全 文 ：中草菊 ChineseTraditionalandHerbalDrugs第38卷第1期2007年1月·77·
越少，说明在没有外源性脂质提供的条件下，细胞内
源性胆固醇合成受抑制。本实验结果显示，丹参提取
物能明显抑制内源性胆固醇合成，这可能是其调血
脂的作用机制之一。
降低血浆中的胆固醇，一方面可以通过减少胆
固醇的合成，另一方面也可以促进胆固醇转化为胆
汁酸。胆汁酸是胆固醇主要的代谢去路，胆固醇与胆
汁酸形成的乳糜微团又是其排出的主要方式，正常
人每天合成胆固醇的总量40％左右在肝内转化为
胆汁酸。在这一酶促过程中，胆固醇7a一羟化酶
(CYP7A)是其限速酶。
CYP7A属于细胞色素P450酶系，存在于细胞
内质网膜上，参与内源性化合物的氧化代谢。主要受
氧化类固醇和胆汁酸的调控，从而诱导或抑制其表
达，调控机制发生在CYP7A的转录水平，主要涉及
到一些核受体，如肝X受体[-liverXreceptor，LXR
(alpha)]和类法尼酯受体(farnesoidXrec pt r，
FXR)等，CYP7A在维持胆固醇代谢内环境中发挥
着重要作用[7”]。本实验结果显示，丹参提取物对增
加CYP7AmRNA的表达有明显作用，提示通过增
加CYP7AmRNA的表达，促进胆固醇转化为胆汁
酸，从而降低血浆中的胆固醇，这可能也是其调血脂
机制之一。
消瘀片具有良好的调血脂作用，尤其是丹参提
取物，对调节胆固醇代谢十分重要，它可抑制内源性
胆固醇的合成和增加胆固醇转化为胆汁酸。
References：
[1]XieML，GuZL，ChenKJ，eta1．Therapeuticeffectsof
XiaoyuTabletsonthehyperlipidemicrabb tsEJ]．ChinJ
ModApplPharm(中国现代应用药学)，1998，i5(6)：15一
18．
E23XieML，GuZL，ChenKJ，甜a1．Studiesonthe
hypolipidemiceffectofXiaoyuTabletsin hyperlipidemie
rabbitsandrats[J]．ChinrraditHerbDrugs(中草药)，
1998，29(3)：178—181．
[3]XieML，GuZL，ChenKJ，eta1．Studyoftheffectsof
XiaoyuTabletsontheregressionofatheroscleroticplaqueof
thetabbitabdominalaorta[J]．ChinJGontol(中国老年学
杂志)，2000，20(6)：359—361．
r4]XueJ，XieML，GuZL．Studiesontheffectiveactive
ingredientsofbloodlipid—regulationfromthextractsof
RadixSaIviaMiltiorrhizafRSM)andFructusCrataegi
(FC)byorthogonalexperimentaldesignEJ]．SuzhOUUniv
J：MedSci(苏州大学学报：医学版)，2004，23(3)：337—
340．
r5]MichihiroF，MasuoN，YasukoM。eta1．HepaticLDL
receptormRNAinratsisincreasedbydietarymushroom
(Agaricusbisporus)fiberandsugarbeetfiber[J]．JNutr．
2000，130：2151-2156．
[6]SunXM，CaiHJ，WangN，eta1．UseamphoterinBcell
modeltodeterminethecholesterolbiosynthesisinhibitor[J]．
ChinJIntegrT aditChinWestMed(中国中西医结合杂
志)，1989，9：604—606．
[7]PeetDJ，TurleySD，MaW，ela1．Cholesterolandbileacid
metabolismarempairedinmicelackingthenuclearoxysterol
receptorLXRalpha[J]．Cell，1998，93：693—704．
[8]NiesorEJ，FlachJ，Lopes—AntoniI，eta1．Thenuclear
receptorFXRandLXRalpha：potentialtargetsforthe
developmentof drugsaffectinglipidmetabolismand
neoplasticdiseases[J]．CurrPharmDes，2001，7：231—259．
[9]LuTT，MakishimaM，RepaJJ，eta1．Molecularbasisfo
feedbackregulationofbileacidsynthesisbynuclearreceptors
