全 文 :中草药 Chinese Traditional and Herbal Drugs 第 45 卷 第 16 期 2014 年 8 月
·2283·
·专 论·
调节细胞自噬的中药有效成分研究进展
佳娜提•达吾列提,姜 楠,寇俊萍*,余伯阳
中国药科大学 中药复方研究室,江苏 南京 211198
摘 要:细胞自噬(autophagy)是一种进化上高度保守的饥饿应答机制,是细胞利用溶酶体降解自身受损的细胞器和大分
子物质的过程,这一特定的过程是细胞存活、分化、发育以及维持内环境稳定的重要机制。同时,自噬参与神经退行性疾病、
心脑血管疾病、肿瘤等重大疾病的病理过程,调节细胞自噬是防治上述疾病的重要途径之一。近年研究发现多种中药有效成
分可调节肿瘤细胞、神经细胞、心肌细胞、内皮细胞自噬,综述了近 3 年国内外对中药有效成分调节细胞自噬的研究进展,
以供参考。
关键词:细胞自噬;中药有效成分;肿瘤;心脑血管疾病;神经退行性疾病
中图分类号:R284;R285 文献标志码:A 文章编号:0253 - 2670(2014)16 - 2283 - 10
DOI: 10.7501/j.issn.0253-2670.2014.16.001
Advances in studies on active components in Chinese materia medica modulating
autophagy
Jia na ti ·DAWULIETI, JIANG Nan, KOU Jun-ping, YU Bo-yang
Department of Complex Prescription of Traditional Chinese Medicine, China Pharmaceutical University, Nanjing 211198, China
Abstract: Autophagy, as a high conserved starvation response mechanism with defensive and protective effects in eukaryotic cell, is
a lysosome-mediated degradation process for non-essential or damaged cellular constituents. It plays an important homeostatic role
in cell survival, differentiation, and development to maintain the homeostasis. Autophagy is involved in neurodegenerative disease,
cardiovascular and cerebrovascular diseases, and tumor. Thus, modulating autophagy may provide the potential therapeutic
strategies. Recently, many active components of Chinese materia medica (CMM) have been found with the modulatting function on
the autophagy in tumor cell, nerve cell, myocardial cell, and endothelial cell. This paper mainly reviews the advances in researches
on the active components of CMM for modulating autophagy in recent three years.
Key words: autophagy; active components of Chinese materia medica; tumor; cardiovascular and cerebrovascular diseases;
neurodegenerative disease
自噬即细胞的自我吞噬,是一种进化上高度保
守的饥饿应答机制,是细胞利用溶酶体降解自身受
损的细胞器和大分子物质的过程,其形成主要有 3
种形式:巨自噬( macroautophagy )、微自噬
(microautophagy)、分子伴侣介导的自噬(chaperone-
mediated autophagy,CMA)[1]。自噬的过程分为 5
个步骤:自噬的诱导、囊泡成核、囊泡的延伸与完
成、自噬小体的形成及自噬小体被溶酶体裂解。至
少有 4 个分子部件参与自噬的调控,包括自噬相关
基因 1(Atg1)/unc-51-like 激酶(ULK)复合物、
Atg6(Beclin1)/III 型磷脂酰肌醇三磷酸激酶(Class
III PI3K)复合物、跨膜蛋白 Atg9 和 VMP1 以及泛
素样蛋白(Atg12 和 Atg8/LC3)结合系统。它们直
接受到细胞内应激信号的调控,在细胞自噬的不同
收稿日期:2014-03-13
基金项目:国家自然科学基金资助项目(81274004);江苏省高等学校优秀科技创新团队项目(苏教科[2011]11 号)
作者简介:佳娜提•达吾列提(1987—),女,哈萨克族,新疆伊犁人,硕士研究生,研究方向为中药复方作用机制研究。
E-mail: cpu_jianati@163.com
*通信作者 寇俊萍,女,博士,教授,博士生导师,主要从事中药及复方药效物质基础与作用机制研究。
Tel: (025)86185158 E-mail: junpingkou@cpu.edu.com
中草药 Chinese Traditional and Herbal Drugs 第 45 卷 第 16 期 2014 年 8 月
·2284·
时期发挥着不同的作用。Atg1/ULK 复合物受到腺苷
酸活化蛋白激酶(AMPK)哺乳动物细胞的雷帕霉素
靶标复合物(mTOR)通路调节,Beclin1/Class III PI3K
复合物则通过 c-Jun 氨基端激酶(JNK)等进行调控。
细胞内游离钙离子浓度的增加和线粒体膜电位的减
少也能诱导细胞自噬的发生[2-3]。
细胞自噬广泛存在于正常生理状态,并参与神
经退行性疾病、心脑血管疾病、肿瘤等重大疾病的
病理过程,调节细胞自噬是防治上述疾病的重要途
径之一[1]。近年来研究发现某些中药及其有效成分
