全 文 ：槲寄生内生真菌在槲寄生寄生过程中的作用
丁志山，蒋福升，金 波，徐 莉，陈铌铍，吕圭源
（浙江中医药大学，浙江 杭州 ３１００５３）
［摘要］ 目的：研究槲寄生内生真菌在槲寄生寄生过程中的作用。方法：将槲寄生８个不同部位的组织进行
外植体培养，分离纯化其内生真菌，利用ＣＭＣ平板培养和ＤＮＳ法筛选出具有较高纤维素酶活性的菌株；将槲寄生
寄生的膨大部位进行组织切片，染色观察其内生真菌的组织分布。结果：槲寄生体内分布着丰富的真菌菌丝；从槲
寄生各组织部位共分离出８３株内生真菌；初步筛选得到３８株可降解纤维素的菌株，１９株降解纤维素能力较强，其
中１０株分离自槲寄生寄生的膨大部位。结论：内生真菌分泌纤维素酶可降解枫杨树的细胞壁及细胞间隙组织，协
助槲寄生的吸器穿透枫杨树组织，帮助槲寄生在枫杨树上寄生。
［关键词］ 槲寄生；内生真菌；寄生；纤维素酶
［中图分类号］Ｓ５６７ ［文献标识码］Ａ ［文章编号］１００１５３０２（２００８）１１１２４３０４
［收稿日期］ ２００７０９２５
［通讯作者］ 吕圭源，Ｔｅｌ：（０５７１）８６６１３６０１，Ｅｍａｉｌ：ｌｖ．ｇｙ＠
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槲寄生 Ｖｉｓｃｕｍｃｏｌｏｒａｔｕｍ（Ｋｏｍａｒ．）Ｎａｋａｉ是桑
寄生科的常绿半寄生小灌木，是近年天然药物研究
的热点。但槲寄生特殊的繁殖和生长方式限制了槲
寄生不能像其他药用植物那样可以人工快速大批量
种植，影响了槲寄生的进一步深入开发利用。
槲寄生和宿主枫杨树经过长期协同进化，槲寄生
已分化出吸器来获取无机盐和养分，吸器是寄生植物
与宿主植物间形态结构和生理功能的桥梁。但吸器
是如何侵入宿主并从宿主中获取水分和无机盐的，有
哪些具体因素在起作用，至今尚没有文献报道。
作者在进行槲寄生组织培养的研究中偶然发现
槲寄生中有大量的内生真菌存在，槲寄生内生菌同
槲寄生具有同样的药理作用［１］。本实验对内生菌
在槲寄生分布及槲寄生产纤维素酶活性等进行初步
研究，探讨内生菌在槲寄生寄生过程中的作用。
１ 材料
１．１ 槲寄生
槲寄生采自杭州植物园，寄生于枫杨树上，经胡
绍庆高级工程师鉴定为黄果槲寄生 Ｖ．ｃｏｌｏｒａｔｕｍ
（Ｋｏｍ．）Ｎａｋａｉｆ．ｌｕｔｅｓｃｅｎｓＫｉｔａｇ。
１．２ 仪器设备
超净工作台（ＳＷ－ＣＪ－２ＦＤ型）、恒温培养箱
（ＫＹＣ－１００Ｃ）、高速冷冻离心机（ＨＥＲＡＥＵＳ）、分
光光度计（Ｕｉｔｒｏｓｐｅｃ３３００ｐｒｏ）等。
１．３ 培养基
外植体培养基（ＰＤＡ培养基）：马铃薯２００ｇ，去
