全 文 ：新疆紫草抗 ＨＩＶ有效成分咖啡酸四聚体的
理化性质和纯化工艺研究
李雅娟１，王隽妮２，沙先谊１，方晓玲１
（１．复旦大学 药学院，上海 ２０００３２；２．上海静安制药有限公司，上海 ２０００４１）
［摘要］ 目的：初步研究咖啡酸四聚体（ＣＡＴ）的理化稳定性的基础上选择合适的大孔吸附树脂，去除杂质，提
高紫草水溶性部分中有效成分咖啡酸四聚体的含量。方法：以咖啡酸四聚体为指标，ＨＰＬＣ检测纯化前后或其他条
件改变的含量变化。结果：７种型号的树脂中 ＬＫ００１纯化效果最佳。确定工艺为吸附液质量浓度１０ｇ·Ｌ－１，ｐＨ
４５，３ＢＶ·ｈ－１的流速流过树脂柱，用去离子水快速洗脱至Ｍｏｌｉｓｈ反应为阴性，再用２０％乙醇洗脱至无色，然后以
５０ｍＬ４５％的乙醇洗脱，洗脱液除去乙醇，５０℃浓缩干燥得粉末。收率为 ３６％，ＣＡＴ单个有效成分的含量为
５８％，纯度提高了４５倍。结论：采用ＬＫ００１树脂可以去除杂质，提高粗提物中有效成分咖啡酸四聚体的含量。
［关键词］ 咖啡酸四聚体；大孔吸附树脂；ＨＰＬＣ；稳定性；纯化
［中图分类号］Ｒ２８４．１ ［文献标识码］Ａ ［文章编号］１００１５３０２（２００８）１３１５５２０４
［收稿日期］ ２００８１２２０
［基金项目］ 上海市科委西部合作项目（０６５４５８０２９）
［通讯作者］ 方晓玲，Ｔｅｌ／Ｆａｘ：（０２１）５４２３７４３２，Ｅｍａｉｌ：ｘｌｆａｎｇ１２１５
＠ｓｈｍｕ．ｅｄｕ．ｃｎ
新疆紫草Ａｒｎｅｂｉａｅｕｃｈｒｏｍａ又名新疆软紫草 Ａ．
ｅｕｃｈｒｏｍａ（Ｒｏｙｌｅ）Ｊｏｈｎｓｔｏｎ，是药典的收载品种之一。
１９９５年日本学者 Ｙａｍａｓａｋｉ发现新疆紫草热水提取
物显示很强的抗 ＨＩＶ活性［１３］；贺金华等从新疆紫
草干燥根的水提取物中得到了咖啡酸四聚体（ＣＡＴ，
ｃａｆｅｉｃａｃｉｄｔｅｔｒａｍｏｒ）以及其他单体化合物或组合，
同时发现，新疆紫草提取液的水溶液经色谱分离得
到的成分在体外试验中，对 ＨＩＶＢ病毒的抑制参数
都大于５［４］。本研究主要对 ＣＡＴ理化稳定性作了
基本考察，并筛选大孔吸附树脂，进行了 ＣＡＴ分离
纯化工艺的初步探讨。到目前为止，还未见 ＣＡＴ理
化稳定性研究，以及有关用大孔吸附树脂法分离纯
化方面的报道。
１ 仪器与试药
ＳｈｉｍａｄｚｕＬＣ－１０ＡＴＶＰ高效液相色谱仪（日本
岛津公司）；ＳｈｉｍａｄｚｕＳＰＤ－１０ＡＶＰＵＶＶｉｓＤｅｔｅｃｔｏｒ
（日本岛津公司）；ＨＳ２０００色谱工作站（杭州英谱）；