可调节多种细胞自噬,继而防治相关疾病。本文从
调节肿瘤细胞、神经细胞、心肌细胞、内皮细胞自
噬等方面,综述了近 3 年国内外对中药有效成分调
节细胞自噬的研究进展,以期为阐释中药有效成分
的作用特点和对相关疾病的防治提供参考和线索。
1 诱导肿瘤细胞自噬的中药有效成分
恶性肿瘤严重危害人类健康,研究表明,在多
种人类肿瘤细胞中存在自噬活性的改变,正常情况
下自噬可以保持细胞稳态,清除肿瘤细胞内折叠异
常的蛋白和功能异常的细胞器如线粒体,抑制细胞
应激反应,从而降低肿瘤的发生率;然而当肿瘤形
成,自噬可降解肿瘤细胞内变性的蛋白质和细胞器,
为其生长提供营养及能量,促进肿瘤生长。随着研
究的深入,诱导肿瘤细胞自噬,为肿瘤的防治提供
了全新的方向 [4]。近年来,越来越多的研究证实,
一些中药有效成分具有明显诱导多种肿瘤细胞自噬
的作用。
1.1 诱导肝癌细胞自噬的中药有效成分
蟾蜍灵(bufalin)是中药蟾酥中的主要成分之
一,研究表明其可诱导多种肝癌细胞自噬。蟾蜍灵
可激活肝癌 HepG2 细胞自噬和凋亡,增强自噬
Beclin-1(BECN-1)的表达,促进 I 型微管相关蛋
白 1 轻链 3(LC3-I)向 II 型微管相关蛋白 1 轻链 3
(LC3-II)的转化,抑制 p62 和 mTOR 信号通路表达,
AMPK 抑制剂可降低蟾蜍灵诱导自噬的作用,提示蟾
蜍灵诱导的自噬作用可能是 AMPK-mTOR 依赖性
的[5]。蟾蜍灵可通过抑制 Akt/mTOR 通路,上调
LC3-II、Beclin-1、Atg5、Atg7 和 Atg12 蛋白的量,
诱导 SK-HEP-1 细胞自噬性死亡[6]。此外,蟾蜍灵
还可诱导 Huh7、Hep3B 和 HA22T 细胞自噬,抑制
细胞增殖,使细胞阻滞在 G2/M 期,其诱导自噬的
机制可能与激活 JNK 通路,上调肿瘤坏死因子
(TNF)、BECN-1、Atg8 水平相关[7]。防己诺林碱是
中药粉防己的有效成分之一,1×10−3~1×103
mmol/L 的防己诺林碱可激活 p53/sestrin2/AMPK 通
路,诱导 HepG2 和 PLC/PRF/5 细胞自噬性死亡,
但不诱导细胞凋亡;抑制 AMPK 通路和干扰 Atg5
基因后,可削弱防己诺林碱的上述作用,提示防己
诺林碱诱导细胞自噬的作用机制可能与激活
p53/sestrin2/AMPK 通路相关[8]。火麻仁的成分大麻
酰 B 也可通过抑制 Akt/mTOR 通路诱导 HepG2 细
胞自噬性死亡[9]。
另外,姜黄素和阿霉素联合用药后,可诱导
HepG2 细胞自噬,上调 LC3-II 的量,提高 LC3 标
记的自体吞噬体和自噬性溶酶体的表达,同时诱导
凋亡,也提示联合用药防治肝癌的有效性[10]。
1.2 诱导肺癌细胞自噬的中药有效成分
β-榄香烯是从香茅草中提取的有效抗癌成分,属
于倍半萜烯类成分。研究发现 β-榄香烯可通过抑制
PI3K/Akt/mTOR/p70S6K1 信号通路,增加 LC3-II 和
Atg5-Atg12 蛋白的量,诱导人非小细胞性肺癌
NSCLCA549 细胞发生自噬,并且可诱导细胞凋亡[11]。
研究发现,姜黄素抑制肺腺癌 A549 细胞增殖,增加
LC3 的免疫荧光点,上调 LC3-II/I 的比值,增加自噬
相关蛋白 SQSTM1 的量,自噬抑制剂 3-甲基腺嘌呤
(3-MA)可抑制姜黄素诱导 A549 细胞增殖的作用;
应用 AMPK 抑制剂和干扰 AMPKα1 后,姜黄素对蛋
白 LC3-II/I 和 SQSTM1 的作用被削弱,提示姜黄素诱
导肺腺癌 A549 细胞自噬,可能与激活 AMPK 通路相
关[12]。另外,麦冬的有效成分之一麦冬皂苷 B 处理肺
癌细胞,可观察到大量细胞质空泡,透射电子显微镜
下可见自噬特征性的形态学改变,同时 LC3-II 的表达
增加,PI3K/Akt 通路受到抑制,而流式细胞仪检测结
果表明,麦冬皂苷 B 不能诱导细胞凋亡,表明麦冬皂
苷 B 可通过抑制 PI3K/Akt 通路引起 H157 和 H460 细
胞自噬,而非凋亡途径[13]。
1.3 诱导乳腺癌细胞自噬的中药有效成分
汉黄芩苷是中药黄芩的有效成分之一,研究发
现,在给予 50、100、200、300、400 μmol/L 的汉
黄芩苷后,MDA-MB-231 细胞活力不同程度降低;
100 μmol/L 汉黄芩苷给药 1、3、6、9、12、15 h,
MDA-MB-231 细胞中 LC3-I 不断减少,LC3-II、
Beclin-1 呈梯度性地增加,p-mTOR、p70S6K、p38
呈梯度减少,p-JNK 没有变化趋势,同时观察到细
胞中待降解的细胞器的自噬空泡和自噬体,结果表
明汉黄芩苷可引起 MDA-MB-231 细胞自噬,且具
中草药 Chinese Traditional and Herbal Drugs 第 45 卷 第 16 期 2014 年 8 月
·2285·
有时间和浓度依赖性,其调节细胞自噬的机制与
MAPK-mTOR 通路相关而非 JNK 通路[14]。另外,
从中药点地梅中分离得到的三萜皂苷类化合物
saxifragifolin D(SD),增加 MCF-7 和 MDA-MB-231
细胞 LC3-II、Beclin-1、III 型 PI3K(Vps34)蛋白
的量,并通过活性氧(ROS)介导的内质网应激(ER
stress)途径诱导乳腺癌细胞凋亡和自噬,抑制癌细
胞增殖[15]。柴胡中提取的单体成分柴胡皂苷 d 通过
增 加 细 胞 质 游 离 Ca2+ 浓 度 , 激 活 CaMKK-
AMPK-mTOR通路诱导MCF-7细胞自噬性死亡[16]。
另外,有学者报道,人参皂苷 F2 诱导乳腺癌干
细胞 CSC 凋亡,且通过增加 Atg7、Beclin-1、LC3B
蛋白的量,增加 LC3-GFP 荧光蛋白和自噬泡诱导自
噬,联合自噬抑制剂则能增强人参皂苷 F2 诱导的细
胞凋亡[17]。白藜芦醇诱导 MDA-MB231 细胞凋亡,
增加 LC3-II 蛋白的量诱导自噬,但联合自噬抑制剂
可增强白藜芦醇诱导 MDA-MB231 细胞凋亡[18]。
1.4 诱导胃癌细胞自噬的中药有效成分
研究发现,β-榄香烯处理 MGC-803 和 SGC-
7901 细胞可观察到 LC3 点状聚集、LC3-II 蛋白水
平增加、Atg5-Atg12 相关蛋白上调,并且 PI3K/Akt/
mTOR/p70S6K1 通路受抑制,表明 β-榄香烯可诱导
胃癌细胞自噬,其机制可能与 PI3K/Akt/mTOR/