皮切碎，用双蒸水煮烂，过滤，加２０ｇ蔗糖，０２％纯
化琼脂粉，溶于１０００ｍＬ蒸馏水，１１６℃，２５ｍｉｎ灭
菌备用。
分离培养基（ｇ·Ｌ－１）：ＣＭＣＮａ２０，ＫＨ２ＰＯ４
１５，Ｎａ２ＨＰＯ４２５，蛋白胨２５，琼脂２０，ｐＨ７０，１１６
℃，２５ｍｉｎ灭菌备用。
测定培养基 （ｇ·Ｌ－１）：ＫＨ２ＰＯ４０５，ＭｇＳＯ４
０２５，ＣＭＣＮａ１８８，刚果红０２，琼脂１４，明胶２０，
ｐＨ７０，１１６℃，２５ｍｉｎ灭菌备用。
液体发酵培养基：ＫＨ２ＰＯ４０４％，ＣａＣｌ２·２Ｈ２Ｏ
００３％，ＭｇＳＯ４·７Ｈ２Ｏ００３％，ＣＭＣＮａ２０％，１１６
℃，２５ｍｉｎ灭菌备用。
２ 方法
２．１ 槲寄生组织切片染色
２．１．１ 槲寄生组织酸性复红乳酸染色［２］ 槲寄生
组织做成徒手切片，分别保存于盛有 ＦＡＡ溶液的
安瓿瓶中进行酸性复红乳酸染色。将槲寄生组织置
于１０％ ＫＯＨ溶液中，于高压蒸气灭菌锅（压力
１０５ｋｇ·ｃｍ－２）中蒸４～１５ｍｉｎ，自来水洗。加碱性
Ｈ２Ｏ２浸１０ｍｉｎ脱色。加００１％酸性复红乳酸液于
１０５ｋｇ·ｃｍ－２压力下加压热染色１０ｍｉｎ左右，置
于二甲苯中透明２ｍｉｎ，显微镜下观察。
２．１．２ 槲寄生组织乳酸石炭酸棉蓝染色 苯胺蓝
是碱性染料，可染真菌的原生质。将枫杨树正常组
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织和槲寄生寄生的膨大组织徒手切片；用５０％的乙
醇浸润，滴加乳酸石炭酸棉蓝染色液镜检。
２．２ 槲寄生与枫杨树内生真菌的分离与纯化培养
将槲寄生的不同部位用自来水洗净，加入洗衣
粉冲洗１ｈ，用蒸馏水洗净槲寄生。分别用７５％乙
醇消毒 １０ｓ，无菌水洗 ２次；０１％ ＨｇＣｌ２消毒 １０
ｍｉｎ，无菌水洗６次，将各组织切成薄片，贴于 ＰＤＡ
培养基上。同时做无菌对照。培养１～４ｄ后，挑取
槲寄生组织周围长出的菌丝体，进行连续划线，放于
２７０℃的恒温箱培养得纯菌种。同样做枫杨树茎
内生真菌的分离培养。
２．３ 产纤维素酶内生菌的筛选
２．３．１ 产纤维素酶菌株的初步筛选 挑取菌丝接
种于分离培养基；待长出明显的菌落，将其刮去，浸
于０５ｍｇ·Ｌ－１的刚果红中染色１ｈ；倒去染液，脱
色１ｈ，测定透明圈的大小。
２．３．２ 产纤维素酶菌株酶活性的初步测定 挑取
筛选出的单菌落，接种于测定培养基，２７０℃培养。
待长出明显的菌落，将其刮去，脱色１ｈ，测定透明
圈［３］的大小。根据透明圈的大小可初步测定纤维
素酶活力大小。
２．３．３ 产纤维素酶菌株酶活性的精确测定 将
２３２测定的具有较强纤维素酶活的菌，分别接种
