全 文 ：中草药ChineseTraditionalandHerbalDrugs第36卷第12期2005年】2月·1889·
·专论与综述·
高效毛细管电泳技术用于生物碱的分析
张蕊，郭宝林+
(中国医学科学院中国协和医科大学药用植物研究所，北京100038)
摘要：综述了高效毛细管电泳用于生物碱类化合物的应用情况。介绍了毛细管区带电泳(CZE)和媵束电动毛细
管色谱(MECC或MEKC)2种模式应用于生物碱类化食物时各自特点和应用范围，分析了影响生物碱类成分分离
的主要因素，阐述了如何根据待分离化合物的特性建立并优化方法，还介绍了实验中存在的一些技术问题。
关键词：高效毛细管电泳}生物碱；毛细管区带电泳f胶束电动毛细管色谱
中豳分类号：R286．02 文献标识码：A 文章编号：0253—2670(2005)12—1889—04
Analysisofalkaloidsbyhighperformancec pillaryIectrophoresis
ZHANGRui，GU0Bao—lin
(InstituteofMedicinalPl nt，ChineseAcad myofMedicalSciencesandPekingUnion
MedicalCo lege，Beijiag100094，China)
Keywords：highperformancec pillaryelectrophoresis(HPCE)；alkaloids；capillaryzonelectro—
phoresis(CZE)；micellarelectrokineticcapillaryhromatography(MECC)
毛细管电泳又称高效毛细管电泳(HPCE)，是一类以毛细
管为分离通道的电泳技术，主要依据样品各组分之间淌度(单
位电场下的电泳速度)的差异而实现分离。此项技术突出的特
点是应用范围广，不仅应用于生物大分子(肽、蛋白质、低聚核
苷酸和DNA片断等)的分析，而且也可应用于无机离子和一般
有机化合物的分离，如生物碱类、黄酮类、蒽醌类、有机酸类、香
豆素类及皂苷类等；此外，还可有效地分析手性化台物。
生物碱是一类具有多种生理活性的重要天然产物，目前
已发现超过10000种不同结构的该类化合物。其分析方法
目前主要是高效液相色谱法，但是组成复杂的样品如植物提
取物．容易造成色谱柱的污染，常需要进行复杂的前处理，有
时难以在较短时间内使各种组分达到有效分离；另外生物碱
中的一Ⅳ一基可与填料上的残余一SiOH基结合而造成峰拖尾，
使分离度变差。而HPCE分离效率高，是以毛细管为通道进
行分离，容易清洗，不存在污染问题，同时对样品预处理要求
低，而且HPCE进样体积小，一般为纳升级，使用样本量少}
另外，化学试剂用量少、价廉，也降低了分析成本，因此适用
于广泛的样本。HPCE方法本身需要分析带有一定电荷的物
质，而生物碱在结构上以含有氮原子为特点，氮原子上的孤
电子对能接受质子而显碱性，常携带正电荷，所以十分适用
于HPCE的分析。迄今报道的天然产物的HPCE的分析研
究中．也以生物碱类化合物为多。
HPCE具有十分多样的分离模式，生物碱类成分同其他
天然的次生代谢产物一样一般采用毛细管区带电泳(capil
laryzoneelectrophoresls，CZE)和胶束电动毛细管色谱(mi—
cellarelectrokineticcapillaryhromatography，MECC)两种
分离模式。
1 CZE和MECC分离原理简介
I．1 毛细管区带电泳：HPcE中最简单的、应用最广泛的一
种方式，毛细管内只充人缓冲溶液，分离过程中电渗流由毛
细管内壁表面电荷所引起的管内液体的整体流动起着主导
作用。由于常用的石英毛细管产生的电渗流方向是从正极指
向负极，一组化合物中，迁移方向与电渗流同向的阳离子迁
移最快，中性物质居中，而阴离子则因为其迁移方向与电渗
流反向而速度最慢。被分析物中各化合物带电荷数差别越
大，相对分子质量的差别越大，分离度越大，但所有的中性物
质彼此不能分离。
1．2胶柬电动毛细管色谱(MEcc或MEKC)：结合了电泳
技术与色谱技术．也是HPCE中应用最广的方式之一。MECC
是唯一的既能分离中性组分又能分离带电组分的电泳技术。
其原理是在缓冲溶液中加人表面活性剂，如果表面活性剂的
浓度足够大，则表面活性剂单体就结合在一起，即长链疏水基
通过分子间的引力互相缔台在一起．亲水基朝向外，形成了一
个球体，称为胶柬。“足够大浓度”就是胶束的临界浓度。所有
的阴离子和阳离子表面括性剂形成胶柬后带电荷，前者带负
