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Research progress on mechanism of neuroprotective effects of cannabidiol

大麻二酚神经保护作用机制研究进展



全 文 :中草药 Chinese Traditional and Herbal Drugs 第 45 卷 第 3 期 2014 年 2 月

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·综 述·
大麻二酚神经保护作用机制研究进展
殷 莎,唐双奇,陆 阳*
上海交通大学医学院,上海 200025
摘 要:大麻 Cannabis sativa 是一种古老的具有药用开发利用价值的栽培植物。大麻素是大麻中特有的萜类次生代谢产物,
具有复杂的生物活性,目前已分离得到 70 多种大麻素,其中主要活性成分为四氢大麻酚(THC)和大麻二酚(CBD)。THC
与 CBD 均具有神经保护作用。THC 因具有强致幻性其应用受限,CBD 无成瘾性且具有抗痉挛、抗风湿关节炎及抗焦虑作
用。近年来,CBD 的神经保护作用及其机制成为研究热点,对 CBD 神经保护作用的研究进展进行综述。
关键词:大麻二酚;大麻素受体;5HT1A受体;腺苷受体;神经保护
中图分类号:R285 文献标志码:A 文章编号:0253 - 2670(2014)03 - 0432 - 05
DOI: 10.7501/j.issn.0253-2670.2014.03.024
Research progress on mechanism of neuroprotective effects of cannabidiol
YIN Sha, TANG Shuang-qi, LU Yang
School of Medicine, Shanghai Jiao Tong University, Shanghai 200025, China
Key words: cannabidiol; cannabinoid receptor; 5-HT1A receptor; adenosine receptors; neuroprotection

大 麻 Cannabis sativa Linn. 是 大 麻 科
(Cannabinaceae)大麻属 Cannabis Linn. 一年生草
本植物,其成熟的雌株花、叶及茎制品称 Marijuana。
大麻药用的记录可追溯至公元前 2727 年。目前从植
物大麻干物质及新鲜大麻叶中分离出的大麻素
(cannabinoids,CBs)已有 70 多种,主要包括四氢
大麻酚(tetrahydrocannabinol,THC)、大麻二酚
(cannabidiol,CBD)、大麻酚(cannabinol,CBN)
及大麻萜酚(cannabichromene,CBC)等,其中 THC
及 CBD 量最高[1]。THC 是大麻中最重要的活性物
质,具有神经保护作用,并可用于治疗癌症引起的
呕吐。THC 具有致幻作用,因此大麻在多国被禁止
种植。20 世纪 40 年代从大麻中分离得到 CBD,体
内实验发现 CBD 不但能拮抗 THC 激动大麻素 I 型
受体(CB1R)所引发的精神活性[2],而且具有抗惊
厥、镇静催眠、抗焦虑、抗精神病、抗炎及神经保
护作用[3]。临床前及临床研究表明,CBD 药动学性
质良好,注射后能迅速透过血脑屏障(blood-brain
barrier,BBB),脑神经保护作用显著[4]。CBD 能够
通过多途径发挥神经保护作用(图 1),本文将对
CBD 神经保护作用及其机制的研究进展进行综述。
1 抗氧化应激损伤
氧化应激(oxidative stress,OS)是自由基介导
的活性作用,是导致细胞衰老和损伤的重要因素。
CBD 在机体内能够通过多种方式应对氧化应激损
伤,保护神经细胞。
CBD(3 mg/kg,ip)可显著抑制 6-羟基多巴胺
损伤大鼠黑质纹状体多巴胺能神经元引起的 Cu,
Zn-超氧化物歧化酶表达水平降低,同时逆转 6-羟