ＹＭＣＣ１８色谱柱（４６ｍｍ×２５０ｍｍ，１０μｍ）；Ｓａｔｏｒｉ
ｏｕｓＰＢ１０ｐＨ计（德国赛多利斯集团）；艾科浦ＡＷＪＯ
－０５００－Ｕ纯水机（颐洋企业发展有限公司）；ＲＥ－
５２Ｂ旋转蒸发仪（上海光学仪器厂制造）；ＤＺＦ－
６０５０型真空干燥箱（上海精宏实验设备有限公司）；
电热恒温水浴锅（上海医疗器械五厂）；咖啡酸四聚
体对照品（纯度９８％以上，新疆医科大学）；紫草水
溶性部分提取液浸膏（批号２００７０６２０，新疆医科大
学）；ＨＰＤ１００，ＨＰＤ３００（沧州恩宝），ＤＨ１３０，Ｄ１３１，
ＬＫ００１（鲁抗医药股份有限公司树脂分厂），Ｄ３５２０
（南开大学化工厂），ＡＢ８（安徽三星树脂科技有限
公 司 ）大 孔 吸 附 树 脂，乙 腈 （色 谱 纯，
Ｂｕｒｄｉｃｋ＆ＪａｃｋｓｏｎＣｏｒｐ．，ＵＳＡ）；甲醇（色谱纯，江苏
汉邦科技有限公司）；水为超纯水，其他试剂均为分
析纯。
２ 方法与结果
２．１ 含量测定
色谱条件［５］：流动相乙腈００１ｍｏｌ·Ｌ－１磷酸
缓冲液（调 ｐＨ２５）（１８５∶８１５）；流速 １ｍＬ·
ｍｉｎ－１，检测波长２５２ｎｍ，进样量２０μＬ。在２５～１７５
ｍｇ·Ｌ－１，以峰面积（Ａ）对 ＣＡＴ对照品溶液浓度
（Ｃ）进行线性回归，得回归方程 Ａ＝４４３３３７Ｃ＋
３５２３８４，ｒ＝０９９９９，ＣＡＴ浓度与峰面积线性关系
良好。
浸膏中ＣＡＴ的含量测定：精密称取浸膏０１ｇ，
置１０ｍＬ量瓶中，流动相定容至刻度，０４５μｍ微孔
滤膜过滤后，进样 ２０μＬ，ＨＰＬＣ测定。测得浸膏
ＴＣＡ质量分数为１２８％（ｎ＝３）。
大孔吸附树脂纯化粉末中ＣＡＴ含量的测定：精
·２５５１·
第３３卷第１３期
２００８年７月
中 国 中 药 杂 志
ＣｈｉｎａＪｏｕｒｎａｌｏｆＣｈｉｎｅｓｅＭａｔｅｒｉａＭｅｄｉｃａ
Ｖｏｌ．３３，Ｉｓｓｕｅ １３
Ｊｕｌｙ，２００８
密称取干燥粉末５ｍｇ，置１０ｍＬ量瓶中，流动相溶
解并定容至刻度，０４５μｍ微孔滤膜过滤，进样２０
μＬ，ＨＰＬＣ进样测定。
２．２ 理化稳定性研究
２．２．１ ＣＡＴ的 ｐＨ稳定性研究 配制一系列 ｐＨ
１５，３，７，８，９，１１的磷酸盐缓冲液各５０ｍＬ，精密吸
取０５ｇ·Ｌ－１的 ＣＡＴ储备液０５ｍＬ，共６份，分别
置５ｍＬ量瓶中，用各 ｐＨ的缓冲液稀释至刻度，
ＨＰＬＣ测定０，２，４，６，８，１２，２４ｈ的浓度，换算成相对
０ｈ的百分比（ｎ＝３）。结果表明ＣＡＴ在碱性及中性
条件下均有降解，且随着 ｐＨ升高降解加剧，而在