p70S6K1 通路相关 [19]。另外,苦参碱也可诱导
SGC-7901 细胞产生自噬空泡和自噬体,诱导细胞
自噬,其机制与苦参碱抑制组织蛋白酶 cathepsins
运输过程和蛋白酶的活性以及溶酶体蛋白酶活性,
上调内涵体/溶酶体的 pH 值相关[20-21]。槲皮素可诱
导 AGS 和 MKN28 细胞凋亡,且通过抑制 Akt-
mTOR 通路和激活缺氧诱导因子-1(HIF-1)信号通
路诱导自噬[22]。
1.5 诱导结肠癌细胞自噬的中药有效成分
研究发现,经蟾蜍灵处理的 HT-29 和 Caco-2
细胞,透射电镜超微结构中观察到自噬体的形成,
LC3-II、Atg5、Beclin-1 蛋白表达上调,ROS 产生;
应用 ROS 抗氧化剂,JNK 的抑制剂 SP600125 和干
扰 JNK2 后,发现蟾蜍灵诱导自噬的能力削弱,提
示蟾蜍灵诱导结肠癌细胞自噬性死亡的机制可能与
ROS 的产生和 JNK 的激活相关[23]。人参皂苷 Rb1
代谢产物K通过产生ROS,激活 JNK,诱导HCT-116
细胞自噬和凋亡[24]。另外,白藜芦醇通过诱导 ROS
激活的自噬途径诱导 HT-29 细胞凋亡[25],其亦可诱
导 HCT116 细胞凋亡,通过增加 LC3-II 蛋白的量诱
导自噬,但联合自噬抑制剂可增强白藜芦醇诱导的
HCT116 细胞凋亡[18]。
1.6 诱导前列腺癌细胞自噬的中药有效成分
前列腺癌是男性最常见的恶性肿瘤之一,而且
是导致西方国家男性癌症患者死亡的第 2 位原因。
中药水鬼焦的化学成分之一水鬼焦碱可诱导 DU145
和 LNCaP 细胞凋亡,同时诱导雄激素非依赖的前列
腺癌 DU145 细胞发生自噬性死亡,而 LNCaP 细胞
中没有观察到自噬相关指标,提示水鬼碱诱导的
DU145 细胞自噬可能具有雄激素依赖性[26]。另外,
胡椒中主要的活性成分之一胡椒碱给药 24 h 后通过
增加 LC3B-II 蛋白的量和阳性荧光点,诱导 LNCaP
和 PC-3 细胞自噬,抑制细胞增殖,使细胞阻滞在
G0/G1期[27]。
1.7 诱导宫颈癌细胞自噬的中药有效成分
有学者报道,150~250 μmol/L 白藜芦醇处理
C33A、HeLa、CaSki、SiHa、CaLo 细胞 48 h 后,
使细胞阻滞在 G1 期,诱导细胞凋亡,且通过增加
C33A、CaLo 和 HeLa 细胞溶酶体通透性诱导细胞
自噬,表明白藜芦醇对不同细胞的敏感性不同,诱
导不同程度的细胞自噬[28]。另外,柴胡皂苷 d 通过
增加细胞质游离 Ca2+浓度水平,激活 CaMKK-
AMPK-mTOR 通路诱导 HeLa 细胞自噬性死亡[16]。
1.8 诱导白血病细胞自噬的中药有效成分
白藜芦醇可通过抑制 Akt/mTOR/p70S6K/
4E-BP1,激活 p38-MAPK 通路诱导 T 细胞急性淋
巴细胞白血病细胞自噬[29]。另外二氢青蒿素(DHA)
通过增加 LC3-II 蛋白的量诱导铁超负荷介导的白
血病 K562 细胞自噬[30]。
1.9 其他
有学者考察了三氧化二砷(ATO)对体内和体
外胶质瘤细胞 U118-MG 的作用,研究发现 ATO 可
通过下调肿瘤组织中存活素的量诱导U118-MG细胞
自噬和凋亡,从而发挥抑制肿瘤的作用,其作用抑
制与 PI3K/Akt 通路和激活 MAPK 通路相关[31]。DHA
还可诱导食管癌 Eca109 和 Ec9706 细胞 LC3-I 向
LC3-II 转变,并且发生细胞凋亡[32]。和厚朴酚可剂
量依赖性抑制多形性胶质母细胞 DBTRG-05MG 细
胞活力,诱导 DBTRG-05MG 细胞自噬和凋亡[33]。
槲皮素诱导人神经胶质瘤细胞株 U373-MG 发生线
粒体介导的自噬,诱导 LC3-I 向 LC3-II 转化[34]。另
外,汉黄芩黄素通过抑制 mTOR/P70S6K 通路诱导人
鼻咽癌自噬,且诱导细胞凋亡[35]。锦灯笼的有效成
中草药 Chinese Traditional and Herbal Drugs 第 45 卷 第 16 期 2014 年 8 月
·2286·
分酸浆苦素 A 可上调 Beclin-1、LC3 蛋白表达诱导
黑色素肿瘤细胞 A375-S2 自噬,且诱导细胞凋亡[36]。
2 调节神经细胞自噬的中药有效成分
近年来研究表明,自噬广泛参与神经系统发育及
脑缺血、帕金森病(PD)、阿尔茨海默病(AD)、亨
廷顿氏病(HD)等多种神经系统疾病的发生发展[37]。
已有研究显示,多种中药有效成分调节神经细胞自
噬,发挥防治上述疾病的作用。
自噬在脑缺血再灌注中起到双重调控作用,是
决定细胞存活还是凋亡的重要因素。在适度缺血损
伤下,上调自噬,为细胞提供能量;但是过度刺激,
可能导致细胞自噬过度,发生自噬性细胞死亡。调
节细胞自噬也是目前防治中风的热点之一[38]。有学
者采用流式细胞术检测到脑缺血大鼠脑内 Beclin1、
JNK、p-JNK 的水平增加,bcl-2 水平降低,术前 4 d
连续 ip 石菖蒲的有效成分 β-细辛醚 3.75、7.5、15
mg/kg 后可降低 Beclin1、JNK、p-JNK 的水平,增
加 bcl-2 的水平,证实不同剂量的 β-细辛醚能通过
下调 Beclin1、JNK、p-JNK 的水平降低大鼠脑内脑
缺血再灌注引起的细胞自噬,表明 β-细辛醚可能通
过自噬途径改善脑缺血再灌注引起的损伤[39]。进一
步证实,β-细辛醚通过降低游离 Ca2+浓度,下调
Beclin1 的量,通过 MPP 途径,降低自噬,发挥对
PC12 细胞氧糖剥夺损伤模型的保护作用[40]。中药
吴茱萸的有效成分吴茱萸碱诱导U87-MG星形胶质
细胞自噬,抑制细胞外 Ca2+的内流、干扰香草型瞬
时受体电位(TRPV)基因均可抑制细胞自噬,抑
制 JNK 通路,增加细胞凋亡,提示吴茱萸碱可能通
过诱导 Ca2+内流,激活 JNK 通路诱导自噬,此研究
为脑缺血的研究提供了新的依据和选择[41]。
细胞内路易小体的主要组成部分α-突触核蛋白
(α-syn)作为毒性因子介导了 PD 的病理过程。研
究表明,自噬参与了 PD 的发病过程,过量的 α-syn
可抑制自噬,提示自噬可能是药物治疗 PD 的一个
潜在靶点[42-43]。异钩藤碱是钩藤的有效成分,有学
者研究报道,12.5、25、50 μmol/L 异钩藤碱处理
24 h 后,可剂量依赖性地增加不同神经细胞(N2a、
PC12、SH-SY5Y、皮层神经元)LC3-II 蛋白的量;
稳定表达 GFP-LC3 的 N2a 细胞经不同浓度(6.25、