[J]．MolCell，2000，6：507—515．
人参总皂苷体外定向诱导CD34+细胞分化为粒系血细胞的研究
王建伟，王亚平，王莎莉，姜 蓉
(重庆医科大学基础医学院重庆市生物化学与分子药理学重点实验室，重庆400016)
摘 要：目的 研究人参总皂苷(TSPG)协同造血生长因子对CD34+细胞体外定向诱导分化为粒系血细胞的影
响。方法 应用阴性磁性分选策略，以Stemsepl”系统从正常人骨髓细胞中分离CD34+造血干／7祖细胞(HSC／
HPC)，通过甲基纤维素半固体培养法检测TSPG诱导CD34+HSC／HPc向粒系祖细胞集落(CFU—GM)增殖与
分化的能力；在SCF+IL一3+GM—CSF+G—CSF(SIGG)液体培养体系中加入不同剂量的TSPG，检测对CD34+
HSC／HPC增殖形成CFU—GM的影响以及CD33+细胞比例的变化。结果TSPG(10～50ug／mL)均能提高
CD34+细胞形成CFU—GM的集落产率，以TSPG20ug／mL效果最为明显；不同质量浓度的TSPG协同造血生长
因子在液体培养体系中诱导CD34+细胞2周，观察粒系血细胞的分化，TSPG10～70ug／mL均可不同程度地提高
细胞总数、CFU—GM扩增倍数及CD33+细胞比例，TSPG20ug／mL是液体培养诱导CD34+细胞向粒系分化的最
佳质量浓度。结论TSPG协同造血生长因子能促进CD34+细胞定向诱导分化为粒系血细胞。
收稿日期：2006—05—22
基金项目：国家自然科学基金资助项目(编号38670880，30472253)
作者简介：王建伟(1968一)，女，副教授，博士，硕士生导师，重庆市科技项目与科技成果评审专家，主要研究方向为天然中药对造血的调
控。Tel：(023)68485087E—mail：wangjianwei88@sohu．corn
万方数据
中草药 ChineseTraditionalandHerbalDrugs第38卷第1期2007年1月
关键词：人参总皂苷；CD34+细胞；分化
中图分类号：R285．5 文献标识码：A 文章编号：0253—2670(2007)01—0077一04
TotalsaponinsofPanaxginsengi ducingCD34+cellstodifferentiate
intogranulocytopoieticlineageinvitro
WANGJian—wei，WANGYa—ping，WANGSha一1i，JIANGRong
(ChongqingKeyLaboratoryofBiochemistryandMolecularPh macology，SchoolofBasicMedicine，
ChongqingUniversityofMedicalSciences，Chongqing400016，China)
Abstract：ObjectiveToinvestigatetheffectofrecombinantbetweenh matopoieticgrowthfactors
andtotalsaponinsofPanaxginseng(TSPG)ongranulocytopoieticdifferentiationofpurifiedhuman
CD34+cellsderivedfromhumanbonemarrowcells．MethodsAsterilizedseparationsystemfor
purificationofCD34+hematopoieticstem／progentiorells(HSC／HPC)wasestablishedbymeansof
StemsepⅢaccordingtothestrategyofnegativeselectiononimmunomagneticseparation．Thecapacityof
variousconcentrationsofTSPGinducingCD34+cellstodifferentiateintoCFU—GMcellswasdetectedby
methylce luloseassays stems；CD34+cellswerecommittedlydifferentiatedw thvariouscombinationof
cytokinesinliquidculturesystemsandthexpandedcellnumber，CD33+cellratioandgranulocytopoietic
progenitorcellnumberweredetected：variousconcentrationsofTSPGwerethenaddedintoliquidculture
systemscontaingingSCF+IL一3+GM—CSF+G—CSF(SIGG)，theelevationrateonproliferationofCD34+
cellsandtheformationofCFU—GMwereobservedandtheratioofCD33+cellsweree timated．Resuits