ｐＨ５以下没有显著变化。提示在进行 ＣＡＴ的分离
纯化时，要避免碱性及中性条件，以保证 ＣＡＴ的稳
定性。ＣＡＴ在不同ｐＨ条件下的稳定性见图１。
Ｃｔｔ时质量浓度；Ｃ０初始浓度
图１ ＣＡＴ在不同ｐＨ条件下的稳定性
２．２．２ 浸膏水溶液的温度稳定性 配制一定浓度
的ＣＡＴ浸膏水溶液，密封并分别置于２０，４０，５０，７０
℃的条件下，于４ｈ，２，４，６，８ｄ测定 ＣＡＴ的质量分
数，换算成０ｈ的百分数（ｎ＝３）。结果表明紫草水
提取液中 ＣＡＴ在室温下比较稳定。但是随着温度
的提高，含量下降明显。提示紫草在进行加热提取
或浓缩时，要注意温度的影响，且最好控制温度不超
过５０℃。紫草浸膏溶液在不同温度下的稳定性见
图２。
２．２．３ 氧化稳定性的研究 配制适宜浓度的浸膏
溶液，精密吸取１ｍＬ，置１０ｍＬ量瓶中。分别加双
氧水０，１，３，５ｍＬ，去离子水稀释至刻度（ｎ＝３）。过
滤后ＨＰＬＣ进样测定１５ｍｉｎ，２ｈ的含量。包括对照
组在内，２ｈ含量均比１５ｍｉｎ有所降低，但是统计检
验表明双氧水的浓度及时间对含量改变并没有起到
显著作用。图３为氧化稳定性结果。
２．２．４ 光照稳定性的研究 取大孔吸附树脂纯化
后所得粉末，均匀铺于表面皿上成一薄层，放于装有
Ｃｔｔ时质量分数；Ｃ０初始质量分数
图２ 紫草浸膏溶液在不同温度下的稳定性
Ｃ２ｈ２ｈ时质量浓度；Ｃ１５ｍｉｎ１５ｍｉｎ时质量浓度
图３ 紫草浸膏溶液对双氧水的氧化稳定性
日光灯的光照箱内，于照度（４５００±５００）ｌｘ的条件
下放置１０ｄ，于第５天和第１０天取样，测定ＣＡＴ的
含量（ｎ＝３）。结果表明光照对 ＣＡＴ的稳定性具有
一定的影响，放置时要尽量避免光直射。光照稳定
性结果见图４。
Ｃｔｔ时质量分数；Ｃ０初始质量分数
图４ 树脂纯化物的光照稳定性
２．３ 动态吸附法筛选树脂
取预处理好的７种型号湿树脂各５ｍＬ，分别为
ＨＰＤ１００，ＨＰＤ３００，Ｄ３５２０，ＬＫ００１，ＤＨ１３０，ＡＢ８，
Ｄ１３１，装填于内径１０ｍｍ的色谱柱中，径高比为１∶
６２５。称取一定量的紫草水提取液浸膏，去离子水
溶解，配制成５ｇ·Ｌ－１的水溶液。调节 ｐＨ４５，以
保证纯化过程中的稳定，以３ＢＶ·ｈ－１的速度流过
大孔吸附树脂柱。以 １０ｍＬ为单位收集流出液，
ＨＰＬＣ检测流出液的 ＣＡＴ浓度，直至浓度达到吸附
液体中ＣＡＴ浓度的９５％以上。去离子水快速流过
树脂柱，直至流出液 Ｍｏｌｉｓｈ反应检测不到糖成分。
用ｐＨ５０，９５％ 乙醇以３ＢＶ·ｈ－１的速度流过树脂
