉｆｉｃａｔｉｏｎｓ. Ａｌｌ ｔｅｓｔｓ
ｗｅｒｅ ｐｅｒｆｏｒｍｅｄ ｉｎ Ｓａｂｏｕｒａｕｄ Ｄｅｘｔｒｏｓｅ ｂｒｏｔｈ (ＳＤＢ).
Ｔｈｅ ｔｗｏ￣ｆｏｌｄ ｓｅｒｉａｌ ｄｉｌｕｔｉｏｎ ｉｎ ｃｏｎｃｅｎｔｒａｔｉｏｎ ｏｆ ｔｈｅ ｅｓ￣
ｓｅｎｔｉａｌ ｏｉｌ (５００－３􀆰 ９ μｇ􀅰ｍＬ－１) ｗａｓ ｐｒｅｐａｒｅｄ ｉｎ Ｓａｂ￣
ｏｕｒａｕｄ Ｄｅｘｔｒｏｓｅ Ｂｒｏｔｈ (ＳＤＢ) ｆｏｒ ｙｅａｓｔ ａｎｄ ｄｅｒｍａｔｏ￣
ｐｈｙｔｅｓ. Ｔｈｅ ｃｏｎｔｅｎｔｓ ｗｅｒｅ ｉｎｃｕｂａｔｅｄ ａｔ ３７ ℃ ｆｏｒ ４８ ｈ
ｆｏｒ ｙｅａｓｔｓ ａｎｄ ａｔ ２８ ℃ ｆｏｒ ５ ｄａｙｓ ｆｏｒ ｄｅｒｍａｔｏｐｈｙｔｅｓ.
Ｔｈｅ ｍｉｎｉｍａｌ ｆｕｎｇｉｃｉｄａｌ ｃｏｎｃｅｎｔｒａｔｉｏｎ (ＭＦＣ) ｗａｓ ｒｅ￣
ｇａｒｄｅｄ ａｓ ｔｈｅ ｌｏｗｅｓｔ ｃｏｎｃｅｎｔｒａｔｉｏｎ ｏｆ ｔｅｓｔ ｓａｍｐｌｅ
ｗｈｉｃｈ ｄｉｄ ｎｏｔ ｐｒｏｄｕｃｅ ａ ｃｏｌｏｕｒ ｏｒ ｔｕｒｂｉｄｉｔｙ ｃｈａｎｇｅ.
２　 Ｒｅｓｕｌｔｓ ａｎｄ ｄｉｓｃｕｓｓｉｏｎ
２􀆰 １ 　 Ｃｈｅｍｉｃａｌ ｃｏｍｐｏｎｅｎｔｓ ｏｆ Ｌ􀆰 ｐｔｅｒｏｄｏｎｔａ ｅｓ￣
ｓｅｎｔｉａｌ ｏｉｌｓ ｆｒｏｍ ４ ｌｏｃａｔｉｏｎｓ
Ｔｈｅ ｅｓｓｅｎｔｉａｌ ｏｉｌｓ ｏｆ Ｌ􀆰 ｐｔｅｒｏｄｏｎｔａ ｗｅｒｅ ｏｂｔａｉｎｅｄ
ｆｒｏｍ ｔｈｅ ｌｅａｖｅｓ ｂｙ ｈｙｄｒｏｄｉｓｔｉｌｌａｉｏｎꎬ ａｆｆｏｒｄｉｎｇ ｙｅｌｌｏｗｉｓｈ
ｏｉｌｓ ｉｎ ０􀆰 １５％ꎬ ０􀆰 １６％ꎬ ０􀆰 １６％ꎬ ０􀆰 １６％ ｙｉｅｌｄｓꎬ ｒｅ￣
ｓｐｅｃｔｉｖｅｌｙꎬ ｆｒｏｍ ｄｒｙ ｐｌａｎｔ ｍａｔｅｒｉａｌｓ ｃｏｌｌｅｃｔｅｄ ｉｎ Ｋｕｎ￣
ｍｉｎｇ (ＫＭ)ꎬ Ｌｉｊｉａｎｇ (ＬＪ)ꎬ Ｐｕｅｒ (ＰＥ) ａｎｄ Ｘｉｎｐｉｎｇ
(ＸＰ) ｌｏｃａｔｉｏｎｓ.
ＧＣ￣ＭＳ ａｎａｌｙｓｅｓ ｌｅｄ ｔｏ ｔｈｅ ｉｄｅｎｔｉｆｉｃａｔｉｏｎ ｏｆ ３９ꎬ
３７ꎬ ３３ ａｎｄ ４４ ｃｏｍｐｏｎｅｎｔｓ ｉｎ ｔｈｅ ｅｓｓｅｎｔｉａｌ ｏｉｌ ｏｆ ４
ｌｏｃａｔｉｏｎｓꎬ ｉｄｅｎｔｉｆｉｅｄ ｂｙ ｃｏｍｐａｒｉｎｇ ｔｈｅｉｒ ＲＩ ｖａｌｕｅｓ
ｗｉｔｈ ｌｉｔｅｒａｔｕｒｅ ｖａｌｕｅｓ ( Ａｄａｍｓꎬ ２００７ ) ａｎｄ ｔｈｅｉｒ
ｍａｓｓ ｓｐｅｃｔｒａ ｗｉｔｈ ＮＩＳＴ０８ ＭＳ ｌｉｂｒａｒｙ. Ｔｈｅ ｖｏｌａｔｉｌｅ
ｃｏｎｓｔｉｔｕｅｎｔｓ ａｒｅ ｌｉｓｔｅｄ ｉｎ Ｔａｂｌｅ １ ａｃｃｏｒｄｉｎｇ ｔｏ ｔｈｅｉｒ
ｅｌｕｔｉｏｎ ｏｒｄｅｒ ｏｎ ａｎ ａｐｏｌａｒ ＨＰ￣５ ＭＳ ｃａｐｉｌｌａｒｙ ｃｏｌ￣
ｕｍｎ. Ｔｈｅ ｍａｉｎ ｃｏｎｓｔｉｔｕｅｎｔｓ ｉｎ ＫＭ ｏｉｌ ｗｅｒｅ １￣Ｍｅｔｈ￣
ｙｌ￣２ꎬ ５￣ｄｉｍｅｔｈｏｘｙ￣４￣ｉｓｏｐｒｏｐｙｌ ｂｅｎｚｅｎｅ (３６􀆰 ７５％)ꎬ
α￣ｈｕｍｕｌｅｎｅ ( １０􀆰 １２％)ꎬ β￣ｐｉｎｅｎｅ ( ９􀆰 ９７％)ꎬ γ￣
Ｅｕｄｅｓｍｏｌ ( ８􀆰 ９９％)ꎬ β￣ｃａｒｙｏｐｈｙｌｌｅｎｅ ( ５􀆰 ６４％).
