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Application of multiplex allele-specific PCR for authentication of Panax Ginseng and P. quinquefolius

利用多重等位基因特异PCR鉴别人参、西洋参



全 文 :GeneticdiversityofCoptischinensisgermplasmbasedonISSRanalysis
CHENDaxia,LILongyun,PENGrui,QUXianyou
(ChongqingAcademyofChineseMateriaMedica,Chongqing400065,China)
[Abstract] Objective:TodeteminethegeneticdiversityofCoptischinensisMethod:32germplasmicresourcesofCchinen
siswereanalyzedbyISSRmolecularmarkersTomakeupthesystematicdiagramofgeneticrelationshipbyTREECONWsoftwareand
clusteredbyUPGMAmethodResult:Atotalof106ISSRbandswerescored,amongwhich51werepolymorphicbandsTheaverage
percentageofpolymorphicbandswas481%Geneticsimilaritycoeficientwerechangedfrom08258to09351Byclusteranaly
sis,thegeographicaldistributionisnotveryobvious,butitwasalsoshowedsomeoftheCchinensisfromthesameregionwereinthe
samegroupwhichpresentedthelawofgeographicaldistributioninthetestedmaterialsConclusion:Diferentgermplasmsdiversityof
CchinensisislowandtherelationshipofCchinensisisclose
[Keywords] Coptischinensis;ISSR;germplasmicresources;geneticdiversi
[责任编辑 张宁宁]
[收稿日期] 20060119
[通讯作者] 黄璐琦,Tel:(010)64014411,Email:huangluqi
@263.net
利用多重等位基因特异 PCR鉴别人参、西洋参
崔光红,唐晓晶,黄璐琦
(中国中医科学院 中药研究所,北京 100700)
[摘要] 目的:查找并发现参类药材的SNP位点,利用多重等位基因特异PCR同时鉴别人参、西洋参。方法:
查找GenBank上已收载的参类药材序列,进行比对分析,根据人参、西洋参的SNP位点设计引物,对PCR反应体系
进行优选。在此基础上,对20个不同来源的人参、西洋参样品进行PCR扩增,根据各自的特异条带进行鉴别。结
果:当退火温度为66℃时,出现249bp条带的为人参,1049bp条带的为西洋参。该鉴别反应特异性高、重复性
好,能在同一反应中准确鉴别人参、西洋参。结论:多重等位基因特异PCR能成功地对人参、西洋参进行鉴别,在中
药材分子鉴定中具有推广应用价值。
[关键词] 人参;西洋参;多重等位基因特异PCR
[中图分类号]S567 [文献标识码]A [文章编号]10015302(2006)23194004
  随着参类药材rDNA、叶绿体基因的大量测序,使
其物种间单核苷酸的变异,即单核苷酸多态性(single
nucleotidepolymorphism,SNP)的发现成为可能,ZhuS
等[1]已成功地应用MARMS鉴别人参Panaxginseng、
西洋参Pquinquefolius等几种同属参类药材,但对于
每种药材的鉴别均需要2对引物同时进行PCR反应
后才能判断。本研究拟探索更为简便的方法,应用多
重等位基因特异PCR(multiplexalelicspecificpoly
merasechainreaction,MASPCR)[2],在同一PCR反应
中同时检测人参、西洋参各自的SNP位点,以达到准
确鉴别人参、西洋参的目的。在此基础上,对反应体