·３５５１·
第３３卷第１３期
２００８年７月
中 国 中 药 杂 志
ＣｈｉｎａＪｏｕｒｎａｌｏｆＣｈｉｎｅｓｅＭａｔｅｒｉａＭｅｄｉｃａ
Ｖｏｌ．３３，Ｉｓｓｕｅ １３
Ｊｕｌｙ，２００８
柱，收集流出液，直至流出液无色。流出液旋转蒸发
除去乙醇，得到的浓溶液转移至蒸发皿，５０℃水浴
蒸干，收集干燥粉末。ＨＰＬＣ测定干粉中ＣＡＴ含量。
７种大孔吸附树脂动态吸附法优选结果见表１。
由表１可以看出，ＬＫ００１树脂比上柱量和比洗脱量
最高。树脂处理所得物中 ＣＡＴ含量最高，近３０％。
据此，选定ＬＫ００１树脂进行分离纯化研究。
表１ ７种大孔吸附树脂动态吸附法优选结果
树脂型号
比上柱量
／ｍｇ·ｇ－１
比洗脱量
／ｍｇ·ｇ－１
ＣＡＴ
／％
ＨＰＤ１００ １２１３ １６２０ １９０９
ＨＰＤ３００ １７７７ １２５９ １８４０
ＬＫ００１ ５６２４ ３９８７ ２９８２
Ｄ３５２０ ２５０７ ３０２ ９９８４
ＤＨ１３０ １７１０ ２６１ １９６３
ＡＢ８ ２６９２ １８４３ ２５４８
Ｄ１３１ １８６２ １６１６ ２３０６
２．４ 大孔吸附树脂纯化的工艺优化
２．４．１ 吸附液质量浓度的考察 精密称取 ３份
０５ｇ的浸膏，配制成１００，１０，５ｇ·Ｌ－１的高、中、低
３种质量浓度的溶液，以３ＢＶ·ｈ－１的流速进行大孔
吸附树脂吸附，去离子水快速冲洗直至流出液 Ｍｏｌ
ｉｓｈ反应阴性。根据预试验改用７０％乙醇洗脱，收
集洗脱液至无色，所得干燥粉末测 ＣＡＴ含量和收
率，考察结果见表２。
表２ 吸附液浓度的考察 ％
吸附液质量浓度／ｇ·Ｌ－１ ＣＡＴ 收率
１００ ３５４７ ３３７
１０ ３６８０ ５３０
５ ３６８６ ４４２
注：收率＝Ｗ回收粉末／Ｗ上柱浸膏 ×１００％
综合考虑ＣＡＴ含量和收率，选吸附液浓度为１０
ｇ·Ｌ－１。
２．４．２ 吸附液ｐＨ的考察 配制１０ｇ·Ｌ－１的浸膏
溶液，每份 ５０ｍＬ，分别用稀盐酸调 ｐＨ２８，３５，
４０，４５，５０，５４，过滤，以３ＢＶ·ｈ－１的流速流过
树脂，去离子水水快速冲柱直至流出液 Ｍｏｌｉｓｈ反应
阴性。７０％乙醇洗脱至无色。收集洗脱液，浓缩干
燥，得干燥粉，计算收率及ＣＡＴ含量。结果见表３。
由表３可见，在 ｐＨ２８～５０，浸膏溶液的 ｐＨ
对ＣＡＴ含量和收率并无显著影响。但考虑到ｐＨ过
低时对ＨＩＶ病毒的药效可能会有所降低［２］，最后确
定吸附液用稀盐酸调ｐＨ４５。
２．４．３ 洗脱液乙醇浓度的考察 将已吸附好的树
表３ 吸附液ｐＨ考察 ％
