全 文 :中草药 Chinese Traditional and Herbal Drugs 第 47 卷 第 16 期 2016 年 8 月
• 2916 •
洋常春藤皂苷类化合物代谢累积规律研究
孙化鹏 1,阮琴妹 1,曹雄军 1, 2,李佳银 3,钟晓红 1*
1. 湖南农业大学园艺园林学院,湖南 长沙 410128
2. 广西农业科学院 葡萄与葡萄酒研究所,广西 南宁 530007
3. 长沙三福生物科技有限公司,湖南 长沙 410138
摘 要:目的 以洋常春藤Hedera helix 1 年生扦插苗为材料,通过检测不同部位及 1 年生长周期内 4 种常春藤皂苷类化合物(α-常
春藤皂苷、常春藤皂苷 C、常春藤皂苷 B 和常春藤皂苷 D)的量,分析洋常春藤皂苷类化合物代谢累积规律,以期为确定药用洋常
春藤原料的合理采收时间提供理论依据。方法 实验通过合理设计洋常春藤材料的采样方法,采用 HPLC 法测定常春藤皂苷类化合
物量。结果 洋常春藤不同部位皂苷类化合物量测定结果为老叶>新叶>茎>根,并且在一年的生长周期内,不同常春藤皂苷类化
合物在不同采样部位中的动态累积规律均有所不同。结论 洋常春藤叶片和茎均可作为高质量药用原料的采收部位,且叶片的最适
宜采收时期为 3 月份开始的生长发育期,而茎的适宜采收时期则可以从 3 月份开始的生长发育期持续到低温休眠开始前的 11 月份。
关键词:洋常春藤;皂苷类化合物;不同生长期;累积规律;合理采收时期;α-常春藤皂苷;常春藤皂苷 C;常春藤皂苷 B;
常春藤皂苷 D
中图分类号:R282.4 文献标志码:A 文章编号:0253 - 2670(2016)16 - 2916 - 05
DOI: 10.7501/j.issn.0253-2670.2016.16.024
Dynamic accumulation of saponins in Hedera helix
SUN Hua-peng1, RUAN Qin-mei1, CAO Xiong-jun1, 2, LI Jia-yin3, ZHONG Xiao-hong1
1. College of Horticulture and Landscape, Hunan Agricultural University, Changsha 410128, China
2. Grape and Wine Research Institute, Guangxi Academy of Agricultural Sciences, Nanning 530007, China
3. Changsha Sunfull Bio-tech Co., Ltd., Changsha 410138, China
Abstract: Objective This study detected the contents of four saponins (hederacoside C, hederacoside D, hederacoside D, α-hederin) from
different parts of annual cutting Hedera helix in one year growth cycle and analyzed the dynamic accumulation, in order to provide theoretical
basis to harvest Hedera helix L. as medicinal raw materials reasonably. Methods This study designed a reasonable method of collecting
materials and detected the contents of saponins by HPLC. Results The contents of saponins in different parts were as following order: mature
leaf > new leaf > stem > root, and four saponins in different parts had different dynamic accumulations in one year growth cycle. Conclusion
The leaf and stem are the reasonable collecting parts of raw materials which have higher medicinal quality. The reasonable collecting time of
leaf is the growth stage in March and stem is from March to November before the beginning of dormancy.
