全 文 ：大豆种子吸胀冷害抗性与其质体膜脂不饱和度正相关∗
禹晓梅１ꎬ２ꎬ４ꎬ 李唯奇１ꎬ３∗∗
(１ 中国科学院昆明植物研究所 中国西南野生生物种质资源库ꎬ 云南 昆明　 ６５０２０１ꎻ ２ 中国科学院大学ꎬ 北京　 １０００４９ꎻ
３. 红河学院生物系ꎬ 云南 蒙自　 ６６１１００ꎻ ４. 玉溪中烟种子有限责任公司ꎬ 云南 玉溪　 ６５３１００)
摘要: 吸胀冷害是干种子在吸胀阶段遭受低温造成不萌发的现象ꎬ 结果可能造成农作物损失严重ꎮ 虽然吸
胀过程中细胞膜的修复是关键事件ꎬ 而且细胞膜在响应水分和温度胁迫中扮演重要角色ꎬ 但是种子吸胀过
程中膜变化的过程ꎬ 特别是膜流动性变化过程研究较少ꎮ 本文比较了吸胀冷害耐受型 (ＬＸ) 和敏感型
(Ｒ５) 两个大豆品种在吸胀冷害过程中膜脂不饱和度 (ｄｏｕｂｌｅ￣ｂｏｎｄ ｉｎｄｅｘꎬ ＤＢＩ) 的变化ꎬ 结果发现ꎬ ＬＸ
和 Ｒ５在常温 (２５ ℃) 吸胀时变化趋势一致ꎬ 质体膜脂 ＤＢＩ 升高ꎬ 质体外膜脂中磷脂酰甘油 (ｐｈｏｓｐｈａｔｉ￣
ｄｙｌｇｌｙｃｅｒｏｌꎬ ＰＧ) 分子 ＤＢＩ下降ꎮ ＬＸ和 Ｒ５在低温 (４ ℃) 吸胀时 ＤＢＩ变化有很大差异ꎬ 低温吸胀仅仅延
缓了耐受型 ＬＸ中质体膜脂 ＤＢＩ 的升高ꎬ 但是敏感性 Ｒ５ 质体膜脂 ＤＢＩ 不仅没有升高反而下降ꎮ 用浓度
３３％的聚乙二醇 (ｐｏｌｙｅｔｈｙｌｅｎｅ ｇｌｙｃｏｌꎬ ＰＥＧ) 引发没有直接引起 ＤＢＩ变化ꎬ 但是所引起的细微而显著的变化
可能为萌发做好准备ꎮ ＰＥＧ引发处理后的 Ｒ５在吸胀冷害后第二和第三阶段质体膜脂 ＤＢＩ迅速增加ꎬ 这个
增加模式与 ＬＸ的 ＤＢＩ增加相似ꎮ 结果表明ꎬ 吸胀冷害延缓或者阻滞了质体膜脂不饱和度的升高ꎬ 大豆种
子的吸胀冷害抗性与质体膜脂不饱和度正相关ꎬ 提高质体膜质 ＤＢＩ可以提高吸胀冷害抗性ꎮ
关键词: 大豆种子ꎻ 吸胀冷害ꎻ 膜脂不饱和度ꎻ 渗透调控ꎻ 双键指数
中图分类号: Ｑ ９４５　 　 　 　 　 　 文献标识码: Ａ　 　 　 　 　 　 　 文章编号: ２０９５－０８４５(２０１４)０２－１８７－１０
Ｔｈｅ Ｄｅｇｒｅｅ ｏｆ Ｕｎｓａｔｕｒａｔｉｏｎ ｏｆ Ｐｌａｓｔｉｄｉｃ Ｍｅｍｂｒａｎｅ Ｌｉｐｉｄｓ ｉｓ
Ｐｏｓｉｔｉｖｅｌｙ Ａｓｓｏｃｉａｔｅｄ ｗｉｔｈ Ｔｏｌｅｒａｎｃｅ ｔｏ Ｉｍｂｉｂｉｔｉｏｎａｌ
Ｃｈｉｌｌｉｎｇ ｉｎ Ｓｏｙｂｅａｎ Ｓｅｅｄｓ
ＹＵ Ｘｉａｏ￣Ｍｅｉ１ꎬ２ꎬ４ꎬ ＬＩ Ｗｅｉ￣Ｑｉ１ꎬ３∗∗
(１ Ｇｅｒｍｐｌａｓｍ Ｂａｎｋ ｏｆ Ｗｉｌｄ Ｓｐｅｃｉｅｓ ｉｎ Ｓｏｕｔｈｗｅｓｔ Ｃｈｉｎａꎬ Ｋｕｎｍｉｎｇ Ｉｎｓｔｉｔｕｔｅ ｏｆ Ｂｏｔａｎｙꎬ Ｃｈｉｎｅｓｅ Ａｃａｄｅｍｙ ｏｆ Ｓｃｉｅｎｃｅｓꎬ Ｋｕｎｍｉｎｇ
６５０２０１ꎬ Ｃｈｉｎａꎻ ２ Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｙ ｏｆ Ｃｈｉｎｅｓｅ Ａｃａｄｅｍｙ ｏｆ Ｓｃｉｅｎｃｅｓꎬ Ｂｅｉｊｉｎｇ １０００４９ꎬ Ｃｈｉｎａꎻ ３. Ｄｅｐａｒｔｍｅｎｔ ｏｆ Ｂｉｏｌｏｇｙꎬ
Ｈｏｎｇｈｅ Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｙꎬ Ｍｅｎｇｚｉ ６６１１００ꎬ Ｃｈｉｎａꎻ ４. Ｙｕｘｉ Ｚｈｏｎｇｙａｎ Ｔｏｂａｃｃｏ Ｓｅｅｄ Ｃｏ.ꎬ Ｌｔｄꎬ Ｙｕｘｉ ６５３１００ꎬ Ｃｈｉｎａ)
Ａｂｓｔｒａｃｔ: Ｉｎｊｕｒｙ ｃａｕｓｅｄ ｂｙ ｉｍｂｉｂｉｔｉｏｎａｌ ｃｈｉｌｌｉｎｇ ｉｓ ａ ｃｏｍｍｏｎ ｐｈｅｎｏｍｅｎｏｎ ｄｕｒｉｎｇ ｒｅｈｙｄｒａｔｉｏｎ ｏｆ ｄｅｓｉｃｃａｔｅｄ ｓｅｅｄｓꎬ
ａｎｄ ｕｓｕａｌｌｙ ｃａｕｓｅｓ ｓｅｒｉｏｕｓｌｙ ｃｏｍｐｒｏｍｉｓｅｓ ｓｅｅｄｌｉｎｇ ｅｍｅｒｇｅｎｃｅ ａｎｄ ｃｒｏｐ ｙｉｅｌｄ. Ｒｅｓｔｏｒａｔｉｏｎ ｏｆ ｔｈｅ ｃｅｌｌ ｍｅｍｂｒａｎｅｓ ｉｓ ａ
ｃｒｉｔｉｃａｌ ｅｖｅｎｔ ｄｕｒｉｎｇ ｉｍｂｉｂｉｔｉｏｎꎬ ｍｏｒｅｏｖｅｒ ｉｔ ｉｓ ｖｅｒｙ ｉｍｐｏｒｔａｎｔ ｉｎ ｒｅｓｐｏｎｓｅｓ ｔｏ ｗａｔｅｒ ａｎｄ ｔｅｍｐｅｒａｔｕｒｅ ｓｔｒｅｓｓ. Ｈｏｗｅｖｅｒꎬ
ｔｈｅ ｃｈａｎｇｅｓ ｉｎ ｍｅｍｂｒａｎｅ ｓｔｒｕｃｔｕｒｅ ｄｕｒｉｎｇ ｓｅｅｄ ｉｍｂｉｂｉｔｉｏｎꎬ ｅｓｐｅｃｉａｌｌｙ ｔｈｏｓｅ ｒｅｌａｔｅｄ ｔｏ ｍｅｍｂｒａｎｅ ｆｌｕｉｄｉｔｙꎬ ｈａｖｅ ｙｅｔ ｔｏ
ｂｅ ｉｎｖｅｓｔｉｇａｔｅｄ. Ｔｈｉｓ ｓｔｕｄｙ ｃｏｍｐａｒｅｄ ｃｈａｎｇｅｓ ｉｎ ｔｈｅ ｌｅｖｅｌ ｏｆ ｕｎｓａｔｕｒａｔｉｏｎ ｏｆ ｍｅｍｂｒａｎｅ ｌｉｐｉｄｓ (ｄｏｕｂｌｅ￣ｂｏｎｄ ｉｎｄｅｘꎬ
ＤＢＩ) ｂｅｔｗｅｅｎ ｃｈｉｌｌｉｎｇ￣ｔｏｌｅｒａｎｔ ‘ＬＸ’ ａｎｄ ｃｈｉｌｌｉｎｇ￣ｓｅｎｓｉｔｉｖｅ ‘Ｒ５’ ｓｏｙｂｅａｎ ｃｕｌｔｉｖａｒｓ ｄｕｒｉｎｇ ｉｍｂｉｂｉｔｉｏｎａｌ ｃｈｉｌｌｉｎｇ. Ａｆ￣
ｔｅｒ ｉｍｂｉｂｉｔｉｏｎ ａｔ ｎｏｒｍａｌ ｔｅｍｐｅｒａｔｕｒｅ (２５ ℃)ꎬ ｓｅｅｄｓ ｏｆ ＬＸ ａｎｄ Ｒ５ ｓｈｏｗｅｄ ｓｉｍｉｌａｒ ｃｈａｎｇｅｓ ｉｎ ｔｈｅ ｌｅｖｅｌ ｏｆ ｌｉｐｉｄ ｕｎ￣
ｓａｔｕｒａｔｉｏｎꎬ ｗｉｔｈ ｉｎｃｒｅａｓｅｄ ＤＢＩ ｖａｌｕｅｓ ｆｏｒ ｐｌａｓｔｉｄｉｃ ｌｉｐｉｄｓ ａｎｄ ｒｅｄｕｃｅｄ ｌｅｖｅｌｓ ｏｆ ｅｘｔｒａｐｌａｓｔｉｄｉｃ ｐｈｏｓｐｈａｔｉｄｙｌｇｌｙｃｅｒｏｌ
(ＰＧ). Ｉｎ ｃｏｎｔｒａｓｔꎬ ｔｈｅｒｅ ｗｅｒｅ ｄｒａｍａｔｉｃ ｄｉｆｆｅｒｅｎｃｅｓ ｉｎ ｔｈｅ ｃｈａｎｇｅｓ ｏｆ ＤＢＩ ｂｅｔｗｅｅｎ ＬＸ ａｎｄ Ｒ５ ｆｏｌｌｏｗｉｎｇ ｉｍｂｉｂｉｔｉｏｎ
ｕｎｄｅｒ ｃｈｉｌｌｉｎｇ ｃｏｎｄｉｔｉｏｎｓ (４ ℃). Ｃｈｉｌｌｉｎｇ ｏｎｌｙ ｄｅｌａｙｅｄ ｔｈｅ ｉｎｃｒｅａｓｅ ｏｆ ｐｌａｓｔｉｄｉｃ ＤＢＩ ｉｎ ｓｅｅｄｓ ｏｆ ｔｈｅ ｔｏｌｅｒａｎｔ ｃｕｌｔｉｖａｒ
植 物 分 类 与 资 源 学 报　 ２０１４ꎬ ３６ (２): １８７~１９６
Ｐｌａｎｔ Ｄｉｖｅｒｓｉｔｙ ａｎｄ Ｒｅｓｏｕｒｃｅｓ　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 ＤＯＩ: １０.７６７７ / ｙｎｚｗｙｊ２０１４１３０９５
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Ｆｕｎｄｉｎｇ: Ｔｈｅ Ｎａｔｉｏｎａｌ Ｎａｔｕｒａｌ Ｓｃｉｅｎｃｅ Ｆｏｕｎｄａｔｉｏｎ ｏｆ Ｃｈｉｎａ (ＮＳＦＣ ３０６７０４７４ꎬ ３０８７０５７１ꎬ ａｎｄ ３１０７０２６２)
Ａｕｔｈｏｒ ｆｏｒ ｃｏｒｒｅｓｐｏｎｄｅｎｃｅꎻ Ｅ￣ｍａｉｌ: ｗｅｉｑｉｌｉ＠ｍａｉｌ􀆰 ｋｉｂ􀆰 ａｃ􀆰 ｃｎ
Ｒｅｃｅｉｖｅｄ ｄａｔｅ: ２０１３－０４－２１ꎬ Ａｃｃｅｐｔｅｄ ｄａｔｅ: ２０１３－０５－２４
作者简介: 禹晓梅 (１９８４－) 女ꎬ 博士ꎬ 主要从事种子生物学研究ꎮ
ＬＸꎬ ｗｈｅｒｅａｓ ｐｌａｓｔｉｄｉｃ ＤＢＩ ｄｉｄ ｎｏｔ ｉｎｃｒｅａｓｅ ｏｒ ｅｖｅｎ ｄｅｃｒｅａｓｅｄ ｉｎ ｔｈｅ ｓｅｎｓｉｔｉｖｅ ｃｕｌｔｉｖａｒ Ｒ５ ｕｎｄｅｒ ｔｈｅｓｅ ｃｏｎｄｉｔｉｏｎｓ.
Ｐｒｉｍｉｎｇ ｏｆ ｓｅｅｄｓ ｂｙ ｉｎｃｕｂａｔｉｏｎ ｉｎ ３３％ ｐｏｌｙｅｔｈｙｌｅｎｅ ｇｌｙｃｏｌ (ＰＥＧ) ｄｉｄ ｎｏｔ ｄｉｒｅｃｔｌｙ ｃａｕｓｅ ｃｈａｎｇｅｓ ｉｎ ＤＢＩꎬ ｈｏｗｅｖｅｒꎬ
ｔｈｅ ｓｕｂｔｌｅ ｂｕｔ ｓｉｇｎｉｆｉｃａｎｔ ｃｈａｎｇｅｓ ｉｎ ＤＢＩ ｔｈａｔ ｉｔ ｉｎｄｕｃｅｄ ｐｒｅｐａｒｅｄ ｔｈｅ ｓｏｙｂｅａｎ ｓｔｒａｉｎ ｆｏｒ ｇｅｒｍｉｎａｔｉｏｎ. Ｐｌａｓｔｉｄｉｃ ＤＢＩ
ｉｎｃｒｅａｓｅｄ ｄｕｒｉｎｇ ｐｈａｓｅｓ ＩＩ ａｎｄ ＩＩＩ ｏｆ ｇｅｒｍｉｎａｔｉｏｎ ｉｎ ＰＥＧ￣ｏｓｍｏｃｏｎｄｉｔｉｏｎｅｄ Ｒ５ ｓｅｅｄｓ ｕｎｄｅｒ ｉｍｂｉｂｉｔｉｏｎａｌ ｃｈｉｌｌｉｎｇ
ｓｔｒｅｓｓꎻ ｔｈｉｓ ｉｎｃｒｅａｓｅ ｗａｓ ｓｉｍｉｌａｒ ｔｏ ｔｈｅ ｐａｔｔｅｒｎｓ ｏｆ ｉｎｃｒｅａｓｅ ｉｎ ＤＢＩ ｏｆ ＬＸ. Ｏｕｒ ｒｅｓｕｌｔｓ ｓｕｇｇｅｓｔ ｔｈａｔ ｃｈｉｌｌｅｄ ｉｍｂｉｂｉｔｉｏｎ
ｄｅｌａｙｓ ｏｒ ｐｒｅｖｅｎｔｓ ｔｈｅ ｉｎｃｒｅａｓｅ ｏｆ ｔｈｅ ｄｅｇｒｅｅ ｏｆ ｕｎｓａｔｕｒａｔｉｏｎ ｉｎ ｐｌａｓｔｉｄｉｃ ｍｅｍｂｒａｎｅ ｌｉｐｉｄｓꎬ ｔｈａｔ ｔｏｌｅｒａｎｃｅ ｔｏ ｉｍｂｉｂｉ￣
ｔｉｏｎａｌ ｃｈｉｌｌｉｎｇ ｉｎ ｓｏｙｂｅａｎ ｉｓ ｐｏｓｉｔｉｖｅｌｙ ａｓｓｏｃｉａｔｅｄ ｗｉｔｈ ａｎ ｉｎｃｒｅａｓｅ ｉｎ ｔｈｅ ｌｅｖｅｌ ｏｆ ｕｎｓａｔｕｒａｔｉｏｎ ｏｆ ｐｌａｓｔｉｄｉｃ ｍｅｍｂｒａｎｅ
ｌｉｐｉｄｓꎬ ａｎｄ ｔｈａｔ ｉｎｃｒｅａｓｅｄ ｐｌａｓｔｉｄｉｃ ＤＢＩ ｃｏｕｌｄ ｉｍｐｒｏｖｅ ｔｏｌｅｒａｎｃｅ ｏｆ ｉｍｂｉｂｉｔｉｏｎａｌ ｃｈｉｌｌｉｎｇ.
Ｋｅｙ ｗｏｒｄｓ: Ｓｏｙｂｅａｎ ｓｅｅｄｓꎻ Ｉｍｂｉｂｉｔｉｏｎａｌ ｃｈｉｌｌｉｎｇ ｉｎｊｕｒｙꎻ Ｄｅｇｒｅｅ ｏｆ ｕｎｓａｔｕｒａｔｉｏｎ ｏｆ ｍｅｍｂｒａｎｅ ｌｉｐｉｄｓꎻ Ｏｓｍｏｃｏｎｄｉ￣
ｔｉｏｎｉｎｇꎻ Ｄｏｕｂｌｅ￣ｂｏｎｄ ｉｎｄｅｘ
　 Ｉｍｂｉｂｉｔｉｏｎ ｉｓ ａ ｃｒｉｔｉｃａｌ ｐｒｏｃｅｓｓ ｄｕｒｉｎｇ ｓｅｅｄ ｇｅｒ￣
ｍｉｎａｔｉｏｎ. Ｔｈｅ ｕｐｔａｋｅ ｏｆ ｗａｔｅｒ ｂｙ ａ ｍａｔｕｒｅ ｄｒｙ ｓｅｅｄ
ｉｓ ｔｒｉｐｈａｓｉｃ (Ｂｅｗｌｅｙꎬ １９９７ꎻ Ｙｉｎ ｅｔ ａｌ.ꎬ ２００９ꎻ Ｈａｎ
ｅｔ ａｌ.ꎬ ２０１３)ꎬ ｗｉｔｈ ｒａｐｉｄ ｉｎｉｔｉａｌ ｕｐｔａｋｅ ( ｐｈａｓｅ Ｉ)
ｆｏｌｌｏｗｅｄ ｂｙ ａ ｐｌａｔｅａｕ ｐｈａｓｅ ( ｐｈａｓｅ ＩＩ) . Ａ ｆｕｒｔｈｅｒ
ｉｎｃｒｅａｓｅ ｉｎ ｗａｔｅｒ ｕｐｔａｋｅ ｏｃｃｕｒｓ ｏｎｌｙ ａｆｔｅｒ ｇｅｒｍｉｎａ￣
ｔｉｏｎ ｈａｓ ｂｅｅｎ ｃｏｍｐｌｅｔｅｄꎬ ａｓ ｔｈｅ ｅｍｂｒｙｏｎｉｃ ａｘｅｓ ｅ￣
ｌｏｎｇａｔｅ ( ｐｈａｓｅ ＩＩＩ) . Ｉｎ ｄｒｙ ｓｅｅｄｓꎬ ｃｅｌｌ ｍｅｍｂｒａｎｅ
ｓｙｓｔｅｍｓ ｌｏｓｅ ｔｈｅｉｒ ｉｎｔｅｇｒｉｔｙ ａｎｄ ａｄｏｐｔ ａ ｗｒｉｎｋｌｅｄ ａｎｄ
ｄｉｓｏｒｄｅｒｅｄ ｆｏｒｍꎬ ｓｕｃｈ ａｓ ｔｈｅ ｈｅｘａｇｏｎａｌ ＩＩ ｏｒ ｃｒｙｓｔａｌ￣
ｌｉｎｅ ｇｅｌ ｆｏｒｍｓ. Ｕｐｏｎ ｒｅｈｙｄｒａｔｉｏｎꎬ ｔｈｅｓｅ ｓｙｓｔｅｍｓ ｒｅ￣
ｐａｉｒ ｔｈｅｍｓｅｌｖｅｓ ｉｎｔｏ ａｎ ｏｒｄｅｒｌｙ ａｎｄ ｓｔａｂｌｅ ｃｏｎｆｉｇｕｒａ￣
ｔｉｏｎꎬ ｗｈｉｃｈ ｒｅｓｔｏｒｅｓ ｉｎｔｅｇｒｉｔｙ ａｎｄ ｆｌｕｉｄｉｔｙ ( Ｚｈｅｎｇꎬ
１９９１). Ｔｈｅ ｒｅｓｔｏｒａｔｉｏｎ ｏｆ ｔｈｅ ｃｅｌｌ ｍｅｍｂｒａｎｅ ｏｃｃｕｒｓ
ｄｕｒｉｎｇ ｔｈｅ ｐｈａｓｅ ｉｎｖｏｌｖｉｎｇ ｔｈｅ ｐｈｙｓｉｃａｌ ｕｐｔａｋｅ ｏｆ
ｗａｔｅｒ (ｐｈａｓｅ Ｉ)ꎬ ａｎｄ ｉｔ ｉｓ ｖｅｒｙ ｉｍｐｏｒｔａｎｔ ｆｏｒ ｓｅｅｄ
ｇｅｒｍｉｎａｔｉｏｎ (Ｂｅｗｌｅｙꎬ １９９７). Ｉｔ ｉｓ ｇｅｎｅｒａｌｌｙ ｒｅｃｏｇ￣
ｎｉｓｅｄ ｔｈａｔ ｉｎｊｕｒｙ ｃａｕｓｅｄ ｂｙ ｉｍｂｉｂｉｔｉｏｎａｌ ｃｈｉｌｌｉｎｇ ｏｃ￣
ｃｕｒｓ ｗｈｅｎ ｄｒｙ ｓｅｅｄｓ ｉｍｂｉｂｅ ａｔ ａ ｌｏｗ ｔｅｍｐｅｒａｔｕｒｅ ａｔ
ｔｈｉｓ ｓｔａｇｅ (Ｚｈｅｎｇꎬ １９８８ꎬ １９９１). Ｔｈｅ ｉｍｂｉｂｉｔｉｏｎａｌ
ｔｅｍｐｅｒａｔｕｒｅ ａｎｄ ｒａｔｅ ａｒｅ ｔｈｅ ｔｗｏ ｍａｉｎ ｆａｃｔｏｒｓ ｔｈａｔ
ｄｅｔｅｒｍｉｎｅ ｔｈｅ ｓｕｃｃｅｓｓ ｏｆ ｍｅｍｂｒａｎｅ ｒｅｏｒｇａｎｉｚａｔｉｏｎ
(Ｙｉｎ ｅｔ ａｌ.ꎬ ２００９ꎻ Ｌｙｏｎｓꎬ １９７３). Ｌｏｗ ｔｅｍｐｅｒａｔｕｒｅ
ａｎｄ ｒａｐｉｄ ｕｐｔａｋｅ ｏｆ ｗａｔｅｒ ｃａｎ ｓｅｖｅｒｅｌｙ ｄｉｓｔｕｒｂ ｐｈｏｓ￣
ｐｈｏｌｉｐｉｄｓ ａｎｄ ｉｎｄｕｃｅ ａ ｃｈａｎｇｅ ｉｎ ｔｈｅｉｒ ａｒｒａｎｇｅｍｅｎｔ
ｆｒｏｍ ａ ｈｅｘａｇｏｎａｌ ( ｄｅｈｙｄｒａｔｅｄ) ｔｏ ａ ｌａｍｅｌｌａｒ ( ｈｙ￣
ｄｒａｔｅｄ) ａｒｃｈｉｔｅｃｔｕｒｅ (Ｓｉｍｏｎꎬ １９７４).