于ＣＭＣＮａ、滤纸、稻草、棉花发酵培养基中，每隔２４
ｈ采用管斌等的方法［４］测定培养基中的还原糖含
量，计算出纤维素酶的活性。
２．４ 枫杨树槲寄生寄生的膨大部位和非寄生部位
还原糖含量测定
将枫杨树上槲寄生寄生的膨大部位和非寄生部
位的木质部采用植物粉碎机磨碎，测定木质部中的
还原糖含量。
３ 结果与分析
３．１ 槲寄生组织切片染色观察
槲寄生寄生膨大部位经乳酸品红染色观察证实
槲寄生膨大部位内有丰富的内生真菌，膨大部位切
片乳酸石炭酸棉蓝染色可见典型泡囊（图１）。
３．２ 槲寄生内生真菌的分离纯化结果
从槲寄生茎、叶、芽、靠近芽的茎、果实、槲寄生
寄生的膨大部位等８个部位分离得到８３株内生真
菌，各部位内生真菌的数量（表１）以寄生的膨大部
位和果实中最多。分离出的 ８３株内生真菌中有
３２５％存在于槲寄生的寄生膨大部位，靠近膨大部
图１ 槲寄生寄生膨大部位组织切片
１．酸性复红乳酸染色（示膨大部位横切）；２．膨大部位酸性复红
乳酸染色（示菌丝）；３．膨大部位棉蓝染色（示菌丝和泡囊）；４
膨大部位酸性复红乳酸染色（示菌丝）
位的茎占１５７％，果实部位占１８０％。从分离结果
可以看出槲寄生内含有丰富的内生真菌。而同样条
件下从槲寄生寄生的枫杨树枝条中只分离出６株内
生真菌。
表１ 槲寄生不同部位筛选出的菌数 株
组织部位 总菌数 ＣＭＣＮａ 刚果红纤维素
膨大部位 ２７ １７ １０
靠近膨大部位的茎 １３ ８ ４
节结 ６ ２ ０
节间 ２ ０ ０
靠近芽的茎 ７ ３ ０
叶 ８ １ ０
果实 １５ １０ ５
芽 ５ ０ ０
３．３ 产纤维素酶菌株初步筛选结果
将分离出的８３株真菌在 ＣＭＣＮａ平板上进行
纤维素酶活性的初步测定，共筛选出 ３８株可降解
ＣＭＣＮａ，且透明圈的直径大于１５ｃｍ。筛选出的
各部位菌株数量见表 １中的 ＣＭＣＮａ筛选出的菌
数。槲寄生的膨大部位、果实、靠近膨大部位的茎能
降解ＣＭＣＮａ的内生真菌的数量远多于其他部位。
３．４ 产纤维素酶菌株产酶活力初步测定结果
经过初步筛选得到的３８株内生真菌，通过利用
刚果红纤维素平板对其纤维素酶活力进行再次测
定，２７℃培养３ｄ，测其透明圈的直径并计算其相对
酶活力（ｃｍ·ｄ－１）（表２）。其中 Ｍ菌来自膨大部
位，Ｈ菌来自果实，Ｌ菌来自靠近膨大部位的茎。对
于枫杨树的６株内生真菌也进行了纤维素酶活力的
测定，但未出现透明圈，说明其不产纤维素酶或产纤
维素酶的能力不强。
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表２ 产纤维素酶内生真菌的酶活力初步测定 ｃｍ·ｄ－１