12.5、25 μmol/L)异钩藤碱和 DIV7 小鼠胚胎神经
元经50 μmol/L异钩藤碱处理24 h后,细胞质内LC3
呈现明显的点状聚集,3-MA 可抑制异钩藤碱诱导
的 GFP-LC3 点状聚集,表明异钩藤碱可诱导神经细
胞自噬。异钩藤碱可抑制 N2a 细胞 p-mTOR、p-
70S6K 表达,对 Beclin-1、Atg7、Atg5 的量无影响,
但干扰 Becn1 基因后,异钩藤碱诱导的自噬作用降
低;通过自噬溶酶体途径清除 N2a 细胞中过量表
达的野生型和突变型的 α-syn,显示其防治 PD 的
广阔前景[44]。另外,山柰酚和雷公藤红素可通过
诱导自噬途径保护鱼藤酮诱导的 SH-SY5Y 神经细
胞,提示自噬途径可能是二者发挥神经保护作用的
机制之一[45-46]。
HD 是由于中枢神经的神经元中出现由突变的
亨廷顿蛋白(Htt)形成的包涵体和聚集体引起的。
在 HD 的细胞模型中,上调自噬不仅可以减少聚集
物的形成,而且还可以降低可溶性的 mHtt 水平和
毒性,提示自噬可能成为 HD 新的治疗靶点[47]。远
志皂苷 B 通过 Atg7 调节和 AMPK-mTOR 信号通路
诱导 PC12 细胞自噬,加速 Htt 蛋白和 A53T α-突触
核蛋白的清除,此研究为通过自噬途径减小神经毒
性和清除突变蛋白,治疗神经性退化疾病提供了参
考依据[48]。
朊病毒(prion diseases)疾病也是一种神经退
行性疾病。线粒体功能障碍是一种在 AD 和朊病毒
疾病等退行性疾病中引起的神经细胞死亡中最常
见的方式[49]。调节自噬途径在治疗神经退行性疾
病方面发挥着重要的作用,且与调节线粒体功能障
碍相关 [50]。1、2、4 μmol/L 的白藜芦醇处理
SH-SY5Y 细胞 6、12、24、36、48 h 后,LC3-II
蛋白显著增加,3-MA 可削弱白藜芦醇的神经保护
作用,表明白藜芦醇通过诱导自噬途径抑制 PrP
(106~126)介导的神经 SH-SY5Y 细胞凋亡和线
粒体功能障碍[51]。
3 调节心肌细胞自噬的中药有效成分
自噬在心血管网络调节中同样占有重要地位,
已成为心血管疾病防治的一个新靶点[52]。研究发现,
自噬在心肌缺血再灌注过程不同阶段发挥着不同的
作用。对于缺血初期的心肌细胞来说,由于缺血状
态下氧和营养物质下降,内生 ATP 水平也下降,激
活 AMPK,同时抑制 mTOR,引起细胞自噬增强,
此时的细胞自噬主要起保护作用,防止心肌细胞过
度死亡。而在再灌注期,由于血液和氧气的供给,
AMPK的激活以及mTOR的抑制不再起主导作用,
此时胞内 Ca2+ 浓度升高,氧化应激、内质网应激发
生,伴随着 Beclin1 的表达上调,这些导致再灌注期
的细胞自噬增强。但是与缺血期的保护不同的是,
中草药 Chinese Traditional and Herbal Drugs 第 45 卷 第 16 期 2014 年 8 月
·2287·
此时由于细胞自噬引发的过量死亡,会导致细胞损
伤加重[53]。
有学者报道制备左冠状动脉结扎术小鼠心肌梗
死模型,造模 4 周后,ig 5、50 mg/kg 白藜芦醇 2
周,结果发现高浓度的白藜芦醇可上调心肌细胞
LC3-II蛋白的量,增加自噬泡和ATP,且激活AMPK
通路,表明高浓度白藜芦醇可能通过 AMPK 通路改
善小鼠心肌肥大、心肌梗死[54]。过氧化氢诱导心肌
细胞 H9c2 氧化应激损伤,其活力降低,诱导凋亡,
20 μmol/L 白藜芦醇可抑制细胞凋亡,诱导自噬体形
成,上调 Beclin-1、LC3-II 蛋白的量,3-MA 和
p38MAPK 抑制剂均可削弱白藜芦醇诱导的自噬作
用,表明白藜芦醇可诱导 H9c2 细胞自噬,其通路
可能与激活的 p38MAPK 相关[55]。另外,白藜芦醇
通过抑制 p-70S6 激酶 1(S6K1)介导的自噬途径减
少多柔比星诱导的心肌细胞毒性[56]。
有研究表明心肌细胞饥饿 3 h,能诱导心肌细胞
自噬,LC3-II 积累,导致细胞损伤,并且呈时间依
赖性,LC3 阳性荧光点增加,经丹酚酸 B 处理后,
发现 LC3-II 的表达降低,LC3 阳性荧光点减少,说
明丹酚酸 B 能抑制饥饿心肌细胞自噬,从而发挥保
护作用[57]。缺氧/复氧(H/R)增加 LC3B-II 的量,
且可时间依赖性地降低 H9c2 心肌细胞活力和胞内
ATP 量。100 μmol/L 人参皂苷 Rg1 可抑制自噬和凋
亡,增加胞内 ATP 量;人参皂苷 Rg1 还可抑制
AMPKα 的活化,增强 mTOR 的激活,减少 LC3B-II
和 Beclin-1 的量,表明人参皂苷 Rg1 可通过抑制自
噬途径对H/R诱导的H9c2细胞损伤产生保护作用,
其机制可能与激活的 AMPK/mTOR 通路相关[58]。
4 调节内皮细胞自噬的中药有效成分
内皮细胞损伤是心血管疾病发生的首要环节,因
此保护内皮细胞的损伤是预防和治疗心血管疾病的
关键。高同型半胱氨酸血症(Hhcy)是脑血管疾病
的一个重要的独立危险因素,可导致血管内皮细胞
损伤、血管基质重构动脉中层弹力蛋白和胶原蛋白
的损伤缺失等病理过程,与缺血性脑血管病有密切
关系。有研究表明 Hhcy 小鼠在脑缺血后,脑组织中
同型半胱氨酸(Hcy)水平增加,激活细胞自噬,基
质金属蛋白酶(MMPs)表达明显增加,血脑屏障通
透性增加,在术后 30 min ip 25 mg/kg 四氢姜黄素
(THC)3 d,结果发现 THC 可降低脑组织 Hcy 的神
经毒性,抑制 LC3-I 向 LC3-II 的转化,降低 MMPs
表达,降低血脑屏障通透性,提示 THC 可通过抑制
细胞自噬途径改善 Hhcy 小鼠脑缺血损伤[59]。另外,
白藜芦醇通过激活环磷酸腺苷(cAMP)[60],并可诱
导内皮型一氧化氮合酶(eNOS)和沉默信息调节因
子 1(SIRT1)表达上调,同时增加了自噬相关基因
γ-氨基丁酸 A 受体相关蛋白(GABARAP)、LC3B、
Atg3、金属硫蛋白(MT)1X 基因(MT1X)的表达,
表明白藜芦醇可诱导 HUVEC 细胞自噬,发挥对心
血管系统的保护作用[61]。经 1、5、10 μmol/L 姜黄素
处理 24 h 的 HUVECs 细胞可剂量依赖性地上调
LC3-II 蛋白的量,增加自噬体,下调 p62 蛋白水平,
表明姜黄素可诱导 HUVECs 细胞自噬保护内皮细胞
的氧化应激损伤,进一步研究提示,姜黄素诱导
HUVECs细胞自噬可能与促进BECN1和凋亡相关调