ＸＰ ｏｉｌ ｓｈｏｗｅｄ ａ ｄｉｆｆｅｒｅｎｔ ｃｏｍｐｏｓｉｔｉｏｎꎬ ｓｉｎｃｅ β￣ｐｉ￣
ｎｅｎｅ (３０􀆰 ４２％)ꎬ α￣ｈｕｍｕｌｅｎｅ (９􀆰 ８９％)ꎬ δ￣ｔｅｒｐｉｎ￣
ｅｏｌ (７􀆰 ９５％) ａｎｄ β￣ｂｉｓａｂｏｌｅｎｅ (５􀆰 １８％) ｗｅｒｅ ｔｈｅ
ｍａｉｎ ｃｏｎｓｔｉｔｕｅｎｔｓ. Ｔｈｅ ＬＪ ａｎｄ ＰＥ ｏｉｌｓ ｗｅｒｅ ｄｏｍｉｎａ￣
ｔｅｄ ｂｙ ｓｅｓｑｕｉｔｅｒｐｅｎｅｓ ａｎｄ ｓｅｓｑｕｉｔｅｒｐｅｎｅｓ ｏｘｉｄｅ ｃｏｍ￣
ｐｏｎｅｎｔｓꎬ ｗｉｔｈ β￣Ｃａｒｙｏｐｈｙｌｌｅｎｅ ( ＬＪ １６􀆰 ０８％ꎬ ＰＥ
３２􀆰 ７１％) ａｎｄ γ￣Ｅｕｄｅｓｍｏｌ (ＬＪ ２０􀆰 ３２％ꎬ ＰＥ １９􀆰 ３７％)
ｗｅｒｅ ｔｈｅ ｍａｊｏｒ ｃｏｎｓｔｉｔｕｅｎｔｓ. Ｔｈｅ ｔｏｔａｌ ｉｄｅｎｔｉｆｉｅｄ ｃｏｍ￣
ｐｏｕｎｄｓ ｆｒｏｍ ｔｈｅ ４ ｅｓｓｅｎｔｉａｌ ｏｉｌ ｓａｍｐｌｅｓ ａｍｏｕｎｔｅｄ ｔｏ
ＫＭ ９３􀆰 ３２％ꎬ ＬＪ ８０􀆰 ５７％ꎬ ＰＥ ９２􀆰 ２４％ ａｎｄ ＸＰ
９３􀆰 ８５％ ｏｆ ｔｈｅ ｔｏｔａｌ ｏｉｌ ｃｏｍｐｏｓｉｔｉｏｎ.
Ｔａｂｌｅ １　 Ｃｈｅｍｉｃａｌ ｃｏｍｐｏｓｉｔｉｏｎ ｏｆ ｔｈｅ ｅｓｓｅｎｔｉａｌ ｏｉｌｓ ｏｂｔａｉｎｅｄ ｆｒｏｍ Ｌａｇｇｅｒａ ｐｔｅｒｏｄｏｎｔａ ｃｏｌｌｅｃｔｅｄ ｉｎ ４ ｌｏｃａｔｉｏｎｓ
Ｃｏｍｐｏｕｎｄ ｎａｍｅ ＲＩ１ ａ)
Ｐｅａｋ ａｒｅａ / ％
Ｋｕｎｍｉｎｇ Ｌｉｊｉａｎｇ Ｐｕｅｒ Ｘｉｎｐｉｎｇ
Ｃｏｍｐｏｕｎｄ ｎａｍｅ ＲＩ１ ａ)
Ｐｅａｋ ａｒｅａ / ％
Ｋｕｎｍｉｎｇ Ｌｉｊｉａｎｇ Ｐｕｅｒ Ｘｉｎｐｉｎｇ
Ｔｒｉｃｙｃｌｅｎｅ ９２６ ￣ ￣ ￣ ０􀆰 ４７ ３￣ｍｅｔｈｙｌｅｎｅ￣
α￣Ｐｉｎｅｎｅ ９３３ ￣ ￣ ￣ ０􀆰 ５６ Ｅｔｈａｎｏｎｅꎬ １￣(１ꎬ １１２２ ￣ ０􀆰 ３９ ￣ ￣
β￣Ｐｉｎｅｎｅ ９７５ ９􀆰 ９７ ￣ ￣ ３０􀆰 ４２　 ４￣ｄｉｍｅｔｈｙｌ￣３￣
３￣Ｏｃｔａｎｏｎｅ ９８４ ０􀆰 ２３ ￣ ￣ ￣ ｃｙｃｌｏｈｅｘｅｎ￣１￣ｙｌ)￣
Ｍｙｒｃｅｎｅ ９８９ ０􀆰 ６３ ￣ ￣ １􀆰 ０６ ｍ￣Ｍｅｔｈｙｌａｃｅｔｏｐｈｅｎｏｎｅ １１３３ ￣ ０􀆰 ２０ ￣ ￣
α￣Ｐｈｅｌｌａｎｄｒｅｎｅ １００４ ０􀆰 ４８ ￣ ￣ ０􀆰 ２２ １￣Ｍｅｔｈｙｌ￣２￣ ｍｅｔｈｙｌｅｎｅ￣３ꎬ １１５９ ￣ ￣ ￣ ０􀆰 ３３
α￣Ｔｅｒｐｉｎｅｎｅ １０１６ ０􀆰 ８８ ￣ ￣ １􀆰 ３８ ５￣ｄｉｖｉｎｙｌｃｙｃｌｏｈｅｘａｎｅ
ｏ￣Ｃｙｍｅｎｅ １０２４ ０􀆰 ６１ ￣ ￣ ０􀆰 １５ Ｔｒｉｃｙｃｌｏ[５􀆰 ２􀆰 １􀆰 ０(２ꎬ６)] １１６２ １􀆰 ０３ ￣ ￣ ￣
β￣Ｐｈｅｌｌａｎｄｒｅｎｅ １０２９ ０􀆰 １７ ￣ ￣ ０􀆰 ２３ ｄｅｃ￣３￣ｅｎｅꎬ ４￣ｅｔｈｙｌ￣
１ꎬ ８￣Ｃｉｎｅｏｌ １０３３ １􀆰 １１ ０􀆰 １９ ￣ ０􀆰 ８７ δ￣Ｔｅｒｐｉｎｅｏｌ １１６３ ￣ ７􀆰 ３８ ０􀆰 ３９ ７􀆰 ９５
Ｂｅｎｚｅｎｅａｃｅｔａｌｄｅｈｙｄｅ １０４４ ０􀆰 ２８ ￣ ￣ ￣ ３ꎬ ６￣Ｄｉｍｅｔｈｙｌ￣２ꎬ １１７０ ￣ ０􀆰 ２８ ￣ ￣
Ｏｃｉｍｅｎｅ １０４６ ０􀆰 ０９ ￣ ￣ ２􀆰 ６３ ３ꎬ ３ａꎬ ４ꎬ ５ꎬ ７α￣