TSPG(10—50／生g／mL)couldincreasethecolonyyieldofCFU—GM，TSPG(20弘g／mL)didbest．Atthe
variousconcentrationsofTSPGynergizedwithematopoieticgrowthfactorsongranulocytopoietic
differentiationofCD34+cellsfortWOweeksinliquidculturesystems，TSPG(1O一70／19／mL)could
increaseth xpandedcellnumber，theamplificationmultipleoftotalCFU—GM，andCD33+cellratio；
TSPG20／19／mLwasidentifiedasthemostpotentialconcentrationforthegranulocytopoietic
differentiationofCD34+cellsin iquidculturesystem．ConclusionTSPGmaypromoteCD34+cellsto
proliferateandifferentiatetogranulocytopoieticlineagebysynergismw thhematopoieticgrowthfactors．
Keywords：thetotalsaponinsofPanaxginsengC．A．Meyer(TSPG)；CD34+cells；differentiation
人参是祖国传统医学的补气要药，人参皂苷是
人参中主要有效成分。既往研究表明[1卅1人参总皂
苷(totalsaponinsofPanaxginseng，TSPG)是人
参促进血细胞生成的有效成分。TSPG在体内外均
能刺激造血祖细胞的增殖分化r2“]。本研究采用造血
细胞工程技术，以分离纯化的CD34+造血于／祖细
胞(CD34+HSC／HPC)为模型，探讨了TSPG协同
造血生长因子定向诱导对CD34+细胞分化为粒系
血细胞的作用，旨在进一步阐述人参补气生血的现
代生物学机制。
1材料与方法
1．1骨髓细胞：取胸外科无血液疾病患者切除的肋
骨骨髓，淋巴细胞分离液(Ficoll，相对密度1．077)
分离骨髓单个核细胞(MNC)，RPMI一1640培养液
洗涤，用4号针头制备单细胞悬液，并计数MNC。
1．2药物：TSPG，重庆中药研究所惠赠，质量分数
95％以上，IMDM培养液配成1mg／mL的工作
液，正压滤过除菌。
1．3 主要试剂及材料：RPMI一1640、IMDM培养基
(Gibeo公司)，胎牛血清(FBS，Sigma公司)，马血
清(HS，军事医学科学院提供)，CD33+抗体(Santa
Cruz公司)，干细胞因子(SCF)、白细胞介素一3(IL一
3)、粒一巨噬细胞集落刺激因子(GM—CSF)、粒细胞
集落刺激因子(G—CSF)(军事医学科学院提供，使
用终质量浓度分别为100、2、50、20ng／mL)。
1．4 CD34+细胞的分离纯化[5]：利用StemsepTM阴
性分选系统进行分离，将4×107～8×107骨髓
MNC悬浮于含2％FBS的PBS缓冲液中，加入
antibodycocktail100／*L，0℃、30min，再加入磁性
胶体60弘L，0℃、30rain。将标记后的骨髓MNC加
入磁场中的分离柱内，缓冲液冲洗，从流出道收集
CD34+细胞群。经流式细胞仪FACSVantage
(BectonDickinsonImmunocytometrySystem，美
国)测定其纯度。
1．5 TSPG协同造血生长因子对CD34+细胞增殖
分化的影响：IMDM培养基中含12．5％HS、
12．5％FBS、5×103／mLCD34+细胞及重组细胞因
子；对照组，含细胞因子组合SCF+IL一3+GM—
万方数据
中草喃ChineseTraditionalandHerbalDrugs第38卷第1期2007年1月·79·
CSF+G—CSF；加药组，在以上细胞因子组合中加入
不同剂量的TSPG，终质量浓度分别为10、20、50、
70、100,ug／rnL。细胞因子每48h加入体系1次，均
连续加入5次；TSPG每周加入1次。上述体系接种
于24孔板中，每孔1mL，复种3孑L，37℃、5％CO。
及饱和湿度下培养2周。每周半量换液，取出细胞用
于细胞总数、CD33+细胞比例及CFU—GM祖细胞
检测。
1．6 CD33+细胞的检测：将扩增的细胞经PBS洗
涤后，用直接荧光法标记行流式细胞仪检测，每个样
品分析细胞数≥1×104个，用PC—LysysⅡ软件在
VAX3300微机(Digital，美国)上进行分析。
1．7 粒系造血祖细胞(CFU—GM)培养：体系中含
30％HS、10％BSA、SCF、IL一3、GM—CSF、G～CSF