Key words: Hedera helix L.; saponins; different growth stages; dynamic accumulation; reasonable harvest; α-hederin; hederacoside C;
hederacoside B; hederacoside D
洋常春藤 Hedera helix L. 为五加科常春藤属常
绿藤本植物,原产于欧洲,现在世界范围内广泛种
植[1-2]。洋常春藤是一种传统的药用植物,具有很高
的药用价值,其药用价值和功效早在 19 世纪就已经
得到很多欧洲国家的认可,现已被《欧洲药典》和
《英国药典》收录为植物药,主要用于治疗哮喘、支
气管炎等呼吸道系统疾病[3-6]。国外学者尤其是欧洲
学者对其药理活性和临床应用进行了深入研究,研
究表明其主要活性成分是 α-常春藤皂苷、常春藤皂
苷 C、常春藤皂苷 B 和常春藤皂苷 D 等三萜皂苷
类化合物[7-9],《欧洲药典》和《英国药典》的收录
标准就是春季采集的洋常春藤叶片且干燥后洋常春
藤皂苷 C 的量不低于 3%[3]。洋常春藤成功引种到
我国已经有很长一段时间,并在全国范围内广泛繁
殖应用,但是国内研究仅仅涉及到其繁殖栽培领域,
关于其药用价值以及主要功效成分的研究尚未见相
收稿日期:2016-02-16
基金项目:湖南省教育厅科研项目(15A089);湖南省研究生科研创新项目(CX2014B290)
作者简介:孙化鹏(1983—),男,山东淄博人,博士研究生,研究方向为药用植物开发与利用。E-mail: Harper_sun@126.com
*通信作者 钟晓红(1961—),女,教授,博士生导师,主要从事药用植物资源高值化利用研究。E-mail: xh-zhong@163.com
中草药 Chinese Traditional and Herbal Drugs 第 47 卷 第 16 期 2016 年 8 月
• 2917 •
关报道[10-12]。在常春藤相关的产品开发方面,现在
很多欧洲制药企业都生产以洋常春藤提取物为主要
成分的糖浆、片剂、栓剂、滴剂以及泡腾片等成药
剂型[1,13-14]。因此,合理采集洋常春藤药用原材料是
生产高质量提取物的基础,并有助于进一步节约生
产成本,创造更高的经济效益。本实验在前期对常
春藤属植物皂苷类化合物 HPLC-UV 指纹图谱的研
究基础上,进一步研究洋常春藤在 1 年生长周期内
的皂苷类化合物动态变化,探讨其代谢累积规律,
以期为洋常春藤药用原料的繁殖栽培、合理采收及
其功效成分的进一步利用提供理论基础。
1 材料与仪器
1.1 材料
本实验选用长势一致的洋常春藤 1 年生扦插苗
165 株,经湖南农业大学观赏园艺教研室鉴定为洋常春
藤Hedera helix L.,采样部位为新叶、老叶、茎和根,
其中,新叶为当前生长发育期萌发的叶片,叶色浅绿
且已完全展开,叶质柔软、薄;老叶为前一个或前几
个生长发育期萌发的叶片,叶色深绿,叶质厚硬[15-16]。
1.2 仪器及试剂
Shimadzu 高效液相色谱仪,包括 Shimadzu
SPD20A 检测器、Shimadzu SIL20A 自动进样器、
Shimadzu LCSolutions 工作站;Milli-Q 超纯水仪;梅
特勒-托利多电子天平;超声波清洗器;鼓风干燥箱。
乙腈(色谱纯),磷酸(色谱纯),超纯水,甲醇(分
析纯)。对照品 α-常春藤皂苷(批号 CTZG20120820)、
常春藤皂苷 C(批号 CTGC20130311)、常春藤皂苷 B
(批号 CTGB20131106)和常春藤皂苷 D(批号
CTGD20131110),质量分数均≥98%,均购自南京春
秋生物工程有限公司。
2 方法与结果
2.1 样品的采集
2.1.1 不同部位代谢累积实验采样方法 2014
年 5 月 5 日随机选择长势良好的洋常春藤植株 15
株,随机分为 3 组,每组 5 株为一个生物学重复。
分别采集新叶、老叶、茎、根不同部位样品,洗
净后置于 60 ℃鼓风干燥箱中干燥至恒定质量,
粉碎后密封备用。
2.1.2 不同生长时期代谢累积实验采样方法 选取
长势一致的洋常春藤植株 150 株,随机分为 3 组,
每组 50株为一个生物学重复。样品采集时间从 2014
年 6 月 30 日持续到 2015 年 5 月 31 日,每月最后一
天采样并处理保存。鉴于洋常春藤只在生长期萌发
新叶,因此实验拟定叶片采样方法为每次采样从每
株洋常春藤基部采集 2 片老叶,洗净后置于 60 ℃
鼓风干燥箱中干燥至恒定质量,粉碎后密封备用;
洋常春藤茎采样方法为每次采样从根颈以上 10 cm
处剪取全部茎段以保证取样后的植株能发芽成活,