γ￣Ｔｅｒｐｉｎｅｎｅ １０５８ ２􀆰 １２ １􀆰 ３３ ０􀆰 ０３ ２􀆰 ５５ ｈｅｘａｈｙｄｒｏｂｅｎｚｏｆｕｒａｎ
Ｔｅｒｐｉｎｏｌｅｎｅ １０８８ ０􀆰 ５４ ２􀆰 ５５ ￣ ０􀆰 ５９ Ｔｅｒｐｉｎｅｎ￣４￣ｏｌ １１８１ ３􀆰 ６０ ￣ ￣ ￣
３ꎬ ４￣ｄｉｍｅｔｈｙｌ￣２ꎬ ４ꎬ １０９８ ￣ ￣ ￣ １􀆰 ６３ α￣Ｔｅｒｐｉｎｅｏｌ １１９３ ０􀆰 ２６ ０􀆰 ５３ ０􀆰 １１ ２􀆰 ７６
６￣Ｏｃｔａｔｒｉｅｎｅ Ｍｅｔｈｙｌ ｓａｌｉｃｙｌａｔｅ １１９７ ０􀆰 ２１ ￣ ￣ ￣
Ｎｏｎａｎａｌ １１０１ ￣ ￣ ０􀆰 ０４ ￣ Ｍｙｒｔｅｎｏｌ １２０１ ￣ ０􀆰 ２９ ￣ ￣
２￣Ｎｏｎｅｎ￣１￣ｏｌ １１０３ ０􀆰 ２７ ￣ ￣ ￣ ｎｅｏｉｓｏ￣Ｍｅｎｔｈｏｌ １２０７ ￣ ￣ ０􀆰 ０３ ０􀆰 １６
Ｃｙｃｌｏｈｅｘａｎｅꎬ ２￣ １１１５ ０􀆰 ２１ ￣ ￣ ￣ ｔｒａｎｓ￣Ｃａｒｖｅｏｌ １２１２ ￣ ０􀆰 ２６ ￣ ￣
ｅｔｈｅｎｙｌ￣１ꎬ １￣ｄｉｍｅｔｈｙｌ￣ ｐ￣Ｍｅｎｔｈａ￣６ꎬ ８￣ ｄｉｅｎ￣２￣ ｏｎｅ １２２７ ￣ ０􀆰 ４２ ￣ ￣
９１１１期　 　 ＧＵ Ｊｉａｎ￣Ｌｏｎｇ ｅｔ ａｌ.: Ｃｈｅｍｉｃａｌ Ｃｏｍｐｏｓｉｔｉｏｎ ａｎｄ Ａｎｔｉｍｉｃｒｏｂｉａｌ Ａｃｔｉｖｉｔｉｅｓ ｏｆ Ｅｓｓｅｎｔｉａｌ Ｏｉｌｓ ｏｆ Ｌａｇｇｅｒａ ｐｔｅｒｏｄｏｎｔａ 􀆺　 　
Ｔａｂｌｅ １ ｃｏｎｔｉｎｕｅｄ
Ｃｏｍｐｏｕｎｄ ｎａｍｅ ＲＩ１ ａ)
Ｐｅａｋ ａｒｅａ / ％
Ｋｕｎｍｉｎｇ Ｌｉｊｉａｎｇ Ｐｕｅｒ Ｘｉｎｐｉｎｇ
Ｃｏｍｐｏｕｎｄ ｎａｍｅ ＲＩ１ ａ)
Ｐｅａｋ ａｒｅａ / ％
Ｋｕｎｍｉｎｇ Ｌｉｊｉａｎｇ Ｐｕｅｒ Ｘｉｎｐｉｎｇ
Ｍｅｔｈｙｌ ｔｈｙｍｙｌ ｅｔｈｅｒ １２３３ ０􀆰 ３３ ￣ ０􀆰 ０６ ￣ (＋)￣Ｅｐｉ￣ｂｉｃｙｃｌｏｓｅｓ￣ １５３１ ０􀆰 ３１ ￣ ￣ ￣
１￣ｍｅｔｈｏｘｙ￣４￣ｍｅｔｈｙｌ￣ １２４２ ０􀆰 １２ ￣ ０􀆰 ０３ ￣ ｑｕｉｐｈｅｌｌａｎｄｒｅｎｅ
２￣(１￣ｍｅｔｈｙｌｅｔｈｙｌ)￣ Ｗｉｅｌａｎｄ￣Ｍｉｃｈｌｅｒ ｋｅｔｏｎｅ １５３１ ￣ ３􀆰 ７１ ￣ ￣
Ｂｅｎｚｅｎｅｖ Ｅｕｄｅｓｍａ￣３ꎬ ７(１１)￣ｄｉｅｎｅ １５４３ ￣ ￣ ０􀆰 １２ ￣
６ꎬ ７￣Ｄｉｍｅｔｈｙｌ￣１ꎬ ２ꎬ １２７１ ￣ １􀆰 ７７ ￣ ￣ Ｅｌｅｍｏｌ １５５３ ￣ ￣ ￣ ０􀆰 ２６
３ꎬ ５ꎬ ８ꎬ ８α￣ Ｇｅｒｍａｃｒｅｎｅ Ｂ １５５７ ０􀆰 １６ ￣ ０􀆰 ６２ １􀆰 ０５
ｈｅｘａｈｙｄｒｏｎａｐｈｔｈａｌｅｎｅ Ｓｐａｔｈｕｌｅｎｏｌ １５６９ ￣ ０􀆰 ７３ ￣ ￣
Ｌａｖａｎｄｕｌｙｌ ａｃｅｔａｔｅ １２８６ ￣ ￣ ￣ ０􀆰 １０ Ｃａｒｙｏｐｈｙｌｌｅｎｅ ｏｘｉｄｅ １５９４ ０􀆰 ６５ ３􀆰 ８３ ２􀆰 ９９ １􀆰 ６４
Ｃａｒｖａｃｒｏｌ １２９０ ０􀆰 ０７ ￣ ￣ ￣ ２￣Ｎａｐｈｔｈａｌｅｎｅｍｅｔｈａｎｏｌ １５９８ ￣ ０􀆰 ６８ ￣ ￣
Ｅｕｇｅｎｏｌ １３４０ ０􀆰 ３０ １􀆰 ０４ ０􀆰 ０６ ０􀆰 １６ Ｈｕｍｕｌｅｎｅ ｅｐｏｘｉｄｅ ＩＩ １６０２ ￣ ３􀆰 ２１ ￣ ￣