控因子 Bcl-2 的表达,抑制 PI3K-AKT-mTOR 通路,
阻止叉头转录因子 1(FOXO1)的乙酰化水平有关[62]。
5 其他
除此之外,自噬还参与五没食子酰葡萄糖抗疱
疹病毒 I 型病毒作用,机制可能与抑制 mTOR 通路
相关[63]。
6 结语与展望
多种中药有效成分对肿瘤细胞、神经细胞、心
肌细胞、内皮细胞等多种靶细胞自噬具有调节作用
(表 1),目前报道中主要以黄酮类、多酚类、生物
碱、萜类、甾体及其苷类等多种类型中药有效成分
诱导肿瘤细胞自噬居多,其中白藜芦醇、姜黄素最
具代表性,可诱导肝癌、乳腺癌、结肠癌、宫颈癌、
胶质瘤、白血病等多器官多系统的肿瘤细胞自噬;
同时,内酯类化合物蟾蜍灵也是研究较多的中药有
效成分之一,对肝癌和结肠癌的细胞自噬作用更为
突出;槲皮素、β-榄香烯等也是文献报道较多的中
药有效成分,为抗肿瘤中药新药的研制开发提供可
能的治疗策略。同时,白藜芦醇对神经细胞、心肌
细胞、内皮细胞自噬等都有调节作用,姜黄素也能
诱导内皮细胞自噬,提示调节细胞自噬可能是这些
有效成分发挥广泛的药理活性的共同作用途径之
一。另外,不同中药有效成分对细胞自噬的调节作
用也不同,槲皮素、汉黄芩苷等可诱导细胞自噬,
而 β-细辛醚、丹酚酸 B、人参皂苷 Rg1则具有抑制
细胞自噬的作用;同一中药有效成分对不同靶细胞
或不同模型细胞,呈现激活或抑制自噬的双向作用,
如白藜芦醇可诱导肿瘤细胞、心肌 H9c2 细胞自噬,
但又可通过抑制 S6K1 介导的自噬途径减少多柔比
星诱导的心肌细胞毒性;同一种有效成分对多种靶
中草药 Chinese Traditional and Herbal Drugs 第 45 卷 第 16 期 2014 年 8 月
·2288·
表 1 调节细胞自噬的中药有效成分
Table 1 Active components of Chinese materia medica with modulating function on autophagy
类别 成分 靶细胞
激活或抑
制自噬
作用环节
参考
文献
1)抑制 Akt-mTOR 通路 胃癌 AGS/MKN28 细胞 激活
2)激活 HIF-1 信号通路
22 槲皮素
神经胶质瘤细胞 U373-MG 激活 上调 LC3-II 34
1)上调 LC3II、Beclin-1 汉黄芩苷 乳腺癌 MDA-MB-231 细胞 激活
2)抑制 MAPK-mTOR 通路
14
汉黄芩黄素 人鼻咽癌细胞 激活 抑制 mTOR 通路 35
山柰酚 SH-SY5Y/初级神经细胞 激活 上调 LC3-II 45
黄酮类
五没食子酰葡萄糖 病毒 激活 抑制 mTOR 通路 63
1)上调 LC3-II 和 Atg5-Atg12 肺癌 NSCLCA549 细胞 激活
2)抑制 PI3K/Akt/mTOR/p70S6K1 通路
11
1)上调 LC3-II、Atg5-Atg12
β-榄香烯
胃癌 MGC803/SGC7901 细胞 激活
2)抑制 PI3K/Akt/mTOR/p70S6K1 通路
19
白血病 K562 细胞 激活 上调 LC3-II 30 二氢青蒿素
食管癌 Eca109/Ec9706 细胞 激活 上调 LC3-II 水平 32
萜类
雷公藤红素 神经 SH-SY5Y 细胞 激活 上调 LC3-II/I 的比值 46
乳腺癌 MDA-MB231 细胞 激活 上调 LC3-II 18
结肠癌 HCT116 细胞 激活 上调 LC3-II 18
结肠癌 HT-29 细胞 激活 产生 ROS 25
宫颈癌 C33A/CaLo/HeLa 细胞 激活 增加溶酶体通透性 28
1)上调 LC3-II/LC3-I、Beclin-1
2)抑制 Akt/mTOR/p70S6K/4E-BP1 通路
白血病 T-ALL 激活
3)激活 p38-MAPK 通路
29
神经 SH-SY5Y 细胞 激活 上调 LC3-II 51
1)上调 Beclin-1、LC3-II 心肌 H9c2 细胞 激活
2)激活 p38MAPK
55
心肌细胞 抑制 S6K1 介导 56
1)上调 LC3-II 蛋白 心肌细胞 激活
2)激活 AMPK 通路
54
内皮细胞 激活 激活 cAMP 通路 60
1)上调 LC3B、Atg3
多酚类 白藜芦醇
内皮细胞 激活
2)上调 SIRT1、GABARAP
61
肝癌 HepG2 细胞 激活 上调 LC3-II 10
1)上调 LC3-II/I、SQSTM1 肺腺癌 A549 细胞 激活
2)激活 AMPK 通路
12
1)上调 LC3-II,下调 p62
2)抑制 PtdIns3K-AKT-mTOR 通路
姜黄素
内皮 HUVECs 细胞 激活
3)调节 FOXO1
62
四氢姜黄素 内皮细胞 抑制 下调 LC3-II 59
和厚朴酚 多形性胶质母细胞 DBTRG-05MG 激活 上调 Beclin-1、LC3-II 33
中草药 Chinese Traditional and Herbal Drugs 第 45 卷 第 16 期 2014 年 8 月
·2289·
续表 1
类别 成分 靶细胞 激活或抑制自噬 作用环节
参考
文献
防己诺林碱 肝癌 HepG2、PLC/PRF/5 细胞 激活 激活 p53/sestrin2/AMPK 通路 8
1)抑制 cathepsins 运输过程
2)抑制溶酶体蛋白酶活性
苦参碱 胃癌 SGC-7901 细胞 激活
3)上调内涵体/溶酶体的 pH 值
20-21
水鬼焦碱 前列腺癌 DU145 细胞 激活 26
胡椒碱 LNCaP/PC-3 细胞 激活 上调 LC3B-II 27
1)诱导 Ca 离子内流 吴茱萸碱 U87-MG 星形胶质细胞 激活
2)激活 JNK 通路
41
生物碱
异钩藤碱 神经细胞 N2a 激活 抑制 p-mTOR、p-70S6K 表达 44
1)上调 LC3-II 水平 麦冬皂苷 B 肺癌 H15/H460 细胞 激活
2)抑制 PI3K/Akt 通路
13
1)上调 LC3-II、Beclin-1、Vps34 saxifragifolin D 乳腺癌MCF-7/MDA-MB-231细胞 激活
2)ROS 介导的内质网应激
15
人参皂苷 F2 乳腺癌干细胞 CSC 激活 上调 Beclin-1、LC3B、Atg7 17
1)产生 ROS 人参皂苷 Rb1 代谢
产物 K
结肠癌 HCT-116 细胞 激活
2)激活 JNK 通路
24
1)下调 LC3B-II、Beclin-1
2)抑制 AMPKα 的活化