Ｓｅｖｅｒｅ ｉｎｊｕｒｙ ｃａｕｓｅｄ ｂｙ ｉｍｂｉｂｉｔｉｏｎａｌ ｃｈｉｌｌｉｎｇ ｏｃ￣
ｃｕｒｓ ｗｈｅｎ ｃｈｉｌｌｉｎｇ￣ｓｅｎｓｉｔｉｖｅ ｓｅｅｄｓ ａｂｓｏｒｂ ｗａｔｅｒ ａｔ ａ
ｌｏｗｅｒ ｔｅｍｐｅｒａｔｕｒｅ. Ｔｈｉｓ ｒｅｓｕｌｔｓ ｉｎ ｐｏｏｒ ｇｅｒｍｉｎａｔｉｏｎꎬ ｒｅ￣
ｄｕｃｅｄ ｓｅｅｄｌｉｎｇ ｅｍｅｒｇｅｎｃｅꎬ ｄｅｃｒｅａｓｅｄ ｓｅｅｄｌｉｎｇ ｖｉｇｏｕｒꎬ
ａｎｄ ｕｌｔｉｍａｔｅｌｙ ｌｏｓｓ ｏｆ ｙｉｅｌｄ (Ｐｏｌｌｏｃｋꎬ １９６９). Ｓｕｃｈ ｉｎ￣
ｊｕｒｙ ｉｓ ａ ｃｏｍｍｏｎ ｐｒｏｂｌｅｍ ｉｎ ａｇｒｉｃｕｌｔｕｒｅ ａｎｄ ｈａｓ ｂｅｅｎ
ｒｅｐｏｒｔｅｄ ｆｏｒ ａ ｗｉｄｅ ｒａｎｇｅ ｏｆ ｃｒｏｐｓꎬ ｉｎｃｌｕｄｉｎｇ ｇｒｅｅｎ
ｂｅａｎ ａｎｄ ｌｉｍａ ｂｅａｎ (Ｐｏｌｌｏｃｋꎬ １９６９)ꎬ ｃｏｔｔｏｎ (Ｃｈｒｉｓ￣
ｔｉａꎬ １９６７)ꎬ ｐｅａ (Ｐｏｗｅｌｌ ａｎｄ Ｍａｔｔｈｅｗｓꎬ １９７８)ꎬ ｃｕ￣
ｃｕｍｂｅｒ (Ｗｉｌｌｉｎｇ ａｎｄ Ｌｅｏｐｏｌｄꎬ １９８３)ꎬ ｃｏｒｎ ａｎｄ ｓｏｙ￣
ｂｅａｎ (Ｏｂｅｎｄｏｒｆ ａｎｄ Ｈｏｂｂｓꎬ １９７０). Ｏｎ ｏｎｅ ｏｃｃａｓｉｏｎꎬ
ａ ２５％ ｄｅｃｒｅａｓｅ ｉｎ ｓｏｙｂｅａｎ ｙｉｅｌｄ ｃａｕｓｅｄ ｂｙ ｃｈｉｌｌｉｎｇ ｉｎ￣
ｊｕｒｙ ｗａｓ ｒｅｐｏｒｔｅｄꎬ ｅｖｅｎ ｔｈｏｕｇｈ ｔｈｅ ｆｉｅｌｄ ｓｅｅｄｌｉｎｇ ｄｅｎ￣
ｓｉｔｙ ｒｅｍａｉｎｅｄ ｔｈｅ ｓａｍｅ (Ｈｏｂｂｓ ａｎｄ Ｏｂｅｎｄｏｒｆꎬ １９７２).
Ｏｓｍｏｃｏｎｄｉｔｉｏｎｉｎｇ ｉｎｖｏｌｖｅｓ ｔｈｅ ｉｎｃｕｂａｔｉｏｎ ｏｆ
ｓｅｅｄｓ ｉｎ ａｎ ｏｓｍｏｔｉｃｕｍꎬ ｗｈｉｃｈ ｉｓ ｕｓｕａｌｌｙ ａ ｓｏｌｕｔｉｏｎ
ｏｆ ａ ｓａｌｔ ｏｒ ｐｏｌｙｅｔｈｙｌｅｎｅ ｇｌｙｃｏｌ ( ＰＥＧ). Ｐｒｉｍｉｎｇ
ｓｅｅｄｓ ｆｏｒ ｇｅｒｍｉｎａｔｉｏｎ ｂｙ ｉｎｃｕｂａｔｉｎｇ ｔｈｅｍ ｉｎ ｓｏｌｕｔｉｏｎｓ
ｏｆ ＰＥＧ ｗａｓ ｐｒｅｖｉｏｕｓｌｙ ｓｈｏｗｎ ｔｏ ｒｅｄｕｃｅ ｏｒ ｅｌｉｍｉｎａｔｅ
ｄａｍａｇｅ ｃａｕｓｅｄ ｂｙ ｃｈｉｌｌｅｄ ｉｍｂｉｂｉｔｉｏｎꎬ ａｎｄ ｉｔ ａｌｓｏ
ｃｌｅａｒｌｙ ｉｍｐｒｏｖｅｄ ｓｅｅｄ ｖｉｇｏｕｒ (Ｗｏｏｄｓｔｏｃｋ ａｎｄ Ｔａｏꎬ
１９８１ꎻ Ｐｏｓｍｙｋ ｅｔ ａｌ.ꎬ ２００１). Ｃｈｉｌｌｉｎｇ ｉｎｊｕｒｙ ａｎｄ
ＰＥＧ ｐｒｉｍｉｎｇ ａｒｅ ａｓｓｏｃｉａｔｅｄ ｗｉｔｈ ｖａｒｉｏｕｓ ｂｉｏｃｈｅｍｉｃａｌ
ａｎｄ ｍｅｔａｂｏｌｉｃ ａｌｔｅｒａｔｉｏｎｓ. Ｉｎ ｃｈｉｌｌｉｎｇ￣ｓｅｎｓｉｔｉｖｅ ｓｅｅｄｓꎬ
ｔｈｅ ｇｒｅａｔｅｓｔ ｓｅｎｓｉｔｉｖｉｔｙ ｔｏ ｌｏｗ ｔｅｍｐｅｒａｔｕｒｅｓ ｏｃｃｕｒｓ
ｄｕｒｉｎｇ ｔｈｅ ｆｉｒｓｔ ｈｏｕｒｓ ｏｆ ｔｈｅ ｉｍｂｉｂｉｔｉｏｎ ｐｈａｓｅ (Ｐｏｌ￣
ｌｏｃｋ ａｎｄ Ｔｏｏｌｅꎬ １９６６ꎻ Ｃｈｒｉｓｔｉａꎬ １９６７ꎻ Ｂｒａｍｌａｇｅ ｅｔ
ａｌ.ꎬ １９７８ꎻ Ｌｅｏｐｏｌｄꎬ １９８０). Ｔｈｅ ｌｅａｋａｇｅ ｏｆ ｓｏｌｕｔｅｓ
ｆｒｏｍ ｃｈｉｌｌｅｄ ｉｍｂｉｂｉｎｇ ｓｅｅｄｓ ｓｕｇｇｅｓｔｓ ｔｈａｔ ｍｅｍｂｒａｎｅ
ｒｅｏｒｇａｎｉｓａｔｉｏｎ ｉｓ ｉｍｐａｉｒｅｄ ａｔ ｌｏｗ ｔｅｍｐｅｒａｔｕｒｅｓ (Ｂｒａｍ￣
ｌａｇｅ ｅｔ ａｌ.ꎬ １９７８)ꎬ ａｎｄ ｔｈｕｓ ｔｈａｔ ｍｅｍｂｒａｎｅ ｓｙｓｔｅｍｓ
ａｒｅ ｔｈｅ ｃｅｌｌ ｃｏｍｐｏｎｅｎｔｓ ｔｈａｔ ａｒｅ ｍｏｓｔ ｖｕｌｎｅｒａｂｌｅ ｔｏ
ｉｎｊｕｒｙ ｂｙ ｃｈｉｌｌｉｎｇꎻ ｈｏｗｅｖｅｒꎬ ｏｎｌｙ ａ ｌｉｍｉｔｅｄ ｎｕｍｂｅｒ
ｏｆ ｓｔｕｄｉｅｓ ｈａｖｅ ａｄｄｒｅｓｓｅｄ ｔｈｉｓ ｉｓｓｕｅ.
Ｍｅｍｂｒａｎｅｓꎬ ｐａｒｔｉｃｕｌａｒｌｙ ｐｌａｓｍａ ａｎｄ ｃｈｌｏｒｏｐｌａｓｔ
ｍｅｍｂｒａｎｅｓ ａｒｅ ｓｅｎｓｉｔｉｖｅ ｔｏ ｅｎｖｉｒｏｎｍｅｎｔａｌ ｓｔｉｍｕｌｉ. Ｔｈｅ
ｆｌｕｉｄｉｔｙ ｏｆ ｃｅｌｌ ｍｅｍｂｒａｎｅｓ ｃａｎ ｉｎｆｌｕｅｎｃｅ ｔｈｅｉｒ ｓｔａｂｉｌｉｔｙ
８８１　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 植 物 分 类 与 资 源 学 报　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 第 ３６卷
ｄｕｒｉｎｇ ｅｘｐｏｓｕｒｅ ｔｏ ｓｔｒｅｓｓꎬ ｉｔ ｃａｎ ｂｅ ｏｐｔｉｍｉｓｅｄ ｂｙ ａｄ￣
ｊｕｓｔｍｅｎｔ ｏｆ ｔｈｅ ｍｅｍｂｒａｎｅ ｌｉｐｉｄ ｏｒ ｆａｔｔｙ ａｃｉｄ ｃｏｍｐｏｓｉ￣
ｔｉｏｎꎬ ｓｔｒｕｃｔｕｒｅꎬ ａｎｄ ｌｅｖｅｌ ｏｆ ｕｎｓａｔｕｒａｔｉｏｎ ｉｎ ｒｅｓｐｏｎｓｅ
ｔｏ ｓｔｒｅｓｓꎬ ｗｈｉｃｈ ａｒｅ ｉｍｐｏｒｔａｎｔ ｄｅｔｅｒｍｉｎａｎｔｓ ｏｆ ｔｈｅ ａ￣
ｂｉｌｉｔｙ ｔｏ ａｄａｐｔ ｔｏ ｓｔｒｅｓｓ (Ｎａｖａｒｉ￣Ｉｚｚｏ ｅｔ ａｌ.ꎬ １９９３).
Ｔｈｅ ｄｅｇｒｅｅ ｏｆ ｕｎｓａｔｕｒａｔｉｏｎ ｏｆ ｍｅｍｂｒａｎｅ ｇｌｙｃｅｒｏｌｉｐｉｄｓ
(ｍｅａｓｕｒｅｄ ａｓ ｔｈｅ ｄｏｕｂｌｅ￣ｂｏｎｄ ｉｎｄｅｘꎬ ＤＢＩ) ｉｓ ｔｈｅ
ｍａｊｏｒ ｆａｃｔｏｒ ｔｈａｔ ｄｅｔｅｒｍｉｎｅｓ ｍｅｍｂｒａｎｅ ｆｌｕｉｄｉｔｙ. Ａ
ｈｉｇｈ ＤＢＩ ｉｎｄｉｃａｔｅｓ ｔｈｅ ｐｒｅｓｅｎｃｅ ｏｆ ｍｏｒｅ ｕｎｓａｔｕｒａｔｅｄ
ｍｅｍｂｒａｎｅ ｌｉｐｉｄｓ. Ａｔ ｌｏｗ ｔｅｍｐｅｒａｔｕｒｅｓꎬ ｔｈｅ ＤＢＩ ｏｆ
ｆａｔｔｙ ａｃｉｄｓ ｉｓ ｉｎｃｒｅａｓｅｄ. Ｔｏｌｅｒａｎｃｅ ｏｆ ｌｅａｖｅｓ ｔｏ ｄｅｈｙ￣
ｄｒａｔｉｏｎ ｏｒ ｄｅｓｉｃｃａｔｉｏｎ ｉｓ ａｓｓｏｃｉａｔｅｄ ｗｉｔｈ ａ ｄｅｃｒｅａｓｅ ｉｎ
ｆａｔｔｙ ａｃｉｄ ｃｏｎｔｅｎｔ ａｎｄ ａｌｔｅｒａｔｉｏｎ ｉｎ ｔｈｅ ｃｏｍｐｏｓｉｔｉｏｎ ｏｆ
ｕｎｓａｔｕｒａｔｅｄ ａｎｄ ｓａｔｕｒａｔｅｄ ｆａｔｔｙ ａｃｉｄｓ ｉｎ ｖａｒｉｏｕｓ ｐｌａｎｔ
ｓｐｅｃｉｅｓ (Ｘｕ ｅｔ ａｌ.ꎬ ２０１１). Ｄｅｈｙｄｒａｔｉｏｎ ｒｅｄｕｃｅｓ ｔｈｅ
ＤＢＩ ｏｆ ｆａｔｔｙ ａｃｉｄｓ ｉｎ ｔｈｅ ｐｌａｓｔｉｄｉｃ ｍｅｍｂｒａｎｅｓ ｏｆ ｌｅａｖ￣
ｅｓ (Ｑｕａｒｔａｃｃｉ ｅｔ ａｌ.ꎬ ２００２). Ｆｏｌｌｏｗｉｎｇ ｄｅｈｙｄｒａｔｉｖｅ
ｓｔｒｅｓｓꎬ ｄｉｆｆｅｒｅｎｃｅｓ ｉｎ ｔｈｅ ＤＢＩ ｖａｌｕｅｓ ｏｆ ｆｏｕｒ ｃｕｌｔｉｖａｒｓ
ｏｆ ｇｒａｐｅｖｉｎｅ (Ｖｉｔｉｓ ｖｉｎｉｆｅｒａ Ｌ.) ｔｈａｔ ｅｘｈｉｂｉｔ ｄｉｆｆｅｒｅｎｔ
ｌｅｖｅｌｓ ｏｆ ｄｒｏｕｇｈｔ ｔｏｌｅｒａｎｃｅ ｉｍｐｌｉｅｄ ｔｈａｔ ｓｐｅｃｉｆｉｃ ａｄ￣
ｊｕｓｔｍｅｎｔｓ ｉｎ ｔｈｅ ｌｅｖｅｌ ｏｆ ｕｎｓａｔｕｒａｔｉｏｎ ｏｆ ｌｉｐｉｄｓ ｄｕｒｉｎｇ
ｓｔｒｅｓｓ ｃｏｕｌｄ ｃｏｍｐｒｏｍｉｓｅ ｓｔｒｅｓｓ ｔｏｌｅｒａｎｃｅ ( Ｔｏｕｍｉ ｅｔ
ａｌ.ꎬ ２００８ ). Ｔｈｅ ａｂｉｌｉｔｙ ｔｏ ｃｈａｎｇｅ ＤＢＩ ｉｎ ｏｒｄｅｒ ｔｏ
ｍａｉｎｔａｉｎ ｍｅｍｂｒａｎｅ ｉｎｔｅｇｒｉｔｙ ａｎｄ ｆｌｕｉｄｉｔｙ ｄｕｒｉｎｇ ｐｅｒｉ￣
ｏｄｓ ｏｆ ｓｔｒｅｓｓ ｉｓ ｏｆ ｍａｊｏｒ ｉｍｐｏｒｔａｎｃｅ ｆｏｒ ｐｌａｎｔ ｓｕｒｖｉｖ￣
ａｌꎬ ａｓ ｄｉｓｃｕｓｓｅｄ ａｂｏｖｅꎬ ａｎｄ ｍａｙ ａｌｓｏ ｂｅ ｃｒｉｔｉｃａｌ ｆｏｒ
ｓｅｅｄ ｒｅｈｙｄｒａｔｉｏｎ ｏｒ ｒｅｇｒｏｗｔｈ ( Ｑｕａｒｔａｃｃｉ ｅｔ ａｌ.ꎬ
１９９５ꎻ Ｂｅｔｔａｉｅｂ ｅｔ ａｌ.ꎬ ２００９ꎻ Ｔｏｕｍｉ ｅｔ ａｌ.ꎬ ２００８).
Ｈｏｗｅｖｅｒꎬ ｃｈａｎｇｅｓ ｉｎ ＤＢＩ ｄｕｒｉｎｇ ｉｍｂｉｂｉｔｉｏｎａｌ ｃｈｉｌｌ￣
ｉｎｇ ａｎｄ ｔｈｅ ｅｆｆｅｃｔｓ ｏｆ ｔｈｅｓｅ ｃｈａｎｇｅｓ ｏｎ ｓｅｅｄ ｇｅｒｍｉｎａ￣
ｔｉｏｎ ｄｏ ｎｏｔ ａｐｐｅａｒ ｔｏ ｈａｖｅ ｂｅｅｎ ｒｅｐｏｒｔｅｄ.
Ｐｌａｎｔ ｌｉｐｉｄｏｍｉｃｓ ａｎａｌｙｓｉｓ ｂａｓｅｄ ｏｎ ｅｌｅｃｔｒｏｓｐｒａｙ ｉ￣
ｏｎｉｚａｔｉｏｎ ｔａｎｄｅｍ ｍａｓｓ ｓｐｅｃｔｒｏｍｅｔｒｙ (ＥＳＩ￣ＭＳ / ＭＳ) ｃａｎ
ｒａｐｉｄｌｙ ｍｅａｓｕｒｅ ｔｈｅ ｒｅｌａｔｉｖｅ ａｂｕｎｄａｎｃｅｓ ｏｆ ｈｕｎｄｒｅｄｓ ｏｆ
ｄｉｆｆｅｒｅｎｔ ｔｙｐｅｓ ｏｆ ｌｉｐｉｄ ｍｏｌｅｃｕｌｅｓ ｉｎ ｖｉｖｏ ｕｓｉｎｇ ｓｍａｌｌ
ｓａｍｐｌｅｓ (Ｗｅｌｔｉ ｅｔ ａｌ.ꎬ ２００２)ꎬ ｔｈｉｓ ｅｎａｂｌｅｓ ａｃｃｕｒａｔｅ
ｃａｌｃｕｌａｔｉｏｎ ｏｆ ｔｈｅ ＤＢＩ ｏｆ ａｌｌ ｍｅｍｂｒａｎｅ ｇｌｙｃｅｒｏｌｉｐｉｄｓ
ｍｅａｓｕｒｅｄ. Ｓｅｖｅｒａｌ ｓｔｕｄｉｅｓ ｈａｖｅ ｅｍｐｌｏｙｅｄ ｌｉｐｉｄｏｍｉｃｓ ｔｏ
ｐｒｏｆｉｌｅ ｃｈａｎｇｅｓ ｉｎ ｍｏｌｅｃｕｌａｒ ｓｐｅｃｉｅｓ ａｎｄ ＤＢＩ ｄｕｒｉｎｇ
ｐｌａｎｔ ｇｒｏｗｔｈ ａｎｄ ｓｔｒｅｓｓ. Ｆｏｒ ｅｘａｍｐｌｅꎬ Ｚｈｅｎｇ ｅｔ ａｌ.
(２０１１) ｕｓｅｄ ａ ｌｉｐｉｄｏｍｉｃｓ ａｐｐｒｏａｃｈ ｔｏ ｐｒｏｆｉｌｅ ｔｈｅ ｃｈａｎ￣
ｇｅｓ ｉｎ ｍｏｌｅｃｕｌａｒ ｓｐｅｃｉｅｓ ｏｆ ｍｅｍｂｒａｎｅ ｇｌｙｃｅｒｏｌｉｐｉｄｓ ａｎｄ
ｔｈｕｓ ｃａｌｃｕｌａｔｅｄ ｔｈｅ ＤＢＩ ｉｎ ｆｏｕｒ ｐｌａｎｔ ｓｐｅｃｉｅｓ ｉｎ ｒｅ￣
ｓｐｏｎｓｅ ｔｏ ｆｒｅｑｕｅｎｔ ｃｈａｎｇｅｓ ｏｆ ｔｅｍｐｅｒａｔｕｒｅ.