３￣ Ａｌｌｙｌ￣６￣ ｍｅｔｈｏｘｙｐｈｅｎｏｌ １３５３ ￣ ０􀆰 ６５ ￣ ￣ γ￣Ｅｕｄｅｓｍｏｌ １６１６ ８􀆰 ９９ ２０􀆰 ３２　 １９􀆰 ３７　 ￣
Ｃｏｐａｅｎｅ １３８０ ￣ ￣ ０􀆰 １４ １􀆰 １７ Ｃｅｄｒｅｌａｎｏｌ １６３２ ￣ ０􀆰 ７３ ￣ ０􀆰 ２０
β￣Ｅｌｅｍｅｎｅ １３８７ ０􀆰 ５９ ￣ ０􀆰 ０５ ０􀆰 ２３ α￣Ｅｕｄｅｓｍｏｌ １６３８ ０􀆰 １２ ２􀆰 ７７ ０􀆰 ７９ ￣
β￣Ｂｏｕｒｂｏｎｅｎｅ １３９４ ０􀆰 ０８ ￣ ￣ ￣ ｐ￣Ｈｅｘｙｌａｃｅｔｏｐｈｅｎｏｎｅ １６４０ ￣ ￣ ０􀆰 ４６ ０􀆰 ３２
β￣Ｃｏｐａｅｎｅ １３９５ ￣ ￣ １􀆰 ０８ ３􀆰 ９３ Ｅｕｄｅｓｍ￣４(１４)￣ｅｎ￣１１￣ｏｌ １６４４ ￣ ０􀆰 ３８ ￣ ￣
α￣Ｃｅｄｒｅｎｅ １４０６ ￣ ￣ ￣ ０􀆰 ２９ Ｔｏｒｒｅｙｏｌ １６４９ ￣ ￣ ０􀆰 ４３ ￣
２￣Ａｌｌｙｌ￣１ꎬ ４￣ｄｉｍｅｔｈｏｘｙ￣ １４２５ ￣ ０􀆰 ３７ ￣ ￣ Ｖａｌｅｒｉａｎｏｌ １６５６ ￣ ￣ ２􀆰 ３２ ０􀆰 １３
３￣ｍｅｔｈｙｌ￣ｂｅｎｚｅｎｅ Ｌｅｄｅｎｅ ｏｘｉｄｅ￣(ＩＩ)∗ １６６１ ￣ ０􀆰 ４６ ￣ ￣
β￣Ｃａｒｙｏｐｈｙｌｌｅｎｅ １４２９ ５􀆰 ６４ １６􀆰 ０８　 ３２􀆰 ７１　 ３􀆰 ７７ Ｃｕｂｅｎｏｌ １６６１ ￣ ￣ ０􀆰 ５２ ￣
１￣Ｍｅｔｈｙｌ￣２ꎬ ５￣ １４３１ ３６􀆰 ７５　 ２􀆰 ９４ １１􀆰 ２７　 ￣ β￣Ｂｉｓａｂｏｌｏｌ １６７２ ２􀆰 ５１ ３􀆰 ０８ ３􀆰 ９３ １􀆰 ３２
ｄｉｍｅｔｈｏｘｙ￣４￣ Ｃａｄａｌｅｎｅ １６８３ ￣ ￣ ０􀆰 ０８ ￣
ｉｓｏｐｒｏｐｙｌ ｂｅｎｚｅｎｅ α￣Ｂｉｓａｂｏｌｏｌ １６９０ ￣ ￣ ０􀆰 ０４ ２􀆰 ０９
Ａｒｏｍａｄｅｎｄｒｅｎｅ １４３７ ￣ ０􀆰 １５ ￣ ￣ Ｇｕａｉａｃ ａｃｅｔａｔｅ １７１０ ￣ ￣ ４􀆰 ４１ ￣
ｔｒａｎｓ￣α￣Ｂｅｒｇａｍｏｔｅｎｅ １４３９ ￣ ￣ ￣ １􀆰 ４４ ６￣Ｉｓｏｐｒｏｐｅｎｙｌ￣４ꎬ ８α￣ １７２２ ￣ ０􀆰 ２４ ０􀆰 ２３ ￣
ｔｒａｎｓ￣Ｇｅｒａｎｙｌａｃｅｔｏｎｅ １４５１ ￣ ￣ ￣ ０􀆰 ４２ ｄｉｍｅｔｈｙｌ￣１ꎬ ２ꎬ ３ꎬ ５ꎬ ６ꎬ
(６Ｚ)￣７ꎬ １１￣Ｄｉｍｅｔｈｙｌ￣ １４５５ ￣ ￣ ￣ ０􀆰 ４８ ７ꎬ ８ꎬ ８α￣ｏｃｔａｈｙｄｒｏ￣
３￣ｍｅｔｈｙｌｅｎｅ￣１ꎬ ６ꎬ ｎａｐｈｔｈａｌｅｎ￣２￣ｏｌ
１０￣ｄｏｄｅｃａｔｒｉｅｎｅ ２￣(４αꎬ８￣Ｄｉｍｅｔｈｙｌ￣ １７７１ ￣ ０􀆰 ７２ ￣ ￣
β￣Ｓａｎｔａｌｅｎｅ １４５７ ０􀆰 １５ ￣ ￣ ￣ １ꎬ ２ꎬ ３ꎬ ４ꎬ ４αꎬ ５ꎬ
α￣Ｈｕｍｕｌｅｎｅ １４６６ １０􀆰 １２　 １􀆰 ４８ ８􀆰 ３５ ９􀆰 ８９ ６ꎬ ７￣ｏｃｔａｈｙｄｒｏ￣
Ｅｕｄｅｓｍａ￣４(１４)ꎬ １４７６ ￣ ０􀆰 ２０ ￣ ￣ ｎａｐｈｔｈａｌｅｎ￣２￣ｙｌ)￣
１１￣ｄｉｅｎｅ ｐｒｏｐ￣２￣ｅｎ￣１￣ｏｌ
２￣Ｉｓｏｐｒｏｐｅｎｙｌ￣４αꎬ ８￣ １４８１ ￣ ￣ ０􀆰 １２ ０􀆰 ５５ Ｈｅｘａｈｙｄｒｏｆａｒｎｅｓｙｌ １８２１ ￣ ０􀆰 ４５ ￣ ￣
ｄｉｍｅｔｈｙｌ￣１ꎬ ２ꎬ ３ꎬ ４ꎬ ａｃｅｔｏｎｅ
４ａꎬ ５ꎬ ６ꎬ ７￣ｏｃｔａｈｙｄ￣ (￣)￣Ｉｓｏｌｏｎｇｉｆｏｌｏｌꎬ １８３７ ０􀆰 ９６ ￣ ￣ ￣
ｒｏｎａｐｈｔｈａｌｅｎｅ ａｃｅｔａｔｅ