菌种号 ＣＭＣ 菌种号 ＣＭＣ
Ｍ１ ０６７ Ｌ１ ０５２
Ｍ２ ０５０ Ｌ２ ０５０
Ｍ３ ０６５ Ｌ３ ０６０
Ｍ４ ０６５ Ｌ４ ０５７
Ｍ５ ０７０ Ｈ１ ０３５
Ｍ６ ０５０ Ｈ２ ０８０
Ｍ７ ０５３ Ｈ３ ０８６
Ｍ８ ０６７ Ｈ４ ０８３
Ｍ９ １００ Ｈ５ ０６３
Ｍ１０ ０５７
３．５ 产纤维素酶菌株酶活性的精确测定结果
综合３．３和３．４的筛选结果，将槲寄生各部位
分离出的内生真菌中产纤维素酶活性较高的１１株
利用ＤＮＳ法分别进行了稻草酶、棉花酶、滤纸酶和
ＣＭＣＮａ酶活的精确测定（表３）。
表３ 产纤维素酶内生真菌的酶活力精确测定 Ｕ
菌株号 滤纸 稻草 ＣＭＣＮａ
Ｃ１ ０１３５３ ０１１６２ １１７３０
Ｈ３ ０００００ ０１２７２ １５７２０
Ｆ２ ０００００ ０１２７２ １５７２０
Ｇ１ ００７８５ ００７０９ １０９５８
Ｈ４ ０００００ ００５９３ １１６９５
Ｊ１ ００５８８ ０１０５２ １０８３１
Ｋ１ ０７２２３ ０１７１９ ２５００６
Ｌ３ ０００００ ０６３５９ ００５３０
Ｍ３ ０００００ ０００００ １３６５５
Ｍ５ ００５７０ ０００５３ ０５２６８
Ｍ９ ００７０９ ００７７３ ００７３３
注：棉花酶活为０
从表３数据可以看出，来自槲寄生膨大部位、靠
近膨大部位的茎以及果实中的内生真菌相比其他部
位分离得到的内生真菌有较强的降解纤维素的能
力。其中Ｍ３（膨大部位），Ｈ３（果实），Ｋ１（靠近膨
大部位的茎）有较强的 ＣＭＣＮａ酶活，Ｌ３（膨大部
位）有强的稻草酶活。
３．６ 枫杨树槲寄生寄生的膨大部位和非寄生部位
还原糖含量测定
膨大部位还原糖为２４１ｍｇ·ｇ－１，非寄生部位
还原糖为１４２ｍｇ·ｇ－１。
４ 讨论
寄生植物通过吸器从宿主植物中吸取自身生长
发育所需要的水分、矿物质和有机物。黄建中等［５］
通过对全寄生植物日本菟丝子吸器生长机制进行研
究后认为，在日本菟丝子吸器前端的细胞中可能含
有酸性磷酸酶等酶类，这些酶能使寄主植物的细胞
壁软化并水解，有利于寄生。到目前为止只是对全
寄生植物寄生机制的一种推测。
本研究发现，槲寄生中有大量的内生真菌存在。
但宿主枫杨树中却很少。将槲寄生的寄生部位进行
了组织切片染色，清楚地看到了槲寄生吸器周围布满
了菌丝。内生菌长期生活在植物体内的特殊环境中
与宿主协同进化，彼此构成了稳定的生态关系［６］。本
研究从槲寄生各部位组织中分离出８３株内生真菌，
其中槲寄生的寄生膨大部位占２７株。有３８株菌具
有不同程度的降解纤维素的能力，其中的１９株内生
真菌分泌的纤维素酶平均活性是其他菌株的２～３