Ｓｅｅｄｓ ｏｆ ｍｏｓｔ ｓｏｙｂｅａｎ ｖａｒｉｅｔｉｅｓ ａｒｅ ｓｅｎｓｉｔｉｖｅ ｔｏ
ｃｏｌｄ ｉｍｂｉｂｉｔｉｏｎꎬ ａｌｂｅｉｔ ｔｏ ｖａｒｉｏｕｓ ｅｘｔｅｎｔｓ. Ａｌｌｅｖｉａｔｉｏｎ
ｏｆ ｔｈｉｓ ｓｅｎｓｉｔｉｖｉｔｙ ｐｏｓｅｓ ｏｎｅ ｏｆ ｔｈｅ ｍｏｓｔ ｉｍｐｏｒｔａｎｔ
ｃｈａｌｌｅｎｇｅｓ ｔｏ ｒｅｌｉａｂｌｅ ａｎｄ ｓｕｓｔａｉｎａｂｌｅ ｓｏｙｂｅａｎ ｐｒｏ￣
ｄｕｃｔｉｏｎ ｉｎ Ｎｏｒｔｈｅａｓｔ Ｃｈｉｎａ (Ｚｈｅｎｇꎬ １９９１). Ｗｅ ｆｏｕｎｄ
ｔｗｏ ｓｏｙｂｅａｎ ｃｕｌｔｉｖａｒｓ ｃｈａｒａｃｔｅｒｉｓｅｄ ｂｙ ｄｉｆｆｅｒｅｎｔ ｌｅｖｅｌｓ
ｏｆ ｒｅｓｉｓｔａｎｃｅ ｔｏ ｉｍｂｉｂｉｔｉｏｎａｌ ｃｈｉｌｌｉｎｇ: ‘ＬＸ’ (ｃｈｉｌｌ￣
ｉｎｇ￣ｔｏｌｅｒａｎｔ) ａｎｄ ‘Ｒ５’ (ｃｈｉｌｌｉｎｇ￣ｓｅｎｓｉｔｉｖｅ). Ｔｈｅ ｐｕｒ￣
ｐｏｓｅ ｏｆ ｔｈｉｓ ｓｔｕｄｙ ｗａｓ ｔｏ ｕｓｅ ｌｉｐｉｄｏｍｉｃ ａｎａｌｙｓｉｓ ｔｏ ｄｅ￣
ｔｅｒｍｉｎｅ: (ｉ) ｈｏｗ ＤＢＩ ｃｈａｎｇｅｓ ｉｎ ｔｈｅｓｅ ｔｗｏ ｓｏｙｂｅａｎ
ｃｕｌｔｉｖａｒｓ ｄｕｒｉｎｇ ｔｈｅｉｒ ｉｍｂｉｂｉｔｉｏｎ ａｔ ｎｏｒｍａｌ ａｎｄ ｃｏｌｄ
ｔｅｍｐｅｒａｔｕｒｅｓꎻ ( ｉｉ) ｈｏｗ ＤＢＩ ｃｈａｎｇｅｓ ｄｕｒｉｎｇ ＰＥＧ
ｐｒｉｍｉｎｇ ａｎｄ ｈｏｗ ＤＢＩ ｃｈａｎｇｅｓ ｉｎ ＰＥＧ￣ｐｒｉｍｅｄ ｃｈｉｌｌ￣
ｉｎｇ￣ｓｅｎｓｉｔｉｖｅ ｓｅｅｄｓ ｓｕｂｓｅｑｕｅｎｔｌｙ ｉｍｂｉｂｅｄ ａｔ ｃｏｌｄ
ｔｅｍｐｅｒａｔｕｒｅｓꎻ ａｎｄ (ｉｉｉ) ｗｈｅｔｈｅｒ ｃｈｉｌｌｉｎｇ ｔｏｌｅｒａｎｃｅ ｉｓ
ａｓｓｏｃｉａｔｅｄ ｗｉｔｈ ａ ｃｈａｎｇｅ ｉｎ ＤＢＩ ｄｕｒｉｎｇ ｉｍｂｉｂｉｔｉｏｎ.
１　 Ｍｅｔｈｏｄｓ ａｎｄ ｍａｔｅｒｉａｌｓ
１􀆰 １　 Ｓｅｅｄｓ
Ｓｏｙｂｅａｎ ｓｅｅｄｓ ｏｆ ｔｈｅ ｔｗｏ ｃｕｌｔｉｖａｒｓꎬ ＬＸ ａｎｄ Ｒ５ꎬ
ｗｅｒｅ ｏｂｔａｉｎｅｄ ｆｒｏｍ ａ ｃｏｍｍｅｒｃｉａｌ ｓｏｕｒｃｅ. Ｔｈｅ ｓｅｅｄｓ
ｗｅｒｅ ｅｑｕｉｌｉｂｒａｔｅｄ ｔｏ １０％ ｍｏｉｓｔｕｒｅ ｏｖｅｒ ａ ｓａｔｕｒａｔｅｄ
ｓｏｌｕｔｉｏｎ ｏｆ ＬｉＣｌ ( ５３％ ｒｅｌａｔｉｖｅ ｈｕｍｉｄｉｔｙ) ｆｏｒ ｏｎｅ
ｗｅｅｋ ａｎｄ ｔｈｅｎ ｓｔｏｒｅｄ ａｔ １５ ℃ ｕｎｔｉｌ ａｎａｌｙｓｉｓ.
１􀆰 ２　 Ｓｅｅｄ ｇｅｒｍｉｎａｔｉｏｎ ａｎｄ ｓｅｎｓｉｔｉｖｉｔｙ ｔｏ ｉｍｂｉｂｉ￣
ｔｉｏｎａｌ ｃｈｉｌｌｉｎｇ ｉｎｊｕｒｙ
Ｓｅｅｄｓ ｏｆ ｔｈｅ ｔｗｏ ｃｕｌｔｉｖａｒｓ ｗｅｒｅ ｔｅｓｔｅｄ ｆｏｒ ｓｅｎｓｉ￣
ｔｉｖｉｔｙ ｔｏ ｉｍｂｉｂｉｔｉｏｎａｌ ｃｈｉｌｌｉｎｇ. Ｔｈｅｙ ｕｎｄｅｒｗｅｎｔ ｉｍｂｉ￣
ｂｉｔｉｏｎ ｆｏｒ ２４ ｈ ｉｎ ｄｉｓｔｉｌｌｅｄ ｗａｔｅｒ ａｔ ２５ ℃ ｏｒ ４ ℃ꎬ
ａｎｄ ｗｅｒｅ ｔｈｅｎ ｔｒａｎｓｆｅｒｒｅｄ ｔｏ ２５ ℃ ｆｏｒ ｆｏｕｒ ｄａｙｓ ｄｕｒ￣
ｉｎｇ ｗｈｉｃｈ ｓｅｅｄ ｇｅｒｍｉｎａｔｉｏｎ ｗａｓ ｒｅｃｏｒｄｅｄ ｕｓｉｎｇ ａ
ｃａｍｅｒａ. Ｐｅｒｃｅｎｔ ｇｅｒｍｉｎａｔｉｏｎ ｗａｓ ｍｅａｓｕｒｅｄ ｔｏ ｄｅｔｅｒ￣
ｍｉｎｅ ｔｈｅ ｓｅｎｓｉｔｉｖｉｔｙ ｔｏ ｉｍｂｉｂｉｔｉｏｎａｌ ｃｈｉｌｌｉｎｇꎬ ｆｏｕｒ
ｒｅｐｌｉｃａｔｉｏｎｓ ｗｉｔｈ ４０ ｓｅｅｄｓ ｅａｃｈ ｗｅｒｅ ｇｅｒｍｉｎａｔｅｄ ａｔ
２５ ℃ (ｕｎｐｕｌｉｓｈｅｄ ｄａｔａ).
１􀆰 ３　 Ｓｅｅｄ ｐｒｉｍｉｎｇ
Ｄｒｙ ｓｅｅｄｓ ｕｎｄｅｒｗｅｎｔ ｉｍｂｉｂｉｔｉｏｎ ｉｎ ３３％ ＰＥＧ￣
６０００ ｓｏｌｕｔｉｏｎ ｆｏｒ ｔｈｒｅｅ ｄａｙｓ ａｔ １５ ℃ . Ａｎｄ ｔｈｅｎ ｔｈｅ
ｓｅｅｄｓ ｗｅｒｅ ｗａｓｈｅｄ ｔｈｒｅｅ ｔｉｍｅｓ ｉｎ ｄｉｓｔｉｌｌｅｄ ｗａｔｅｒ ａｎｄ
ｔｈｅｎ ｄｅｓｉｃｃａｔｅｄ ｆｏｒ ｔｈｒｅｅ ｄａｙｓ ａｔ ｒｏｏｍ ｔｅｍｐｅｒａｔｕｒｅ ｔｏ
９８１２期　 　 　 ＹＵ ａｎｄ ＬＩ ｅｔ ａｌ.: Ｔｈｅ Ｄｅｇｒｅｅ ｏｆ Ｕｎｓａｔｕｒａｔｉｏｎ ｏｆ Ｐｌａｓｔｉｄｉｃ Ｍｅｍｂｒａｎｅ Ｌｉｐｉｄｓ ｉｓ Ｐｏｓｉｔｉｖｅｌｙ Ａｓｓｏｃｉａｔｅｄ 􀆺　 　 　
ａｄｊｕｓｔ ｔｈｅｉｒ ｗａｔｅｒ ｃｏｎｔｅｎｔ ｔｏ １０􀆰 ３％ ｏｎ ａｖｅｒａｇｅ (ｄｒｙ
ｗｅｉｇｈｔ ｂａｓｉｓ)ꎬ ｗｈｉｃｈ ｉｓ ｓｉｍｉｌａｒ ｔｏ ｔｈａｔ ｏｆ ｃｏｎｔｒｏｌ ｕｎ￣
ｔｒｅａｔｅｄ ｓｅｅｄｓ. Ｔｈｅ ｃｏｎｔｒｏｌ ｓｅｅｄｓ ａｎｄ ｔｈｅ ｐｒｉｍｅｄ
ｓｅｅｄｓ ｔｈｅｎ ｕｎｄｅｒｗｅｎｔ ｉｍｂｉｂｉｔｉｏｎ ａｔ ４ ℃ ｆｏｒ ２４ ｈ ｆｏｒ
ｉｍｂｉｂｉｔｉｏｎａｌ ｃｈｉｌｌｉｎｇ ｔｒｅａｔｍｅｎｔ. Ｕｎｔｒｅａｔｅｄ ｓｅｅｄｓ ｗｅｒｅ
ｕｓｅｄ ａｓ ｃｏｎｔｒｏｌｓ.
１􀆰 ４　 Ｌｉｐｉｄ ｅｘｔｒａｃｔｉｏｎ ａｎｄ ＥＳＩ / ＭＳ￣ＭＳ ａｎａｌｙｓｉｓ
Ｔｈｅ ｐｒｏｃｅｓｓ ｏｆ ｌｉｐｉｄ ｅｘｔｒａｃｔｉｏｎꎬ ＥＳＩ￣ＭＳ / ＭＳ ａ￣
ｎａｌｙｓｉｓꎬ ａｎｄ ｑｕａｎｔｉｆｉｃａｔｉｏｎ ｗａｓ ｐｅｒｆｏｒｍｅｄ ａｓ ｄｅ￣
ｓｃｒｉｂｅｄ ｐｒｅｖｉｏｕｓｌｙ ｗｉｔｈ ｍｉｎｏｒ ｍｏｄｉｆｉｃａｔｉｏｎ (Ｗｅｌｔｉ ｅｔ
ａｌ.ꎬ ２００２ꎻ Ｌｉ ｅｔ ａｌ.ꎬ ２００８ꎻ Ｚｈｅｎｇ ｅｔ ａｌ.ꎬ ２０１２).
Ｅａｃｈ ｓａｍｐｌｅ ｃｏｎｔａｉｎｅｄ ｓｅｅｄ ａｘｅｓ ｗｉｔｈ ａ ｐｏｏｌｅｄ ｄｒｙ
ｗｅｉｇｈｔ ｏｆ １０ ｔｏ ２０ ｍｇꎻ ｓａｍｐｌｅｓ ｗｅｒｅ ｈａｒｖｅｓｔｅｄ ａｔ ｔｈｅ
ｉｎｄｉｃａｔｅｄ ｓａｍｐｌｉｎｇ ｔｉｍｅ. Ｔｏ ｉｎｈｉｂｉｔ ｌｉｐｏｌｙｔｉｃ ａｃｔｉｖｉｔｙꎬ
ｓｅｅｄ ａｘｅｓ ｗｅｒｅ ｔｒａｎｓｆｅｒｒｅｄ ｉｍｍｅｄｉａｔｅｌｙ ｉｎｔｏ ３ ｍＬ ｏｆ
ｉｓｏｐｒｏｐａｎｏｌ ｗｉｔｈ ０􀆰 ０１％ ｂｕｔｙｌａｔｅｄ ｈｙｄｒｏｘｙｔｏｌｕｅｎｅ ｉｎ
ａ ７５ ℃ ｗａｔｅｒ ｂａｔｈ. Ｔｈｅ ｔｉｓｓｕｅ ｗａｓ ｅｘｔｒａｃｔｅｄ ｔｈｒｅｅ
ｔｉｍｅｓ ｗｉｔｈ ｃｈｌｏｒｏｆｏｒｍ / ｍｅｔｈａｎｏｌ (２ ∶ １) ｗｉｔｈ ０􀆰 ０１％
ｂｕｔｙｌａｔｅｄ ｈｙｄｒｏｘｙｔｏｌｕｅｎｅꎬ ｗｉｔｈ ａ ｗｅｅｋ ｏｆ ａｇｉｔａｔｉｏｎ.
Ｔｈｅ ｒｅｍａｉｎｉｎｇ ｐｌａｎｔ ｔｉｓｓｕｅ ｗａｓ ｄｒｉｅｄ ｏｖｅｒｎｉｇｈｔ ａｔ
１０５ ℃ ａｎｄ ｗｅｉｇｈｅｄ ｔｏ ｇｉｖｅ ｔｈｅ ｄｒｙ ｗｅｉｇｈｔ ｏｆ ｔｈｅ ｔｉｓ￣
ｓｕｅ. Ｌｉｐｉｄ ｓａｍｐｌｅｓ ｗｅｒｅ ａｎａｌｙｓｅｄ ｏｎ ａ ｔｒｉｐｌｅ ｑｕａｄｒｕ￣
ｐｏｌｅ ＭＳ / ＭＳ ｅｑｕｉｐｐｅｄ ｆｏｒ ＥＳＩ. Ａｕｔｏｍａｔｅｄ ＥＳＩ￣ＭＳ /
ＭＳ ａｎａｌｙｓｉｓ ｗａｓ ｐｅｒｆｏｒｍｅｄ ｉｎ ｔｈｅ Ｋａｎｓａｓ Ｌｉｐｉｄｏｍｉｃｓ
Ｒｅｓｅａｒｃｈ Ｃｅｎｔｅｒ Ａｎａｌｙｔｉｃａｌ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ ａｓ ｄｅｓｃｒｉｂｅｄ
ｐｒｅｖｉｏｕｓｌｙ (Ｋａｎｓａｓ Ｌｉｐｉｄｏｍｉｃｓ Ｒｅｓｅａｒｃｈ Ｃｅｎｔｅｒꎬ ｈｔ￣
ｔｐ: / / ｗｗｗ􀆰 ｋ￣ｓｔａｔｅ􀆰 ｅｄｕ / ｌｉｐｉｄ / ｌｉｐｉｄｏｍｉｃｓ).
１􀆰 ５　 Ｄａｔａ ａｎａｌｙｓｉｓ
Ｄａｔａ ｐｒｏｃｅｓｓｉｎｇ ｗａｓ ｐｅｒｆｏｒｍｅｄ ａｓ ｐｒｅｖｉｏｕｓｌｙ
ｄｅｓｃｒｉｂｅｄ (Ｄｅｖａｉａｈ ｅｔ ａｌ.ꎬ ２００６ꎻ Ｗｅｌｔｉ ｅｔ ａｌ.ꎬ ２００２ꎻ
Ｚｈｅｎｇ ｅｔ ａｌ.ꎬ ２０１２). ＤＢＩ ｗｅｒｅ ｃａｌｃｕｌａｔｅｄ ｕｓｉｎｇ ｔｈｅ
ｆｏｒｍｕｌａ: ＤＢＩ＝[∑(Ｎ×ｍｏｌ％ ｌｉｐｉｄ)] / １００ꎬ ｗｈｅｒｅ Ｎ
ｉｓ ｔｈｅ ｔｏｔａｌ ｎｕｍｂｅｒ ｏｆ ｄｏｕｂｌｅ ｂｏｎｄｓ ｉｎ ｔｈｅ ｔｗｏ ｆａｔｔｙ
ａｃｉｄ ｃｈａｉｎｓ ｏｆ ｅａｃｈ ｇｌｙｃｅｒｏｌｉｐｉｄ ｍｏｌｅｃｕｌｅ (Ｚｈｅｎｇ ｅｔ
ａｌ.ꎬ ２０１１ꎻ Ｏｓｍｏｎｄ ｅｔ ａｌ.ꎬ １９８２ꎻ Ｒａｗｙｌｅｒ ｅｔ ａｌ.ꎬ
１９９９ꎻ Ｂａｋｈｔ ｅｔ ａｌ.ꎬ ２００６). Ｆｉｖｅ ｒｅｐｌｉｃａｔｅｓ ｏｆ ｅａｃｈ
ｔｒｅａｔｍｅｎｔ ｗｅｒｅ ａｎａｌｙｓｅｄ. Ｔｈｅ Ｑ￣ｔｅｓｔ ｗａｓ ｐｅｒｆｏｒｍｅｄ ｏｎ
ｔｈｅ ｔｏｔａｌ ａｍｏｕｎｔ ｏｆ ｌｉｐｉｄ ｉｎ ｅａｃｈ ｃｌａｓｓꎬ ａｎｄ ｄａｔａ ｆｒｏｍ
ｄｉｓｃｏｒｄａｎｔ ｓａｍｐｌｅｓ ｗｅｒｅ ｒｅｍｏｖｅｄ. Ｔｈｅ ｄａｔａ ｗｅｒｅ ｓｕｂ￣
ｊｅｃｔｅｄ ｔｏ ｏｎｅ￣ｗａｙ ａｎａｌｙｓｉｓ ｏｆ ｖａｒｉａｎｃｅ ( ＡＮＯＶＡ)
ｗｉｔｈ ＳＰＳＳ １３􀆰 ０. Ｓｔａｔｉｓｔｉｃａｌ ｓｉｇｎｉｆｉｃａｎｃｅ ｗａｓ ｔｅｓｔｅｄ ｂｙ
Ｆｉｓｈｅｒ’ｓ ｌｅａｓｔ ｓｉｇｎｉｆｉｃａｎｔ ｄｉｆｆｅｒｅｎｃｅ (ＬＳＤ) ｍｅｔｈｏｄ.
２　 Ｒｅｓｕｌｔｓ ａｎｄ ｄｉｓｃｕｓｓｉｏｎ
２􀆰 １　 ＬＸ ａｎｄ Ｒ５ ｃｕｌｔｉｖａｒｓ ｄｉｆｆｅｒ ｍａｒｋｅｄｌｙ ｉｎ ｔｈｅｉｒ
ｓｅｎｓｉｔｉｖｉｔｙ ｔｏ ｉｍｂｉｂｉｔｉｏｎａｌ ｃｈｉｌｌｉｎｇ
Ａｆｔｅｒ ２４ ｈ ｏｆ ｉｍｂｉｂｉｔｉｏｎ ａｔ ２５ ℃ꎬ ｂｏｔｈ ｃｕｌｔｉｖａｒｓ
ｅｘｈｉｂｉｔｅｄ ａ ｓｅｅｄ ｇｅｒｍｉｎａｔｉｏｎ ｒａｔｅ ｏｆ １００％ (Ｆｉｇ􀆰 １ꎬ
Ｃｏｎｔｒｏｌ)ꎬ ｗｈｉｃｈ ｉｎｄｉｃａｔｅｄ ｔｈａｔ ａｎ ｅｘｔｒｅｍｅｌｙ ｈｉｇｈ
ｌｅｖｅｌ ｏｆ ｖｉａｂｉｌｉｔｙ ｏｆ ｔｈｅｓｅ ｓｅｅｄｓ. Ｈｏｗｅｖｅｒꎬ ＬＸ ａｎｄ
Ｒ５ ｅｘｈｉｂｉｔｅｄ ｃｏｎｔｒａｓｔｉｎｇ ｌｅｖｅｌｓ ｏｆ ｒｅｓｉｓｔａｎｃｅ ｔｏ ｉｍｂｉ￣
ｂｉｔｉｏｎａｌ ｃｈｉｌｌｉｎｇ (Ｆｉｇ􀆰 １ꎬ Ｉｍｂｉｂｉｔｉｏｎ Ｃｈｉｌｌｉｎｇ): (１)
Ｒ５ꎬ ｃｈｉｌｌｉｎｇ￣ｓｅｎｓｉｔｉｖｅ: Ｉｍｂｉｂｉｔｉｏｎ ａｔ ４ ℃ ｃａｕｓｅｄ ｌａｒｇｅ
ｒｅｄｕｃｔｉｏｎｓ ｉｎ ｓｕｒｖｉｖａｌ ａｎｄ ｓｅｅｄｌｉｎｇ ｖｉｇｏｕｒꎬ ａｎｄ ｎｏ
ｇｅｒｍｉｎａｔｉｏｎ ｏｃｃｕｒｒｅｄ ( ０ ｇｅｒｍｉｎａｔｉｏｎ ｒａｔｅꎬ ｕｎｐｕｌ￣
ｉｓｈｅｄ ｄａｔａ). Ｔｈｅ ｓｅｅｄｓ ｗｅｒｅ ｓｕｒｒｏｕｎｄｅｄ ｂｙ ａ ｃｉｒｃｌｅ
ｏｆ ａ ｌｉｇｈｔ￣ｙｅｌｌｏｗꎬ ｓｔｉｃｋｙ ｓｕｂｓｔａｎｃｅꎬ ｗｈｉｃｈ ｍａｙ ｈａｖｅ
ｂｅｅｎ ｍｉｌｄｅｗ ｏｒ ｆｕｎｇａｌ ｒｏｔ. (２) ＬＸꎬ ｃｈｉｌｌｉｎｇ￣ｒｅｓｉｓｔ￣
ａｎｔ: Ｉｍｂｉｂｉｔｉｏｎａｌ ｃｈｉｌｌｉｎｇ ｈａｄ ａ ｓｍａｌｌ ｅｆｆｅｃｔꎻ ａ ｓｍａｌｌ
ｒｅｄｕｃｔｉｏｎ ｏｆ ｒａｄｉｃｌｅ ｅｍｅｒｇｅｎｃｅ ｗａｓ ｏｂｓｅｒｖｅｄ ｃｏｍ￣
ｐａｒｅｄ ｗｉｔｈ ｔｈｅ ｃｏｎｔｒｏｌ (ｕｎｐｕｌｉｓｈｅｄ ｄａｔａ)ꎬ ｂｕｔ ｎｏｒ￣
ｍａｌ ｒａｄｉｃｌｅ ｅｘｔｅｎｓｉｏｎ ｏｃｃｕｒｒｅｄ. Ｔｈｅｒｅｆｏｒｅꎬ ｗｅ ｕｓｅｄ
ＬＸ ａｓ ａ ｃｈｉｌｌｉｎｇ￣ｒｅｓｉｓｔａｎｔ ｃｕｌｔｉｖａｒ ａｎｄ Ｒ５ ａｓ ａ ｃｈｉｌｌ￣
ｉｎｇ￣ｓｅｎｓｉｔｉｖｅ ｏｎｅ ｆｏｒ ｆｕｒｔｈｅｒ ｃｏｍｐａｒａｔｉｖｅ ｉｎｖｅｓｔｉｇａｔｉｏｎ
ｏｆ ｔｈｅ ｅｆｆｅｃｔｓ ｏｆ ｃｈｉｌｌｅｄ ｉｍｂｉｂｉｔｉｏｎ ｏｎ ｇｅｒｍｉｎａｔｉｏｎ.