β￣Ｉｏｎｏｎｅ １４９１ ￣ ０􀆰 ３２ ￣ ￣ Ｐｈｙｔｏｌ ２０８８ ￣ ０􀆰 ２３ ￣ ￣　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　
Ｅｒｅｍｏｐｈｉｌｅｎｅ １４９１ ￣ ￣ ０􀆰 ２４ ２􀆰 ０２ Ｔｏｔａｌ ９３􀆰 ３２　 ８０􀆰 ５６　 ９２􀆰 ２３　 ９３􀆰 ８５　　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　
α￣Ｍｕｕｒｏｌｅｎｅ １４９２ ０􀆰 ８７ ￣ ０􀆰 ４０ ０􀆰 ４８ Ｍｏｎｏｔｅｒｐｅｎｅ １６􀆰 ７３　 ３􀆰 ８８ ０􀆰 ０３ ４２􀆰 ２３　
α￣Ｃｈａｍｉｇｒｅｎ １４９５ ０􀆰 ２７ ￣ ￣ ￣ ｈｙｄｒｏｃａｒｂｏｎｓ
(￣)￣Ｚｉｎｇｉｂｅｒｅｎｅ １４９６ ￣ ￣ ￣ ０􀆰 ３７ Ｏｘｙｇｅｎａｔｅｄ ５􀆰 ４７ １０􀆰 ２５　 ０􀆰 ５６ １２􀆰 ２５　
α￣Ｓｅｌｉｎｅｎｅ １４９８ ０􀆰 １５ ￣ ０􀆰 ４４ ０􀆰 ４５ ｍｏｎｏｔｅｒｐｅｎｅｓ
Ｖａｌｅｎｃｅｎｅ １５００ ￣ ￣ ￣ １􀆰 ０８ Ｓｅｓｑｕｉｔｅｒｐｅｎｅ １８􀆰 ３４　 １９􀆰 ８９　 ４４􀆰 ６５　 ３３􀆰 ２５　
Ｃａｄｉｎａ￣１(１０)ꎬ ４￣ｄｉｅｎｅ １５０９ ￣ ０􀆰 ２１ ￣ ￣ ｈｙｄｒｏｃａｒｂｏｎｓ
β￣Ｂｉｓａｂｏｌｅｎｅ １５１２ ￣ ￣ ￣ ５􀆰 １８ Ｏｘｙｇｅｎａｔｅｄ １４􀆰 ７２　 ４０􀆰 ８５　 ３５􀆰 １１　 ５􀆰 ６２
Ｉｓｏｌｏｎｇｉｆｏｌａｎ￣８￣ｏｌ １５１６ １􀆰 ４９ ￣ ￣ ￣ ｓｅｓｑｕｉｔｅｒｐｅｎｅｓ
Ｃａｄｉｎａ￣３ꎬ ９￣ｄｉｅｎｅ １５２７ ￣ ￣ ０􀆰 ３８ ０􀆰 ８７ Ｐｈｅｎｏｌｉｃ ｅｔｈｅｒ ３８􀆰 ０６　 ５􀆰 ６９ １１􀆰 ８８　 ０􀆰 ４８
ａ) ＲＩ: Ｒｅｔｅｎｔｉｏｎ ｉｎｄｉｃｅｓ ｄｅｔｅｒｍｉｎｅｄ ｒｅｌａｔｉｖｅ ｔｏ ｎ￣ａｌｋａｎｅｓ (Ｃ７－Ｃ３０) ｏｎ ａ ＨＰ￣５ ＭＳ ｃｏｌｕｍｎ
０２１　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 植 物 分 类 与 资 源 学 报　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 第 ３６卷
２􀆰 ２　 Ａｎｔｉｍｉｃｒｏｂｉａｌ ａｃｔｉｖｉｔｉｅｓ ｏｆ Ｌ􀆰 ｐｔｅｒｏｄｏｎｔａ ｅｓ￣
ｓｅｎｔｉａｌ ｏｉｌｓ ｆｒｏｍ ４ ｌｏｃａｔｉｏｎｓ
Ｔｈｅ ｅｓｓｅｎｔｉａｌ ｏｉｌｓ ｗｅｒｅ ｔｅｓｔｅｄ ａｇａｉｎｓｔ ｓｅｖｅｒａｌ
ｂａｃｔｅｒｉａｌ ａｎｄ ｆｕｎｇａｌ ｓｔｒａｉｎｓꎬ ａｎｄ ｔｈｅ ｒｅｓｕｌｔｓ ａｒｅ ｓｕｍ￣
ｍａｒｉｚｅｄ ｉｎ Ｔａｂｌｅｓ ２ ａｎｄ ３. Ｔｈｅ ａｎｔｉｍｉｃｒｏｂｉａｌ ａｃｔｉｖｉ￣
ｔｉｅｓ ｗｅｒｅ ｅｖａｌｕａｔｅｄ ｂｙ ｂｒｏｔｈ ｍｉｃｒｏｄｉｌｕｔｉｏｎ ｍｅｔｈｏｄ ｏｎ
ｔｈｅ ｂａｓｉｓ ｏｆ ｍｉｎｉｍｕｍ ｉｎｈｉｂｉｔｏｒｙ ｃｏｎｃｅｎｔｒａｔｉｏｎ (ＭＩＣ)
ａｎｄ ｍｉｎｉｍｕｍ ｂａｃｔｅｒｉｃｉｄａｌ ｃｏｎｃｅｎｔｒａｔｉｏｎ (ＭＢＣ) ｏｒ
ｍｉｎｉｍａｌ ｆｕｎｇｉｃｉｄａｌ ｃｏｎｃｅｎｔｒａｔｉｏｎ (ＭＦＣ).