人参皂苷 Rg1 心肌 H9c2 细胞 抑制
3)激活 mTOR
58
酸浆苦素 A 黑色素肿瘤 A375-S2 细胞 激活 上调 Beclin-1、LC3 蛋白 36
1)上调 LC3-II、Atg7 远志皂苷 B PC12 细胞 激活
2)激活 AMPK-mTOR 通路
48
1)增加细胞质 [Ca2+]i 水平
皂苷类
柴胡皂苷 d 乳腺癌 MCF-7 细胞/宫颈癌 HeLa
细胞
激活
2)激活 CaMKK-AMPK-mTOR 通路
16
1)上调 Beclin-1、LC3-II 肝癌 HepG2 细胞 激活
2)激活 AMPK-mTOR 通路
5
1)上调 LC3-II、Beclin-1
2)上调 Atg5、Atg7、Atg12
肝癌 SK-HEP-1 细胞 激活
3)抑制 Akt/mTOR 通路
6
1)上调 TNF、BECN-1、Atg8 肝癌 Huh7/Hep3B/HA22T 细胞 激活
2)激活 JNK 通路
7
1)上调 LC3-II、Atg5、Beclin-1
2)激活 JNK 通路
内酯类 蟾蜍素
结肠癌 HT-29/Caco-2 细胞 激活
3)活化 ROS
23
1)上调 LC3-II 木脂素酰
胺类
大麻酰 B 肝癌 HepG2 细胞 激活
2)抑制 Akt/mTOR 通路
9
1)下调 Beclin-1 挥发油 β-细辛醚 PC12 细胞 抑制
2)降低 [Ca2+]i,增加 MMP 途径
39-40
苯丙素类 丹酚酸 B 心肌细胞 抑制 下调 LC3-II 57
胶质瘤细胞 U118-MG 1)抑制 PI3K/Akt 通路 矿物质类 三氧化二砷
激活
2)激活 MAPK 通路
31
中草药 Chinese Traditional and Herbal Drugs 第 45 卷 第 16 期 2014 年 8 月
·2290·
细胞具有相同的激活或抑制作用,如槲皮素对胃癌
AGS/MKN28 细胞和神经胶质瘤细胞 U373-MG 均
有激活作用。同时,值得注意的是,细胞自噬也是
机体正常的生理过程,诱导肿瘤细胞自噬的成分,
对正常细胞的存活影响如何,是否可能带来一定副
作用,值得进一步关注。另外,目前文献报道中,
以体外细胞模型的结果为多,中药有效成分往往显
示调节细胞凋亡、抗氧化等广泛的药理活性,是否
存在一定非特异性调节自噬的作用,还需结合体内
实验及其他手段等加以证实。
中药有效成分调节细胞自噬的可能机制目前报
道比较多的信号通路主要包括 PI3K-Akt、mTOR 通
路、ERK1/2、JNK 通路等,其中涉及最多的是 mTOR
信号通路,是槲皮素、汉黄芩苷、β-榄香烯、白藜
芦醇、姜黄素、蟾蜍灵等多种活性成分调节自噬的
共同信号通路,提示调节 mTOR 途径是防治自噬相
关疾病很有吸引力的靶点之一。另外,由于结构类
型的不同,各有效成分调节自噬的途径也各有特点,
如吴茱萸碱诱导U87-MG星形胶质细胞自噬的通路
与 JNK 通路相关;β-细辛醚抑制 PC12 细胞自噬的
机制涉及 Ca2+浓度调节,姜黄素还可激活 AMPK
等。但仍有些中药有效成分如和厚朴酚、山柰酚、
水鬼焦碱等对细胞自噬的调节信号通路尚不清楚,
仍有待进一步研究。
中药有效成分在调节细胞自噬方面的研究取得
长足的进展,进一步阐释其作用机制,发现调节自
噬作用的关键靶点或相互作用网络,将为防治肿瘤、
神经退行性疾病、心脑血管疾病等重大疾病,提供
可能的治疗策略。
参考文献
[1] Mizushima N, Komatsu M. Autophagy: renovation of
cells and tissues [J]. Cell, 2011, 147(4): 728-741.
[2] East D A, Campanella M. Ca2+ in quality control: An
unresolved riddle critical to autophagy and mitophagy [J].
Autophagy, 2013, 9(11): 1710-1719.
[3] Loor G, Kondapalli J, Iwase H, et al. Mitochondrial
oxidant stress triggers cell death in simulated
ischemia-reperfusion [J]. Biochim Biophys Acta, 2011,
1813(7): 1382-1394.
[4] Chen N, Karantza V. Autophagy as a therapeutic target in
cancer [J]. Cancer Biol Ther, 2011, 11(2): 157-168.
[5] Miao Q, Bi L L, Li X, et al. Anticancer effects of bufalin
on human hepatocellular carcinoma HepG2 cells: Roles
of apoptosis and autophagy [J]. Int J Mol Sci, 2013,
14(1): 1370-1382.
[6] Tsai S C, Yang J S, Peng S F, et al. Bufalin increases
sensitivity to AKT/mTOR-induced autophagic cell death
in SK-HEP-1 human hepatocellular carcinoma cells [J].
Int J Oncol, 2012, 41(4): 1431-1442.
[7] Hsu C M, Tsai Y, Wan L, et al. Bufalin induces G2/M
phase arrest and triggers autophagy via the TNF, JNK,
BECN-1 and ATG8 pathway in human hepatoma cells [J].
Int J Oncol, 2013, 43(1): 338-348.
[8] Wang N, Pan W, Zhu M, et al. Fangchinoline induces
autophagic cell death via p53/sestrin2/AMPK signalling
in human hepatocellular carcinoma cells [J]. Br J
Pharmacol, 2011, 164(2b): 731-742.