Ｆｉｇ􀆰 １　 Ｔｈｅ ｓｅｎｓｉｔｉｖｉｔｙ ｏｆ ｓｏｙｂｅａｎ ｃｕｌｔｉｖａｒｓ ｔｏ ｉｍｂｉｂｉｔｉｏｎａｌ ｃｈｉｌｌｉｎｇ ｉｎｊｕｒｙ
Ｃｏｎｔｒｏｌ: Ｓｅｅｄｓ ｕｎｄｅｒｗｅｎｔ ｉｍｂｉｂｉｔｉｏｎ ｆｏｒ ２４ ｈ ｉｎ ｄｉｓｔｉｌｌｅｄ ｗａｔｅｒ ａｔ ２５ ℃ꎬ
ｆｏｌｌｏｗｅｄ ｂｙ ｇｅｒｍｉｎａｔｉｏｎ ｆｏｒ ｆｏｕｒ ｄａｙｓ ａｔ ２５ ℃ . Ｃｈｉｌｌｅｄ ｉｍｂｉｂｉｔｉｏｎ:
Ｓｅｅｄｓ ｕｎｄｅｒｗｅｎｔ ｉｍｂｉｂｉｔｉｏｎ ｆｏｒ ２４ ｈ ｉｎ ｄｉｓｔｉｌｌｅｄ ｗａｔｅｒ ａｔ ４ ℃ꎬ ｆｏｌｌｏｗｅｄ
ｂｙ ｇｅｒｍｉｎａｔｉｏｎ ｆｏｒ ｆｏｕｒ ｄａｙｓ ａｔ ２５ ℃ . ＬＸꎬ Ｌｉａｏｘｉｎꎻ Ｒ５ꎬ Ｒｉｂｅｎ ５
２􀆰 ２　 Ｅｆｆｅｃｔｓ ｏｆ ＰＥＧ ｐｒｉｍｉｎｇ ｏｎ Ｒ５ ｓｅｅｄ ｇｅｒｍｉｎａｔｉｏｎ
Ｍａｎｙ ｓｔｕｄｉｅｓ ｈａｖｅ ｉｎｄｉｃａｔｅｄ ｔｈａｔ ｏｓｍｏｐｒｉｍｉｎｇ
ｃａｎ ａｃｃｅｌｅｒａｔｅ ｓｅｅｄ ｇｅｒｍｉｎａｔｉｏｎ. Ｉｎ ｏｒｄｅｒ ｔｏ ｄｅｔｅｒ￣
０９１　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 植 物 分 类 与 资 源 学 报　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 第 ３６卷
ｍｉｎｅ ｗｈｅｔｈｅｒ ＰＥＧ￣ｏｓｍｏｃｏｎｄｉｔｉｏｎｅｄ ｓｅｅｄｓ ｗｅｒｅ
ｃｈｉｌｌｉｎｇ￣ｓｅｎｓｉｔｉｖｅꎬ ｔｈｅｙ ｕｎｄｅｒｗｅｎｔ ｉｍｂｉｂｉｔｉｏｎ ａｔ ４ ℃
ｆｏｒ ２４ ｈ ａｎｄ ｗｅｒｅ ｔｈｅｎ ｔｒａｎｓｆｅｒｒｅｄ ｔｏ ２５ ℃ . Ｆｉｇｕｒｅ ２
ｓｈｏｗｓ ｔｈａｔ ｃｏｎｔｒｏｌ ｓｅｅｄｓ ｌｏｓｔ ｔｈｅｉｒ ａｂｉｌｉｔｙ ｔｏ ｇｅｒｍｉ￣
ｎａｔｅ ａｔ ２５ ℃ ａｆｔｅｒ ｉｍｂｉｂｉｔｉｏｎ ａｔ ４ ℃ . Ｈｏｗｅｖｅｒꎬ ｔｈｅ
ｇｅｒｍｉｎａｔｉｏｎ ｏｆ ＰＥＧ￣ｏｓｍｏｃｏｎｄｉｔｉｏｎｅｄ Ｒ５ ｓｅｅｄｓ ａｔ
２５ ℃ ｗａｓ ａｌｍｏｓｔ ｕｎｃｈａｎｇｅｄ ａｆｔｅｒ ｃｈｉｌｌｅｄ ｉｍｂｉｂｉｔｉｏｎ
(ｕｎｐｕｌｉｓｈｅｄ ｄａｔａ). Ｔｈｉｓ ｅｘｐｅｒｉｍｅｎｔ ｉｎｄｉｃａｔｅｄ ｔｈａｔ
ＰＥＧ ｏｓｍｏｃｏｎｄｉｔｉｏｎｉｎｇ ｈａｓ ｃｌｅａｒ ａｄｖａｎｔａｇｅｓ ｆｏｒ ｉｍ￣
ｐｒｏｖｉｎｇ ｔｈｅ ｔｏｌｅｒａｎｃｅ ｏｆ Ｒ５ ｓｅｅｄｓ ｔｏ ｉｍｂｉｂｉｔｉｏｎａｌ
ｃｈｉｌｌｉｎｇ. Ｔｈｅｒｅｆｏｒｅꎬ ＰＥＧ ｗａｓ ｕｓｅｄ ｔｏ ｉｎｖｅｓｔｉｇａｔｅ ｔｈｅ
ｍｅｃｈａｎｉｓｍｓ ｏｆ ｉｎｊｕｒｙ ｄｕｅ ｔｏ ｉｍｂｉｂｉｔｉｏｎａｌ ｃｈｉｌｌｉｎｇ ｉｎ
ｓｅｎｓｉｔｉｖｅ ｓｅｅｄｓ.
Ｆｉｇ􀆰 ２　 Ｐｒｉｏｒ ｉｍｉｂｉｂｉｔｉｏｎ ｉｎ ｓｏｌｕｔｉｏｎｓ ｏｆ ＰＥＧ ｐｒｏｔｅｃｔｓ ａｇａｉｎｓｔ
ｃｈｉｌｌｉｎｇ ｉｎｊｕｒｙ ｉｎ ｇｅｒｍｉｎａｔｉｎｇ Ｒ５ ｓｏｙｂｅａｎ ｓｅｅｄｓ
Ｃｏｎｔｒｏｌｓ: Ｒ５ ｓｅｅｄｓ ｗｉｔｈｏｕｔ ＰＥＧ ｔｒｅａｔｍｅｎｔ ｕｎｄｅｒｗｅｎｔ ｉｍｂｉｂｉｔｉｏｎ ｆｏｒ
２４ ｈ ｉｎ ｄｉｓｔｉｌｌｅｄ ｗａｔｅｒ ａｔ ４ ℃ꎬ ｆｏｌｌｏｗｅｄ ｂｙ ｇｅｒｍｉｎａｔｉｏｎ ｆｏｒ ｆｏｕｒ ｄａｙｓ ａｔ
２５ ℃ . Ａｆｔｅｒ ＰＥＧ ｔｒｅａｔｍｅｎｔ: ＰＥＧ￣ｔｒｅａｔｅｄ Ｒ５ ｓｅｅｄｓ ｕｎｄｅｒｗｅｎｔ ｉｍｂｉｂｉ￣
ｔｉｏｎ ｆｏｒ ２４ ｈ ｉｎ ｄｉｓｔｉｌｌｅｄ ｗａｔｅｒ ａｔ ４ ℃ꎬ ｆｏｌｌｏｗｅｄ ｂｙ ｇｅｒｍｉｎａｔｉｏｎ ｆｏｒ ｆｏｕｒ
ｄａｙｓ ａｔ ２５ ℃
２􀆰 ３　 Ｐｒｏｆｉｌｉｎｇ ＤＢＩ ｃｈａｎｇｅｓ ｄｕｒｉｎｇ ｇｅｒｍｉｎａｔｉｏｎ
Ｗｅ ｈａｒｖｅｓｔｅｄ ｔｈｅ ｅｍｂｒｙｏ ａｘｅｓ ｏｆ ＬＸ ａｎｄ Ｒ５
ｓｅｅｄｓ ａｆｔｅｒ ｔｈｅｉｒ ｉｍｂｉｂｉｔｉｏｎ ｉｎ ｗａｔｅｒ ｆｏｒ ０ ｈ (ｃｏｎｔｒｏｌ)ꎬ
３ ｈꎬ ａｎｄ ２４ ｈ ａｔ ２５ ℃ ｏｒ ４ ℃ꎬ ａｎｄ ｔｈｅｎ ａｔ ｏｎｅ ａｎｄ
ｔｈｒｅｅ ｄａｙｓ ｏｆ ｇｅｒｍｉｎａｔｉｏｎ ａｔ ２５ ℃ ｆｏｒ ｌｉｐｉｄｏｍｉｃｓ
ａｎａｌｙｓｉｓ. Ｂａｓｅ ｏｎ ｔｈｅ ｗａｔｅｒ ｕｐｔａｋｅ (ｕｎｐｕｌｉｓｈｅｄ ｄａ￣
ｔａ)ꎬ ｔｈｅｓｅ ｓａｍｐｌｉｎｇ ｔｉｍｅｓ ｒｅｐｒｅｓｅｎｔ ｔｈｅ ｔｈｒｅｅ ｐｈａｓｅｓ
ｄｕｒｉｎｇ ｇｅｒｍｉｎａｔｉｏｎ ( Ｂｅｗｌｅｙꎬ １９９７ꎻ Ｙｉｎ ｅｔ ａｌ.ꎬ
２００９ꎻ Ｈａｎ ｅｔ ａｌ.ꎬ ２０１３). Ｉｍｂｉｂｉｔｉｏｎ ｆｏｒ ３ ｈ ｒｅｐｒｅ￣
ｓｅｎｔｅｄ ｔｈｅ ｐｅｒｉｏｄ ｏｆ ｒａｐｉｄ ｉｎｉｔｉａｌ ｕｐｔａｋｅ (ｐｈａｓｅ Ｉ)ꎬ
ｗｈｅｒｅａｓ ｉｍｂｉｂｉｔｉｏｎ ｆｏｒ ２４ ｈ ｒｅｐｒｅｓｅｎｔｅｄ ｔｈｅ ｐｌａｔｅａｕ
ｐｈａｓｅ ( ｐｈａｓｅ ＩＩ) . Ｐｅｎｅｔｒａｔｉｏｎ ｏｆ ｔｈｅ ｓｅｅｄ ｒａｄｉｃｌｅｓ
ｔｈｒｏｕｇｈ ｔｈｅ ｓｅｅｄ ｃｏａｔ １ ｄａｙ ａｆｔｅｒ ｔｈｅ ｂｅｇｉｎｎｉｎｇ ｏｆ
ｉｍｂｉｂｉｔｉｏｎ ｉｎｄｉｃａｔｅｄ ｔｈａｔ ｔｈｅ ｓｅｅｄ ｈａｄ ｃｏｍｐｌｅｔｅｄ
ｐｈａｓｅｓ Ｉ＋ＩＩ ａｎｄ ｗａｓ ｊｕｓｔ ｓｔａｒｔｉｎｇ ｐｈａｓｅ ＩＩＩ ( ｕｎｐｕｌ￣
ｉｓｈｅｄ ｄａｔａ). Ｕｓｉｎｇ ａ ｌｉｐｉｄｏｍｉｃｓ ａｐｐｒｏａｃｈ ｂａｓｅｄ ｏｎ
ＥＳＩ￣ＭＳ / ＭＳ (Ｗｅｌｔｉ ｅｔ ａｌ.ꎬ ２００２ꎻ Ｌｉ ｅｔ ａｌ.ꎬ ２００８)ꎬ
ｗｅ ｉｄｅｎｔｉｆｉｅｄ ａｎｄ ｑｕａｎｔｉｆｉｅｄ ｓｉｘ ｈｅａｄ￣ｇｒｏｕｐ ｃｌａｓｓｅｓ
ｏｆ ｐｈｏｓｐｈｏｌｉｐｉｄｓ: ｐｈｏｓｐｈａｔｉｄｙｌｃｈｏｌｉｎｅ (ＰＣ)ꎬ ｐｈｏｓ￣
ｐｈａｔｉｄｙｌｅｔｈａｎｏｌａｍｉｎｅ (ＰＥ)ꎬ ｐｈｏｓｐｈａｔｉｄｙｌｉｎｏｓｉｔｏｌ (ＰＩ)ꎬ
ｐｈｏｓｐｈａｔｉｄｙｌｓｅｒｉｎｅ (ＰＳ)ꎬ ｐｈｏｓｐｈａｔｉｄｉｃ ａｃｉｄ (ＰＡ)ꎬ
ａｎｄ ｐｈｏｓｐｈａｔｉｄｙｌｇｌｙｃｅｒｏｌ (ＰＧ)ꎬ ａｓ ｗｅｌｌ ａｓ ｔｗｏ ｈｅａｄ￣
ｇｒｏｕｐ ｃｌａｓｓｅｓ ｏｆ ｇａｌａｃｔｏｌｉｐｉｄｓ: ｍｏｎｏｇａｌａｃｔｏｓｙｌｄｉａｃｙｌ￣
ｇｌｙｃｅｒｏｌ (ＭＧＤＧ) ａｎｄ ｄｉｇａｌａｃｔｏｓｙｌｄｉａｃｙｌｇｌｙｃｅｒｏｌ (ＤＧ￣
ＤＧ) (Ｗｅｌｔｉ ｅｔ ａｌ.ꎬ ２００２)ꎬ ａｎｄ ｔｈｕｓ ｗｅ ｃａｌｃｕｌａｔｅｄ
ｔｈｅｉｒ ＤＢＩ ｄｕｒｉｎｇ ｔｈｅ ｔｈｒｅｅ ｐｈａｓｅｓ ｏｆ ｇｅｒｍｉｎａｔｉｏｎ
(Ｔａｂｌｅ １). Ｆｒｏｍ ａｎ ｏｖｅｒｖｉｅｗ ｏｆ ｔｈｅ ＤＢＩꎬ ｉｔ ｃａｎ ｂｅ
ｓｅｅｎ ｔｈａｔ ｔｈｅｒｅ ｗａｓ ｄｉｖｅｒｓｉｔｙ ｉｎ ｔｈｅ ｃｈａｎｇｅｓ ｉｎ ＤＢＩ
ａｍｏｎｇ ｔｈｅ ｅｉｇｈｔ ｃｌａｓｓｅｓ ｏｆ ｌｉｐｉｄｓꎬ ｄｉｆｆｅｒｅｎｃｅｓ ｂｅ￣
ｔｗｅｅｎ ｎｏｒｍａｌ ａｎｄ ｃｈｉｌｌｉｎｇ ｇｅｒｍｉｎａｔｉｏｎꎬ ａｎｄ ｄｉｆｆｅｒ￣
ｅｎｃｅｓ ｂｅｔｗｅｅｎ ＰＥＧ￣ ａｎｄ ｎｏｎ￣ＰＥＧ￣ｔｒｅａｔｅｄ Ｒ５ ｓｅｅｄｓ
ｆｏｌｌｏｗｉｎｇ ｃｈｉｌｌｅｄ ｉｍｂｉｂｉｔｉｏｎ. Ｄｅｔａｉｌｅｄ ａｎａｌｙｓｉｓ ａｎｄ
ｄｉｓｃｕｓｓｉｏｎ ａｒｅ ｐｒｅｓｅｎｔｅｄ ｉｎ ｌａｔｅｒ ｓｅｃｔｉｏｎｓ.
２􀆰 ４　 Ｐａｔｔｅｒｎｓ ｏｆ ｃｈａｎｇｅｓ ｉｎ ｌｅｖｅｌｓ ｏｆ ｅｘｔｒａｐｌａｓｔｉｄｉｃ
ａｎｄ ｐｌａｓｔｉｄｉｃ ＤＢＩ ｄｉｆｆｅｒ ａｆｔｅｒ ｉｍｂｉｂｉｔｉｏｎ ａｔ ２５ ℃
Ｔｏ ｕｎｄｅｒｓｔａｎｄ ｂｅｔｔｅｒ ｔｈｅ ｐａｔｔｅｒｎｓ ｏｆ ＤＢＩ ｃｈａｎｇｅ
ｄｕｒｉｎｇ ｇｅｒｍｉｎａｔｉｏｎꎬ ｗｅ ｐｒｏｆｉｌｅｄ ｔｈｅ ＤＢＩ ｐｈａｓｅ ｂｙ
ｐｈａｓｅ ｆｒｏｍ ｄｒｙ ｓｅｅｄｓ ｔｏ ｔｈｒｅｅ ｄａｙｓ ｏｆ ｇｅｒｍｉｎａｔｉｏｎ ｉｎ
ＬＸ ａｎｄ Ｒ５ ｓｅｅｄｓ ｉｍｂｉｂｅｄ ａｔ ｔｈｅ ｎｏｒｍａｌ ｔｅｍｐｅｒａｔｕｒｅ
ｔｅｓｔｅｄ (２５ ℃). Ｔａｂｌｅ １ ｓｈｏｗｓ ｔｈａｔ ＬＸ ａｎｄ Ｒ５ ｈａｄ
ｔｈｅ ｓａｍｅ ｐａｔｔｅｒｎｓ ｏｆ ｃｈａｎｇｅ ａｆｔｅｒ ｉｍｂｉｂｉｔｉｏｎ ａｔ ２５ ℃ꎻ
ｎａｍｅｌｙꎬ ｔｈｅ ｃｏｎｔｅｎｔ ｏｆ ｔｏｔａｌ ＤＢＩ ｉｎｃｒｅａｓｅｄ ｗｉｔｈ ｔｉｍｅ.
Ａｆｔｅｒ ｔｈｒｅｅ ｄａｙｓ ｏｆ ｇｅｒｍｉｎａｔｉｏｎꎬ ｔｈｅ ｃｏｎｔｅｎｔｓ ｏｆ ＭＧ￣
ＤＧ ａｎｄ ＤＧＤＧ ｉｎｃｒｅａｓｅｄ ｍａｒｋｅｄｌｙꎬ ｗｈｅｒｅａｓ ｌｅｖｅｌｓ
ｏｆ ＰＧ ｓｉｇｎｉｆｉｃａｎｔｌｙ ｄｅｃｒｅａｓｅｄꎻ ｈｏｗｅｖｅｒꎬ ｔｈｅ ｃｏｎｔｅｎｔｓ
ｏｆ ＰＩꎬ ＰＥꎬ ＰＣꎬ ＰＡꎬ ａｎｄ ＰＳ ｃｈａｎｇｅｄ ｖｅｒｙ ｌｉｔｔｌｅ.