Ｔｈｅ ｄｉｆｆｅｒｅｎｔ ｃｏｍｐｏｓｉｔｉｏｎｓ ｏｆ ｔｈｅ ４ ｅｓｓｅｎｔｉａｌ ｏｉｌｓ
ａｒｅ ｌｉｋｅｌｙ ｒｅｓｐｏｎｓｉｂｌｅ ｆｏｒ ｔｈｅ ｄｉｆｆｅｒｅｎｔ ａｃｔｉｖｉｔｉｅｓ
ｆｏｕｎｄ ａｇａｉｎｓｔ ｂａｃｔｅｒｉａ ａｎｄ ｆｕｎｇｉ. Ｔｈｅ ＫＭꎬ ＬＪ ａｎｄ
ＰＥ ｓａｍｐｌｅｓ ｈａｖｅ ｍｏｄｅｒａｔｅ ａｃｔｉｖｉｔｙ ｏｎ ｓｏｍｅ ｇｒａｍ￣
ｎｅｇａｔｉｖｅ ｂａｃｔｅｒｉｕｍꎬ ｓｕｃｈ ａｓ Ｐｓｅｕｄｏｍｏｎａｓ ａｅｒｕｇｉｎｏ￣
ｓａ (ＭＩＣ ＝ ５００ μｇ􀅰ｍＬ－１)ꎬ Ｅｓｃｈｅｒｉｃｈｉａ ｃｏｌｉ (ＭＩＣ
２５０ μｇ􀅰ｍＬ－１)ꎬ ａｎｄ Ｅｎｔｅｒｏｂａｃｔｅｒ ａｅｒｏｇｅｎｅｓ (ＭＩＣ ＝
１２５ μｇ􀅰ｍＬ－１ ｔｏ ２５０ μｇ􀅰ｍＬ－１). Ｈｏｗｅｖｅｒꎬ ＸＰ ｅｓ￣
ｓｅｎｔｉａｌ ｏｉｌ ｗａｓ ｌｅｓｓ ｓｅｎｓｉｔｉｖｅ ｔｏ ｍｏｓｔ ｏｆ ｂａｃｔｅｒｉａ
ｓｔｒａｉｎｓ ｔｈａｎ ｔｈｅ ｏｔｈｅｒ ｔｈｒｅｅ ｓａｍｐｌｅｓ ｗｅ ｔｅｓｔｅｄ. ＸＰ ｏｉｌ
ｈａｄ ｏｎｌｙ ｗｅａｋ ｉｎｈｉｂｉｔｏｒｙ ａｃｔｉｖｉｔｉｅｓ ａｇａｉｎｓｔ ｓｏｍｅ ｆｕｎ￣
ｇａｌ ｓｔｒａｉｎｓ (Ｔａｂｌｅ ３).
Ｔｈｅ ａｎｔｉｍｉｃｒｏｂｉａｌ ａｃｔｉｖｉｔｙ ｍａｙ ｂｅ ｒｅｌａｔｅｄ ｔｏ ｔｈｅ
ｐｒｅｓｅｎｃｅ ｏｆ ｃｏｎｓｔｉｔｕｅｎｔｓ ｌｉｋｅ ｃａｒｙｏｐｈｙｌｌｅｎｅ ｗｈｉｃｈ ｉｓ
ｋｎｏｗｎ ｔｏ ｐｏｓｓｅｓ ａｃｔｉｖｉｔｙ ａｇａｉｎｓｔ Ｓｔａｐｈｙｌｏｃｏｃｃｕｓ ａｕ￣
ｒｅｕｓꎬ Ｃａｎｄｉｄａ ａｌｂｉｃａｎ ( Ｓｕ ａｎｄ Ｈｏꎬ ２０１２)ꎻ β￣Ｐｉ￣
ｎｅｎｅꎬ ｗｈｉｃｈ ｉｓ ｋｎｏｗｎ ｔｏ ｈａｖｅ ａｎｔｉｂａｃｔｅｒｉａｌ ａｃｔｉｖｉｔｙ
ｏｎ Ｅｎｔｅｒｏｃｏｃｃｕｓ ｆａｅｃａｌｉｓꎬ Ｅｓｃｈｅｒｉｃｈｉａ ｃｏｌｉꎬ Ｐｓｅｕｄｏ￣
ｍｏｎａｓ ａｅｒｕｇｉｎｏｓａꎬ Ｓｔａｐｈｙｌｏｃｏｃｃｕｓ ａｕｒｅｕｓ ( Ｄｏｒｍａｎ
ａｎｄ Ｄｅａｎｓꎬ ２００８ )ꎻ ａｎｄ γ￣Ｅｕｄｅｓｍｏｌꎬ ｗｈｉｃｈ ｉｓ
ｋｎｏｗｎ ｔｏ ｈａｖｅ ａｎｔｉｍｉｃｒｏｂｉａｌ ａｃｔｉｖｉｔｙ ａｇａｉｎｓｔ Ｐｓｅｕｄｏ￣
ｍｏｎａｓ ａｅｒｕｇｉｎｏｓａꎬ Ｓｔａｐｈｙｌｏｃｏｃｃｕｓ ａｕｒｅｕｓ ａｎｄ Ｃａｎｄｉ￣
ｄａ ａｌｂｉｃａｎｓ (Ｃｏｓｔａ ｅｔ ａｌ.ꎬ ２００８). Ｃａｒｙｏｐｈｙｌｌｅｎｅ ｏｘ￣
ｉｄｅ ａｎｄ ｔｅｒｐｉｎｅｎ￣４￣ｏｌ ｗｅｒｅ ａｌｓｏ ｒｅｐｏｒｔｅｄ ｈａｖｉｎｇ ｇｏｏｄ
ｅｆｆｅｃｔ ｏｎ Ｅｎｔｅｒｏｂａｃｔｅｒ ａｅｒｏｇｅｎｅｓ (Ｄｏｒｍａｎ ａｎｄ Ｄｅａｎｓꎬ
２００８ꎬ Ｓｋａｌｔｓａ ｅｔ ａｌ.ꎬ ２００３). Ａｌｌ ｔｈｅ ｔｅｓｔｅｄ ｅｓｓｅｎｔｉａｌ
ｏｉｌｓ ｈａｖｅ ｓｔｒｏｎｇ ａｃｔｉｖｉｔｙ ａｇａｉｎｓｔ Ｅｎｔｅｒｏｂａｃｔｅｒ ａｅｒｏ￣
ｇｅｎｅｓ (１２５ μｇ􀅰ｍＬ－１ ｔｏ ２５０ μｇ􀅰ｍＬ－１) ｗｈｉｃｈ ｉｎｄｉ￣
ｃａｔｅｓ ｓｏｍｅ ｏｆ ｔｈｅ ｓａｍｅ ｃｏｍｐｏｎｅｎｔｓ ｐｒｅｓｅｎｔｅｄ ｉｎ ｔｈｅ
４ ｏｉｌｓ ｗｅｒｅ ｒｅｌａｔｅ ｔｏ ｔｈｅｉｒ ａｎｔｉｂａｃｔｅｒｉａｌ ａｃｔｉｖｉｔｉｅｓ ｏｆ
ｔｈｅ ｂａｃｔｅｒｉａ.
Ｔａｂｌｅ ２　 Ａｎｔｉｂａｃｔｅｒｉａｌ ａｃｔｉｖｉｔｉｅｓ ｏｆ ｔｈｅ ｅｓｓｅｎｔｉａｌ ｏｉｌｓ ｏｂｔａｉｎｅｄ ｆｒｏｍ Ｌａｇｇｅｒａ ｐｔｅｒｏｄｏｎｔａ ｃｏｌｌｅｃｔｅｄ ｉｎ ４ ｌｏｃａｔｉｏｎｓ
Ｍｉｃｒｏｏｒｇａｎｉｍｓ ａｎｄ Ｓｏｕｒｃｅ Ｎｏ.