基多巴胺引发的神经元多巴胺耗竭[5]。
通过观察 CBD 对线粒体复合物 II 抑制剂 3-硝
基丙酸(3-NP)引起的大鼠纹状体神经元损伤的影
响,发现 CBD(5 mg/kg,ip)能够完全抑制 3-NP
引起的纹状体 γ-氨基丁酸(GABA)、P 物质
(substance P)、神经元特异性烯醇化酶(neuronal-
specific enolase,NSE)及超氧化物歧化酶-2(SOD-2)

收稿日期:2013-10-30
基金项目:国家自然科学基金资助项目(30873057,81171245);上海市科委基础重点项目(11JC1406600)
作者简介:殷 莎(1988—),女,研究生,研究方向为化学生物学。E-mail: deanbengchenzhi@126.com
*通信作者 陆 阳(1955—),男,博士生导师,研究方向为化学生物学。E-mail: luyangssmu@163.com
中草药 Chinese Traditional and Herbal Drugs 第 45 卷 第 3 期 2014 年 2 月

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CBD
DA代谢产
生的自由基
MPO活性
SOD类、P物质、
PENK、NSE、GABA
还原性
CBRs非依赖
CB1R、TRPV1、
A2A受体非依赖
氧化应激损伤
BDNF 神经生长发育
调节Zn2+转运蛋白表达,
改变细胞内Zn2+浓度
调节金属离子依赖性
蛋白及转录因子功能
CB2R、5HT1A、
A1A、A2A受体依赖
Glu维持Ca2+内稳态
COX-2
CB2R、5HT1A受
体依赖
IL-6
TNF-α
iNOS
PPARγ依赖
NF-κB
GFAP
IL-1β
S100β
神经炎症
β-catenin神经细胞
GSK-3β、tau过度磷酸
化、caspase-3表达神经凋亡

图 1 CBD 神经保护作用机制
Fig. 1 Mechanism of neuroprotection of CBD
mRNA 水平降低;部分抑制 SOD-1 及脑啡肽原
(proenkephalin,PENK)mRNA 水平降低[6]。CB1R
拮抗剂 SR141716、TRPV1 受体拮抗剂 capsazepine
及腺苷 A2A受体拮抗剂 MSX-3 均不影响 CBD 对纹
状体神经元的保护作用,提示 CBD 对 3-NP 毒性的
抑制作用并非通过 CB1R、TRPV1 受体及腺苷 A2A
受体介导。通过观察 CBD 对线粒体呼吸链复合物 I
抑制剂 1-甲基-4-苯基吡啶鎓(MPP+)损伤小鼠中
脑多巴胺能神经细胞存活率的影响,发现神经细胞
与 CBD(10 μmol/L)、MPP+(10 μmol/L)共同孵
育 48 h 后,CBD+MPP+组神经细胞数(117%)显
著高于 MPP+组,但神经突长度无明显差异,提示
CBD 在该损伤模型中的作用可能与清除自由基有
关,而不影响神经细胞生长发育[7]。
CBD(3 mg/kg,ip)能逆转缺血再灌注引起的
小鼠脑血流量降低及其对中性粒细胞髓过氧化物酶
(myeloperoxidase,MPO)活性的影响,CBD 的作
用不受大麻素受体(cannabinoid receptors,CBRs)
拮抗剂 SR 141716 或 AM 630 的影响,表明 CBD 的
作用可能与 CBRs 无关[8]。
CBD 对新生小猪脑缺氧缺血( hypoxic-
ischemic,HI)损伤模型的神经保护机制研究发现,
HI 损伤 30 min 后,给予 CBD(1 mg/kg,iv),6 h
后给药组相对于空白组大脑皮层谷胱甘肽/肌氨酸
比值升高、蛋白羰基化程度降低、谷氨酸/N-乙酰天
冬氨酸比值降低、皮层神经元存活率升高,提示皮
层受氧化应激及兴奋性氨基酸损伤程度减小。大麻
素 II 型受体(CB2R)拮抗剂 AM 630 或 5HT1A受体
拮抗剂 WAY 100635 能够拮抗 CBD 的神经保护作
用,生物荧光共振能转移研究显示 CB2R 与 5HT1A