Ｔｈｅ ｅｉｇｈｔ ｃｌａｓｓｅｓ ｏｆ ｌｉｐｉｄｓ ｃａｎ ｂｅ ｄｉｖｉｄｅｄ ｉｎｔｏ
ｅｘｔｒａｐｌａｓｔｉｄｉｃ ａｎｄ ｐｌａｓｔｉｄｉｃ ｔｙｐｅｓ. Ｐｌａｓｔｉｄｉｃ ｌｉｐｉｄｓ ｉｎ￣
ｃｌｕｄｅ ＭＧＤＧ ａｎｄ ＤＧＤＧꎬ ｗｈｉｃｈ ａｒｅ ｔｈｅ ｄｏｍｉｎａｎｔ
ｃｏｍｐｏｎｅｎｔｓ ｏｆ ｃｈｌｏｒｏｐｌａｓｔ ｍｅｍｂｒａｎｅｓ (Ｊａｒｖｉｓ ｅｔ ａｌ.ꎬ
２０００ꎻ Ｄｕｂｏｔｓ ｅｔ ａｌ.ꎬ ２０１０). Ｆｉｖｅ ｏｆ ｔｈｅ ｏｔｈｅｒ ｃｌａｓ￣
ｓｅｓ ｏｆ ｌｉｐｉｄｓ (ＰＣꎬ ＰＥꎬ ＰＩꎬ ＰＳꎬ ａｎｄ ＰＡ) ｂｅｌｏｎｇ ｔｏ
ｔｈｅ ｅｘｔｒａｐｌａｓｔｉｄｉｃ ｔｙｐｅ (Ｌｉ ｅｔ ａｌ.ꎬ ２００８ ). ＰＧ ｌｉｐｉｄｓ
ｉｎｃｌｕｄｅ ｂｏｔｈ ｃｌａｓｓｅｓ: ３４ ∶ ４ ＰＧ ( ｔｏｔａｌ ｃａｒｂｏｎ ｎｕｍ￣
ｂｅｒ: ｄｏｕｂｌｅ￣ｂｏｎｄ ｎｕｍｂｅｒ)ꎬ ｗｈｉｃｈ ｈａｒｂｏｕｒｓ ａ １６∶１
ａｃｙｌ ｃｈａｉｎꎬ ｉｓ ｐａｒｔ ｏｆ ｔｈｅ ｐｌａｓｔｉｄｉｃ ｍｅｍｂｒａｎｅꎬ ｗｈｅｒｅａｓ
１９１２期　 　 　 ＹＵ ａｎｄ ＬＩ ｅｔ ａｌ.: Ｔｈｅ Ｄｅｇｒｅｅ ｏｆ Ｕｎｓａｔｕｒａｔｉｏｎ ｏｆ Ｐｌａｓｔｉｄｉｃ Ｍｅｍｂｒａｎｅ Ｌｉｐｉｄｓ ｉｓ Ｐｏｓｉｔｉｖｅｌｙ Ａｓｓｏｃｉａｔｅｄ 􀆺　 　 　
ｂｏｔｈ ３４∶１ ＰＧ ａｎｄ ３４ ∶ ２ ＰＧ ａｒｅ ｅｘｔｒａｐｌａｓｔｉｄｉｃ ｌｉｐｉｄｓ
(Ｗｅｌｔｉ ｅｔ ａｌ.ꎬ ２００２ꎻ Ｍａｒｅｃｈａｌ ｅｔ ａｌ.ꎬ １９９７). Ｉｎ ｓｏｙ￣
ｂｅａｎ ｓｅｅｄ ａｘｅｓꎬ ＰＧ ｉｎｃｌｕｄｅｓ ３４ ∶ １ ＰＧꎬ ３４ ∶ ２ ＰＧꎬ
ａｎｄ ３４∶３ ＰＧꎬ ｂｕｔ ｎｏｔ ３４ ∶ ４ ＰＧ (ｄａｔａ ｎｏｔ ｓｈｏｗｎ).
Ａｃｃｏｒｄｉｎｇｌｙꎬ ｉｎ ｔｈｉｓ ｃａｓｅꎬ ＰＧ ｃａｎ ｂｅ ｃｌａｓｓｉｆｉｅｄ ａｓ
ｅｘｔｒａｐｌａｓｔｉｄｉｃ ｌｉｐｉｄｓ. Ａｓ ｓｕｃｈꎬ ｔｈｅ ｄａｔａ ｏｂｔａｉｎｅｄ ｉｎ
ｔｈｉｓ ｓｔｕｄｙ ｉｎｄｉｃａｔｅ ｔｈａｔ ｅｘｔｒａｐｌａｓｔｉｄｉｃ ａｎｄ ｐｌａｓｔｉｄｉｃ
ｌｉｐｉｄｓ ａｒｅ ａｆｆｅｃｔｅｄ ｄｉｆｆｅｒｅｎｔｌｙ ｂｙ ｉｍｂｉｂｉｔｉｏｎ ａｔ ２５ ℃.
Ｔｈｅｓｅ ｄｉｆｆｅｒｅｎｃｅｓ ｍａｙ ｂｅ ａｓｓｏｃｉａｔｅｄ ｗｉｔｈ ｔｈｅ ｓｐｅｃｉａｌ
ｂｉｏｌｏｇｉｃａｌ ｓｉｇｎｉｆｉｃａｎｃｅ ｏｆ ｅｘｔｒａｐｌａｓｔｉｄｉｃ ａｎｄ ｐｌａｓｔｉｄｉｃ
ｍｅｍｂｒａｎｅｓ. Ｄｒｙ ｓｅｅｄｓ ｈａｄ ｖｅｒｙ ｌｏｗ ｌｅｖｅｌｓ ｏｆ ｐｌａｓｔｉｄｉｃ
ＤＢＩ (Ｔａｂｌｅ １)ꎬ ｗｈｉｃｈ ｃｏｎｆｉｒｍｅｄ ｔｈａｔ ｐｌａｓｔｉｄｓ ｗｅｒｅ
ｓｃａｒｃｅ ｉｎ ｄｒｙ ｓｅｅｄｓ. Ｔｈｅ ｃｏｎｔｅｎｔ ｏｆ ｐｌａｓｔｉｄｉｃ ｍｅｍ￣
ｂｒａｎｅ ＤＢＩ ｉｎｃｒｅａｓｅｄ ａｌｏｎｇ ｗｉｔｈ ｓｅｅｄ ｇｅｒｍｉｎａｔｉｏｎ.
Ｔｈｉｓ ｓｕｇｇｅｓｔｅｄ ｔｈａｔ ＭＧＤＧ ａｎｄ ＤＧＤＧ ｓｙｎｔｈｅｓｉｓ ａｎｄ
ｃｈｌｏｒｏｐｌａｓｔ ｄｅｖｅｌｏｐｍｅｎｔ ｏｃｃｕｒｒｅｄ ｄｕｒｉｎｇ ｔｈｉｓ ｐｅｒｉｏｄ.
Ｂｅｃａｕｓｅ ＭＧＤＧ ａｎｄ ＤＧＤＧ ａｒｅ ｔｈｅ ｄｏｍｉｎａｎｔ ｃｏｍｐｏ￣
ｎｅｎｔｓ ｏｆ ｔｈｙｌａｋｏｉｄ ｍｅｍｂｒａｎｅｓꎬ ｔｈｅｙ ａｒｅ ｔｈｅ ｍａｉｎ ｃｏｎ￣
ｔｒｉｂｕｔｏｒｓ ｔｏ ｍｅｍｂｒａｎｅ ｕｎｓａｔｕｒａｔｉｏｎ ｂｅｃａｕｓｅ ｔｈｅｙ ａｌｓｏ
ｈａｒｂｏｕｒ ａ ｒｅｌａｔｉｖｅｌｙ ｈｉｇｈ ｌｅｖｅｌ ｏｆ ｔｒｉｅｎｏｉｃ ｆａｔｔｙ ａｃｉｄｓ.
Ｆｏｒ ａｌｌ ｇｌｙｃｅｒｏｌｉｐｉｄ ｃｌａｓｓｅｓꎬ ｔｈｅ ｃｈａｎｇｅｓ ｉｎ ＤＢＩ
ｗｅｒｅ ｓｍａｌｌ ａｔ ｐｈａｓｅｓ Ｉ ａｎｄ ＩＩ. Ｈｏｗｅｖｅｒꎬ ｄｕｒｉｎｇ
ｐｈａｓｅ ＩＩＩꎬ ｄｒａｍａｔｉｃ ａｌｔｅｒａｔｉｏｎｓ ｔｏｏｋ ｐｌａｃｅ ｉｎ ｂｏｔｈ ｔｈｅ
ｅｘｔｒａｐｌａｓｔｉｄｉｃ ａｎｄ ｐｌａｓｔｉｄｉｃ ｌｉｐｉｄｓ ｏｆ ｔｈｅ ｔｗｏ ｃｕｌｔｉ￣
ｖａｒｓ. Ｔｈｉｓ ｗａｓ ｐｒｏｂａｂｌｙ ｂｅｃａｕｓｅꎬ ｄｕｒｉｎｇ ｉｍｂｉｂｉｔｉｏｎ
(ｐｈａｓｅｓ Ｉ ａｎｄ ＩＩ)ꎬ ｓｅｅｄｓ ｍａｉｎｌｙ ａｄｊｕｓｔ ｔｈｅｉｒ ｌｉｐｉｄ
ｃｏｍｐｏｓｉｔｉｏｎ ｕｓｉｎｇ ｅｘｉｓｔｉｎｇ ｓｕｂｓｔａｎｃｅｓ ｉｎ ｏｒｄｅｒ ｔｏ ｒｅ￣
ｓｐｏｎｄ ｔｏ ｔｈｅ ｌｅｖｅｌ ｏｆ ｈｙｄｒａｔｉｏｎꎬ ｗｈｅｒｅａｓ ｅｎｚｙｍｅｓ
ｉｎｉｔｉａｔｅ ｍｅｔａｂｏｌｉｓｍ ａｎｄ ｔｈｅ ｓｙｎｔｈｅｓｉｓ ｏｆ ｎｅｗ ｐｏｌｙｕｎ￣
ｓａｔｕｒａｔｅｄ ｏｒ ｓａｔｕｒａｔｅｄ ｆａｔｔｙ ａｃｉｄｓ ｉｎ ｏｒｄｅｒ ｔｏ ｒｅｓｔｏｒｅ
ｔｈｅｉｒ ｉｎｔｅｇｒｉｔｙ ａｎｄ ｆｌｕｉｄｉｔｙ ｓｔａｔｅ ｐｏｓｔ￣ｇｅｒｍｉｎａｔｉｏｎ
(ｐｈａｓｅ ＩＩＩ) . Ｔｈｅｒｅｆｏｒｅꎬ ｔｈｅ ＤＢＩ ｃｈａｎｇｅｄ ｌｉｔｔｌｅ ｄｕ￣
ｒｉｎｇ ｉｍｂｉｂｉｔｉｏｎꎬ ｂｕｔ ｄｉｓｐｌａｙｅｄ ｓｉｇｎｉｆｉｃａｎｔ ｃｈａｎｇｅｓ ａｔ
ｐｈａｓｅ ＩＩＩꎻ ｉｎ ａｄｄｉｔｉｏｎꎬ ｃｈｌｏｒｏｐｌａｓｔ ｄｅｖｅｌｏｐｍｅｎｔ ｗａｓ
ｔｈｅ ｍａｉｎ ｏｃｃｕｒｒｅｎｃｅ ｄｕｒｉｎｇ ｐｏｓｔ￣ｇｅｒｍｉｎａｔｉｏｎ.
２􀆰 ５　 Ｔｈｅ ｅｆｆｅｃｔｓ ｏｆ ｃｈｉｌｌｅｄ ｉｍｂｉｂｉｔｉｏｎ ｏｎ ｔｈｅ ＤＢＩ
ｉｎ ｃｈｉｌｌｉｎｇ￣ｔｏｌｅｒａｎｔ ｓｅｅｄｓ
Ｔｏ ｓｔｕｄｙ ｈｏｗ ｃｈｉｌｌｅｄ ｉｍｂｉｂｉｔｉｏｎ ａｆｆｅｃｔｓ ＤＢＩꎬ ｗｅ
ｃｏｍｐａｒｅｄ ｔｈｅ ＤＢＩ ｖａｌｕｅｓ ｏｆ ＬＸ ｓｅｅｄｓ ｉｍｂｉｂｅｄ ａｔ ２５℃
ａｎｄ ｔｈｏｓｅ ｉｍｂｉｂｅｄ ａｔ ４ ℃ . Ｔｈｅ ｐａｔｔｅｒｎｓ ｏｆ ｃｈａｎｇｅｓ
ｉｎ ｔｈｅ ＤＢＩ ｏｆ ｅｘｔｒａｐｌａｓｔｉｄｉｃ ａｎｄ ｐｌａｓｔｉｄｉｃ ｌｉｐｉｄｓ ｗｅｒｅ
ｓｉｍｉｌａｒ ｂｅｔｗｅｅｎ ｓｅｅｄｓ ｉｍｂｉｂｅｄ ａｔ ｎｏｒｍａｌ ａｎｄ ｃｏｌｄ
ｔｅｍｐｅｒａｔｕｒｅｓ ( Ｔａｂｌｅ １). Ｉｎｃｒｅａｓｅｓ ｉｎ ｔｈｅ ｐｌａｓｔｉｄｉｃ
ｍｅｍｂｒａｎｅ ＤＢＩ ａｎｄ ｄｅｃｒｅａｓｅｓ ｏｆ ｅｘｔｒａｐｌａｓｔｉｄｉｃ ＰＧ
ＤＢＩ ａｆｔｅｒ ｉｍｂｉｂｉｔｉｏｎ ａｔ ４ ℃ ｉｍｂｉｂｉｔｉｏｎ ｗｅｒｅ ｓｌｏｗｅｒ
ｔｈａｎ ｔｈｏｓｅ ｏｂｓｅｒｖｅｄ ａｆｔｅｒ ｉｍｂｉｂｉｔｉｏｎ ａｔ ２５ ℃ . Ｆｏｒ ｅｘ￣
ａｍｐｌｅꎬ ｔｈｅ ＤＧＤＧ ＤＢＩ ａｆｔｅｒ ｉｍｂｉｂｉｔｉｏｎ ａｔ ４℃ (４􀆰 ５７)
ｗａｓ ｌｏｗｅｒ ｔｈａｎ ｔｈａｔ ａｔ ２５ ℃ (４􀆰 ９０) ａｆｔｅｒ ｏｎｅ ｄａｙ ｏｆ
ｇｅｒｍｉｎａｔｉｏｎ ( Ｔａｂｌｅ １ ). Ｈｏｗｅｖｅｒꎬ ｔｈｅｒｅ ｗａｓ ｎｏ
ｄｉｆｆｅｒｅｎｃｅ ａｆｔｅｒ ｔｈｒｅｅ ｄａｙｓ ｏｆ ｇｅｒｍｉｎａｔｉｏｎ. Ｔｈｅｓｅ ｒｅ￣
ｓｕｌｔｓ ｉｎｄｉｃａｔｅ ｔｈａｔ ｃｈｉｌｌｉｎｇ ｄｅｌａｙｅｄ ａｎ ｉｎｃｒｅａｓｅ ｉｎ ｔｈｅ
ＤＢＩ ｏｆ ｐｌａｓｔｉｄｉｃ ｌｉｐｉｄｓ.
２􀆰 ６ 　 Ｄｉｆｆｅｒｅｎｔｉａｌ ｃｈａｎｇｅｓ ｉｎ ＤＢＩ ｂｅｔｗｅｅｎ ＬＸ
ａｎｄ Ｒ５ ｆｏｌｌｏｗｉｎｇ ｃｈｉｌｌｅｄ ｉｍｂｉｂｉｔｉｏｎ
Ｓｅｖｅｒｅ ｉｎｊｕｒｙ ｏｃｃｕｒｒｅｄ ｉｎ Ｒ５ ｓｅｅｄｓ ａｆｔｅｒ ｉｍｂｉｂｉ￣
ｔｉｏｎ ａｔ ａ ｌｏｗ ｔｅｍｐｅｒａｔｕｒｅ. Ｔｏ ｒｅｖｅａｌ ｗｈｅｔｈｅｒ ＤＢＩ
ｃｈａｎｇｅ ｉｓ ａｓｓｏｃｉａｔｅｄ ｗｉｔｈ ｉｍｂｉｂｉｔｉｏｎａｌ ｃｈｉｌｌｉｎｇ ｉｎｊｕ￣
ｒｙꎬ ｗｅ ｃｏｍｐａｒｅｄ ｔｈｅ ｅｘｔｒａｐｌａｓｔｉｄｉｃ ａｎｄ ｐｌａｓｔｉｄｉｃ ＤＢＩ
ｏｆ Ｒ５ ｗｉｔｈ ｔｈｏｓｅ ｏｆ ＬＸ ｓｅｅｄｓ ｓｕｂｊｅｃｔｅｄ ｔｏ ｃｈｉｌｌｅｄ ｉｍ￣
ｂｉｂｉｔｉｏｎ (Ｔａｂｌｅ １). Ｔｈｅ ＤＢＩ ｏｆ ｔｈｅ ｔｗｏ ｃｕｌｔｉｖａｒｓ ｅｘ￣
ｈｉｂｉｔｅｄ ｄｉｆｆｅｒｅｎｔ ｃｈａｎｇｅｓ. Ｉｎ ｓｅｅｄｓ ｏｆ ｔｈｅ ｔｏｌｅｒａｎｔ
ｃｕｌｔｉｖａｒ ＬＸꎬ ｉｍｂｉｂｉｔｉｏｎ ａｔ ４ ℃ ｃａｕｓｅｄ ｄｒａｍａｔｉｃ ｉｎ￣
ｃｒｅａｓｅｓ ｉｎ ｔｈｅ ｌｅｖｅｌｓ ｏｆ ｔｏｔａｌ ＤＢＩ ａｎｄ ｐｌａｓｔｉｄｉｃ ＤＢＩ
(ＭＧＤＧ ａｎｄ ＤＧＤＧ)ꎬ ｗｉｔｈ ＭＧＤＧ ｉｎｃｒｅａｓｉｎｇ ｆｒｏｍ
３􀆰 ７５ (ｃｏｎｔｒｏｌ) ｔｏ ５􀆰 ７６ (ｇｅｒｍｉｎａｔｉｏｎ ３ ｄ). Ｈｏｗｅｖ￣
ｅｒꎬ ＭＧＤＧ ａｎｄ ＤＧＤＧ ｄｉｄ ｎｏｔ ｉｎｃｒｅａｓｅ ｏｒ ｅｖｅｎ ｄｅ￣
ｃｒｅａｓｅｄ ｉｎ ｔｈｅ ｓｅｎｓｉｔｉｖｅ ｃｕｌｔｉｖａｒ Ｒ５ ｆｏｌｌｏｗｉｎｇ ｉｍｂｉｂｉ￣
ｔｉｏｎａｌ ｃｈｉｌｌｉｎｇ: ＭＧＤＧ ｄｅｃｒｅａｓｅｄ ｆｒｏｍ ５􀆰 ２１ ( ｃｏｎ￣
ｔｒｏｌ) ｔｏ ４􀆰 ６５ (ｇｅｒｍｉｎａｔｉｏｎ ３ ｄ). Ｔｈｉｓ ｉｎｄｉｃａｔｅｄ ｔｈａｔ
ｔｈｅ ＤＢＩ ｏｆ Ｒ５ ｓｅｅｄｓ ａｆｔｅｒ ｉｍｂｉｂｉｔｉｏｎ ａｔ ４ ℃ ｄｉｆｆｅｒｅｄ
ｍａｒｋｅｄｌｙ ｆｒｏｍ ｔｈａｔ ｏｆ ＬＸ ｓｅｅｄｓ ｗｉｔｈ ｎｏｒｍａｌ ｇｅｒｍｉｎａ￣
ｔｉｏｎ. Ｌｏｗ ＤＢＩ ｌｅｖｅｌｓ ｏｆ ＭＧＤＧ ａｎｄ ＤＧＤＧ ｉｎ Ｒ５
ｓｅｅｄｓ ｃｏｕｌｄ ｂｅ ａｓｓｏｃｉａｔｅｄ ｗｉｔｈ ｔｈｅｉｒ ｓｅｖｅｒｅ ｉｎｊｕｒｙ
ｄｕｅ ｔｏ ｃｈｉｌｌｅｄ ｉｍｂｉｂｉｔｉｏｎ. Ｉｎ ｏｔｈｅｒ ｗｏｒｄｓꎬ ｃｈａｎｇｅｓ ｉｎ
ｔｈｅ ｄｅｇｒｅｅ ｏｆ ｕｎｓａｔｕｒａｔｉｏｎ ｏｆ ｍｅｍｂｒａｎｅ ｌｉｐｉｄｓ ｏｆ ｓｏｙ￣
ｂｅａｎ ｓｅｅｄｓ ｗｅｒｅ ｓｕｇｇｅｓｔｅｄ ｔｏ ｂｅ ｒｅｌａｔｅｄ ｔｏ ｔｈｅ ｔｏｌｅｒ￣
ａｎｃｅ ｏｆ ｉｍｂｉｂｉｔｉｏｎａｌ ｃｈｉｌｌｉｎｇ.
Ｇｉｖｅｎ ｔｈａｔ ｄｒｙ ｓｅｅｄｓ ｄｏ ｎｏｔ ｃｏｎｔａｉｎ ｃｈｌｏｒｏｐｌａｓｔｓ
ｆｏｒ ｐｈｏｔｏｓｙｎｔｈｅｓｉｓꎬ ｔｈｅ ｄｅｖｅｌｏｐｍｅｎｔ ｏｆ ｃｈｌｏｒｏｐｌａｓｔｓ
ｔｏ ｐｒｏｖｉｄｅ ＡＴＰ ｄｕｒｉｎｇ ｓｅｅｄ ｇｅｒｍｉｎａｔｉｏｎ ｉｓ ｅｓｓｅｎｔｉａｌ
ｆｏｒ ｓｅｅｄｓ ｔｏ ｏｖｅｒｃｏｍｅ ｉｍｂｉｂｉｔｉｏｎａｌ ｃｈｉｌｌｉｎｇ ａｎｄ ｔｏ
ｇｒｏｗ. Ｐｈｏｔｏｓｙｎｔｈｅｓｉｓ ｒｅｑｕｉｒｅｓ ｈｉｇｈ ｌｅｖｅｌｓ ｏｆ ｍｅｍ￣
ｂｒａｎｅ ｐｏｌｙｕｎｓａｔｕｒａｔｉｏｎ (Ｍｃｃｏｎｎ ａｎｄ Ｂｒｏｗｓｅꎬ １９９８).
Ａ ｈｉｇｈ ＤＢＩ ｈｅｌｐｓ ｔｏ ｍａｉｎｔａｉｎ ｔｈｅ ｆｌｕｉｄｉｔｙ ｏｆ ｍｅｍ￣
２９１　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 植 物 分 类 与 资 源 学 报　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 第 ３６卷
ｂｒａｎｅｓ ｉｎ ｏｒｄｅｒ ｔｏ ｓｕｓｔａｉｎ ｔｈｅ ｆｕｎｃｔｉｏｎａｌ ａｃｔｉｖｉｔｙ ｏｆ
ｍｅｍｂｒａｎｅ ｐｒｏｔｅｉｎｓ ａｎｄ ｔｈｅ ｍｅｍｂｒａｎｅｓ ｔｈｅｍｓｅｌｖｅｓ.