ＥＯ Ｋｕｎｍｉｎｇ
ＭＩＣ ＭＢＣ
ＥＯ Ｌｉｊｉａｎｇ
ＭＩＣ ＭＢＣ
ＥＯ Ｐｕｅｒ
ＭＩＣ ＭＢＣ
ＥＯ Ｘｉｎｐｉｎｇ
ＭＩＣ ＭＢＣ
Ｒｉｆａｍｐｉｃｉｎ
ＭＩＣ ＭＢＣ
Ｐｓｅｕｄｏｍｏｎａｓ ａｅｒｕｇｉｎｏｓａ ＡＴＣＣ ２７８５３ ５００ >５００ ５００ >５００ ５００ >５００ ５００ >５００ ２５　 　 ５０　 　
Ｅｓｃｈｅｒｉｃｈｉａ ｃｏｌｉ ＡＴＣＣ ８７３９ ５００ >５００ ５００ >５００ ５００ >５００ ５００ >５００ ０.０９ ６.２５
Ｅｓｃｈｅｒｉｃｈｉａ ｃｏｌｉ ＡＴＣＣ １０５３６ ２５０ >５００ ２５０ >５００ ２５０ >５００ >５００ >５００ ０.１９ ０.７８
Ｅｓｃｈｅｒｉｃｈｉａ ｃｏｌｉ ＡＴＣＣ １１７７５ >５００ >５００ >５００ >５００ >５００ >５００ >５００ >５００ ０.３９ １.５６
Ｅｎｔｅｒｏｃｏｃｕｓ ｆａｅｃａｌｉｓ ＡＴＣＣ１０５４１ ５００ >５００ ５００ >５００ ５００ >５００ >５００ >５００ ０.１９ １.５６
Ｓｔａｐｈｙｌｏｃｏｃｃｕｓ ａｕｒｅｕｓ ＡＴＣＣ ２５９２２ >５００ >５００ >５００ >５００ ５００ >５００ >５００ >５００ ０.１９ ０.７８
Ｅｎｔｅｒｏｂａｃｔｅｒ ａｅｒｏｇｅｎｅ ＡＴＣＣ １３０４８ １２５ ２５０ ２５０ ２５０ １２５ １２５ １２５ １２５ ０.１９ ０.１９
Ｐｒｏｖｉｄｅｎｃｉａ ｓｔｕａｒｔｉｉ ＡＴＣＣ ２９９１６ >５００ >５００ ５００ >５００ >５００ >５００ >５００ >５００ ０.０９ ０.１９
Ｓａｌｍｏｎｅｌｌａ ｔｙｐｈｉ ＡＴＣＣ ６５３９ ５００ >５００ ５００ ５００ ２５０ ５００ ５００ >５００ ０.０９ ６.２５
Ｔａｂｌｅ ３　 Ａｎｔｉｆｕｎｇａｌ ａｃｔｉｖｉｔｉｅｓ ｏｆ ｔｈｅ ｅｓｓｅｎｔｉａｌ ｏｉｌｓ ｏｂｔａｉｎｅｄ ｆｒｏｍ Ｌａｇｇｅｒａ ｐｔｅｒｏｄｏｎｔａ ｃｏｌｌｅｃｔｅｄ ｉｎ ４ ｌｏｃａｔｉｏｎｓ
Ｍｉｃｒｏｏｇａｎｉｓｍｓ
ＥＯ Ｋｕｎｍｉｎｇ
ＭＩＣ ＭＦＣ
ＥＯ Ｌｉｊｉａｎｇ
ＭＩＣ ＭＦＣ
ＥＯ Ｐｕｅｒ
ＭＩＣ ＭＦＣ
ＥＯ Ｘｉｎｐｉｎｇ
ＭＩＣ ＭＦＣ
ａｍｐｈｏｔｅｒｉｃｉｎ Ｂ
ＭＩＣ ＭＦＣ
Ｔｒｉｃｈｏｐｈｙｔｏｎ ａｊｅｌｏｉ (Ｅ １５０１) ２５０ ５００ ２５０ ２５０ ２５０ ５００ ２５０ ２５０ ２５　 　 ５０　 　
Ｔｒｉｃｈｏｐｈｙｔｏｎ ｔｅｒｒｅｓｔｒｅ ５００ ５００ ２５０ ５００ ２５０ ５００ ５００ ５００ ６.２５ ５０　 　
Ｃａｎｄｉｄａ ａｌｂｉｃａｎｓ (ＡＴＣＣ １６６３) >５００　 >５００　 >５００　 ２５　 　 >５０　 　
Ｃａｎｄｉｄａ ｇｌａｂｒａｔａ (ＣＩＰ ３５) ２５０ ２５０ １２５ １２５ ２５０ ２５０ ２５０ ２５０ １.５６ １２.５　
Ｃａｎｄｉｄａ ｇｕｉｌｉｍｏｎｄｉｉ ２５０ ２５０ １２５ １２５ ２５０ ２５０ ２５０ ２５０ ６.２５ １２.５０
Ｃｒｙｐｔｏｃｏｃｃｕｓ ｎｅｏｆｏｒｍａｎｓ (ＣＩＰ９５０２６) ２５０ ２５０ ２５０ ２５０ ２５０ ２５０ ２５０ ５００ １.５６ １２.５０
１２１１期　 　 ＧＵ Ｊｉａｎ￣Ｌｏｎｇ ｅｔ ａｌ.: Ｃｈｅｍｉｃａｌ Ｃｏｍｐｏｓｉｔｉｏｎ ａｎｄ Ａｎｔｉｍｉｃｒｏｂｉａｌ Ａｃｔｉｖｉｔｉｅｓ ｏｆ Ｅｓｓｅｎｔｉａｌ Ｏｉｌｓ ｏｆ Ｌａｇｇｅｒａ ｐｔｅｒｏｄｏｎｔａ 􀆺　 　
Ｒｅｆｅｒｅｎｃｅｓ:
Ａｄａｍｓ ＲＰꎬ ２００７. Ｉｄｅｎｔｉｆｉｃａｔｉｏｎ ｏｆ Ｅｓｓｅｎｔｉａｌ ｏｉｌ Ｃｏｍｐｏｎｅｎｔｓ ｂｙ Ｇａｓ
Ｃｈｒｏｍａｔｏｇｒａｐｈｙ / Ｍａｓｓ Ｓｐｅｃｔｒｏｍｅｔｒｙ [ Ｍ]. Ｃａｒｏｌ Ｓｔｒｅａｍꎬ Ｉｌｌｉ￣
ｎｏｉｓ: Ａｌｌｕｒｅｄ Ｐｕｂｌｉｓｈｉｎｇ Ｃｏｒｐｏｒａｔｉｏｎ
Ｃａｏ ＣＳ (曹长姝)ꎬ Ｌｉｕ ＢＬ (刘百联)ꎬ Ｓｈｅｎ ＷＺ (沈伟哉) ｅｔ ａｌ.ꎬ
２０１０. Ｒｅｓｅａｒｃｈ ｏｎ ａｎｔｉｐｒｏｌｉｆｅｒａｔｉｖｅ ｅｆｆｅｃｔ ｏｆ ｆｌａｖｏｎｅｓ ｉｓｏｌａｔｅｄ ｆｒｏｍ