[9] Chen T, Hao J, He J, et al. Cannabisin B induces
autophagic cell death by inhibiting the AKT/mTOR
pathway and S phase cell cycle arrest in HepG2 cells [J].
Food Chem, 2013, 138(2): 1034-1041.
[10] Qian H, Yang Y, Wang X. Curcumin enhanced
adriamycin-induced human liver-derived Hepatoma G2
cell death through activation of mitochondria-mediated
apoptosis and autophagy [J]. Eur J Pharm Sci, 2011,
43(3): 125-131.
[11] Liu J, Hu X J, Jin B, et al. β-Elemene induces apoptosis
as well as protective autophagy in human non-small-cell
lung cancer A549 cells [J]. J Pharm Pharmacol, 2012,
64(1): 146-153.
[12] Xiao K, Jiang J, Guan C, et al. Curcumin induces
autophagy via activating the AMPK signaling pathway in
lung adenocarcinoma cells [J]. J Pharmacol Sci, 2013,
123(2): 102-109.
[13] Chen M, Du Y, Qui M, et al. Ophiopogonin B-induced
autophagy in non-small cell lung cancer cells via
inhibition of the PI3K/Akt signaling pathway [J]. Oncol
Rep, 2013, 29(2): 430-436.
[14] Sun Y, Zou M, Hu C, et al. Wogonoside induces
autophagy in MDA-MB-231 cells by regulating
MAPK-mTOR pathway [J]. Food Chem Toxicol, 2013,
51: 53-60.
[15] Shi J M, Bai L L, Zhang D M, et al. Saxifragifolin D
induces the interplay between apoptosis and autophagy in
breast cancer cells through ROS-dependent endoplasmic
reticulum stress [J]. Biochem Pharmacol, 2013, 85(7):
913-926.
[16] Wong V K W, Li T, Law B Y K, et al. Saikosaponin-d, a
novel SERCA inhibitor, induces autophagic cell death in
apoptosis-defective cells [J]. Cell Death Dis, 2013, 4(7):
e720.
[17] Mai T T, Moon J Y, Song Y W, et al. Ginsenoside F2
中草药 Chinese Traditional and Herbal Drugs 第 45 卷 第 16 期 2014 年 8 月
·2291·
induces apoptosis accompanied by protective autophagy
in breast cancer stem cells [J]. Cancer Lett, 2012, 321(2):
144-153.
[18] Prabhu V, Srivastava P, Yadav N, et al. Resveratrol
depletes mitochondrial DNA and inhibition of autophagy
enhances resveratrol-induced caspase activation [J].
Mitochondrion, 2013, 13(5): 493-499.
[19] Liu J, Zhang Y, Qu J, et al. β-Elemene-induced autophagy
protects human gastric cancer cells from undergoing
apoptosis [J]. BMC Cancer, 2011, 11(1): 183-193.
[20] Zhang J, Li Y, Chen X, et al. Autophagy is involved in
anticancer effects of matrine on SGC-7901 human gastric
cancer cells [J]. Oncol Rep, 2011, 26(1): 115-124.
[21] Wang Z, Zhang J, Wang Y, et al. Matrine, a novel
autophagy inhibitor, blocks trafficking and the proteolytic
activation of lysosomal proteases [J]. Carcinogenesis,
2013, 34(1): 128-138.
[22] Wang K, Liu R, Li J, Mao J, et al. Quercetin induces
protective autophagy in gastric cancer cells: involvement
of Akt-mTOR-and hypoxia-induced factor 1α-mediated
signaling [J]. Autophagy, 2011, 7(9): 966-978.
[23] Xie C M, Chan W Y, Yu S, et al. Bufalin induces
autophagy-mediated cell death in human colon cancer
cells through reactive oxygen species generation and JNK
activation [J]. Free Radic Biol Med, 2011, 51(7):
1365-1375.
[24] Kim A D, Kang K A, Kim H S, et al. A ginseng
metabolite, compound K, induces autophagy and
apoptosis via generation of reactive oxygen species and
activation of JNK in human colon cancer cells [J]. Cell
Death Dis, 2013, 4(8): e750.
[25] Miki H, Uehara N, Kimura A, et al. Resveratrol induces
apoptosis via ROS-triggered autophagy in human colon
cancer cells [J]. Int J Oncol, 2012, 40(4): 1020-1028.
[26] Griffin C, McNulty J, Pandey S. Pancratistatin induces
apoptosis and autophagy in metastatic prostate cancer
cells [J]. Int J Oncol, 2011, 38(6): 1549-1556.
[27] Ouyang D, Zeng L, Pan H, et al. Piperine inhibits the
proliferation of human prostate cancer cells via induction
of cell cycle arrest and autophagy [J]. Food Chem
Toxicol, 2013, 60: 424-430.
[28] García-Zepeda S P, García-Villa E, Díaz-Chávez J, et al.
Resveratrol induces cell death in cervical cancer cells
through apoptosis and autophagy [J]. Eur J Cancer Prev,
2013, 22(6): 577-584.
[29] Ge J, Liu Y, Li Q, et al. Resveratrol induces apoptosis and
autophagy in T-cell acute lymphoblastic leukemia cells by
inhibiting Akt/mTOR and activating p38-MAPK [J].
Biomed Environ Sci, 2013, 26(11): 902-911.
[30] Wang Z, Hu W, Zhang J L, et al. Dihydroartemisinin
induces autophagy and inhibits the growth of iron-loaded
human myeloid leukemia K562 cells via ROS toxicity [J].
FEBS Open Biol, 2012, 2: 103-112.
[31] Chiu H W, Ho Y S, Wang Y J. Arsenic trioxide induces
autophagy and apoptosis in human glioma cells in vitro
and in vivo through downregulation of survivin [J]. J Mol
Med, 2011, 89(9): 927-941.
[32] Du X X, Li Y J, Wu C L, et al. Initiation of apoptosis, cell
cycle arrest and autophagy of esophageal cancer cells by
dihydroartemisinin [J]. Biomed Pharmacother, 2013,
67(5): 417-424.
[33] Chang K H, Yan M D, Yao C J, et al. Honokiol induced
apoptosis and autophagy in glioblastoma multiforme cells
[J]. Oncol Lett, 2013, 6(5): 1435-1438.
[34] Kim H, Moon J Y, Ahn K S, et al. Quercetin induces
mitochondrial mediated apoptosis and protective
autophagy in human glioblastoma U373MG cells [J].
Oxid Med Cell Longev, 2013, 2013: 596496.
[35] Chow S E, Chen Y W, Liang C A, et al. Wogonin induces
cross-regulation between autophagy and apoptosis via a
variety of Akt pathway in human nasopharyngeal
carcinoma cells [J]. J Cell Biochem, 2012, 113(11):
3476-3485.