ｐＨ ＣＡＴ 收率
２８ ３７９１ ５４８
３５ ３８４０ ６１８
４０ ３８０１ ６２４
４５ ３８５３ ５３８
５０ ３６８５ ５３２
５４ ３３３１ ４９８
脂先用去离子水快速洗脱直至无糖检测出，再分别
用１０％，２０％，３０％，４０％，４５％，５０％，７０％，９５％乙
醇梯度洗脱至无色，各浓度洗脱液浓缩得干燥粉末，
称重，ＨＰＬＣ测定ＣＡＴ含量。结果表明３０％至４５％
乙醇洗脱物中ＣＡＴ含量显著高于其他洗脱物，平均
含量为分别为１０％，２０％，５０％，７０％，９５％乙醇洗
脱物的３８，６，２９，６０倍，而且３０％至４５％的洗脱物
占总洗脱物质量的６２８％，达到了将ＣＡＴ富集的效
果。因此确定洗脱步骤为先水洗，再用 ２０％乙醇
洗，洗脱液均弃去，最后收集４５％乙醇洗脱物。结
果见图５。
图５ 洗脱液乙醇体积分数的考察
２．４．４ 洗脱液 ｐＨ的考察 将已吸附好的树脂四
份，分别依次用去离子水、２０％乙醇洗脱，然后分别
用ｐＨ３０，４０，５０，６０的４５％乙醇洗脱至无色，收
集洗脱液浓缩干燥得粉末。计算收率，ＨＰＬＣ测定
ＣＡＴ含量。结果表明在ｐＨ３０和５０时ＣＡＴ含量
较高。但ＣＡＴ在低 ｐＨ时的活性可能会有所降低，
所以最后选择洗脱液ｐＨ为５０。结果见表４。
表４ 洗脱液ｐＨ考察 ％
洗脱液ｐＨ ＣＡＴ 收率
３０ ４１３８ ３３５
４０ ３８５０ ３８７
５０ ４０７０ ４０６
６０ ３８８６ ４１１
２．４．５ 洗脱液体积的考察 将已吸附好的树脂先
用去离子水快速洗脱至无糖，再用２０％乙醇洗脱至
无色，然后用４５％乙醇洗脱，１０ｍＬ为单位收集洗脱
液，ＨＰＬＣ测定ＣＡＴ含量，并确定液体中所含固体量
·４５５１·
第３３卷第１３期
２００８年７月
中 国 中 药 杂 志
ＣｈｉｎａＪｏｕｒｎａｌｏｆＣｈｉｎｅｓｅＭａｔｅｒｉａＭｅｄｉｃａ
Ｖｏｌ．３３，Ｉｓｓｕｅ １３
Ｊｕｌｙ，２００８
（洗脱率＝ＷＶ／Ｗ总 ×１００％）。洗脱液体积的考察结
果见图６。由图６可见，１１０ｍＬ洗脱液即可将９３％
的吸附物洗脱下来。但是，当洗脱液体积大于 ５０
ｍＬ时，洗脱物中 ＣＡＴ含量开始降低。为了保证纯
化的效果，只收集前５０ｍＬ的洗脱液。
图６ 洗脱液体积的考察
２．４．６ 验证试验 预处理好的 ＬＫ００１树脂５ｍＬ，
装填于内径１０ｍｍ的色谱柱中备用。配制１０ｇ·
Ｌ－１的浸膏溶液５０ｍＬ，稀盐酸调 ｐＨ４５，０４５μｍ
微孔滤膜过滤，以３ＢＶ·ｈ－１的流速流过树脂柱，用