及在此基础上分别加入1×104／mLCD34+细胞、
5×104／mL扩增细胞，IMDM及0．9％甲基纤维
素。药物组为在CD34+细胞培养体系中加入不同质
量浓度的TSPG(质量浓度同前)，以不加TSPG为
对照组。所有培养均在96孔板(每孔0．2mL，复种
3～5孔)，37℃、5％C0。及饱和湿度下培养14d，
计数CFU—GM。
1．8统计学方法：显著性分析用t检验。
2结果
2．1 骨髓CD34+细胞的分选、纯化与鉴定：骨髓
MNC中仅有少量细胞表达CD34+抗原，CD34+
HSC／HPC仅占1～3％，用StemsepTM系统分离纯
化可得到高纯度的CD34+细胞，经免疫细胞化学和
流式细胞术检测，其纯度为92％～94％。
2．2 TSPG诱导CD34+细胞定向分化为粒系血细
胞的作用：不同质量浓度的TSPG协同造血生长因
子诱导CD34+细胞2周，结果显示，TSPG10～70
,ug／mL均可不同程度地提高细胞总数、CFU—GM
扩增倍数及CD33+细胞比例，TSPG20／zg／mL是
液体培养诱导CD34+细胞向粒系分化的最佳质量
浓度，但TSPG100t-g／mL对细胞总数的增加有所
抑制，与对照组相比差异显著(表1)。
2．3 TSPG对CD34+细胞形成CFU—GM能力的
影响：以甲基纤维素半固体培养法检测不同剂量
TSPG诱导CD34+HSC／HPC向CFU—GM增殖能
力，结果TSPG(10～50ptg／mL)均能提高CD34+
细胞形成CFU—GM的集落产率，以TSPG20vg／
mL效果最为明显(P<0．01)(表2)。
3讨论
利用不同的细胞因子组合，使造血干／祖细胞按
表1 TSPG对人骨髓细胞中CD34+细胞定向诱导分化为
粒系血细胞的影响(髓一9)
Table1 EffectofTSPGongranulocytopoieticdifferen—
tiationofpurifiedCD34+cellsderivedfrom
humanbonemarrowcells(咒一9)
O(对照)
10
20
50
70
100
与对照组比较：’P<0．05一P+P<0．05。’P表2 TSPG对CD34+细胞形成CFU—GM的影响(押一12)
Table2 EffectofTSPGonCFU—GMcolony
formationofCD34+cells(以一12)
TSPG／(pg·mL一1)CFU—GM数／1×104个CD34+细胞
0(对照)
10
20
50
70
100
40．83±5．879
46．50士4．722‘
52．83士7．322+。
48．67±4．227。
43．50土3．082
41．33士3．204
与对照组比较：‘P。P<0．05。。P照要求向不同的方向分化，从而生产出所需的用于
临床治疗的细胞产品。在造血干细胞移植和大剂量
化疗、放疗后患者将出现一段较长时间的粒细胞减
少和血小板减少，由此所造成的感染及出血往往成
为治疗失败的直接原因。目前针对这一现象往往采
用常规的抗感染及抗出血治疗，其结果是患者治疗
费用增高而疗效常不尽人意。虽然目前尚不清楚造
血干细胞产物中哪一部分群体与早期的造血恢复有
关，利用富集的CD34+细胞的研究提示可进行造血
重建的细胞存在于这一非成熟的细胞群体中。这样，
治疗这一细胞缺乏期的一个策略就是提供部分分化
的粒细胞和／或巨核细胞的前体细胞，这些细胞可在
输入后很快成熟，从而发挥其生理功能。利用这些扩
增的造血细胞作为目前造血千细胞治疗的补充方法
将会减轻或消除这些细胞减少症。
一项研究报道[6]，回输培养3周后的外周血成
熟中性粒细胞可获得暂时的中性粒细胞恢复。这些
数据与其他的利用G—CSF动员后的异基因供者粒
细胞输注的研究结果相一致。利用PIXY321(IL一3／
GM—CSF)扩增CD34+细胞产生的中性粒细胞前体
细胞在1010的剂量下没有不良反应，还发现给予患
■
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万方数据
·80· 中草药ChineseTraditionalandHerbalDrugs第38卷第1期2007年1月
者更大剂量的培养细胞可缩短中性粒细胞缺乏的时
间r7]。研究显示体外培养获得的中性粒细胞是有生
理功能的r8]。“生产”用于增加造血恢复细胞的争论
焦点在于是否能“生产”出有益于临床适合数量的细
胞。并且，维持这一数量的最佳方法是应该持续地产
生成熟的细胞，而不是一次大量地输入成熟细胞。所
以，目前人们仍在努力探索提高中性粒细胞“生产”
量的方案。本室多年来一直关注中医药，尤其是
TSPG对血发生的影响，研究表明：TSPG是人参促
进造血的主要成分。对于TSPG能否促进CFU—
GM的增殖，文献报道结论各异。黄干等[13认为
TSPG对小鼠CFU—GM的集落产率无明显影响；
但王勇等[93同样以小鼠为实验对象，却表明TSPG
对CFU—GM的刺激作用与剂量有关，TSPG在3
,ug／mL时对CF．U—GM的增殖的影响不明显，而当