Ｌａｇｇｅｒａ ｐｔｅｒｏｄｏｎｔａ [Ｊ] . Ｃｈｉｎａ Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ Ｃｈｉｎｅｓｅ Ｍａｔｅｒｉａ Ｍｅｄｉ￣
ｃａ (中国中药杂志)ꎬ ３５ (１６): ２１７１—２１７４
Ｃｈｉｎａ Ｐｈａｒｍａｃｏｐｏｅｉａ Ｃｏｍｍｉｔｔｅｅ (国家药典委员会)ꎬ ２０１０. Ｐｈａｒ￣
ｍａｃｏｐｏｅｉａ ｏｆ Ｐｅｏｐｌｅ’ ｓ Ｒｅｐｕｂｌｉｃ ｏｆ Ｃｈｉｎａ (中华人民共和国药
典) [Ｍ]. Ｂｅｉｊｉｎｇ: Ｃｈｉｎａ Ｍｅｄｉｃａｌ Ｓｃｉｅｎｃｅ Ｐｒｅｓｓꎬ Ａｐｐｄｅｘ Ｉ: ５７
Ｃｏｓｔａ ＥＶꎬ Ｔｅｉｘｅｉｒａ ＳＤꎬ Ｍａｒｑｕｅｓ ＦＡ ｅｔ ａｌ.ꎬ ２００８. Ｃｈｅｍｉｃａｌ ｃｏｍ￣
ｐｏｓｉｔｉｏｎ ａｎｄ ａｎｔｉｍｉｃｒｏｂｉａｌ ａｃｔｉｖｉｔｙ ｏｆ ｔｈｅ ｅｓｓｅｎｔｉａｌ ｏｉｌｓ ｏｆ ｔｈｅ Ａｍａ￣
ｚｏｎ Ｇｕａｔｔｅｒｉｏｐｓｉｓ ｓｐｅｃｉｅｓ [Ｊ] . Ｐｈｙｔｏｃｈｅｍｉｓｔｒｙꎬ ６９ (９): １８９５—
１８９９
Ｄｏｒｍａｎ Ｈꎬ Ｄｅａｎｓ Ｓꎬ ２００８. Ａｎｔｉｍｉｃｒｏｂｉａｌ ａｇｅｎｔｓ ｆｒｏｍ ｐｌａｎｔｓ: ａｎｔｉ￣
ｂａｃｔｅｒｉａｌ ａｃｔｉｖｉｔｙ ｏｆ ｐｌａｎｔ ｖｏｌａｔｉｌｅ ｏｉｌｓ [ Ｊ] . Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ Ａｐｐｌｉｅｄ
Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌｏｇｙꎬ ８８ (２): ３０８—３１６
Ｌｉ ＸＣꎬ Ｈｕｏ ＣＨꎬ Ｓｈｉ ＱＷ ｅｔ ａｌ.ꎬ ２００７. Ｃｈｅｍｉｃａｌ ｃｏｎｓｔｉｔｕｅｎｔｓ ｏｆ ｔｈｅ
ｐｌａｎｔｓ ｆｒｏｍ ｔｈｅ ｇｅｎｕｓ Ｌａｇｇｅｒａ [ Ｊ] . Ｃｈｅｍｉｓｔｒｙ ＆ Ｂｉｏｄｉｖｅｒｓｉｔｙꎬ ４
(２): １０５—１１１
Ｍｏｔｈａｎａ ＲＡꎬ Ａｌｓａｉｄ ＭＳꎬ Ａｌ￣Ｍｕｓａｙｅｉｂ ＮＭꎬ ２０１１. Ｐｈｙｔｏｃｈｅｍｉｃａｌ ａ￣
ｎａｌｙｓｉｓ ａｎｄ ｉｎ ｖｉｔｒｏ ａｎｔｉｍｉｃｒｏｂｉａｌ ａｎｄ ｆｒｅｅ￣ｒａｄｉｃａｌ￣ｓｃａｖｅｎｇｉｎｇ ａｃ￣
ｔｉｖｉｔｉｅｓ ｏｆ ｔｈｅ ｅｓｓｅｎｔｉａｌ ｏｉｌｓ ｆｒｏｍ Ｅｕｒｙｏｐｓ ａｒａｂｉｃｕｓ ａｎｄ Ｌａｇｇｅｒａ ｄｅ￣
ｃｕｒｒｅｎｓ [Ｊ] . Ｍｏｌｅｃｕｌｅｓꎬ １６: ５１４９—５１５８
ＮＣＣＬＳ￣Ｎａｔｉｏｎａｌ Ｃｏｍｍｉｔｔｅｅ ｆｏｒ Ｃｌｉｎｉｃａｌ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｓｔａｎｄａｒｄｓꎬ ２００１.
Ｐｅｒｆｏｒｍａｎｃｅ Ｓｔａｎｄａｒｄｓ ｆｏｒ Ａｎｔｉ￣Ｍｉｃｒｏｂｉａｌ Ｓｕｓｃｅｐｔｉｂｉｌｉｔｙ Ｔｅｓｔｉｎｇ:
Ｅｌｅｖｅｎｔｈ Ｉｎｆｏｒｍａｔｉｏｎａｌ Ｓｕｐｐｌｅｍｅｎｔ. Ｄｏｃｕｍｅｎｔ [ Ｍ ]. Ｗａｙｎｅꎬ
ＰＡ: ＮＣＣＬＳꎬ １００—Ｓ１１
ＮＣＣＬＳ￣Ｎａｔｉｏｎａｌ Ｃｏｍｍｉｔｔｅｅ ｆｏｒ Ｃｌｉｎｉｃａｌ ａｎｄ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｓｔａｎｄａｒｄｓꎬ
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(ｐｐ. １—２９)
ＮＣＣＬＳ￣Ｎａｔｉｏｎａｌ Ｃｏｍｍｉｔｔｅｅ ｆｏｒ Ｃｌｉｎｉｃａｌ ａｎｄ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｓｔａｎｄａｒｄｓꎬ
２００２ｂ. Ｒｅｆｅｒｅｎｃｅ Ｍｅｔｈｏｄ ｆｏｒ Ｂｒｏｔｈ Ｄｉｌｕｔｉｏｎ Ａｎｔｉｆｕｎｇａｌ Ｓｕｓｃｅｐｔｉｂｉｌ￣
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