[36] He H, Zang L H, Feng Y S, et al. Physalin A induces
apoptosis via p53-noxa-mediated ROS generation, and
autophagy plays a protective role against apoptosis
through p38-NF-κB survival pathway in A375-S2 cells
[J]. J Ethnopharmacol, 2013, 148(2): 544-555.
[37] Rubinsztein D C, Codogno P, Levine B. Autophagy
modulation as a potential therapeutic target for diverse
diseases [J]. Nat Rev Drug Discov, 2012, 11(9): 709-730.
[38] Gabryel B, Kost A, Kasprowska D, et al. Review-
Neuronal autophagy in cerebral ischemia-a potential
target for neuroprotective strategies? [J]. Pharmacol Rep,
2012, 64(1): 1-15.
[39] Liu L, Fang Y Q, Xue Z F, et al. Beta-asarone attenuates
ischemia-reperfusion-induced autophagy in rat brains via
modulating JNK, p-JNK, Bcl-2 and Beclin 1 [J]. Eur J
Pharmacol, 2012, 680(1): 34-40.
[40] Mo Z, Fang Y, He Y, et al. β-Asarone protects PC12 cells
against OGD/R-induced injury via attenuating
Beclin-1-dependent autophagy [J]. Acta Pharmacol Sin,
2012, 33(6): 737-742.
[41] Liu A J, Wang S H, Hou S Y, et al. Evodiamine induces
transient receptor potential vanilloid-1-mediated
protective autophagy in U87-MG astrocytes [J]. Evid
中草药 Chinese Traditional and Herbal Drugs 第 45 卷 第 16 期 2014 年 8 月
·2292·
Based Complement Alternat Med, 2013, 2013: 354840.
[42] Winslow A R, Rubinsztein D C. The parkinson disease
protein α-synuclein inhibits autophagy [J]. Autophagy,
2011, 7(4): 429-431.
[43] Lynch-Day M A, Mao K, Wang K, et al. The role of
autophagy in Parkinson’s disease [J]. Cold Spring Harbor
Perspect Med, 2012, 2(4): a009357.
[44] Lu J H, Tan J Q, Durairajan S S, et al.
Isorhynchophylline, a natural alkaloid, promotes the
degradation of α-synuclein in neuronal cells via inducing
autophagy [J]. Autophagy, 2012, 8(1): 98-108.
[45] Filomeni G, Graziani I, De Zio D, et al. Neuroprotection of
kaempferol by autophagy in models of rotenone-mediated
acute toxicity: possible implications for Parkinson’s disease
[J]. Neurobiol Aging, 2012, 33(4): 767-785.
[46] Deng Y N, Shi J, Liu J, et al. Celastrol protects human
neuroblastoma SH-SY5Y cells from rotenone-induced
injury through induction of autophagy [J]. Neurochem Int,
2013, 63(1): 1-9.
[47] Ross C A, Tabrizi S J. Huntington’s disease: from
molecular pathogenesis to clinical treatment [J]. Lancet
Neurol, 2011, 10(1): 83-98.
[48] Wu A G, Wong V K W, Xu S W, et al. Onjisaponin B
derived from Radix Polygalae enhances autophagy and
accelerates the degradation of mutant α-synuclein and
huntingtin in PC-12 cells [J]. Int J Mol Sci, 2013, 14(11):
22618-22641.
[49] Quintanilla R A, Dolan P J, Jin Y N, et al. Truncated tau
and Aβ cooperatively impair mitochondria in primary
neurons [J]. Neurobiol Aging, 2012, 33(3): 619.e25-619.
e35.
[50] Graef M, Nunnari J. A role for mitochondria in autophagy
regulation [J]. Autophagy, 2011, 7(10): 1245-1246.
[51] Jeong J K, Moon M H, Bae B C, et al. Autophagy
induced by resveratrol prevents human prion
protein-mediated neurotoxicity [J]. Neurosci Res, 2012,
73(2): 99-105.
[52] Gottlieb R A, Mentzer Jr R M. Autophagy: an affair of the
heart [J]. Heart Fail Rev, 2013, 18(5): 575-584.
[53] Ma X, Liu H, Foyil S R, et al. Autophagy is impaired in
cardiac ischemia-reperfusion injury [J]. Autophagy, 2012,
8(9): 1394-1396.
[54] Kanamori H, Takemura G, Goto K, et al. Resveratrol
reverses remodeling in hearts with large, old myocardial
infarctions through enhanced autophagy-activating AMP
kinase pathway [J]. Am J Pathol, 2013, 182(3): 701-713.
[55] Lv X C, Zhou H Y. Resveratrol protects H9c2 embryonic
rat heart derived cells from oxidative stress by inducing
autophagy: role of p38 mitogen-activated protein kinase
[J]. Can J Physiol Pharmacol, 2012, 90(5): 655-662.
[56] Xu X, Chen K, Kobayashi S, et al. Resveratrol attenuates
doxorubicin-induced cardiomyocyte death via inhibition
of p70 S6 kinase 1-mediated autophagy [J]. J Pharmacol
Exp Ther, 2012, 341(1): 183-195.
[57] Han X, Liu J, Li X. Salvianolic acid B inhibits autophagy
and protects starving cardiac myocytes [J]. Acta
Pharmacol Sin, 2011, 32(1): 38-44.
[58] Zhang Z L, Fan Y, Liu M L. Ginsenoside Rg1 inhibits
autophagy in H9c2 cardiomyocytes exposed to hypoxia/
reoxygenation [J]. Mol Cell Biochem, 2012, 365(1/2):
243-250.
[59] Tyagi N, Qipshidze N, Munjal C, et al.
Tetrahydrocurcumin ameliorates homocysteinylated
cytochrome-c mediated autophagy in hyperhomocy-
steinemia mice after cerebral ischemia [J]. J Mol
Neurosci, 2012, 47(1): 128-138.
[60] Zhu J, Zhang Q, Mi M. Resveratrol attenuates vascular
endothelial inflammation by inducing autophagy through
the cAMP signaling pathway [J]. Autophagy, 2013, 9(12):
2033-2045.
[61] Takizawa Y, Kosuge Y, Awaji H, et al. Up-regulation of
endothelial nitric oxide synthase (eNOS), silent mating
type information regulation 2 homologue 1 (SIRT1) and
autophagy-related genes by repeated treatments with
resveratrol in human umbilical vein endothelial cells [J].
Br J Nutr, 2013, 110(12): 2150-2155.
[62] Han J, Pan X Y, Xu Y, et al. Curcumin induces autophagy
to protect vascular endothelial cell survival from
oxidative stress damage [J]. Autophagy, 2012, 8(5):
812-825.
[63] Pei Y, Chen Z P, Ju H Q, et al. Autophagy is involved in
anti-viral activity of pentagalloylglucose (PGG) against
Herpes simplex virus type 1 infection in vitro [J].
Biochem Biophys Res Commun, 2011, 405(2): 186-191.