倍。这１９株菌中有１０株分离自寄生的膨大部位，５
株分离自果实，靠近膨大部位的茎则占４株。各部位
分离出的菌株降解纤维素的能力不同。
研究表明，植物寄生的吸器侵入宿主，穿透宿主
的维管束，是由于机械压力和酶的共同作用［７］。因
此根据产纤维素酶菌株在槲寄生寄生膨大部位和种
子中分布比较多现象，作者认为槲寄生的内生真菌
分泌纤维素酶降解了宿主细胞的纤维素，为半寄生
的槲寄生吸器侵入宿主提供了帮助。槲寄生寄生的
膨大部位还原糖含量较高也提供了证据。说明内生
真菌在槲寄生繁殖与寄生过程中起了重要作用。
前期研究发现在根瘤菌与其宿主植物识别的过
程中，存在于豆科植物的凝集素（ｌｅｃｔｉｎ）和存在于根
瘤菌细胞表面的多糖类起着关键作用［８］。槲寄生
中有大量凝集素存在，因此作者推测凝集素可能和
内生真菌表面多糖互补，二者特异性结合后，诱导内
生菌产生纤维素酶使槲寄生侵入宿主枫杨树形成侵
入线，最终形成类似于根瘤的枫杨树寄生膨大部位；
另一方面，内生菌本身也分泌一些植物生长激素，内
生菌分泌的生长激素进一步促进槲寄生寄生部位膨
大和促进槲寄生生长发育。因此内生菌为槲寄生的
繁殖、生长和发育提供了理想的条件。当然这需要
实验进一步验证。
［参考文献］
［１］ 朱 佳，胡旭姣，陈炎伟，等．槲寄生内生真菌发酵产物抗肿瘤
作用的初步研究［Ｊ］．中药材，２００６，２９（１０）：１０８０．
［２］ 余仲东，李 琰，李登武．两类专性寄生真菌侵染植物的组织
学染色技术初步研究［Ｊ］．武汉植物学研究，２００５，２３（６）：５８８．
［３］ 孙晓华，罗安程．纤维素分解菌的分离、筛选及其环境适应性
初步研究［Ｊ］．科技通报，２００５，２１（２）：２３６．
［４］ 管 斌，丁友肪，谢来苏，等．还原糖测定方法的规范［Ｊ］．无锡
轻工大学学报，１９９８，１８（３）：７４．
［５］ 黄建中，李扬汉．外源细胞分裂素诱导日本菟丝子形成吸器的
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ＣｈｉｎａＪｏｕｒｎａｌｏｆＣｈｉｎｅｓｅＭａｔｅｒｉａＭｅｄｉｃａ
Ｖｏｌ．３３，Ｉｓｓｕｅ １１
Ｊｕｎｅ，２００８
发育解剖研究［Ｊ］．南京农业大学学报，１９９１，１４（２）：２３．
［６］ ＢａｃｏｎＣＷ，ＳｉｅｇｅｌＭＲ．Ｅｎｄｏｐｈｙｔｅｐａｒａｓｉｔｉｓｍｏｆｔａｌｆｅｓｃｕｅ［Ｊ］．
ＪＰｒｏｄＡｇｒｉｃ，１９９８，（１）：４５．
［７］ ＯｌｉｖｉｅｒＡ，ＢｅｎｈａｍｏｕＮ，ＬｅｒｏｎｘＧＤ．Ｃｅｌｓｕｒｆａｃｅｉｎｔｅｒａｃｔｉｏｎｓ