质量浓度增高到20pg／mL时，CFU—GM的集落产
率明显提高；高瑞兰等E10]研究表明，人参皂苷能刺
激正常人和再障患者CFU—GM增殖；王莎莉等[3]
实验结果表明：在有外源性HGF(IL一3、Epo、GM—
CSF)存在的条件下，TSPG(20～100／19／mL)在
体外对人骨髓CFU—GM的增殖有显著促进作用，
经TSPG(50／-g／mL)诱导制备的人骨髓基质细
胞、胸腺细胞、脾细胞、血管内皮细胞、单核细胞培养
上清液同样可以促进CFU—GM的增殖，并且从调
控机制上进行了探讨，推测TSPG可通过直接和／或
间接途径刺激人骨髓细胞合成GM—CSFRa，使细胞
膜表面的GM—CSFRa数量增加，结合更多的GM—
CSF，还可以直接和／或间接地促进GM—CSFR(x和
Shc可逆磷酸化，从而调控GM—CSFR介导的信号
转导过程，最终促进CFU—GM的增殖分化。
基于以上的研究基础，直接以分离纯化的人骨
髓CD34+细胞为靶细胞，探讨TSPG对CD34十细
胞向粒系细胞分化的影响。本研究观察到，TSPG
10～70pg／mL均可不同程度地提高细胞总数、
CFU—GM扩增倍数及CD33+细胞比例，TSPG20
／-g／mL是液体培养诱导CD34+细胞向粒系分化的
最佳质量浓度。以甲基纤维素半固体培养法检测不
同质量浓度TSPG诱导CD34+HSC／HPC向
CFU—GM增殖与分化能力，结果显示TSPG(10～
50tlg／mL)均能提高CD34+细胞形成CFU—GM的
集落产率，以TSPG20／_g／mL效果最为明显。既往
研究及本研究结果表明TSPG能够协同其他细胞
因子诱导CD34+HSC／HPC向粒系细胞分化。
References：
r1]HuangG，ZhuBD， angSS．TheeffectofTSPGon
hematopoiesisinmiceEJ3．ChinJHematol(中华血液学杂
志)，1990，11(2)：66—68．
[2]WangL，WangYP．Experimentalstudyfortheffectof
TSPGonthe xpressionofIL一3inhematopoieticstromal
ceils[J]．ActaAnaSin(解剖学报)，2004，35(1)：49—54．
E3]WangSL，ChenD，WangYP，eta1．Modulationof
expressionofhumanGM—-CSFandGM—-CSFRabytotal
saponinsofPanaxginseng[J]．ActaPhysiolSin(生理学
报)，2003，55(4)：487—492．
[4]ChenD，WangSL，WangYP，eta1．Experimentalstudy
onexpressingGM—CSFfromlymphocytesb totalaponins
ofPanaxginseng[J]．1mmunolJ(免疫学杂志)，2003，19
(6)：411-414．
、
[5]WangJW，WangSL，WangYP，ela1．Separation，
purification，anddentificationofCD34+hematopoieticstem／
progenitorcellsf ombonemarrowcells[J]．ChinJAnat(解
剖学杂志)，2004，27(3)：328—330．
r6]GluckS，ChaddertonT，P rterK，eta1．Characterization
andtransfusionofinvitrocultivatedhematopoieticprogenitor
cells[J]．TransfusSci，1995，16(3)：273—281．
[7]WilliamsSF，LeeWJ，BenderJG，eta1．Selectionand
expansionofperipheralbloodCD34+cellsinautologousstem
celltransplantationforbreastcancerrJ]．Bfood，1996，87
(5)：1687一1691．
[8]HinoM，SuzukiK，YamaneT，eta1．Exvivoexpansionof
maturehumanneutrophilswithnormalfunctionsfrom
purifiedp ripheralbloodCD34+haematopoieticprogeni or
cells[J]．BrJHaematol，2000，109(2)：314-321．
[9]WangY，WangYP，ZhuBD．TheeffectofTSPGon
proliferationofmouseh matopoieticceils[J]．ChinJAnat
(解剖学杂志)，1995，18(2)：153—156．．
[10]GaoRL，XuCL，JinJM，eta1．TheeffectofGSon