系中的主要影响因素如Taq酶用量、Mg2+浓度、模板
浓度等进行考察,为等位基因特异 PCR在中药材鉴
别中的应用提供依据。
1 材料和方法
11 材料
人参、西洋参药材各10批样品,分别为新鲜材
料、市售干燥药材、饮片和粉末制剂(见表1),样品
经黄璐琦研究员鉴定为人参 Pginseng和西洋参
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    中 国 中 药 杂 志
ChinaJournalofChineseMateriaMedica
       
Vol31,Issue 23
December,2006
Pquinquefolius的根,现存放于中国中医科学院中 药研究所标本室。
表1 样品来源
No 样品 状态 来源 No 样品 状态 来源
Ren1 人参 鲜品 吉林集安 Xi1 西洋参 鲜品 北京怀柔
Ren2 人参(大马牙)1) 鲜品 吉林集安 Xi2 西洋参 药材 北京同仁堂,3.80元/g
Ren3 人参(二马牙)1) 鲜品 吉林集安 Xi3 西洋参 药材 北京同仁堂,1.80元/g
Ren4 人参(黄果)1) 鲜品 吉林集安 Xi4 西洋参 药材 北京同仁堂,0.98元/g
Ren5 人参(长脖)1) 鲜品 吉林集安 Xi5 西洋参 药材 北京同仁堂,产地美国
Ren6 人参 药材 北京同仁堂 Xi6 西洋参 药材 北京同仁堂,产地加拿大
Ren7 人参(参须) 药材 北京永安堂 Xi7 西洋参 药材 北京永安堂
Ren8 人参 药材 河北安国药市 Xi8 西洋参 标本 中药所标本室
Ren9 人参 标本 中药所标本室 Xi9 西洋参 饮片 北京华颐中药制药厂
Ren10 人参 粉末 自制 Xi10 西洋参 饮片 江西樟树中药饮片厂
  注:1)人参农家品种
12 基因组DNA的提取
参照文献[3]方法。
13 SNP的确定和引物设计
查找 GenBank中参类药材的已知序列,利用
DNAMAN进行多序列比对。发现人参、西洋参在
ITS,18S,matK基因上均存在种间 SNP,如 ITS237
bp处,人参为A,西洋参等其他参类药材的为G,411
bp处西洋参为T,其他为 C[4];18S基因501bp处,
人参为C,其他参类药材如西洋参、竹节参、三七、越
南人参等均为G;matK基因917bp处,西洋参为A,
而其他参类药材均为T。本研究选择已有一定研究
基础的18S和 matK基因上的 SNP位点设计引物。
人参引物PgS481F5′ATAACAATACCGGGCTG
ATTC3′,PgS712R 5′GC CAGTTAAGGACAG
GAG3′,位于18S,其中引物 PgS481F3′端的 C为人
参的SNP位点;西洋参引物PgjqtK1966R5′GATTT
CTGCATATACGCCCAAATT3′,PqtK896F5′
GGAAAATGCGGGTTATGACAAA3′位于 matK基因
上,PqtK896F的3′端为西洋参的 SNP位点[1]。引
物由上海Sangon合成。
14 PCR扩增
PCR反应体系为 25μL,其中 TrisHCl(pH
83)10mmol·L-1,KCl50mmol·L-1,Mg2+15
mmol·L-1,dNTP015mmol·L-1,Taq1U(Takara
ExTaq),引物各015μmol·L-1,模板DNA50ng。
扩增在ABI9700上进行,程序为94℃预变性5min
后,开始94℃30s,66℃1min,共40个循环,72℃
后延伸5min,4℃保温结束反应。取5μL反应产
物在含 EB的15%的琼脂糖凝胶上电泳,在 SYN
GENE型凝胶成像系统下观察、拍照。
2 结果
21 实验条件的确定
多重 PCR成功的关键是引物特异性好,单一
PCR就能得到很好的效果,无非特异性条带出现。
实验所用引物能满足上述要求,当多重PCR的退火
温度为66℃时,人参出现249bp条带,西洋参出现
1049bp条带,无非特异性条带产生。在此基础上,
为明确 PCR反应体系中各成分对 MASPCR的影
响,对 Taq酶用量、镁离子浓度、模板浓度等因素进
行了考察。
211 最适Taq酶用量的确定 25μL体系中Taq
酶量分别设为025,05,1,15,2U,结果 Taq酶量
分别为025,05U时,人参、西洋参的特异条带不
清晰;Taq酶量分别为1,15U时,人参、西洋参的
特异条带清晰;但当Taq酶量达到2U时,人参出现
了非特异条带(图1A)。因此,确定25μL体系中
使用1U的Taq酶量最为合适。
212 最适Mg2+浓度的确定 Mg2+浓度分别设定