受体在 HEK-293T 细胞中能够形成异聚体,表明上
述作用与 CB2R 和 5HT1A受体密切有关[9]。
Sativex®是首个大麻处方药,用于治疗多发性
硬化症引起的痉挛。Sativex®能显著减少额颞痴呆、
震颤麻痹及低运动性神经元疾病混合模型小鼠
(PK−/−/TauVLW)神经元内,在边缘系统多巴胺代谢
过程中产生的与单胺氧化酶(monoamine oxidase,
MAO)有关的自由基,并提高边缘系统还原态/氧
化态谷胱甘肽比例及大脑皮层线粒体呼吸链复合物
IV 水平[10]。
氧化应激是重要的神经损伤因子。在不同动物
或细胞模型中,CBD 可通过 CB2R 或 5HT1A等受体,
降低(提高)细胞内多种(抗)氧化酶的量,从而
增强神经细胞清除活性氧自由基(reactive oxygen
species,ROS)能力,提高细胞存活率。由于 CBD
本身具有强还原性[11],也可直接清除 ROS。
2 抑制炎性细胞因子释放
细胞因子(cytokine,CK)是体内调节细胞反
应的蛋白质,由多种细胞分泌产生,既是机体应激
反应的需要,又是应激组织损伤发生和发展的病理
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基础。目前普遍认为多种炎性细胞因子与神经退行
性疾病及脑卒中的发生及恶化密切相关,而 CBD
能够抑制体内多种炎症细胞因子的释放,保护神经
细胞。
新生大鼠脑 HI 损伤 10 min 后给予 CBD(1
mg/kg,sc),7 d 后发现给药组大鼠脑部肿瘤坏死因
子-α(TNF-α)水平明显低于空白组,并与假损伤
组无显著性差异;CBD 能明显改善 HI 损伤大鼠行
为学功能,提示 CBD 通过抑制 TNF-α释放,对 HI
损伤新生大鼠发挥长效神经保护作用[12]。
CBD 能够抑制小鼠小胶质细胞(BV2 细胞)中
脂多糖(LPS)诱导的 NO 生成(IC50 250 nmol/L),
该抑制作用对 CBRs 拮抗剂不敏感,提示该抑制作
用与 CBRs 激活无关。在体实验发现,β 淀粉样蛋
白(Aβ,2 μmol/L)损伤小鼠亚慢性给予 CBD(20
mg/kg,ip)3 周后,能显著抑制 Aβ 引起的大脑皮
层白细胞介素-6(IL-6)水平升高,改善动物认知
功能。该实验条件下,CBD 对 Aβ引起的 TNF-α表
达升高并无抑制作用[13]。
大鼠星形胶质细胞与 Aβ(1 μg/mL)和 CBD
(1×10−9~1×10−7 mol/L)共同孵育 3 h 后,星形胶
质细胞溶解产物中 p50 和 p65 表达降低;孵育 24 h
后,能够浓度依赖性抑制诱导型一氧化氮合酶
(inducible nitric oxide synthase,iNOS)、胶质纤维
酸性蛋白(glial fibrillary acidic protein,GFAP)、
IL-1β、TNF-α和 S100β等炎症因子表达,过氧化物
酶体增殖物活化受体 α(PPARα)拮抗剂 MK 886
不能拮抗该抑制作用,但可被 PPARγ 拮抗剂 GW
9662 拮抗[14],提示 CBD 可能通过 PPARγ 抑制细
胞核因子-κB(NF-κB)表达,从而减少 iNOS、TNF-α、
SB100β等炎症因子基因转录,发挥抗炎作用。对新
生小猪急性 HI 损伤 15 min 后给予 CBD(0.1 mg/kg,
iv),给药后 6 h,HI 损伤引起的脑脊液(cerebrospinal
fluid,CSF)中神经元特异性烯醇化酶(NSE)和
S100β水平升高,脑组织中 TNF-α阳性细胞量增高
均被抑制[15]。
研究 CBD 对新生小鼠脑片 HI 损伤的保护作用
机制发现,CBD(100 μmol/L)能够通过减少谷氨
酸盐释放,降低 IL-6、TNF-α、环氧化酶-2(COX-2)
及 iNOS 水平,从而减弱 HI 对脑片的急性损伤。
CB2R 拮抗剂 AM 630 及腺苷 A2A受体拮抗剂 SCH
58261 均能够逆转 CBD 的保护作用;腺苷 A1A受体
拮抗剂DPCPX只能拮抗CBD抑制谷氨酸盐释放的