ＭＧＤＧ ａｎｄ ＤＧＤＧꎬ ｔｈｅ ｄｏｍｉｎａｎｔ ｃｏｍｐｏｎｅｎｔｓ ｏｆ ｔｈｙ￣
ｌａｋｏｉｄ ｍｅｍｂｒａｎｅｓꎬ ａｒｅ ｔｈｅ ｍａｉｎ ｃｏｎｔｒｉｂｕｔｏｒｓ ｔｏ
ｍｅｍｂｒａｎｅ ｕｎｓａｔｕｒａｔｉｏｎ ｂｅｃａｕｓｅ ｔｈｅｙ ｈａｒｂｏｕｒ ａ ｒｅｌａ￣
ｔｉｖｅｌｙ ｈｉｇｈ ｌｅｖｅｌ ｏｆ ｔｒｉｅｎｏｉｃ ｆａｔｔｙ ａｃｉｄｓ.
Ｔｈｅ ｄｅｓａｔｕｒａｔｉｏｎ ｏｆ ｌｉｐｉｄｓ ｉｎ ｐｌａｎｔｓ ｓｔａｒｔｓ ｗｉｔｈ
ｔｈｅ ｓｙｎｔｈｅｓｉｓ ｏｆ １６ ∶ ０ ａｎｄ １８ ∶ ０ ｆａｔｔｙ ａｃｉｄｓ (Ｗａｌｌｉｓ
ａｎｄ Ｂｒｏｗｓｅꎬ ２００２ꎻ Ｚｈｅｎｇ ｅｔ ａｌ.ꎬ ２０１１). Ｄｅｓａｔｕｒａｔｉｏｎ
ｉｓ ｍｅｄｉａｔｅｄ ｂｙ ａ ｓｅｒｉｅｓ ｏｆ ｄｅｓａｔｕｒａｓｅｓ ｔｈａｔ ａｒｅ ｌｏｃａｔｅｄ
Ｔａｂｌｅ １　 Ｃｈａｎｇｅｓ ｉｎ ｔｈｅ ｄｏｕｂｌｅ￣ｂｏｎｄ ｉｎｄｅｘ (ＤＢＩ) ｏｆ ｅａｃｈ ｌｉｐｉｄ ｃｌａｓｓ ａｔ ２５ ℃ ｏｒ ４ ℃ ｉｎ ＬＸ ａｎｄ Ｒ５
Ｓｅｅｄｓ ｕｎｄｅｒｗｅｎｔ ｉｍｂｉｂｉｔｉｏｎ ｉｎ ｗａｔｅｒ ａｔ ２５ ℃ ｏｒ ４ ℃ ｆｏｒ ３ ｈ ａｎｄ ２４ ｈꎬ ａｎｄ ｗｅｒｅ ｔｈｅｎ ｔｒａｎｓｆｅｒｒｅｄ ｔｏ ２５ ℃ ｆｏｒ ｇｅｒｍｉｎａｔｉｏｎ ｆｏｒ ｏｎｅ ａｎｄ ｔｈｒｅｅ
ｄａｙｓ. Ｖａｌｕｅｓ ａｒｅ ｍｅａｎｓ ± ＳＥ (ｎ＝ ４ ｏｒ ５) . Ｖａｌｕｅｓ ｉｎ ｔｈｅ ｓａｍｅ ｒｏｗ ｗｉｔｈ ｄｉｆｆｅｒｅｎｔ ｌｅｔｔｅｒｓ ａｒｅ ｓｉｇｎｉｆｉｃａｎｔｌｙ ｄｉｆｆｅｒｅｎｔ (Ｐ < ０􀆰 ０５) . ＤＢＩ＝(∑[Ｎ
× ｍｏｌ％ ｍｏｌｅｃｕｌａｒ ｓｐｅｃｉｅｓ]) / １００ꎬ ｗｈｅｒｅ Ｎ ｉｓ ｔｈｅ ｎｕｍｂｅｒ ｏｆ ｄｏｕｂｌｅ ｂｏｎｄｓ ｉｎ ｅａｃｈ ｍｏｌｅｃｕｌａｒ ｓｐｅｃｉｅｓ. ＬＸꎬ Ｌｉａｏｘｉｎꎻ Ｒ５ꎬ Ｒｉｂｅｎ ５
Ｌｉｐｉｄ
ｃｌａｓｓ Ｔｒｅａｔｍｅｎｔ / ℃
Ｄｏｕｂｌｅ￣ｂｏｎｄ ｉｎｄｅｘ (ＤＢＩ)
Ｃｏｎｔｒｏｌ Ｉｍｂｉｂｉｔｉｏｎ３ ｈ: ｐｈａｓｅ Ｉ)
Ｉｍｂｉｂｉｔｉｏｎ
２４ ｈ: ｐｈａｓｅ ＩＩ
Ｇｅｒｍｉｎａｔｉｏｎ
１ ｄ: ｐｈａｓｅ ＩＩＩ
Ｇｅｒｍｉｎａｔｉｏｎ
３ ｄ: ｐｈａｓｅ ＩＩＩ
ＰＧ
ＬＸ ２５４
２􀆰 ３７ ± ０􀆰 ０３ｂ
２􀆰 ３７ ± ０􀆰 ０３ｂ
２􀆰 ４８ ± ０􀆰 ０２ａ
２􀆰 ４０ ± ０􀆰 ０３ｂ
２􀆰 ３６ ± ０􀆰 ０１ｂ
２􀆰 ４８ ± ０􀆰 ０３ａ
１􀆰 ６９ ± ０􀆰 ０５ｃ
１􀆰 ８８ ± ０􀆰 ０８ｃ
１􀆰 ６４ ± ０􀆰 ０２ｃ
１􀆰 ５９ ± ０􀆰 ０４ｄ
Ｒ５ ２５４
２􀆰 ４３ ± ０􀆰 ０１ａ
２􀆰 ４３ ± ０􀆰 ０１ａ
２􀆰 ４３ ± ０􀆰 ０３ａ
２􀆰 ３３ ± ０􀆰 ０１ｂ
２􀆰 ４１ ± ０􀆰 ０２ａ
２􀆰 ４４ ± ０􀆰 ０３ａ
１􀆰 ９８ ± ０􀆰 ０６ｂ
２􀆰 ０９ ± ０􀆰 ０３ｃ
１􀆰 ５９ ± ０􀆰 ０６ｃ
１􀆰 ９３ ± ０􀆰 ０５ｄ
ＰＩ
ＬＸ ２５４
２􀆰 ５１ ± ０􀆰 ０１ａｂ
２􀆰 ５１ ± ０􀆰 ０１ｂ
２􀆰 ５２ ± ０􀆰 ０１ａ
２􀆰 ５４ ± ０􀆰 ０２ａ
２􀆰 ５０ ± ０􀆰 ０１ｂ
２􀆰 ５３ ± ０􀆰 ０１ａ
２􀆰 ４２ ± ０􀆰 ０１ｄ
２􀆰 ３８ ± ０􀆰 ０１ｃ
２􀆰 ６８ ± ０􀆰 ０２ｃ
２􀆰 ５２ ± ０􀆰 ０２ａｂ
Ｒ５ ２５４
２􀆰 ５３ ± ０􀆰 ０２ｂ
２􀆰 ５３ ± ０􀆰 ０２ａ
２􀆰 ５４ ± ０􀆰 ０１ｂ
２􀆰 ５４ ± ０􀆰 ０２ａ
２􀆰 ４９ ± ０􀆰 ０１ｃ
２􀆰 ５６ ± ０􀆰 ０１ａ
２􀆰 ３６ ± ０􀆰 ０１ｄ
２􀆰 ３９ ± ０􀆰 ０２ｂ
２􀆰 ７０ ± ０􀆰 ０１ａ
２􀆰 ３６ ± ０􀆰 ０１ｂ
ＰＥ
ＬＸ ２５４
３􀆰 ２９ ± ０􀆰 ０３ａ
３􀆰 ２９ ± ０􀆰 ０３ａ
３􀆰 ２４ ± ０􀆰 ０６ｂ
３􀆰 ２８ ± ０􀆰 ０３ａ
３􀆰 ２４ ± ０􀆰 ０３ｂ
３􀆰 ２４ ± ０􀆰 ０７ａｂ
３􀆰 １３ ± ０􀆰 ０２ｃ
３􀆰 １９ ± ０􀆰 ０１ｂ
３􀆰 ２８ ± ０􀆰 ０１ａｂ
３􀆰 ２１ ± ０􀆰 ０４ｂ
Ｒ５ ２５４
３􀆰 ３４ ± ０􀆰 ０１ｂ
３􀆰 ３４ ± ０􀆰 ０１ａ
３􀆰 ３７ ± ０􀆰 ０３ａ
３􀆰 ３０ ± ０􀆰 ０５ａ
３􀆰 ２８ ± ０􀆰 ０１ｃ
３􀆰 ３４ ± ０􀆰 ０４ａ
３􀆰 １６ ± ０􀆰 ０１ｄ
３􀆰 ２２ ± ０􀆰 ０２ｂ
３􀆰 ２８ ± ０􀆰 ０２ｃ
３􀆰 ２４ ± ０􀆰 ０１ｂ
ＰＣ
ＬＸ ２５４
３􀆰 ４５ ± ０􀆰 ０４ｂｃ
３􀆰 ４５ ± ０􀆰 ０４ｂｃ
３􀆰 ４１ ± ０􀆰 ０３ｃ
３􀆰 ４７ ± ０􀆰 ０３ｂ
３􀆰 ４１ ± ０􀆰 ０４ｃ
３􀆰 ３９ ± ０􀆰 ０１ｄ
３􀆰 ４７ ± ０􀆰 ０７ｂ
３􀆰 ４３ ± ０􀆰 ０３ｃ
３􀆰 ６７ ± ０􀆰 ０１ａ
３􀆰 ５６ ± ０􀆰 ０１ａ
Ｒ５ ２５４
３􀆰 ４８ ± ０􀆰 ０１ｂ
３􀆰 ４８ ± ０􀆰 ０１ａｂ
３􀆰 ４６ ± ０􀆰 ０２ｂ
３􀆰 ４９ ± ０􀆰 ０２ａ
３􀆰 ４９ ± ０􀆰 ０５ｂ
３􀆰 ４５ ± ０􀆰 ０３ｂ
３􀆰 ４２ ± ０􀆰 ０３ｃ
３􀆰 ４６ ± ０􀆰 ０２ａｂ
３􀆰 ６５ ± ０􀆰 ０２ａ
３􀆰 ３５ ± ０􀆰 ０３ｃ
ＰＡ
ＬＸ ２５４
３􀆰 ３４ ± ０􀆰 ０３ｂ
３􀆰 ３４ ± ０􀆰 ０３ｂ
３􀆰 ４１ ± ０􀆰 ０３ａ
３􀆰 ４３ ± ０􀆰 ０２ａ
３􀆰 ４１ ± ０􀆰 ０６ａ
３􀆰 ４３ ± ０􀆰 ０２ａ
３􀆰 ２０ ± ０􀆰 ０４ｃ
３􀆰 ２６ ± ０􀆰 ０５ｃ
３􀆰 ３５ ± ０􀆰 ０１ｂ
３􀆰 ２９ ± ０􀆰 ０５ｃ
Ｒ５ ２５４
３􀆰 ４０ ± ０􀆰 ０１ｂ
３􀆰 ４０ ± ０􀆰 ０１ｃ
３􀆰 ５８ ± ０􀆰 ０４ａ
３􀆰 ４７ ± ０􀆰 ０２ｂ
３􀆰 ４５ ± ０􀆰 ０２ｂ
３􀆰 ５５ ± ０􀆰 ０２ａ
３􀆰 ３０ ± ０􀆰 ０６ｃ
３􀆰 ３８ ± ０􀆰 ０４ｃ
３􀆰 ２９ ± ０􀆰 ０３ｃ
３􀆰 ３１ ± ０􀆰 ０４ｄ
ＰＳ
ＬＸ ２５４
２􀆰 ２４ ± ０􀆰 ０２ｃ
２􀆰 ２４ ± ０􀆰 ０２ｂ
２􀆰 ３０ ± ０􀆰 ０３ｂ
２􀆰 ３２ ± ０􀆰 ０９ａ
２􀆰 ２９ ± ０􀆰 ０３ｂ
２􀆰 ２６ ± ０􀆰 ０１ａｂ
２􀆰 ２２ ± ０􀆰 ０１ｃ
２􀆰 ２４ ± ０􀆰 ０１ｂ
２􀆰 ３７ ± ０􀆰 ０２ａ
２􀆰 ３０ ± ０􀆰 ０１ａｂ
Ｒ５ ２５４
２􀆰 ２７ ± ０􀆰 ０３ｃ
２􀆰 ２７ ± ０􀆰 ０３ｂ
２􀆰 ３５ ± ０􀆰 ０６ａｂ
２􀆰 ５０ ± ０􀆰 １６ａ
２􀆰 ３２ ± ０􀆰 ０２ｂ
２􀆰 ３０ ± ０􀆰 ０１ｂ
２􀆰 ２２ ± ０􀆰 ０２ｄ
２􀆰 ２５ ± ０􀆰 ０１ｂ
２􀆰 ３８ ± ０􀆰 ０２ａ
２􀆰 ２５ ± ０􀆰 ０１ｂ
ＭＧＤＧ
ＬＸ ２５４
３􀆰 ９５ ± ０􀆰 １６ｄ
３􀆰 ９５ ± ０􀆰 １６ｄ
４􀆰 ３３ ± ０􀆰 １１ｃ
４􀆰 ０２ ± ０􀆰 ４８ｃｄ
４􀆰 ３６ ± ０􀆰 ０６ｃ
４􀆰 ３７ ± ０􀆰 ０４ｃ
５􀆰 ５４ ± ０􀆰 ０４ｂ
５􀆰 ２９ ± ０􀆰 １４ｂ
５􀆰 ８０ ± ０􀆰 ０１ａ
５􀆰 ７６ ± ０􀆰 ０２ａ
Ｒ５ ２５４
５􀆰 ２１ ± ０􀆰 ０５ｂ
５􀆰 ２１ ± ０􀆰 ０５ａ
４􀆰 ４０ ± ０􀆰 ０９ｄ
４􀆰 ０９ ± ０􀆰 １６ｄ
４􀆰 ４４ ± ０􀆰 ０９ｄ
４􀆰 ３６ ± ０􀆰 ０３ｃ
４􀆰 ９９ ± ０􀆰 １０ｃ
４􀆰 ６８ ± ０􀆰 ０１ｂ
５􀆰 ７９ ± ０􀆰 ０１ａ
４􀆰 ６５ ± ０􀆰 １３ｂ
ＤＧＤＧ
ＬＸ ２５４
４􀆰 ５６ ± ０􀆰 ０７ｃ
４􀆰 ５６ ± ０􀆰 ０７ｂ
４􀆰 ４８ ± ０􀆰 １０ｃ
４􀆰 ６０ ± ０􀆰 ０８ｂ
４􀆰 ２７ ± ０􀆰 ０２ｄ
４􀆰 ３４ ± ０􀆰 ０５ｃ
４􀆰 ９０ ± ０􀆰 ０６ｂ
４􀆰 ５７ ± ０􀆰 ０６ｂ
５􀆰 １３ ± ０􀆰 ０１ａ
５􀆰 １７ ± ０􀆰 ０３ａ
Ｒ５ ２５４
４􀆰 ６６ ± ０􀆰 １０ｂ
４􀆰 ６６ ± ０􀆰 １０ｂ
４􀆰 ６０ ± ０􀆰 ０２ｂ
４􀆰 ８２ ± ０􀆰 １３ａ
４􀆰 ４６ ± ０􀆰 ０２ｃ
４􀆰 ５９ ± ０􀆰 ０６ｂ
４􀆰 ４９ ± ０􀆰 ０８ｃ
４􀆰 ２７ ± ０􀆰 ０１ｃ
５􀆰 １１ ± ０􀆰 ０１ａ
４􀆰 ２４ ± ０􀆰 ０７ｃ
Ｔｏｔａｌ
ＬＸ ２５４
３􀆰 １７ ± ０􀆰 ０２ｃ
３􀆰 １７ ± ０􀆰 ０２ｃ
３􀆰 １９ ± ０􀆰 ０８ｃ
３􀆰 ２４ ± ０􀆰 ０５ｂ
３􀆰 ２０ ± ０􀆰 ０３ｃ
３􀆰 ２２ ± ０􀆰 ０３ｂ
３􀆰 ３１ ± ０􀆰 ０１ｂ
３􀆰 ２４ ± ０􀆰 ０３ｂ
３􀆰 ７４ ± ０􀆰 ０２ａ
３􀆰 ５８ ± ０􀆰 ０３ａ
Ｒ５ ２５４
３􀆰 ２０ ± ０􀆰 ０２ｄ
３􀆰 ２０ ± ０􀆰 ０２ａｂ
３􀆰 ２８ ± ０􀆰 ０２ｃ
３􀆰 ２８ ± ０􀆰 ０３ａ
３􀆰 ２４ ± ０􀆰 ０４ｃｄ
３􀆰 ２６ ± ０􀆰 ０１ａ
３􀆰 ３９ ± ０􀆰 ０３ｂ
３􀆰 ２４ ± ０􀆰 ０３ａ
３􀆰 ７６ ± ０􀆰 ０４ａ
３􀆰 １６ ± ０􀆰 ０４ｂ
３９１２期　 　 　 ＹＵ ａｎｄ ＬＩ ｅｔ ａｌ.: Ｔｈｅ Ｄｅｇｒｅｅ ｏｆ Ｕｎｓａｔｕｒａｔｉｏｎ ｏｆ Ｐｌａｓｔｉｄｉｃ Ｍｅｍｂｒａｎｅ Ｌｉｐｉｄｓ ｉｓ Ｐｏｓｉｔｉｖｅｌｙ Ａｓｓｏｃｉａｔｅｄ 􀆺　 　 　
ｉｎ ｔｈｅ ｅｎｄｏｐｌａｓｍｉｃ ｒｅｔｉｃｕｌｕｍ ａｎｄ ｃｈｌｏｒｏｐｌａｓｔｓꎻ ｔｈｅｓｅ
ｍｏｌｅｃｕｌｅｓ ｈａｖｅ ｓｉｍｉｌａｒ ｃａｔａｌｙｔｉｃ ｓｅｑｕｅｎｃｅｓ ｗｉｔｈｉｎ
ｔｈｅｉｒ ａｃｔｉｖｅ ｓｉｔｅｓ. Ａｌｔｈｏｕｇｈ ｌｉｔｔｌｅ ｉｓ ｋｎｏｗｎ ａｂｏｕｔ ｔｈｅ
ｅｎｚｙｍａｔｉｃ ｍｅｃｈａｎｉｓｍ ｂｙ ｗｈｉｃｈ ｄｅｓａｔｕｒａｔｅｄ ｆａｔｔｙ ａｃｉｄｓ
ａｒｅ ｓａｔｕｒａｔｅｄꎬ ｌｏｗ ＤＢＩ ｌｅｖｅｌｓ ｉｎ Ｒ５ ｓｅｅｄｓ ｃｏｕｌｄ ｒｅｓｕｌｔ
ｆｒｏｍ ｉｎｈｉｂｉｔｉｏｎ ｏｆ ｌｉｐｉｄ ｓｙｎｔｈｅｓｉｓ ｐｒｏｃｅｓｓｅｓ ａｔ ａ ｌｏｗ
ｔｅｍｐｅｒａｔｕｒｅ. Ａｃｃｏｒｄｉｎｇｌｙꎬ ｈｉｇｈｅｒ ｌｅｖｅｌｓ ｏｆ ｕｎｓａｔｕｒａｔ￣
ｅｄ ｌｉｐｉｄｓ ｉｎ ｐｌａｓｔｉｄｉｃ ｍｅｍｂｒａｎｅ ｍｉｇｈｔ ａｃｃｏｕｎｔ ｆｏｒ ｔｈｅ
ｔｏｌｅｒａｎｃｅ ｏｆ ＬＸ ｓｅｅｄｓ ｔｏ ｃｈｉｌｌｅｄ ｉｍｂｉｂｉｔｉｏｎ.
２􀆰 ７　 Ｅｆｆｅｃｔｓ ｏｆ ＰＥＧ ｐｒｉｍｉｎｇ ｏｎ ＤＢＩ ｏｆ ｍｅｍｂｒａｎｅ
ｌｉｐｉｄｓ
Ｔｈｅ ａｂｏｖｅ ｅｘｐｅｒｉｍｅｎｔ ｉｎｄｉｃａｔｅｓ ｔｈａｔ ＰＥＧ ｏｓ￣
ｍｏｔｉｃ ｐｒｅｔｒｅａｔｍｅｎｔ ( ｐｒｉｍｉｎｇ ｏｒ ｏｓｍｏｃｏｎｄｉｔｉｏｎｉｎｇ)
ｒｅｄｕｃｅｄ ｔｈｅ ｄａｍａｇｅ ｄｕｅ ｔｏ ｉｍｂｉｂｉｔｉｏｎａｌ ｃｈｉｌｌｉｎｇ ｉｎ
Ｒ５ ｓｅｅｄｓ. Ｗｅ ｐｒｏｆｉｌｅｄ ｔｈｅ ＤＢＩ ｉｎ Ｒ５ ｓｅｅｄｓ ｏｓ￣
ｍｏｃｏｎｄｉｔｉｏｎｅｄ ｆｏｒ ｏｎｅ ａｎｄ ｔｈｒｅｅ ｄａｙｓ ａｓ ｗｅｌｌ ａｓ
ＰＥＧ￣ｔｒｅａｔｅｄ ｄｒｙ ｓｅｅｄｓ ｔｏ ｔｅｓｔ ｗｈｅｔｈｅｒ ＰＥＧ ｔｒｅａｔｍｅｎｔ
ｃｈａｎｇｅｄ ｔｈｅ ｓｅｅｄ ＤＢＩ (Ｔａｂｌｅ ２). Ｔｈｅ ｒｅｓｕｌｔｓ ｉｎｄｉ￣
ｃａｔｅ ｔｈａｔ ＰＥＧ ｏｓｍｏｐｒｉｍｉｎｇ ｓｌｉｇｈｔｌｙ ｂｕｔ ｓｉｇｎｉｆｉｃａｎｔｌｙ
ｃｈａｎｇｅｄ ｔｈｅ ＤＢＩ ｏｆ ｍｅｍｂｒａｎｅ ｌｉｐｉｄｓ ｉｎ ｃｈｉｌｌｉｎｇ￣ｓｅｎ￣
ｓｉｔｉｖｅ ｓｅｅｄｓ ( Ｒ５)ꎬ ｗｉｔｈ ｔｈｅ ｓｍａｌｌ ｃｈａｎｇｅｓ ｂｅｉｎｇ
ｖｅｒｙ ｓｉｍｉｌａｒ ｔｏ ｔｈｅ ｐａｔｔｅｒｎ ｏｆ ＬＸ ｉｍｂｉｂｉｔｉｏｎ ａｔ ２５ ℃
ｄｕｒｉｎｇ ｐｈａｓｅ Ｉ. Ｔｈｉｓ ｆｉｎｄｉｎｇ ｓｕｇｇｅｓｔｅｄ ｔｈａｔ ＰＥＧ
ｐｒｉｍｉｎｇ ｄｉｄ ｎｏｔ ｄｉｒｅｃｔｌｙ ｃａｕｓｅ ｔｈｅ ｍａｉｎ ｃｈａｎｇｅｓ ｉｎ
ＤＢＩꎬ ｂｕｔ ｒａｔｈｅｒ ｉｎｄｕｃｅｄ ｃｈａｎｇｅｓ ｉｎ ＤＢＩ ｉｎ ｐｒｅｐａｒａ￣
ｔｉｏｎ ｆｏｒ ｇｅｒｍｉｎａｔｉｏｎ.