洗净后置于 60 ℃鼓风干燥箱中干燥至恒定质量,
粉碎后密封备用。
2.2 供试样品溶液的制备
将不同的洋常春藤供试样品粉碎后过 80 目
筛。精密称取供试样品粉末 1.00 g 置于 250 mL
圆底烧瓶中,先加入 80%甲醇溶液 50 mL,水浴
回流提取 1 h,冷却后过滤,回收滤渣后再加入
80%甲醇溶液 30 mL,水浴回流提取 30 min,冷
却后滤过,合并滤液并定容至 100 mL,摇匀,经
0.45 μm 微孔滤膜滤过即得供试样品溶液。
2.3 对照品溶液的制备
精密称取各对照品适量,分别加甲醇配制成对照
品溶液,其质量浓度分别为 α-常春藤皂苷 2.64
mg/mL、常春藤皂苷C 2.76 mg/mL、常春藤皂苷B 1.48
mg/mL、常春藤皂苷 D 1.84 mg/mL,4 ℃保存备用。
2.4 色谱条件[17]
色谱柱:Unitary C18 色谱柱(250 mm×4.6 mm,
5 μm);流动相:乙腈(A)-0.2%磷酸水溶液(B);
二元高压梯度洗脱:0~5 min,10%~13% A;5~
10 min,13%~20% A;10~45 min,20%~50% A;
45~50 min,50%~60% A;50~60 min,60%~100%
A;检测波长 205 nm;体积流量 1 mL/min;进样量
20 μL;柱温 25 ℃。
2.5 常春藤皂苷类化合物测定
不同常春藤皂苷类化合物测定采用对照品外标
法进行计算得出。分别将 α-常春藤皂苷、常春藤皂
苷 C、常春藤皂苷 B 和常春藤皂苷 D 对照品溶液梯
度稀释成 5 份,按照“2.4”项下色谱条件进样分析,
以质量为横坐标(X),峰面积为纵坐标(Y)进行
线性回归,得出各个成分的标准曲线线性回归方程,
见表 1,记录色谱图(图 1-A)。
待测样品按照“2.2”项下方法制备样品溶液,
同样采用“2.4”项下 HPLC 色谱条件进样检测,记
录色谱图及 4 种常春藤皂苷类化合物的峰面积,通
过标准曲线线性回归方程计算其质量分数。在该
HPLC 色谱条件下,待测样品溶液和对照品溶液基
线平稳,各物质成分峰型对称、分离度好,色谱图
具有较好的直观表现性和清晰度(图 1-B)。
中草药 Chinese Traditional and Herbal Drugs 第 47 卷 第 16 期 2016 年 8 月
• 2918 •
表 1 4 种常春藤皂苷类化合物线性回归方程和线性范围
Table 1 Linear regression analysis parameters of four hederacosides in H. helix
化合物名称 线性回归方程 线性范围/mg r
α-常春藤皂苷 Y=9 000 006 X+108 553 0.003 3~0.053 0.999 6
常春藤皂苷 C Y=5 000 006 X+64 740 0.003 4~0.054 0.999 5
常春藤皂苷 B Y=4 000 006 X+26 933 0.001 9~0.030 0.999 6
常春藤皂苷 D Y=4 000 006 X+35 363 0.002 3~0.036 0.999 6
a-常春藤皂苷C b-常春藤皂苷D c-常春藤皂苷B d-α-常春藤皂苷
a-hederacoside C b-hederacoside D c-hederacoside D d-α-hederin
图 1 对照品 (A) 和样品 (B) 色谱图
Fig. 1 HPLC of reference substances (A) and samples (B)
3 结果与分析
3.1 洋常春藤不同组织部位皂苷类化合物量分析
实验通过对洋常春藤新叶、老叶、茎和根 4 个
不同部位的样品材料进行测定,测得常春藤皂苷 C、
常春藤皂苷 D、常春藤皂苷 B 和 α-常春藤皂苷 4 个
主要三萜皂苷的量均有明显差异,根据表 2 检测结
果可知,不同部位中 4 种常春藤皂苷类化合物总量
为老叶>新叶>茎>根。
通过对不同部位逐一分析可知,新叶中 4 种皂
苷总量为 6.48%,其中 α-常春藤皂苷量最高,其次
是常春藤皂苷 C,而常春藤皂苷 B 和 D 量较低。老
叶中总量为 9.19%,是总量最高的一个部位,但老
叶中量最高的是常春藤皂苷 C,其次为 α-常春藤皂
苷且与新叶量相差不大,而常春藤皂苷 B 和 D 量略
高于新叶。茎中总量略低于新叶,4 种皂苷的量为
常春藤皂苷 C>常春藤皂苷 B>α-常春藤皂苷>常春
表 2 洋常春藤不同部位 4种皂苷类化合物量检测结果 (n = 3)
Table 2 Contents of four saponins in different parts of H.