作用,而 CB1R 拮抗剂 SR 141716 对 CBD 的作用无
任何影响,表明 CB2R 及 A2A受体在 CBD 保护新生
小鼠脑片免受 HI 损伤过程中发挥重要作用,而非
通过 CB1R 发挥抗炎作用[16]。
研究表明,CBD 的神经保护作用可能与甘氨酸
受体有关。通过全细胞膜片钳技术观察 CBD 与 α1
及 α1β甘氨酸受体的相互作用,发现低浓度 CBD 对
甘氨酸受体具有别构调节作用 [EC50:α1=(12.3±
3.8)μmol/L,α1β=(18.1±6.2)μmol/L],而高浓
度 CBD 能够直接激活甘氨酸受体 [EC50:α1=
(132±12.3)μmol/L,α1β=(144.3±22.7)μmol/L],
由于脊髓背角抑制性突触传导主要与甘氨酸有关,
提示甘氨酸受体参与 CBD 介导的抗炎作用[17]。
3 维持金属离子内稳态
金属离子是构成生物分子和维持正常生理活
动的重要物质,能够通过与转录因子或蛋白质的
相互作用,调节基因表达或直接参与细胞内信号
转导。
研究 CBD(10 μmol/L)对 BV-2 细胞内与氧化
应激、谷胱甘肽缺失及炎症相关基因表达的关系,
发现 CBD 能上调金属硫蛋白 2(metallothionein 2,
Mt2)、N-myc 下游调节基因 1、基质金属蛋白酶 23、
锌转运蛋白 ZnT1/Slc30a1 及 Zip4/Slc39a4 相关基因
表达;下调锌转运蛋白 Zip10/Slc39a10 及锌指蛋白
472 相关基因表达,表明 CBD 可能通过影响与 Zn2+
内稳态有关的基因表达,调节细胞内锌离子浓度,
发挥自由基清除及抗炎作用[18]。
海马神经元影像学研究发现,CBD(1 μmol/L)
能够根据细胞兴奋性双向调节 Ca2+浓度。当 K+/Ca2+
在正常生理水平时,CBD 引起细胞内 Ca2+微弱升
高;当细胞处于高兴奋条件(高 K+溶液或暴露于
K+通道阻断剂 4AP)时,CBD 能够降低细胞内 Ca2+
浓度并防止 Ca2+波动。细胞质-线粒体双重钙离子影
像实验显示,CBD 用于维持细胞 Ca2+浓度内稳态的
Ca2+主要源于线粒体,而非内质网。进一步以不同
线粒体毒素处理 SH-SY5Y 细胞,发现 CBD 能减弱
线粒体解偶联剂 FCCP 对神经细胞的毒性作用(存
活率 53%),但对过氧化氢(存活率 16%)或 ATP
合酶抑制剂寡霉素(存活率 15%)诱导的细胞死亡
抑制作用较弱。上述实验结果提示在线粒体功能紊
乱或 Ca2+浓度失调等病理条件下,CBD 能够通过维
持 Ca2+内稳态抑制神经细胞凋亡信号[19]。
Zn2+、Ca2+不但与生物体细胞膜电位调节有关,
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而且能够直接与蛋白质或转录因子结合,介导细胞
内信号转导或调控基因转录。近期研究表明,CBD
通过维持神经细胞 Zn2+、Ca2+内稳态,上调保护性
蛋白质及抗炎细胞因子表达,抑制凋亡信号。
4 提高脑源性神经营养因子表达
神经营养因子(neurotrophin,NT)是由神经所
支配的组织和星形胶质细胞产生的具有支持神经元
生长、发育和功能完整性的蛋白质分子。
CBD(15、30、60 mg/kg,ip)能够预防 D-苯
丙胺(D-AMPH,2 mg/kg,ip)引起的海马及纹状
体损伤,30 mg/kg CBD 能够上调脑源性神经营养因
子(brain-derived neurotrophic factor,BDNF)的表
达,30 或 60 mg/kg CBD 能够抑制前额皮质羧基化
合物形成,但 CBD 对 D-AMPH 引起的多动症无预
防或逆转作用。上述数据提示 CBD 抑制氧化物形
成及提高BDNF表达的作用具有脑区特异性及剂量
依赖性[20]。
5 促进神经细胞增殖,抑制凋亡信号
半胱天冬酶(caspase)是一类在进化上非常保
守的蛋白酶,在凋亡过程及炎症发生过程中发挥重
要作用,CBD(10−7~10−4 mol/L)能够预防 Aβ(1
μg/mL)引起的 PC12 细胞凋亡,该保护作用与减少