２􀆰 ８　 Ｄｒａｍａｔｉｃ ｃｈａｎｇｅｓ ｉｎ ＤＢＩ ｐｒｏｆｉｌｅｓ ｏｃｃｕｒ ｉｎ
ＰＥＧ ｏｓｍｏｃｏｎｄｉｔｉｏｎｅｄ Ｒ５ ｓｅｅｄｓ ｕｎｄｅｒ ｉｍｂｉｂｉｔｉｏｎａｌ
ｃｈｉｌｌｉｎｇ ｓｔｒｅｓｓ
Ｔｏ ｅｘａｍｉｎｅ ｈｏｗ ｔｈｅ ｅｆｆｅｃｔｓ ｏｆ ＰＥＧ ｏｓｍｏｐｒｉｍ￣
ｉｎｇ ｏｃｃｕｒ ｕｎｄｅｒ ｉｍｂｉｂｉｔｉｏｎａｌ ｃｈｉｌｌｉｎｇꎬ ｗｅ ａｎａｌｙｓｅｄ
ｔｈｅ ＤＢＩ ｏｆ ｍｅｍｂｒａｎｅ ｌｉｐｉｄｓ ｉｎ ＰＥＧ￣ｔｒｅａｔｅｄ Ｒ５ ｓｅｅｄｓ
ｄｕｒｉｎｇ ｉｍｂｉｂｉｔｉｏｎ ａｔ ４ ℃ ｆｏｒ ３ ａｎｄ ２４ ｈꎬ ｆｏｌｌｏｗｅｄ ｂｙ
ｇｅｒｍｉｎａｔｉｏｎ ａｔ ２５ ℃ ｆｏｒ ｏｎｅ ａｎｄ ｔｈｒｅｅ ｄａｙｓ (Ｔａｂｌｅ
３). Ｌｅｖｅｌｓ ｏｆ ｔｈｅ ｐｌａｓｔｉｄｉｃ ｌｉｐｉｄｓ ＭＧＤＧ ａｎｄ ＤＧＤＧ
ｉｎｃｒｅａｓｅｄ ｃｏｎｔｉｎｕａｌｌｙ ｏｖｅｒ ｔｈｅ ｐｅｒｉｏｄ ｓｔｕｄｉｅｄ: ＭＧ￣
ＤＧ ｉｎｃｒｅａｓｅｄ ｆｒｏｍ ＤＢＩ ｏｆ ５􀆰 １３ (ｃｏｎｔｒｏｌ) ｔｏ ５􀆰 ７２
(ｇｅｒｍｉｎａｔｉｏｎ ３ ｄ)ꎬ ｗｈｅｒｅａｓ ＤＧＤＧ ｉｎｃｒｅａｓｅｄ ｆｒｏｍ
Ｔａｂｌｅ ２　 Ｃｈａｎｇｅｓ ｉｎ ｄｏｕｂｌｅ￣ｂｏｎｄ ｉｎｄｅｘ (ＤＢＩ) ｏｆ ｅａｃｈ ｌｉｐｉｄ ｃｌａｓｓ ｉｎ Ｒ５ ｓｏｙｂｅａｎ ｓｅｅｄｓ ｄｕｒｉｎｇ ｔｈｅ ＰＥＧ ｐｒｉｍｉｎｇ. Ｖａｌｕｅｓ ａｒｅ ｍｅａｎｓ ± ＳＥ
(ｎ＝ ４ ｏｒ ５) . Ｖａｌｕｅｓ ｉｎ ｔｈｅ ｓａｍｅ ｒｏｗ ｗｉｔｈ ｄｉｆｆｅｒｅｎｔ ｌｅｔｔｅｒｓ ａｒｅ ｓｉｇｎｉｆｉｃａｎｔｌｙ ｄｉｆｆｅｒｅｎｔ (Ｐ < ０􀆰 ０５)
Ｌｉｐｉｄ ｃｌａｓｓ
Ｄｏｕｂｌｅ￣ｂｏｎｄ ｉｎｄｅｘ (ＤＢＩ)
Ｃｏｎｔｒｏｌ ＰＥＧ １ ｄ ＰＥＧ ３ ｄ Ａｆｔｅｒ ＰＥＧ ｐｒｉｍｉｎｇ
ＰＧ ２􀆰 ４４ ± ０􀆰 ０７ｃ ２􀆰 ６２ ± ０􀆰 ０６ｂ ２􀆰 ７７ ± ０􀆰 ０４ａ ２􀆰 ７８ ± ０􀆰 ０５ａ
ＰＩ ２􀆰 ５２ ± ０􀆰 ０２ｂ ２􀆰 ５２ ± ０􀆰 ０１ｂ ２􀆰 ５３ ± ０􀆰 ０２ｂ ２􀆰 ５８ ± ０􀆰 ０２ａ
ＰＥ ３􀆰 ５０ ± ０􀆰 ０３ａ ３􀆰 ３７ ± ０􀆰 ０２ｂ ３􀆰 ３９ ± ０􀆰 ０１ｂ ３􀆰 ３９ ± ０􀆰 ０２ｂ
ＰＣ ３􀆰 ５５ ± ０􀆰 ０３ａ ３􀆰 ３８ ± ０􀆰 ０３ｂ ３􀆰 ３５ ± ０􀆰 ０２ｂ ３􀆰 ４１ ± ０􀆰 ０３ｂ
ＰＡ ３􀆰 ３５ ± ０􀆰 ０２ａ ３􀆰 ３４ ± ０􀆰 ０１ａ ３􀆰 ３１ ± ０􀆰 ０１ｂ ３􀆰 ２８ ± ０􀆰 ０２ｂ
ＰＳ ２􀆰 ４７ ± ０􀆰 ０６ｂ ２􀆰 ５１ ± ０􀆰 ０３ｂ ２􀆰 ６７ ± ０􀆰 ０７ａ ２􀆰 ５５ ± ０􀆰 ０９ａｂ
ＭＧＤＧ ４􀆰 ９３ ± ０􀆰 １２ｂ ４􀆰 ９２ ± ０􀆰 １１ｂ ５􀆰 ２１ ± ０􀆰 ０８ａ ５􀆰 １３ ± ０􀆰 １７ａｂ
ＤＧＤＧ ４􀆰 ５９ ± ０􀆰 １３ａ ４􀆰 ４８ ± ０􀆰 ０８ａｂ ４􀆰 ５１ ± ０􀆰 １１ａｂ ４􀆰 ３４ ± ０􀆰 ０８ｂ
Ｔｏｔａｌ ３􀆰 １９ ± ０􀆰 ０３ａ ３􀆰 １３ ± ０􀆰 ０１ｂ ３􀆰 １１ ± ０􀆰 ０２ｂ ３􀆰 １２ ± ０􀆰 ０２ｂ
Ｔａｂｌｅ ３　 Ｃｈａｎｇｅｓ ｉｎ ｄｏｕｂｌｅ￣ｂｏｎｄ ｉｎｄｅｘ (ＤＢＩ) ｏｆ ｅａｃｈ ｌｉｐｉｄ ｃｌａｓｓ ｄｕｒｉｎｇ ｉｍｂｉｂｉｔｉｏｎａｌ ｃｈｉｌｌｉｎｇ ａｎｄ ｐｏｓｔ￣ｇｅｒｍｉｎａｔｉｏｎ ｆｏｒ Ｒ５ ｓｏｙｂｅａｎ ｓｅｅｄｓ ａｆｔｅｒ
ＰＥＧ ｐｒｉｍｉｎｇ. Ｖａｌｕｅｓ ａｒｅ ｍｅａｎｓ ± ＳＥ (ｎ＝ ４ ｏｒ ５) . Ｖａｌｕｅｓ ｉｎ ｔｈｅ ｓａｍｅ ｒｏｗ ｗｉｔｈ ｄｉｆｆｅｒｅｎｔ ｌｅｔｔｅｒｓ ａｒｅ ｓｉｇｎｉｆｉｃａｎｔｌｙ ｄｉｆｆｅｒｅｎｔ (Ｐ < ０􀆰 ０５)
Ｌｉｐｉｄ ｃｌａｓｓ
Ｄｏｕｂｌｅ￣ｂｏｎｄ ｉｎｄｅｘ (ＤＢＩ)
Ａｆｔｅｒ ＰＥＧ ｔｒｅａｔｍｅｎｔ Ｉｍｂｉｂｉｔｉｏｎ ３ ｈ Ｉｍｂｉｂｉｔｉｏｎ ２４ ｈ Ｇｅｒｍｉｎａｔｉｏｎ １ ｄ Ｇｅｒｍｉｎａｔｉｏｎ ３ ｄ
ＰＧ ２􀆰 ７８ ± ０􀆰 ０５ａ ２􀆰 ７３ ± ０􀆰 １１ａ ２􀆰 ７８ ± ０􀆰 ０５ａ １􀆰 ９６ ± ０􀆰 ０１ｂ １􀆰 ５３ ± ０􀆰 ０１ｃ
ＰＩ ２􀆰 ５８ ± ０􀆰 ０３ｂ ２􀆰 ５８ ± ０􀆰 ０３ｂ ２􀆰 ６４ ± ０􀆰 ０１ａ ２􀆰 ３７ ± ０􀆰 ０１ｃ ２􀆰 ６１ ± ０􀆰 ０１ｂ
ＰＥ ３􀆰 ３９ ± ０􀆰 ０２ａ ３􀆰 ３８ ± ０􀆰 ０１ａ ３􀆰 ３７ ± ０􀆰 ０２ａ ３􀆰 １８ ± ０􀆰 ０２ｃ ３􀆰 ２９ ± ０􀆰 ０１ｂ
ＰＣ ３􀆰 ４１ ± ０􀆰 ０３ｃ ３􀆰 ３８ ± ０􀆰 ０４ｃ ３􀆰 ５２ ± ０􀆰 ０２ｂ ３􀆰 ４２ ± ０􀆰 ０１ｃ ３􀆰 ６７ ± ０􀆰 ０４ａ
ＰＡ ３􀆰 ２８ ± ０􀆰 ０２ｂ ３􀆰 ２１ ± ０􀆰 ０３ｃ ３􀆰 ４７ ± ０􀆰 ０６ａ ３􀆰 ２０ ± ０􀆰 ０３ｃ ３􀆰 ３１ ± ０􀆰 ０６ｂ
ＰＳ ２􀆰 ５５ ± ０􀆰 ０９ａ ２􀆰 ５０ ± ０􀆰 ０７ａ ２􀆰 ２７ ± ０􀆰 ０２ｂ ２􀆰 ２１ ± ０􀆰 ０２ｃ ２􀆰 ３０ ± ０􀆰 ０２ｂ
ＭＧＤＧ ５􀆰 １３ ± ０􀆰 １７ｂ ４􀆰 ７０ ± ０􀆰 １９ｃ ４􀆰 ３８ ± ０􀆰 ０５ｄ ５􀆰 ３２ ± ０􀆰 １３ｂ ５􀆰 ７２ ± ０􀆰 ０１ａ
ＤＧＤＧ ４􀆰 ３４ ± ０􀆰 ０８ｃ ４􀆰 ４８ ± ０􀆰 １３ｃ ４􀆰 ２５ ± ０􀆰 １３ｃ ４􀆰 ７７ ± ０􀆰 ０８ｂ ５􀆰 １５ ± ０􀆰 ０３ａ
Ｔｏｔａｌ ３􀆰 １２ ± ０􀆰 ０２ｄ ３􀆰 １７ ± ０􀆰 ０１ｃ ３􀆰 ３５ ± ０􀆰 ０１ｂ ３􀆰 ３９ ± ０􀆰 ０４ｂ ３􀆰 ５４ ± ０􀆰 ０２ａ
４９１　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 植 物 分 类 与 资 源 学 报　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 第 ３６卷
４􀆰 ３４ (ｃｏｎｔｒｏｌ) ｔｏ ５􀆰 １５ (ｇｅｒｍｉｎａｔｉｏｎ ３ ｄ). Ｆｏｒ ｅｘ￣
ｔｒａｐｌａｓｔｉｄｉｃ ｌｉｐｉｄｓꎬ ｔｈｅ ｌｅｖｅｌｓ ｏｆ ＰＧ ｄｅｃｒｅａｓｅｄ ｃｏｎ￣
ｔｉｎｕａｌｌｙꎬ ｆｒｏｍ ２􀆰 ７８ (ｃｏｎｔｒｏｌ) ｔｏ １􀆰 ５３ (ｇｅｒｍｉｎａｔｉｏｎ
３ ｄ). Ｔｈｅｓｅ ｒｅｍａｒｋａｂｌｅ ｃｈａｎｇｅｓ ｏｃｃｕｒｒｅｄ ｍａｉｎｌｙ
ｄｕｒｉｎｇ ｐｈａｓｅ ＩＩＩ. Ｔｈｅｓｅ ｐａｔｔｅｒｎｓ ｗｅｒｅ ｔｈｅ ｓａｍｅ ａｓ
ｔｈｏｓｅ ｆｏｒ ｔｈｅ ｉｍｂｉｂｉｔｉｏｎ ｏｆ ＬＸ ａｎｄ Ｒ５ ｓｅｅｄｓ ａｔ ２５ ℃ .
Ｔｈｅｓｅ ｒｅｓｕｌｔｓ ｉｎｄｉｃａｔｅ ｔｈａｔ ＰＥＧ ｏｓｍｏｐｒｉｍｉｎｇ ｈａｄ ａ
ｌａｒｇｅ ｅｆｆｅｃｔ ｏｎ ＤＢＩ ｉｎ ｃｈｉｌｌｉｎｇ￣ｓｅｎｓｉｔｉｖｅ ｓｅｅｄｓ ｄｕｒｉｎｇ
ｐｈａｓｅｓ ＩＩ ａｎｄ ＩＩＩ. Ｔｈｅ ｅｆｆｅｃｔ ｏｆ ＰＥＧ ｐｒｉｍｉｎｇ ｗａｓ ｔｏ
ｉｎｃｒｅａｓｅ ｔｈｅ ｄｅｇｒｅｅ ｏｆ ｕｎｓａｔｕｒａｔｉｏｎ ｏｆ ｐｌａｓｔｉｄｉｃ ｍｅｍ￣
ｂｒａｎｅ ｉｎ ｏｒｄｅｒ ｔｏ ｅｎｈａｎｃｅ ｔｈｅ ｔｏｌｅｒａｎｃｅ ｏｆ ｉｍｂｉｂｉ￣
ｔｉｏｎａｌ ｃｈｉｌｌｉｎｇ. ＰＥＧ￣ｏｓｍｏｐｒｉｍｅｄ Ｒ５ ｓｅｅｄｓ ｃｏｕｌｄ
ｓｙｎｔｈｅｓｉｓｅ ｄｅｓａｔｕｒａｓｅｓ ｕｎｄｅｒ ｃｈｉｌｌｅｄ ｉｍｂｉｂｉｔｉｏｎ ｉｎ ｏｒ￣
ｄｅｒ ｔｏ ｃｈａｎｇｅ ｔｈｅｉｒ ｍｅｍｂｒａｎｅ ｆｌｕｉｄｉｔｙ ａｎｄ ｅｎｈａｎｃｅ
ｐｈｏｔｏｓｙｎｔｈｅｓｉｓ. Ｔｈｉｓ ｒｅｓｕｌｔ ｆｕｒｔｈｅｒ ｄｅｍｏｎｓｔｒａｔｅｓ ｔｈａｔ
ｔｈｅ ＤＢＩ ｏｆ ｓｅｅｄ ｍｅｍｂｒａｎｅ ｌｉｐｉｄｓ ｉｓ ｐｏｓｉｔｉｖｅｌｙ ｃｏｒｒｅ￣
ｌａｔｅｄ ｗｉｔｈ ｔｈｅｉｒ ｒｅｓｉｓｔａｎｃｅ ｔｏ ｉｍｂｉｂｉｔｉｏｎａｌ ｃｈｉｌｌｉｎｇ.
３　 Ｃｏｎｃｌｕｓｉｏｎ
Ｔｈｅ ｐｒｅｓｅｎｔ ｓｔｕｄｙ ｐｒｏｖｉｄｅｓ ｅｖｉｄｅｎｃｅ ｔｈａｔ ｔｈｅ
ｌｅｖｅｌ ｏｆ ｕｎｓａｔｕｒａｔｉｏｎ ｏｆ ｍｅｍｂｒａｎｅ ｌｉｐｉｄｓ ｉｓ ｉｎｖｏｌｖｅｄ
ｉｎ ｔｈｅ ｔｏｌｅｒａｎｃｅ ｏｆ ｓｏｙｂｅａｎ ｓｅｅｄｓ ｔｏ ｉｍｂｉｂｉｔｉｏｎａｌ
ｃｈｉｌｌｉｎｇ. Ｅｘｔｅｎｓｉｖｅ ｉｎｃｒｅａｓｅｓ ｉｎ ｔｈｅ ｅｘｔｅｎｔ ｏｆ ｔｏｔａｌ
ｌｉｐｉｄ ｕｎｓａｔｕｒａｔｉｏｎ ｏｃｃｕｒｒｅｄ ｄｕｒｉｎｇ ｉｍｂｉｂｉｔｉｏｎ ａｎｄ ａｆ￣
ｔｅｒ ｇｅｒｍｉｎａｔｉｏｎ. ＬＸ ｅｘｈｉｂｉｔｅｄ ｓｉｍｉｌａｒ ｃｈａｎｇｅｓ ｔｏ Ｒ５
ａｆｔｅｒ ｉｍｂｉｂｉｔｉｏｎ ａｔ ２５ ℃ . Ｔｈｅ ｃｏｎｔｅｎｔ ｏｆ ｔｏｔａｌ ＤＢＩ ｉｎ￣
ｃｒｅａｓｅｄ ｄｕｒｉｎｇ ｇｅｒｍｉｎａｔｉｏｎꎬ ｗｈｉｃｈ ｗａｓ ｍａｉｎｌｙ ｄｕｅ
ｔｏ ｔｈｅ ｍａｒｋｅｄ ｉｎｃｒｅａｓｅ ｉｎ ｔｈｅ ｃｏｎｔｅｎｔ ｏｆ ｐｌａｓｔｉｄｉｃ
ＤＢＩ. Ｔｈｅｒｅ ｗｅｒｅ ｉｎｃｒｅａｓｅｓ ｏｆ ｐｌａｓｔｉｄｉｃ ＤＢＩ ｉｎ ＬＸ ａｆ￣
ｔｅｒ ｉｍｂｉｂｉｔｉｏｎ ａｔ ４ ℃ꎬ ｂｕｔ ｔｈｅｓｅ ｉｎｃｒｅａｓｅｓ ｗｅｒｅ ｓｉｇ￣
ｎｉｆｉｃａｎｔｌｙ ｓｌｏｗｅｒ ｔｈａｎ ｔｈｏｓｅ ａｆｔｅｒ ｉｍｂｉｂｉｔｉｏｎ ａｔ ２５ ℃ .
Ｈｏｗｅｖｅｒꎬ ｔｈｅ ｐａｔｔｅｒｎｓ ｏｆ ｃｈａｎｇｅ ｉｎ Ｒ５ ｓｉｇｎｉｆｉｃａｎｔｌｙ
ｄｉｆｆｅｒｅｄ ｆｒｏｍ ｔｈｅ ｐａｔｔｅｒｎｓ ｔｈａｔ ｏｃｃｕｒｒｅｄ ｕｐｏｎ ｎｏｒｍａｌ
ｉｍｂｉｂｉｔｉｏｎꎬ ｗｈｅｎ ｅｖｅｎ ｐｌａｓｔｉｄｉｃ ＤＢＩ ｄｅｃｒｅａｓｅｄ. ＰＥＧ
ｐｒｉｍｉｎｇ ｓｌｉｇｈｔｌｙ ｃｈａｎｇｅｄ ｔｈｅ ＤＢＩ ｉｎ ｓｅｎｓｉｔｉｖｅ ｓｅｅｄｓ
(Ｒ５). Ｉｔ ｉｍｐｒｏｖｅｄ ｔｈｅｉｒ ｒｅｓｉｓｔａｎｃｅ ｔｏ ｉｎｊｕｒｙ ｄｕｅ ｔｏ
ｉｍｂｉｂｉｔｉｏｎａｌ ｃｈｉｌｌｉｎｇꎬ ｍａｉｎｌｙ ｂｙ ｉｎｃｒｅａｓｉｎｇ ｔｈｅｉｒ
ｐｌａｓｔｉｄｉｃ ＤＢＩ ｄｕｒｉｎｇ ｐｈａｓｅｓ ＩＩ ａｎｄ ＩＩＩ. Ｇｉｖｅｎ ｔｈａｔ ｉｎ￣
ｃｒｅａｓｅｓ ｏｆ ｐｌａｓｔｉｄｉｃ ＤＢＩ ｆａｖｏｒ ｔｈｅ ｒｅｓｉｓｔａｎｃｅ ｏｆ ｍｅｍ￣
ｂｒａｎｅｓ ｔｏ ｌｏｗ ｔｅｍｐｅｒａｔｕｒｅ ｉｎｊｕｒｙꎬ ｔｈｏｓｅ ｓｅｅｄｓ ｗｉｔｈ
ｈｉｇｈｅｒ ＤＢＩ ｖａｌｕｅｓ ｆｏｒ ｐｌａｓｔｉｄｉｃ ｌｉｐｉｄｓ ｍｉｇｈｔ ｂｅ ｍｏｒｅ
ｌｉｋｅｌｙ ｔｏ ｇｅｒｍｉｎａｔｅ ａｆｔｅｒ ｉｍｂｉｂｉｔｉｏｎａｌ ｃｈｉｌｌｉｎｇ ｓｔｒｅｓｓ.