去离子水快速洗脱至 Ｍｏｌｉｓｈ反应为阴性（大约 １０
ＢＶ），再用 ２０％乙醇洗脱至无色，然后以 ５０ｍＬ
４５％乙醇洗脱，洗脱液除去乙醇５０℃浓缩干燥得粉
末。收率为３６％，ＣＡＴ含量为５８％。
３ 讨论与总结
在大孔吸附树脂的初步筛选中发现，ＬＫ００１树
脂可将 ＣＡＴ的含量提高２０多倍，经过工艺优化以
后，所得分离纯化物ＣＡＴ含量可进一步提高至原来
的４５倍，表明该工艺可有效去除杂质，富集有效成
分。
［参考文献］
［１］ ＭａｋｏｔｏＮ，ＭａｓａｓｈｉＴ，ＫｏｊｉＨ．Ｔｗｏｃａｆｅｉｃａｃｉｄｔｅｔｒａｍｅｒｓｈａｖｉｎｇ
ｅｎａｎｔｉｏｍｅｒｉｃｐｈｙｅｎｌｄｒｏｎａｐｈｔｈａｌｅｎｅｍｏｉｅｔｉｅｓｆｒｏｍＭａｃｒｏｔｏｍｉａｅｕ
ｃｈｒｏｍａ［Ｊ］．Ｐｈｙｔｏｃｈｅｍｉｓｔｒｙ，１９９０，（８）：２６４５．
［２］ ＫａｓｈｉｗａｄａＹ，ＮｉｓｈｉｚａｗａＭ，ＹａｍａａｇｉｓｈｉＴ，ｅｔａｌ．ＡｎｔｉＡＩＤＳａ
ｇｅｎｔｓ，１８．１ｓｏｄｉｕｍａｎｄｐｏｔａｓｓｉｕｍｓａｌｔｓｏｆｃａｆｅｉｃａｃｉｄｔｅｔｒａｍｅｒｓ
ｆｒｏｍＡｒｎｅｂｉａｅｕｃｈｒｏｍａａｓａｎｔｉＨＩＶａｇｅｎｔｓ［Ｊ］．ＪＮａｔＰｒｏｄ，１９９５，
５８（３）：３９２．
［３］ ＫａｓｈｉｗａｄａＹ，ＢａｓｔｏｗＫＦ，ＬｅｅＫＨ．Ｎｏｖｅｌｌｉｇｎａｎｄｅｒｉｖａｔｉｖｅｓａｓ
ｓｅｌｅｃｔｉｖｅｉｎｈｉｂｉｔｏｒｓｏｆＤＮＡｔｏｐｏｉｓｏｍｅｒａｓｅＩ［Ｊ］．ＢｉｏｏｒｇＭｅｄ
ＣｈｅｍＬｅｔ，１９９５，５（８）：９０５．
［４］ 买尔旦·马合木提，贺金华，堵年生．软紫草抗 ＨＩＶ的一种水
溶性成分及其提取物：中国，ＣＮ１９８２３０３Ａ［Ｐ］２００５１２１４．
［５］ 贺金华，买尔旦·马合木提．高效液相色谱法测定新疆软紫草
中咖啡酸四聚体的含量［Ｊ］．新疆医科大学学报，２００５，２８（５）：
４２９．
Ｐｈｙｓｉｃｏｃｈｅｍｉｃａｌｓｔａｂｉｌｉｔｙａｎｄｐｕｒｉｆｉｃａｔｉｏｎｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙｏｆ
ｃａｆｅｉｃａｃｉｄｔｅｔｒａｍｅｒｆｒｏｍＡｒｎｅｂｉａｅｕｃｈｒｏｍａ
ＬＩＹａｊｕａｎ１，ＷＡＮＧＪｕｎｎｉ２，ＳＨＡＸｉａｎｙｉ１，ＦＡＮＧＸｉａｏｌｉｎｇ２
（１．ＳｃｈｏｏｌｏｆＰｈａｒｍａｃｙ，ＦｕｄａｎＵｎｉｖｅｒｓｉｔｙ，Ｓｈａｎｇｈａｉ２０００３２，Ｃｈｉｎａ；