caspase-3 产生,抑制 DNA 断裂及降低细胞内钙离
子浓度有关[21]。另一项研究发现 CBD(10−7~10−5
mol/L)能够浓度依赖性预防 Aβ(1 μg/mL)引起的
PC12 细胞糖原合成酶激酶-3(GSK-3β)过度磷酸
化,β-链蛋白(β-catenin)表达降低及 tau 蛋白过度
磷酸化,从而促进神经细胞增殖,抑制 Aβ 引起的
PC12 细胞凋亡,该结果可为临床治疗阿尔茨海默病
提供新的途径[22]。
6 结语
CBD 神经保护作用的药效学研究已比较彻底,
但其机制研究进展缓慢。目前普遍认为 CBD 的神
经保护作用主要与其自由基清除及抑制炎症因子释
放有关。因为 CBD 能够通过多途径发挥神经保护
作用,且药动学性质良好,使其近年来成为人们研
究神经退行性疾病机制及治疗药物的工具药。
参考文献
[1] 陈 璇, 杨 明, 郭鸿彦. 大麻植物中大麻素成分研究
进展 [J]. 植物学报, 2011, 46(2): 197-205.
[2] Roser P, Vollenweider F X, Kawohl W. Potential
antipsychotic properties of central cannabinoid (CB1)
receptor antagonists [J]. World J Biol Psychiatry, 2010,
11(2 Pt 2): 208-219.
[3] Fagherazzi E V, Garcia V A, Maurmann N, et al.
Memory-rescuing effects of cannabidiol in an animal
model of cognitive impairment relevant to neuro-
degenerative disorders [J]. Psychopharmacology, 2012,
219(4): 1133-1140.
[4] Iuvone T, Esposito G, De Filippis D, et al. Cannabidiol: a
promising drug for neurodegenerative disorders? [J]. CNS
Neurosci Ther, 2009, 15(1): 65-75.
[5] Garcia-Arencibia M, Gonzalez S, de Lago E, et al.
Evaluation of the neuroprotective effect of cannabinoids
in a rat model of Parkinson’s disease: importance of
antioxidant and cannabinoid receptor-independent
properties [J]. Brain Res, 2007, 1134(1): 162-170.
[6] Sagredo O, Ramos J A, Decio A, et al. Cannabidiol
reduced the striatal atrophy caused 3-nitropropionic acid
in vivo by mechanisms independent of the activation of
cannabinoid, vanilloid TRPV1 and adenosine A2A
receptors [J]. Eur J Neurosci, 2007, 26(4): 843-851.
[7] Moldzio R, Pacher T, Krewenka C, et al. Effects of
cannabinoids Delta (9)-tetrahydrocannabinol, Delta
(9)-tetrahydrocannabinolic acid and cannabidiol in MPP+
affected murine mesencephalic cultures [J].
Phytomedicine, 2012, 19(8/9): 819-824.