proliferationofhematopoieticprogenitorcellsfromnormal
humanndpatientswithaplasticanemia[J]．ChinJIntegr
TraditChinWestMed(中国中西医结合杂志)，1992，12
(5)：285—287．
白藜芦醇对多发性骨髓瘤细胞的体外抗癌作用
孙春艳，胡豫，刘新月，杨海燕
(华中科技大学同济医学院附属协和医院血液病研究所，湖北武汉430022)
摘要：目的研究白藜芦醇对多发性骨髓瘤细胞体外抗癌作用，探讨其抗癌作用的分子机制。方法用MTT法
检测白藜芦醇对骨髓瘤细胞系RPMI一8226和KM3增殖的影响；Annexin—V／PI双标流式细胞术检测白藜芦醇对
收稿日期：2006—04—30
作者简介：孙春艳(1976一)，女，黑龙江省佳木斯市人，博士，主治医师，研究方向为恶性肿瘤的发病机制。
Tel：(027)62766183E—mail：ayan0618@163．com
万方数据
人参总皂苷体外定向诱导CD34+细胞分化为粒系血细胞的研究
作者： 王建伟， 王亚平， 王莎莉， 姜蓉， WANG Jian-wei， WANG Ya-ping， WANG Sha-li，
JIANG Rong
作者单位： 重庆医科大学基础医学院重庆市生物化学与分子药理学重点实验室,重庆,400016
刊名： 中草药
英文刊名： CHINESE TRADITIONAL AND HERBAL DRUGS
年，卷(期)： 2007,38(1)

参考文献(10条)
1.Huang G;Zhu B D;Zhang S S The effect of TSPG on hematopoiesis in mice 1990(02)
2.Wang L;Wang Y P Experimental study for the effect of TSPG on the expression of IL-3 in
hematopoietic stromal cells[期刊论文]-解剖学报 2004(01)
3.Wang S L;Chen D;Wang Y P Modulation of expression of human GM-CSF and GM-CSFRa by total saponins
of Panax ginseng[期刊论文]-生理学报 2003(04)
4.Chen D;Wang S L;Wang Y P Experimental study on expressing GM-CSF from lymphocytes by total
saponins of Panax ginseng[期刊论文]-免疫学杂志 2003(06)
5.Wang J W;Wang S L;Wang Y P Separation,purification,and identification of CD34+ hematopoietic
stem/progenitor cells from bone marrow cells[期刊论文]-解剖学杂志 2004(03)
6.Gluck S;Chadderton T;Porter K Characterization and transfusion of in vitro cultivated
hematopoietic progenitor cells 1995(03)
7.Williams S F;Lee W J;Bender J G Selection and expansion of peripheral blood CD34+ cells in
autologous stem cell transplantation for breast cancer 1996(05)
8.Hino M;Suzuki K;Yamane T Ex vivo expansion of mature human neutrophils with normal functions from
purified peripheral blood CD34+ haematopoietic progenitor cells[外文期刊] 2000(02)
9.Wang Y;Wang Y P;Zhu B D The effect of TSPG on proliferation of mouse hematopoietic cells 1995(02)
10.Gao R L;Xu C L;Jin J M The effect of GS on proliferation of hematopoietic progenitor cells from
normal human and patients with aplastic anemia 1992(05)


本文链接：http://d.g.wanfangdata.com.cn/Periodical_zcy200701029.aspx