为05,10,15,20,30mmol·L-1,结果 Mg2+浓
度过低(05mmol·L-1)时,人参、西洋参均没有扩
增。Mg2+为10~15mmol·L-1时,人参、西洋参
扩增结果好(图1B)。当

20mmol·L-1时,人参
出现了非特异带。因此,Mg2+浓度应控制在10~
15mmol·L-1。
213 最适 dNTP浓度的确定 dNTP浓度分别设
定为01,02,03,04,05mmol·L-1,结果 dNTP
为01,02mmol·L-1时,人参、西洋参出现条带,
而高于 03mmol·L-1时,两者均没有条带(图 1
C),表明 dNTP浓度高后抑制 PCR扩增。因此,将
dNTP浓度定为015mmol·L-1。
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图1 人参、西洋参不同PCR反应条件的电泳图
A不同Taq酶用量;B不同Mg2+浓度;C不同dNTP浓度;D
不同引物浓度;E不同模板;F不同循环次数;A~E中,样品
1~5为人参,6~10为西洋参;F中1,2,5~7为人参,3,4,8~10
为西洋参;M1200,900,750,500,250,100bpDNAmarker;A中
从左至右,25μL反应体系中分别为025,05,1,15,2UTakara
ExTaq;B中从左至右,Mg2+浓度分别为 05,1,15,20,30
mmol·L-1;C中从左至右,dNTP浓度分别为01,02,03,04,
05mmol·L-1;D中从左至右,引物浓度分别为01,02,03,
04,05μmol·L-1;E中从左至右,25μL反应体系中模板量分
别为20,50,100,150,200ng;F中1~4为35个循环,5~10为
30个循环
214 最适引物浓度的确定 引物浓度分别设定
为01,02,03,04,05μmol·L-1。结果 01~
05μmol·L-1对PCR结果没有影响(图1D)。
215 最适模板量的确定 25μL体系中模板量分
别为20,50,100,150,200ng,结果人参20~200ng均
扩增出带,而西洋参当模板量为200ng时,条带不清
晰(图1E)。因此,模板量在20~200ng较合适。
216 最适循环数的确定 将 PCR循环数分别设
为35个和30个循环,结果35个循环时条带均较
好。30个循环时,有一个西洋参样品的条带较不清
晰(图 1F)。由于鲜品、药材以及饮片中所含的
DNA的质量不同,如饮片和粉末制剂中,DNA严重
降解,因此,可以根据材料的来源确定循环次数,如
为新鲜样品,30个循环就能达到检测的效果,而当
为DNA严重降解的材料时,需要适当提高循环数。
22 重复性试验
按上述确定的最佳条件进行组合,对3批Taka
raexTaq酶进行实验,结果均十分稳定。表明该条
件的重复性好。
23 适用范围试验
人参在长期的栽培过程中,产生了不同的农家
品种,如大马牙、二马牙、黄果和长脖[3]。西洋参原
产地在美国、加拿大,自从成功引种到我国后,已有
不少地区开始大规模栽培。根据西洋参品质的不
同,其价格表现出极大的差异,如在同仁堂药店就有
每克380,180,098元不等的西洋参出售。同时
西洋参还被大量的加工成饮片,从而加大了人参、西
洋参鉴别的难度。因此,对不同药材来源,如不同产
地、不同价格、不同加工方式以及不同储藏时间的药
材进行正确鉴别,是保证临床用药安全的第一步。
为此,本试验选用人参的4个农家品种、不同药店出
售药材、标本以及粉末和西洋参的不同产地、不同价
格药材、饮片以及标本作为实验材料,具有广泛的代
表性。对收集到的代表性样品各10批进行检测,结
果人参均能稳定扩增249bp条带,西洋参均能扩增
1049bp条带(图2)。
图2 人参、西洋参MASPCR鉴别电泳图
1~10人参;11~20西洋参(分别对应表1中的各编号);M1
200,900,750,500,250,100bpDNAmarker
3 讨论
单核苷酸多态性(SNP)是指在基因组水平上由
单个核苷酸的变异所引起的DNA序列多态性,以其
分布广泛、数量众多、易于批量检测等优点而成为最
具前途的第3代遗传标记。在物种鉴定、物种起源
与亲缘关系、遗传育种等领域得到了广泛的应用,特
别是在区分近缘种的研究中非常有效[5]。目前,检
测SNP的技术大量涌现,如等位基因特异 PCR法、
Taqman探针技术、分子信标等[6],其中等位基因特
异PCR(alelespecificPCR,ASPCR),又称为 ARMS
(amplification refractorymutation system),PASA