２．ＳｈａｎｇｈａｉＪｉｎｇａｎＰｈａｒｍａｃｅｕｔｉｃａｌＣｏ．，ＬＴＤ，Ｓｈａｎｇｈａｉ２０００４１，Ｃｈｉｎａ）
［Ａｂｓｔｒａｃｔ］ Ｏｂｊｅｃｔｉｖｅ：Ｔｏｐｕｒｉｆｙｃａｆｅｉｃａｃｉｄｔｅｔｒａｍｅｒ（ＣＡＴ）ｗｉｔｈｍａｃｒｏｐｏｒｏｕｓｒｅｓｉｎｏｎｔｈｅｂａｓｉｓｏｆｉｔｓｆｕｎｄａｍｅｎｔａｌｐｈｙｓｉｃｏ
ｃｈｅｍｉｃａｌｓｔａｂｉｌｉｔｙｒｅｓｅａｒｃｈ．Ｍｅｔｈｏｄ：ＴｈｅｃｈａｎｇｅｓｏｆＣＡＴｃｏｎｔｅｎｔｗｅｒｅｃｏｍｐａｒｅｄｂｙＨＰＬＣｍｅｔｈｏｄｂｅｆｏｒｅａｎｄａｆｔｅｒｔｈｅｐｕｒｉｆｉｃａｔｉｏｎ
ｐｒｏｃｅｓｓ，ｏｒｗｈｉｌｅｏｔｈｅｒｃｏｎｄｉｔｉｏｎｓｗｅｒｅａｌｔｅｒｅｄ．Ｒｅｓｕｌｔ：ＬＫ００１ｗａｓｔｈｅｂｅｓｔｏｎｅａｍｏｎｇ７ｋｉｎｄｓｏｆｍａｃｒｏｐｏｒｏｕｓｒｅｓｉｎｉｎｒｅｇａｒｄｏｆｐｕｒｉｆ
ｙｉｎｇａｂｉｌｉｔｙ．Ｔｈｅｏｐｔｉｍｕｍａｂｓｏｒｂｉｎｇｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙｗａｓｔｈｅｓｏｌｕｔｉｏｎｃｏｎｃｅｎｔｒａｔｉｏｎａｔ１０ｇ·Ｌ－１，ｐＨａｔ４５，ａｎｄｔｈｅｆｌｏｗｒａｔｅａｔ３ＢＶ·
ｈ－１．Ｔｈｅｂｅｓｔｅｌｕｔｉｎｇｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙｗａｓ４５％ ｅｔｈａｎｏｌａｓｅｌｕｔｉｎｇａｇｅｎｔ，ｐＨａｔ５０，ｅｌｕｔｉｎｇｖｏｌｕｍｅａｔ５０ｍＬａｆｔｅｒａｐｐｌｙｉｎｇｓｕｐｅｒｐｕｒｉｆｉｅｄ
ｗａｔｅｒａｎｄ２０％ ｅｔｈａｎｏｌ．Ｔｈｅｙｉｅｌｄｏｆｐｒｏｄｕｃｔｗａｓ３６ｐｅｒｃｅｎｔ，ａｎｄｔｈｅａｃｔｉｖｅｃｏｍｐｏｕｎｄＣＡＴｗａｓ５８ｐｅｒｃｅｎｔｉｎｔｈｅｐｒｏｄｕｃｔ．Ｃｏｎｃｌｕ
ｓｉｏｎ：ＭａｃｒｏｐｏｒｏｕｓｒｅｓｉｎＬＫ００１ｉｓｅｆｅｃｔｉｖｅｉｎｅｎｒｉｃｈｉｎｇＣＡＴｆｒｏｍｔｈｅｃｒｕｄｅｅｘｔｒａｃｔｓ，ｔｈｕｓｔｈｉｓｍｅｔｈｏｄｏｆｐｕｒｉｆｉｃａｔｉｏｎｉｓａｄｖｉｓａｂｌｅ．
［Ｋｅｙｗｏｒｄｓ］ ｃａｆｅｉｃａｃｉｄｔｅｔｒａｍｅｒ；ｍａｃｒｏｐｏｒｏｕｓｒｅｓｉｎ；ＨＰＬＣ；ｓｔａｂｉｌｉｔｙ；ｐｕｒｉｆｉｃａｔｉｏｎ
［责任编辑 鲍 雷］
·５５５１·
第３３卷第１３期
２００８年７月
中 国 中 药 杂 志
ＣｈｉｎａＪｏｕｒｎａｌｏｆＣｈｉｎｅｓｅＭａｔｅｒｉａＭｅｄｉｃａ
Ｖｏｌ．３３，Ｉｓｓｕｅ １３
Ｊｕｌｙ，２００８