[8] Hayakawa K, Mishima K, Nozako M, et al. Delayed
treatment with cannabidiol has a cerebroprotective action
via a cannabinoid receptor-independent myeloperoxidase-
inhibiting mechanism [J]. J Neurochem, 2007, 102(5):
1488-1496.
[9] Pazos M R, Mohammed N, Lafuente H, et al.
Mechanisms of cannabidiol neuroprotection in hypoxic-
ischemic newborn pigs: role of 5HT(1)A and CB2
receptors [J]. Neuropharmacology, 2013, 71: 282-291.
[10] Casarejos M J, Perucho J, Gomez A, et al. Natural
cannabinoids improve dopamine neurotransmission and
tau and amyloid pathology in a mouse model of tauopathy
[J]. J Alzheimers Dis, 2013, 35(3): 525-539.
[11] Hampson A J, Grimaldi M, Axelrod J, Wink D.
Cannabidiol and (−) Delta 9-tetrahydrocannabinol are
neuroprotective antioxidants [J]. Proc Natl Acad Sci USA,
1998, 95: 8268-8273.
[12] Pazos M R, Cinquina V, Gomez A, et al. Cannabidiol
administration after hypoxia-ischemia to newborn rats
reduces long-term brain injury and restores neurobehavioral
function [J]. Neuropharmacology, 2012, 63(5): 776-783.
[13] Martin-Moreno A M, Reigada D, Ramirez B G, et al.
Cannabidiol and other cannabinoids reduce microglial
activation in vitro and in vivo: Relevance to Alzheimers
中草药 Chinese Traditional and Herbal Drugs 第 45 卷 第 3 期 2014 年 2 月

·436·
disease [J]. Mol Pharmacol, 2011, 79(6): 964-973.
[14] Espostio G, Scuderi C, Valenza M, et al. Cannabidiol
reduces Aβ-induced neuroinflammation and promotes
hippocampal neurogenesis through PPARγ involvement
[J]. PLoS One, 2011, 6(12): e28668.
[15] Lafuente H, Alvarez F J, Pazos M R, et al. Cannabidiol
reduces brain damage and improves functional recovery
after acute hypoxia-ischemia in newborn pigs [J]. Pediatr
Res, 2011, 70(3): 272-277.
[16] Castillo A, Tolon M R, Fernandez-Ruiz J, et al. The
neuroprotective effect of cannabidiol in an in vitro model
of newborn hypoxic-ischemic brain damage in mice is
mediated by CB (2) and adenosine receptors [J].
Neurobiol Dis, 2010, 37(2): 434-440.
[17] Ahrens J, Demir R, Leuwer M, et al. The nonpsychotropic
cannabinoid cannabidiol modulates and directly activates
alpha-1 and alpha-1-Beta glycine receptor function [J].
Pharmacology, 2009, 83(4): 217-222.
[18] Juknat A, Rimmerman N, Levy R, et al. Cannabidiol
affects the expression of genes involved in zinc
homeostasis in BV-2 microglial cells [J]. Neurochem Int,
2012, 61(6): 923-930.
[19] Ryan D, Drysdale A J, Lafourcade C, et al. Cannabidiol
targets mitochondria to regulate intracellular Ca2+ levels
[J]. J Neurosci, 2009, 29(7): 2053-2063.
[20] Valvassori S S, Elias G, de Souza B, et al. Effects of
cannabidiol on amphetamine-induced oxidative stress
generation in an animal model of mania [J]. J
Psychopharmacol, 2011, 25(2): 274-280.
[21] Iuvone T, Esposito G, Esposito R, et al. Neuroprotective
effect of cannabidiol, a non-psychoactive component
from Cannabis sativa, on beta-amyloid-induced toxicity
in PC12 cells [J]. J Neurochem, 2004, 89(1): 134-141.
[22] Esposito G, De Filippis D, Carnuccio R, et al. The
marijuana component cannabidiol inhibits beta-amyloid-
induced tau protein hyperphosphorylation through
Wnt/beta-catenin pathway rescue in PC12 cells [J]. J Mol
Med, 2006, 84(3): 253-258.