helix (n = 3)
质量分数/%
部位
常春藤皂苷C 常春藤皂苷D 常春藤皂苷B α-常春藤皂苷 总量
新叶 2.90 0.11 0.11 3.35 6.48
老叶 5.12 0.24 0.29 3.53 9.19
茎 2.96 0.02 0.88 0.22 4.08
根 0.19 0.03 1.27 0.00 1.49
藤皂苷 D。根中总量远低于其他 3 个部位的量,其
中量最高的是常春藤皂苷 B,也是 4 个不同部位中
最高的,而常春藤皂苷 C 量仅为 0.19%,与其他部
位量差异明显。综上可知,洋常春藤中量较高的皂
苷类化合物主要是常春藤皂苷 C 和 α-常春藤皂苷,
且常春藤皂苷 C 主要分布在叶片和茎中,而 α-常春
藤皂苷主要分布在叶片中,根中这 2 种皂苷类化合
物的量非常低甚至未能检出,见表 2。
3.2 洋常春藤不同生长时期皂苷类化合物动态累
积分析
洋常春藤为常绿藤本植物,根据不同部位皂苷
类化合物分析结果,实验选取洋常春藤叶片和茎测
定其从 2014 年 6 月至 2015 年 5 月 1 年生长周期内
皂苷类化合物量动态变化趋势,探索其累积规律,
结果详见表 3。
3.2.1 叶片中皂苷类化合物动态累积分析 根据表
3 结果显示,叶片中量较高的常春藤皂苷 C 和 α-常
春藤皂苷在不同的采样时期量有所差异,且动态累
积规律也有所不同。首先从叶片中量最高常春藤皂
苷 C 分析可知,在 1 年的生长时期内其动态累积规
律见图 2,叶片中常春藤皂苷 C 量在 2015 年 3 月份
为最高,然后在 1 年的生长周期内呈现逐步下降的
主要趋势,在 2014 年 10 月份稍微有所升高后急剧
下降,到 12 月份达到最低后一直持续到 2015 年 2
月份,然后迅速上升到 3 月份的最高值。进一步分
a
d
b
c
a
d
b c
0 5 10 15 20 25 30 35 40 45. 50 55
0 5 10 15 20 25 30 35 40 45. 50 55
t/min
A
B
中草药 Chinese Traditional and Herbal Drugs 第 47 卷 第 16 期 2016 年 8 月
• 2919 •
表 3 不同生长时期不同部位常春藤皂苷类化合物量 (n = 3)
Table 3 Contents of saponins from different parts and different growth stages (n = 3)
常春藤皂苷 C/% 常春藤皂苷 D/% 常春藤皂苷 B/% α-常春藤皂苷/% 编号 采样时间 叶片 茎 叶片 茎 叶片 茎 叶片 茎
1 2014-06-30 4.94 2.98 0.18 0.07 0.18 0.09 2.82 0.84
2 2014-07-31 5.09 2.93 0.16 0.04 0.14 0.09 2.99 0.76
3 2014-08-31 3.89 3.61 0.10 0.06 0.07 0.14 3.74 0.58
4 2014-09-30 3.81 3.04 0.10 0.03 0.09 0.08 4.42 0.64
5 2014-10-31 4.57 3.01 0.13 0.06 0.13 0.05 3.33 0.76
6 2014-11-30 3.27 2.65 0.08 0.20 0.17 0.03 3.05 0.58
7 2014-12-31 2.18 1.91 0.04 0.43 0.10 0.01 3.39 0.30
8 2015-01-30 2.08 2.26 0.06 0.49 0.08 0.04 3.52 0.19
9 2015-02-28 2.27 2.45 0.04 0.49 0.04 0.06 3.38 0.28
10 2015-03-31 7.41 3.13 0.31 0.77 0.22 0.07 3.19 0.06
11 2015-04-30 6.78 3.36 0.27 0.67 0.21 0.05 2.73 0.11
12 2015-05-31 5.34 3.04 0.19 0.59 0.24 0.00 4.01 0.11
图2 洋常春藤叶片组织中常春藤皂苷C和α-常春藤皂苷动
态累积规律
Fig. 2 Dynamic accumulation of hederacoside C and
α-hederin in leaves of H. helix
析其动态累积规律的原因可能与洋常春藤的生长发
育周期有关,虽然洋常春藤为常绿藤本植物,但其
在 1 年的周期内会出现 2 次生长发育期和 2 次休眠
期,2 次生长发育期分别是在 3 月份和 10 月份,在
生长发育期间会萌发新叶和嫩茎,整株长长,而 2
次休眠期是夏季高温和冬季低温所导致。因此,叶
片中常春藤皂苷C的合成和累积主要是在生长发育