(PCRamplificationofspecificaleles),ASA(alele
specificamplification)是应用最广泛的一种方法,主
要通过引物3′端碱基与模板的严格配对来实现对
SNP位点的检测[1]。多重 PCR(multiplexPCR)则
是同时加入几对引物,使几个PCR在同一反应体系
中完成[7]。在上述2种方法的基础上,作者建立了
人参、西洋参的多重等位基因 PCR,在一个 PCR反
应过程中同时检测人参、西洋参的 SNP位点,达到
同时特异性鉴别人参、西洋参的目的。
由于只存在一个碱基的变异,因此,引物设计、
PCR反应体系、循环参数等均直接影响PCR扩增的
效果。适宜的反应体系和反应条件是获得良好扩增
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效果的关键。本研究从 Taq酶用量、dNTP浓度、
Mg2+浓度、模板浓度和循环参数等方面,对人参、西
洋参的2个SNP检测条件进行了摸索,发现特异等
位基因PCR反应条件属于严紧型,高 pH、低盐浓
度、低Mg2+浓度、模板DNA、引物浓度和Taq酶用量
均不宜太高,否则扩增反应易出现假阳性,造成误
判。有研究认为在 SNP检测过程中,高保真 DNA
聚合酶是成功的关键[8],作者的试验也得到了同样
的结果,发现不同品质的 Taq酶有可能导致假阳性
结果的产生,因此,在推广应用过程中需要设置阳性
对照药材,以保证所用Taq酶和体系的可靠性。
本研究从 SNP的发现途径、引物设计、PCR反
应体系等方面全面证实了等位基因特异 PCR在人
参、西洋参药材鉴别中的可行性和注意事项。随着
大量中药材基因组测序结果的出现,寻找和发现种
间以及种内SNP,将在解决中药材近缘混淆品种、多
来源品种以及道地药材的鉴定问题上提供广阔的空
间。
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ApplicationofmultiplexalelespecificPCRforauthentication
ofPanaxGinsengandPquinquefolius
CUIGuanghong,TANGXiaojing,HUANGLuqi
(InstituteofChineseMateriaMedica,AcademyofChineseMedicalSciences,Beijing100700,China)
[Abstract] Objective:SearchingandidentifyingSNPinPanaxspeciesandusingmultiplexalelespecificPCR(MASPCR)to
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sequences,identifySNPofPginsengandPquenquefoliumDesignalelespecificprimersforPginsengandPquenquefolium,op
timizethePCRreactionsystemincludingtheusageamountofTaq,dNTP,primer,etcOptimizedsystemwasperformedwiththetotal
DNAof20diferentsourcesofPginsengandPquenquefoliumResult:Whentheannealingtemperaturewas66℃,thetemplate
DNAofPginsengcouldbeamplified249bpbandwhereasPquenquefoliumamplified1049bpbandConclusion:TheMASPCR
havetheadvantagesofhighlyspecific,goodreproducibilityandcouldbeidentifyPginsengandPquenquefoliuminthesamePCR
tubeItwasapotentialmethodtouseinthemolecularidentificationofothermeteriamedica
[Keywords] PanaxGinseng;Panaxquinquefolius;multiplexalelespecificPCR
[责任编辑 张宁宁]
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