Ｔｈｅ ｄｅｌａｙ ｏｒ ｐｒｅｖｅｎｔｉｏｎ ｏｆ ａｎ ｉｎｃｒｅａｓｅ ｉｎ ｔｈｅ ｄｅｇｒｅｅ
ｏｆ ｕｎｓａｔｕｒａｔｉｏｎ ｉｎ ｐｌａｓｔｉｄｉｃ ｍｅｍｂｒａｎｅ ｌｉｐｉｄｓ ｗａｓ ｔｈｕｓ
ｔｈｅ ｃａｕｓｅ ｏｆ ｉｎｊｕｒｙ ｄｕｅ ｔｏ ｉｍｂｉｂｉｔｉｏｎａｌ ｃｈｉｌｌｉｎｇ. Ｔｈｅ
ｉｎｃｒｅａｓｅ ｉｎ ｔｈｅ ＤＢＩ ｏｆ ｐｌａｓｔｉｄｉｃ ｌｉｐｉｄｓ ｉｓ ａｓｓｏｃｉａｔｅｄ
ｗｉｔｈ ｔｈｅ ｒｅｓｔｏｒａｔｉｏｎ ｏｆ ｆｕｎｃｔｉｏｎａｌ ｃｈｌｏｒｏｐｌａｓｔｉｃ ｍｅｍ￣
ｂｒａｎｅｓ ｎｅｅｄｅｄ ｔｏ ｓｕｐｐｏｒｔ ｐｈｏｔｏｓｙｎｔｈｅｓｉｓ ａｎｄ ｍｅｍ￣
ｂｒａｎｅ ｆｌｕｉｄｉｔｙ.
Ｔｈｅ ｒｅｓｕｌｔｓ ｏｆ ｔｈｉｓ ｓｔｕｄｙ ｓｕｇｇｅｓｔｅｄ ｔｈａｔ ａｎ ｉｎ￣
ｃｒｅａｓｅ ｉｎ ｔｈｅ ｄｅｇｒｅｅ ｏｆ ｕｎｓａｔｕｒａｔｉｏｎ ｉｎ ｐｌａｓｔｉｄｉｃ
ｍｅｍｂｒａｎｅ ｌｉｐｉｄｓ ｉｓ ｐｏｓｉｔｉｖｅｌｙ ａｓｓｏｃｉａｔｅｄ ｗｉｔｈ ｔｈｅ ｔｏ￣
ｌｅｒａｎｃｅ ｔｏ ｉｍｂｉｂｉｔｉｏｎａｌ ｃｈｉｌｌｉｎｇ ｉｎ ｓｏｙｂｅａｎｓ. Ｔｈｅｓｅ
ｆｉｎｄｉｎｇｓ ｈａｖｅ ｎｏｔ ｂｅｅｎ ｒｅｐｏｒｔｅｄ ｐｒｅｖｉｏｕｓｌｙ ｆｏｒ ｓｏｙ￣
ｂｅａｎ ｓｅｅｄｓꎬ ａｎｄ ｓｈｏｕｌｄ ｐｒｏｖｉｄｅ ｆｕｒｔｈｅｒ ｉｎｓｉｇｈｔ ｉｎｔｏ
ｔｈｅ ｍｅｃｈａｎｉｓｍｓ ｏｆ ａｄａｐｔａｔｉｏｎ ｔｏꎬ ａｎｄ ｓｕｒｖｉｖａｌ ｏｆꎬ
ｉｍｂｉｂｉｔｉｏｎａｌ ｃｈｉｌｌｉｎｇ. Ｓｕｃｈ ｉｎｓｉｇｈｔｓ ｍｉｇｈｔ ｇｕｉｄｅ ｔｈｅ
ｄｅｖｅｌｏｐｍｅｎｔ ｏｆ ｃｈｉｌｌｉｎｇ￣ｒｅｓｉｓｔａｎｔ ｓｅｅｄｓ. Ｆｕｒｔｈｅｒ ａｎａ￣
ｌｙｓｅｓ ｓｈｏｕｌｄ ｂｅ ｕｎｄｅｒｔａｋｅｎ ｔｏ ｓｔｕｄｙ ｔｈｅ ｍｅｃｈａｎｉｓｍｓ
ｔｈａｔ ｕｎｄｅｒｌｉｅ ｄｉｆｆｅｒｅｎｃｅｓ ｂｅｔｗｅｅｎ ｔｈｅｓｅ ｔｗｏ ｃｕｌｔｉｖａｒｓ
ｉｎ ｔｈｅ ｗａｙ ｔｈａｔ ｃｈｉｌｌｅｄ ｉｍｂｉｂｉｔｉｏｎ ａｆｆｅｃｔｓ ＤＢＩ.
Ａｃｋｎｏｗｌｅｄｇｍｅｎｔｓ: Ｔｈｅ ａｕｔｈｏｒｓ ｔｈａｎｋ Ｍａｒｙ Ｒｏｔｈ (Ｋａｎｓａｓ
Ｌｉｐｉｄｏｍｉｃｓ Ｒｅｓｅａｒｃｈ Ｃｅｎｔｅｒ) ｆｏｒ ｌｉｐｉｄ ａｎａｌｙｓｉｓ.
Ｒｅｆｅｒｅｎｃｅｓ:
Ｂａｋｈｔ Ｊꎬ Ｂａｎｏ Ａꎬ Ｄｏｍｉｎｙ Ｐꎬ ２００６. Ｔｈｅ ｒｏｌｅ ｏｆ ａｂｓｃｉｓｉｃ ａｃｉｄ ａｎｄ ｌｏｗ
ｔｅｍｐｅｒａｔｕｒｅ ｉｎ ｃｈｉｃｋｐｅａ ( Ｃｉｃｅｒ ａｒｉｅｔｉｎｕｍ) ｃｏｌｄ ｔｏｌｅｒａｎｃｅ. ＩＩ.
Ｅｆｆｅｃｔｓ ｏｎ ｐｌａｓｍａ ｍｅｍｂｒａｎｅ ｓｔｒｕｃｔｕｒｅ ａｎｄ ｆｕｎｃｔｉｏｎ [Ｊ] . Ｊｏｕｒｎａｌ
ｏｆ Ｅｘｐｅｒｉｍｅｎｔａｌ Ｂｏｔａｎｙꎬ ５７ (１４): ３７０７—３７１５
Ｂｅｔｔａｉｅｂ Ｉꎬ Ｚａｋｈａｍａ Ｎꎬ Ｗａｎｎｅｓ ＷＡ ｅｔ ａｌ.ꎬ ２００９. Ｗａｔｅｒ ｄｅｆｉｃｉｔ
ｅｆｆｅｃｔｓ ｏｎ Ｓａｌｖｉａ ｏｆｆｉｃｉｎａｌｉｓ ｆａｔｔｙ ａｃｉｄｓ ａｎｄ ｅｓｓｅｎｔｉａｌ ｏｉｌｓ ｃｏｍｐｏｓｉ￣
ｔｉｏｎ [Ｊ] . Ｓｃｉｅｎｔｉａ Ｈｏｒｔｉｃｕｌｔｕｒａｅꎬ １２０ (２): ２７１—２７５
Ｂｅｗｌｅｙ ＪＤꎬ １９９７. Ｓｅｅｄ ｇｅｒｍｉｎａｔｉｏｎ ａｎｄ ｄｏｒｍａｎｃｙ [ Ｊ] . Ｔｈｅ Ｐｌａｎｔ
Ｃｅｌｌꎬ ９ (７): １０５５—１０６６
Ｂｒａｍｌａｇｅ ＷＪꎬ Ｌｅｏｐｏｌｄ ＡＣꎬ Ｐａｒｒｉｓｈ ＤＪꎬ １９７８. Ｃｈｉｌｌｉｎｇ ｓｔｒｅｓｓ ｔｏ ｓｏｙ￣
ｂｅａｎｓ ｄｕｒｉｎｇ ｉｍｂｉｂｉｔｉｏｎ [Ｊ] . Ｐｌａｎｔ Ｐｈｙｓｉｏｌｏｇｙꎬ ６１ (４): ５２５—
５２９
Ｃｈｒｉｓｔｉａ Ｍꎬ １９６７. Ｐｅｒｉｏｄｓ ｏｆ ｓｅｎｓｉｔｉｖｉｔｙ ｔｏ ｃｈｉｌｌｉｎｇ ｉｎ ｇｅｒｍｉｎａｔｉｎｇ ｃｏｔ￣
ｔｏｎ [Ｊ] . Ｐｌａｎｔ Ｐｈｙｓｉｏｌｏｇｙꎬ ４２ (３): ４３１—４３３
Ｄｅｖａｉａｈ ＳＰꎬ Ｒｏｔｈ ＭＲꎬ Ｂａｕｇｈｍａｎ Ｅ ｅｔ ａｌ.ꎬ ２００６. Ｑｕａｎｔｉｔａｔｉｖｅ ｐｒｏｆｉ￣
ｌｉｎｇ ｏｆ ｐｏｌａｒ ｇｌｙｃｅｒｏｌｉｐｉｄ ｓｐｅｃｉｅｓ ｆｒｏｍ ｏｒｇａｎｓ ｏｆ ｗｉｌｄ￣ｔｙｐｅ Ａｒａｂｉ￣
ｄｏｐｓｉｓ ａｎｄ ａ ＰＨＯＳＰＨＯＬＩＰＡＳＥ Ｄ ａｌｐｈａ １ ｋｎｏｃｋｏｕｔ ｍｕｔａｎｔ
[Ｊ] . Ｐｈｙｔｏｃｈｅｍｉｓｔｒｙꎬ ６７ (１７): １９０７—１９２４
Ｄｕｂｏｔｓ Ｅꎬ Ａｕｄｒｙ Ｍꎬ Ｙａｍａｒｙｏ Ｙ ｅｔ ａｌ.ꎬ ２０１０. Ａｃｔｉｖａｔｉｏｎ ｏｆ ｔｈｅ ｃｈｌｏ￣
ｒｏｐｌａｓｔ ｍｏｎｏｇａｌａｃｔｏｓｙｌｄｉａｃｙｌｇｌｙｃｅｒｏｌ ｓｙｎｔｈａｓｅ ＭＧＤ１ ｂｙ ｐｈｏｓｐｈａ￣
ｔｉｄｉｃ ａｃｉｄ ａｎｄ ｐｈｏｓｐｈａｔｉｄｙｌｇｌｙｃｅｒｏｌ [ Ｊ] . Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ Ｂｉｏｌｏｇｉｃａｌ
Ｃｈｅｍｉｓｔｒｙꎬ ２８５ (９): ６００３—６０１１
５９１２期　 　 　 ＹＵ ａｎｄ ＬＩ ｅｔ ａｌ.: Ｔｈｅ Ｄｅｇｒｅｅ ｏｆ Ｕｎｓａｔｕｒａｔｉｏｎ ｏｆ Ｐｌａｓｔｉｄｉｃ Ｍｅｍｂｒａｎｅ Ｌｉｐｉｄｓ ｉｓ Ｐｏｓｉｔｉｖｅｌｙ Ａｓｓｏｃｉａｔｅｄ 􀆺　 　 　
Ｈａｎ Ｃꎬ Ｙｉｎ ＸＪꎬ Ｈｅ ＤＬ ｅｔ ａｌ.ꎬ ２０１３. Ａｎａｌｙｓｉｓ ｏｆ ｐｒｏｔｅｏｍｅ ｐｒｏｆｉｌｅ ｉｎ
ｇｅｒｍｉｎａｔｉｎｇ ｓｏｙｂｅａｎ ｓｅｅｄꎬ ａｎｄ ｉｔｓ ｃｏｍｐａｒｉｓｏｎ ｗｉｔｈ ｒｉｃｅ ｓｈｏｗｉｎｇ
ｔｈｅ ｓｔｙｌｅｓ ｏｆ ｒｅｓｅｒｖｅｓ ｍｏｂｉｌｉｚａｔｉｏｎ ｉｎ ｄｉｆｆｅｒｅｎｔ ｃｒｏｐｓ [ Ｊ] . ＰｌｏＳ
ＯＮＥꎬ ８ (２): ｅ５６９４７
Ｈｏｂｂｓ ＰＲꎬ Ｏｂｅｎｄｏｒｆ ＲＬꎬ １９７２. Ｉｎｔｅｒａｃｔｉｏｎ ｏｆ ｉｎｉｔｉａｌ ｓｅｅｄ ｍｏｉｓｔｕｒｅ
ａｎｄ ｉｍｂｉｂｉｔｉｏｎａｌ ｔｅｍｐｅｒａｔｕｒｅ ｏｎ ｇｅｒｍｉｎａｔｉｏｎ ａｎｄ ｐｒｏｄｕｃｔｉｖｉｔｙ ｏｆ
ｓｏｙｂｅａｎ [Ｊ] . Ｃｒｏｐ Ｓｃｉｅｎｃｅꎬ １２ (５): ６６４—６６７
Ｊａｒｖｉｓ Ｐꎬ Ｄｏｒｍａｎｎ Ｐꎬ Ｐｅｔｏ ＣＡ ｅｔ ａｌ.ꎬ ２０００. Ｇａｌａｃｔｏｌｉｐｉｄ ｄｅｆｉｃｉｅｎｃｙ
ａｎｄ ａｂｎｏｒｍａｌ ｃｈｌｏｒｏｐｌａｓｔ ｄｅｖｅｌｏｐｍｅｎｔ ｉｎ ｔｈｅ Ａｒａｂｉｄｏｐｓｉｓ ＭＧＤ
ｓｙｎｔｈａｓｅ １ ｍｕｔａｎｔ [ Ｊ] . Ｐｒｏｃｅｅｄｉｎｇｓ ｏｆ ｔｈｅ Ｎａｔｉｏｎａｌ Ａｃａｄｅｍｙ ｏｆ
Ｓｃｉｅｎｃｅｓ ｏｆ ｔｈｅ Ｕｎｉｔｅｄ Ｓｔａｔｅｓ ｏｆ Ａｍｅｒｉｃａꎬ ９７ (１４): ８１７５—８１７９
Ｌｅｏｐｏｌｄ ＡＣꎬ １９８０. Ｔｅｍｐｅｒａｔｕｒｅ ｅｆｆｅｃｔｓ ｏｎ ｓｏｙｂｅａｎ ｉｍｂｉｂｉｔｉｏｎ ａｎｄ
ｌｅａｋａｇｅ [Ｊ] . Ｐｌａｎｔ Ｐｈｙｓｉｏｌｏｇｙꎬ ６５ (６): １０９６—１０９８
Ｌｉ ＷＱꎬ Ｗａｎｇ Ｒꎬ Ｌｉ ＭＹ ｅｔ ａｌ.ꎬ ２００８. Ｄｉｆｆｅｒｅｎｔｉａｌ ｄｅｇｒａｄａｔｉｏｎ ｏｆ ｅｘ￣
ｔｒａｐｌａｓｔｉｄｉｃ ａｎｄ ｐｌａｓｔｉｄｉｃ ｌｉｐｉｄｓ ｄｕｒｉｎｇ ｆｒｅｅｚｉｎｇ ａｎｄ ｐｏｓｔ￣ｆｒｅｅｚｉｎｇ
ｒｅｃｏｖｅｒｙ ｉｎ Ａｒａｂｉｄｏｐｓｉｓ ｔｈａｌｉａｎａ [ Ｊ ] . Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ Ｂｉｏｌｏｇｉｃａｌ
Ｃｈｅｍｉｓｔｒｙꎬ ２８３ (１): ４６１—４６８
Ｌｙｏｎｓ ＪＭꎬ １９７３. Ｃｈｉｌｌｉｎｇ ｉｎｊｕｒｙ ｉｎ ｐｌａｎｔｓ [ Ｊ] . Ａｎｎｕａｌ Ｒｅｖｉｅｗ ｏｆ
Ｐｌａｎｔ Ｐｈｙｓｉｏｌｏｇｙ ａｎｄ Ｐｌａｎｔ Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｂｉｏｌｏｇｙꎬ ２４: ４４５—４６６
Ｍａｒｅｃｈａｌ Ｅꎬ Ｂｌｏｃｋ ＭＡꎬ Ｄｏｒｎｅ ＡＪ ｅｔ ａｌ.ꎬ １９９７. Ｌｉｐｉｄ ｓｙｎｔｈｅｓｉｓ ａｎｄ
ｍｅｔａｂｏｌｉｓｍ ｉｎ ｔｈｅ ｐｌａｓｔｉｄ ｅｎｖｅｌｏｐｅ [Ｊ] . Ｐｈｙｓｉｏｌｏｇｉａ Ｐｌａｎｔａｒｕｍꎬ
１００ (１): ６５—７７
Ｍｃｃｏｎｎ Ｍꎬ Ｂｒｏｗｓｅ Ｊꎬ １９９８. Ｐｏｌｙｕｎｓａｔｕｒａｔｅｄ ｍｅｍｂｒａｎｅｓ ａｒｅ ｒｅｑｕｉｒｅｄ
ｆｏｒ ｐｈｏｔｏｓｙｎｔｈｅｔｉｃ ｃｏｍｐｅｔｅｎｃｅ ｉｎ ａ ｍｕｔａｎｔ ｏｆ Ａｒａｂｉｄｏｐｓｉｓ [ Ｊ] .
Ｔｈｅ Ｐｌａｎｔ Ｊｏｕｒｎａｌꎬ １５ (４): ５２１—５３０
Ｎａｖａｒｉ￣Ｉｚｚｏ Ｆꎬ Ｑｕａｒｔａｃｃｉ ＭＦꎬ Ｍｅｌｆｉ Ｄ ｅｔ ａｌ.ꎬ １９９３. Ｌｉｐｉｄ ｃｏｍｐｏｓｉｔｉｏｎ
ｏｆ ｐｌａｓｍａ ｍｅｍｂｒａｎｅｓ ｉｓｏｌａｔｅｄ ｆｒｏｍ ｓｕｎｆｌｏｗｅｒ ｓｅｅｄｌｉｎｇｓ ｇｒｏｗｎ ｕｎ￣
ｄｅｒ ｗａｔｅｒ￣ｓｔｒｅｓｓ [ Ｊ] . Ｐｈｙｓｉｏｌｏｇｉａ Ｐｌａｎｔａｒｕｍꎬ ８７ (４): ５０８—
５１４
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ｔａｋｅ [Ｊ] . Ｐｈｙｓｉｏｌｏｇｉａ Ｐｌａｎｔａｒｕｍꎬ ５１ (１): １３３—１３９
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Ｓｃｉｅｎｃｅꎬ ５１ (１): ２７３—２８１
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Ｐｌａｎｔ ａｎｄ Ｃｅｌｌ Ｐｈｙｓｉｏｌｏｇｙꎬ ５０ (７): １３０５—１３１８
Ｚｈｅｎｇ ＧＷꎬ Ｃｈｅｎ Ｊꎬ Ｌｉ ＷＱꎬ ２０１２. Ｐｒｏｆｉｌｉｎｇ ｏｆ ｍｅｍｂｒａｎｅ ｌｉｐｉｄｓ ｏｆ
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ｑｕｅｎｔ ａｌｔｅｒａｔｉｏｎｓ ｂｅｔｗｅｅｎ ｈｉｇｈ ａｎｄ ｌｏｗ ｔｅｍｐｅｒａｔｕｒｅｓ: ｒｅｍｏｄｅｌｌｉｎｇ
ｏｆ ｍｅｍｂｒａｎｅ ｌｉｐｉｄｓ ａｎｄ ｍａｉｎｔｅｎａｎｃｅ ｏｆ ｕｎｓａｔｕｒａｔｉｏｎ ｌｅｖｅｌｓ [ Ｊ] .
Ｐｌａｎｔ Ｃｅｌｌ ａｎｄ Ｅｎｖｉｒｏｎｍｅｎｔꎬ ３４ (９): １４３１—１４４２
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Ｓｃｉｅｎｃｅ Ｃｈｉｎａ Ｃｈｅｍｉｓｔｒｙꎬ ３１ (８): ９３６—９３６
Ｚｈｅｎｇ ＧＨꎬ １９９１. Ｐｈｙｓｉｏｌｏｇｉｃａｌꎬ ｂｉｏｃｈｅｍｉｃａｌ ａｎｄ ｕｌｔｒａｓｔｒｕｃｔｕｒａｌ ａｓ￣
ｐｅｃｔｓ ｏｆ ｉｍｂｉｂｉｔｉｏｎａｌ ｃｈｉｌｌｉｎｇ ｉｎｊｕｒｙ ｉｎ ｓｅｅｄｓ: ａ ｒｅｖｉｅｗ ｏｆ ｗｏｒｋ
ｃａｒｒｉｅｄ ｏｕｔ ａｔ ｔｈｅ Ｂｅｉｊｉｎｇ Ｂｏｔａｎｉｃａｌ Ｇａｒｄｅｎ [Ｊ] . Ｓｅｅｄ Ｓｃｉｅｎｃｅ Ｒｅ￣
ｓｅａｒｃｈꎬ １ (０２): １２７—１３４
６９１　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 植 物 分 类 与 资 源 学 报　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 第 ３６卷