ｂｅｔｗｅｅｎｓｏｒｇｈｕｍｒｏｏｔｓａｎｄｔｈｅｐａｒａｓｉｔｉｃｗｅｅｄＳｔｒｉｇａｈｅｎｎｏｎｔｈｉｃａ：
ｃｙｔｏｃｈｅｍｉｃａｌａｓｐｅｃｔｓｏｆｃｅｌｕｌｏｓｅｄｉｓｔｒｉｂｕｔｉｏｎｉｎｒｅｓｉｓｔａｎｔａｎｄｓｕｓ
ｃｅｐｔｉｂｌｅｈｏｓｔｔｉｓｓｕｅｓ［Ｊ］．ＣａｎＪＢｏｔ，１９９１，６９：１６７９．
［８］ 王逸群，荆玉祥．豆科植物凝集素及其对根瘤菌的识别作用
［Ｊ］．植物学通报，２０００，１７（２）：１２７．
Ｓｔｕｄｙｆｕｎｃｔｉｏｎｏｆｅｎｄｏｐｈｙｔｉｃｆｕｎｇｕｓｉｎｐａｒａｓｉｔｉｓｍｐｒｏｃｅｓｓｏｆｍｉｓｔｌｅｔｏ
ＤＩＮＧＺｈｉｓｈａｎ，ＪＩＡＮＧＦｕｓｈｅｎｇ，ＪＩＮＢｏ，ＸＵＬｉ，ＣＨＥＮＮｉｐｉ，ＬＶＧｕｉｙｕａｎ
（ＺｈｅｊｉａｎｇＴｒａｄｉｔｉｏｎＣｈｉｎｅｓｅＭｅｄｉｃａｌＣｏｌｅｇｅ，Ｈａｎｇｚｈｏｕ３１００５３，Ｃｈｉｎａ）
［Ａｂｓｔｒａｃｔ］ Ｏｂｊｅｃｔｉｖｅ：ＴｏｒｅｓｅａｒｃｈｔｈｅｆｕｎｃｔｉｏｎｏｆｅｎｄｏｐｈｙｔｅｓｏｆｍｉｓｔｌｅｔｏｅｉｎｐａｒａｓｉｔｉｓｍｐｒｏｃｅｓｓｏｆｍｉｓｔｌｅｔｏｅｉｎＰｔｅｒｏｃａｒｙａ
ｓｔｅｎｏｐｔｅｒａ．Ｍｅｔｈｏｄ：Ｅｎｄｏｐｈｙｔｅｓｆｒｏｍｅｉｇｈｔｄｉｆｅｒｅｎｔｐａｒｔｓｏｆｔｈｅｍｉｓｔｌｅｔｏｅｗｅｒｅｓｅｐａｒａｔｅｄｂｙｅｘｐｌａｎｔｃｕｌｔｕｒｅ，ａｎｄｆｕｒｔｈｅｒｓｃｒｅｅｎｅｄｂｙ
ｄｉｆｅｒｅｎｔＣＭＣｐｌａｔｅｓｃｕｌｔｕｒｅａｎｄＤＮＳｍｅｔｈｏｄｔｏｇｅｔｃｅｌｕｌａｓｅｈｉｇｈｐｒｏｄｕｃｔｉｖｅｓｔｒａｉｎｓ．Ｔｈｅｄｉｓｔｒｉｂｕｔｉｏｎｏｆｔｈｅｅｎｄｏｐｈｙｔｉｃｆｕｎｇｕｓｐａｒａｓｉｔ
ｉｚｅｄｉｎｍｉｓｔｌｅｔｏｅｗｅｒｅｐｒｅｐａｒｅｄａｎｄｓｔａｉｎｅｄｔｏｄｅｍｏｎｓｔｒａｔｅｂｙｈｉｓｔｏｌｏｇｉｃａｌｓｅｃｔｉｏｎｏｆｔｈｅｉｎｔｕｍｅｓｃｅｎｔｉａｐａｒｔｏｆｔｈｅＰ．ｓｔｅｎｏｐｔｅｒａ．Ｒｅ
ｓｕｌｔ：Ｔｈｅｈｉｓｔｏｌｏｇｉｃａｌｓｅｃｔｉｏｎｉｎｄｉｃａｔｅｄｔｈａｔａｂｏｕｎｄｅｎｔｏｆｈｙｐｈａｓｍａｗｅｒｅｄｉｓｔｒｉｂｕｔｅｄａｒｏｕｎｄｔｈｅｈａｕｓｔｏｒｉｕｍｏｆｔｈｅｍｉｓｔｌｅｔｏｅ．Ｅｉｇｈｔｙ
ｔｈｒｅｅｓｔｒａｉｎｓｏｆｅｎｄｏｐｈｙｔｉｃｆｕｎｇｕｓｗｅｒｅｓｅｐａｒａｔｅｄ，３８ｏｆｔｈｅｍｗｅｒｅａｂｌｅｔｏｄｅｇｒａｄｅｃｅｌｕｌｏｓｅ，１９ｓｔｒａｉｎｓｓｈｏｗｅｄｈｉｇｈｃｅｌｕｌａｓｅａｃｔｉｖｉｔｙ
ａｎｄ１０ｏｆｗｈｉｃｈｗｅｒｅｓｅｐａｒａｔｅｄｆｒｏｍｔｈｅｐａｒａｓｉｔｉｃｐｏｓｉｔｉｏｎ．Ｃｏｎｃｌｕｓｉｏｎ：Ｅｎｄｏｐｈｙｔｉｃｆｕｎｇｕｓｏｆｍｉｓｔｌｅｔｏｅｃａｎｓｅｃｒｅｔｅｃｅｌｕｌａｓｅａｎｄａｓｓｉｓｔ