期,尤其是经过低温休眠后的生长发育期;其次对
叶片中量较高的 α-常春藤皂苷进行分析,在 1 年的
生长周期内,α-常春藤皂苷量有所变化但变化幅度
较小,其动态累积规律见图 2。虽然 α-常春藤皂苷
的累积规律趋于平缓,但在 1 年的生长周期内仍然
出现了 2次量升高的趋势,一次是在 2014年 9月份,
另一次在 2015 年 1 月份,这就表明叶片中 α-常春
藤皂苷量升高是在洋常春藤的 2 次休眠期,尤其是
高温休眠时量最高。同时,对比常春藤皂苷 C 动态
累积规律不难发现,α-常春藤皂苷的规律刚好与其
相反,分析其原因可能是这 2 种次生代谢产物在洋
常春藤叶片中所起的生理功能不同而导致;最后,
分析叶片中量较低的常春藤皂苷 B 和常春藤皂苷 D
可知,它们在 1 年生长期内的动态累积规律与常春
藤皂苷 C 相似,其原因也可能相同,见图 3。
图 3 洋常春藤叶片中常春藤皂苷D和常春藤皂苷B动态累
积规律
Fig. 3 Dynamic accumulation of hederacoside D and
hederacoside B in leaves of H. helix
3.2.2 茎中皂苷类化合物动态累积分析 根据表 3
结果显示,洋常春藤茎中不同皂苷类化合物在不同
的采样时期质量分数及动态累积规律同样有所差
异,4 种皂苷类化合物整体量与“3.1”项下检测分
析结果一致,即常春藤皂苷 C 量相对较高,其他 3
种皂苷类化合物量较低。通过分析茎中常春藤皂苷
C 量变化可知,其在 1 年生长周期内波动较小,大
多数月份常春藤皂苷C 的量在 3%左右,经过第 2 个生
长发育期后的 11 月份开始下降,在 12 月份开始低温
休眠时达到最低值后逐步上升至第 1 个生长发育期的
3%左右,总体分析其动态累积规律与叶片中常春藤皂
苷 C 量变化是相辅相成的,见图 4。探析其原因可能
是常春藤皂苷 C 的生物合成主要是在洋常春藤叶片中
进行,而茎自身并不合成常春藤皂苷 C,主要负责运
输和转移;其他 3 种皂苷类化合物虽然也有各自的累
积规律,但因量较低对总量的变化影响不明显。其原
常春藤皂苷 D 常春藤皂苷 B常春藤皂苷 C α-常春藤皂苷
采收时间(编号)
质
量
分
数
/%
8
7
6
5
4
3
2
1
0
1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12
0.5
0.4
0.3
0.2
0.1
0
质
量
分
数
/%
1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12
采收时间(编号)
中草药 Chinese Traditional and Herbal Drugs 第 47 卷 第 16 期 2016 年 8 月
• 2920 •
图4 洋常春藤叶片和茎组织中常春藤皂苷C动态累积规律
Fig. 4 Dynamic accumulation of hederacoside C in leaves
and stems of H. helix
因也可能与茎自身不合成皂苷类化合物有关。
4 讨论
洋常春藤作为药用植物,其质量优劣取决于活性
成分的量高低,本研究以常春藤皂苷 C、常春藤皂苷
B、常春藤皂苷 D 和 α-常春藤皂苷 4 种三萜皂苷类化
合物为主要成分指标,研究了洋常春藤不同部位的量
差异。结果表明了常春藤皂苷 C 和 α-常春藤皂苷的量
远远高于常春藤皂苷 B 和常春藤皂苷 D,且不同部位
药用质量为老叶>新叶>茎>根,进一步证实了《欧
洲药典》收录洋常春藤叶片作为植物药的合理性[3]。
同时,欧洲药企生产洋常春藤的成药剂型主要以 10%
或 60%的常春藤皂苷 C 提取物为原料,研发生产常春
藤皂苷 C 提取物并出口欧洲具有良好的市场前景,结
合本文研究结果,虽然茎中常春藤皂苷 C 量低于叶
片,但在同一生长周期内,茎的生长量要大于叶片,
因此选取洋常春藤的茎作为生产常春藤皂苷 C 提取
物主要原料,既符合欧洲制药企业所需的原料标
准[1,3,14],又能进一步降低成本提高产品利润。
合理采收也是影响药用植物质量和产量的重
要因素,确定最佳采收时期的标准就是分析比较有
效成分的累积量和不同生长发育阶段的动态累积
规律[18]。本研究探析了洋常春藤叶片和茎中 4 种皂
苷类化合物的代谢累积变化规律,总结得出洋常春
藤叶片的最适宜采收时期为 3 月份开始的生长发育
期,而茎的适宜采收时期则可以从 3 月份开始的生
长发育期持续到低温休眠开始前的 11 月份。该结论
与《欧洲药典》和《英国药典》记录的在春季采收
洋常春藤叶片入药的标准相符合[3],为高质量药用
洋常春藤原料的采收及可持续利用提供理论基础。
参考文献
[1] Landgrebe H, Matusch R, Marburg F R, et al.
Effectiveness and use of an old medicinal plant [J].
Pharm Zeitung, 1999, 35(5): 11-15.
[2] Virginia V, Pablo V. Quantitative morphology and species
delimitation under the general lineage concept:
optimization for hedera (Araliaceae) [J]. Am J Bot, 2010,
97(9): 1555-1573.
[3] European Pharmacopoeia [S]. 2012.
[4] Fazio S, Pouso J, Dolinsky D, et al. Tolerance, safety and
efficacy of Hedera helix extract in inflammatory
bronchial diseases under clinical practice conditions: A
prospective, open, multicentre postmarketing study in
9657 patients [J]. Phytomedicine, 2009, 16(1): 17-24.
[5] Häberlein H, Lis K, Chodorowska G, et al. Hedera
helix-mechanizm działania potwierdzony badaniami
biologicznymii biofizycznymi na modelu komórkowym
[J]. Przewodnik Lek, 2008, 103(1): 255-256.
[6] Ute C, Bertram O, Petr A. Acute bronchitis therapy with
ivy leaves extracts in a two-arm study. A double-blind,
randomised study vs. an other ivy leaves extract [J].
Phytomedicine, 2011, 18(13): 1105-1109.
[7] Lutsenko Y, Bylka W, Matlawska I, et al. Hedera helix as a
medicinal plant [J]. Herba Pol, 2010, 56(1): 83-96.
[8] Mendel M, Chłopecka M, Dziekan N, et al. Participation
of extracellularcal ciumin a-hederin-induced contractions
of ratisolated stomach strips [J]. J Ethnopharm, 2013,
146: 423-426.
[9] Mendel M, Chłopecka M, Dziekan N, et al. The effect of the
whole extract of common ivy (Hedera helix) leaves and
selected active substances on the motoric activity of rat isolated
stomach strips [J]. J Ethnopharm, 2011, 134(3): 796-802.
[10] 赵 茜. 欧洲常春藤南京地区引种试验 [J]. 林业科技
开发, 2008, 22(4): 115-116.
[11] 陈爱莉, 蔡 汉. 常春藤属植物种质资源 [A] // 第三届
中国花卉产业高峰论坛 [C]. 杭州: 中国花卉协会, 2006.
[12] 王洪良, 肖万里, 李 刚. 盆栽常春藤工厂化栽培 [J].
中国花卉园艺, 2009(12): 26-27.
[13] Khdair A, Mohammad M K, Tawaha K, et al. A validated
RP HPLC-PAD method for the determination of
hederacoside C in Ivy-Thyme cough syrup [J]. Inter J
Anal Chem, 2010, 2010(10): 1-5.
[14] Stauss-Grabo M, Atiye S, Warnke A, et al. Observational
study on the tolerability and safety of film-coated tablets
containing ivy extract (Prospan® Cough Tablets) in the
treatment of colds accompanied by coughing [J].
Phytomedicine, 2011, 18(6): 433-436.
[15] 谢红旗, 刘发宝, 杨星星, 等. 葡萄植株中白藜芦醇及
葡萄素量动态积累规律研究 [J]. 天然产物研究与开
发, 2012, 24: 1079-1083.
[16] Demirci B, Goppel M, Demirci F, et al. HPLC profiling
and quantification of active principles in leaves of Hedera
helix L. [J]. Pharmazie, 2004, 59(10): 770-774.
[17] 孙化鹏, 阮琴妹, 吴易雄, 等. 洋常春藤及其栽培品种
的 HPLC-UV 指纹图谱和质量评价研究 [J]. 中草药,
2015, 46(18): 2794-2799.
[18] 张春艳, 李国辉, 李天祥, 等. 不同生长期杠柳各部位
活性成分的累积变化 [J]. 中草药 , 2012, 43(12):
2508-2511.
茎组织 叶片组织
8
7
6
5
4
3
2
1
0
常
春
藤
皂
苷
C
/%
1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12
采收时间(编号)