ｔｈｅｈａｕｓｔｏｒｉｕｍｏｆｍｉｓｔｌｅｔｏｅｔｏｂｒｅａｋｔｈｒｏｕｇｈｔｈｅｃｅｌｗａｌｓａｓｗｅｌａｓｉｎｔｅｒｃｅｌｕｌａｒｓｐａｃｅｔｉｓｓｕｅｓｏｆｔｈｅＰ．ｓｔｅｎｏｐｔｅｒａ，ｔｈｕｓ，ｔｈｅｅｎｄｏｐｈｙｔ
ｉｃｆｕｎｇｕｓｐｌａｙｓａｎｉｍｐｏｒｔａｎｔｒｏｌｅｉｎｔｈｅｐａｒａｓｉｔｉｓｍｐｒｏｃｅｓｓｏｆｍｉｓｔｌｅｔｏｉｎＰｓｔｅｎｏｐｔｅｒａ．
［Ｋｅｙｗｏｒｄｓ］ ｍｉｓｔｌｅｔｏｅ；ｅｎｄｏｐｈｙｔｉｃｆｕｎｇｕｓ；ｐａｒａｓｉｔｉｓｍ；ｃｅｌｕｌａｓｅ ［责任编辑 张宁宁］
［收稿日期］ ２００６１１２８
［基金项目］ 国家中医药管理局项目（２００４ＺＸ０６１）；国家科技
支撑计划课题（２００６ＢＡＩ０６Ａ１１０９）；重庆市巫溪县远帆药业公司合
作研究项目
［通讯作者］ 孙年喜，Ｔｅｌ：（０２３）８９０２９０６２，Ｅｍａｉｌ：ｓｕｎｎｘ２００８
＠１６３．ｃｏｍ
川党参种子发芽检验规程的研究
孙年喜，彭 锐，李隆云，钟国跃
（重庆市中药研究院，重庆 ４０００６５）
［摘要］ 目的：探讨温度、光照、发芽床等因素对川党参种子发芽的影响。方法：常规发芽试验方法进行试验。
结果与结论：川党参种子发芽最适温度为２５℃，需光照，发芽床选纸上或纸间均可，发芽初次计数时间为置床后第
１０天，末次计数时间为置床后第１８天。以赤霉素处理可显著提高川党参种子的发芽率。
［关键词］ 川党参；种子；发芽
［中图分类号］Ｓ５６７ ［文献标识码］Ａ ［文章编号］１００１５３０２（２００８）１１１２４６０３
川党参ＣｏｄｏｎｏｐｓｉｓｔａｎｇｓｈｅｎＯｌｉｖ．为桔梗科多年
生草本植物，以根入药，其性味甘平、无毒，为药食两
用药材，有补中益气、生津止渴等功效，主治脾胃虚
弱，中气不足，肺气亏虚，热病伤津，气短口渴，血虚
萎黄，头晕心慌等症［１］，是我国常用的中药材，在东
南亚则被做为保健食品使用。野生党参主要分布于
黑龙江、吉林、辽宁、山西、陕西、甘肃、宁夏、四川等
省区，近年来因掠夺式的采挖，野生党参资源迅猛减
少，故人工栽培党参具有很好的市场前景［２］。党参
栽培中使用播种育苗，两年生党参的新鲜种子发芽
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第３３卷第１１期
２００８年６月
中 国 中 药 杂 志
ＣｈｉｎａＪｏｕｒｎａｌｏｆＣｈｉｎｅｓｅＭａｔｅｒｉａＭｅｄｉｃａ
Ｖｏｌ．３３，Ｉｓｓｕｅ １１
Ｊｕｎｅ，２００８