电荷，后者带正电荷。如常用的十二烷基硫酸钠为阴离子表面
活性剂，在电场作用下，其胶束的迁移方向与电渗流的方向相
反。但在中性和碱性条件下，电渗流的移动比胶束的迁移快，
器霎品羿潆05-蕊05(-129078)，女，北京人，中国协和医科大学药用植物研究所研究生。T。l：62899732E州iI=血。h。。@126com
*通讯作者 郭宝林Tel；(010)62899732Email：guohoIinolo@yaho。COIncn
万方数据
·1890· 中草药ChineseTraditionalandHerbalDrugs第36卷第12期2005年12月
这就迫使胶束最终以低于电渗流的速度较慢地向阴极移动。
在缓冲液中添加的表面活性剂具有吸附、增溶、形成胶束等功
能，因此增加了该模式分离化合物的范围。
在MECC系统中，存在着类似于色谱的两相，一是流动
的水相，另一是起到相对固定作用的胶柬相．溶质在这两相
之间分配，因为各组分在胶束中拥有不同的保留能力会产生
不同的保留值，从而将组分分离。中性组分是依据本身疏水
性的不同而达到分离的，在含阴离子表面活性剂的缓冲系统
中．其疏水性越强，与胶束间作用力就越强，留在胶束相中的
时间就越长，则迁移时间越长，反之越短。如果使用阳离子表
面活性剂，情况与上述相反。
2生物碱的HPCE分析
2．1分离模式的选择
2．1．1CZE模式：用于带电荷物质的分析，这些物质在一定
pH值的缓冲溶液中会发生质子化一去质子化作用和络合作
用，从而带有不同的净电荷数．进而以不同的迁移时间而分
离。在此模式下，对分离结果产生影响的最根本的两个因素是
电荷数和相对分子质量，而这二者中叉以电荷数更为重要。
通常情况下，质子化程度高的强碱性物质会先被检测
到、随后是中等碱性的物质，最后是弱碱性的物质。被分离的
生物碱成分如果具有较大的碱性差别很容易分离。季一
兵“]、陈永川嘲均用不同的缓冲条件很好地分离了麻黄中的
一级胺(去甲基麻黄碱)、二级胺(麻黄碱)、三级胺(甲基麻黄
碱)；王桂芳等01分析了苦参中的苦参碱和氧化苦参碱，后者
的氮原子上有氧原子从而使电子云密度改变，二者的分离度
大于1．5。
除了与氮原子直接连接的基团影响生物碱带电荷数(碱性
强弱)外．其他因素还有：分子空间结构、缓冲溶液的pH值。
有些情况下，因为空问位阻、亲水性的差别。化舍物的分
子结构中不同的功能基会对氦原子的质子化程度产生影响，
从而改变物质电荷数；或者分子特定的几何结构使得其易与
缓冲液溶剂分子发生作用，从而改变自身电荷数，Jing等“1
分离了槐果碱(sophocarpine)和lehmannnine，二者的差别只
是驭键的位置不同，槐果碱中有a，D共轭酮结构，而lehmarl
nine的双键不形成共轭，于是二者具有不同的原子空间排
列，不同的分子形状，使得它们在缓冲液中的电荷数产生差
别而达到分离。
缓冲溶液的pH值一方面影响溶质组分的电离度，即影
响电荷数的多少；另一方面影响电渗流的大小，结果导致迁移
时间的变化”]，所以是影响分离结果的关键因素。理论上说，
选择的缓冲液pH值为化台物的pKa士1。实际操作中发现，
由于pH值除控制化合物的有效淌度外，还影响着电渗甚至
化合物在管壁上的吸附水平，合适的pH值难蹦用公式计算，
就需要通过实验的摸索来选择最佳pH值。值得注意的是，石
英毛细管的化学稳定性高，可使用的pH范围在2～12。
Bo等01在分析阿托品和东莨菪碱时．为了选择最佳的
缓冲液pH值，首先用50ramol／L的磷酸盐缓冲液在不同的
pH值(6～9)下试验，结果显示pH值在6～8内．由于电渗
流加大。阿托品和东莨菪碱的迁移时间随pH的增加而缩
短IpH8～9时．二者的迁移时间又加大，原因是在高pH下．
尽管电渗流会增加，但是氮原子会发生低质予化作用从而导
致分析物的低迁移率。迁移时间过长会导致峰形变宽，在考
虑了分离度、峰形和分析时间后选定了pH为8，二者分别在
4．5和5．3min出峰。Ji等”3在分析小檗碱、巴马亭和药根碱
时采用了磷酸盐缓冲液，确定最佳pH值时发现在pH>7．5
和pHi6．5时均不能达到满意的分离度，而在pH7时完全
分离。陈亚飞等叫在分析复方石韦片中的槐果碱和苦参碱
(均为弱碱)时，曾选用过pH5．5和6．0，分离度均欠佳．后
采用pH5．75的缓冲液，可以达到良好的分离并同时改善了
峰形。袁炜等”1在分析槟榔中的槟榔碱(arecoline)和槟榔次
碱(arecaidine)时，由于二者在结构上的差异仅为氮原子间
位上的取代基不同，当pH在2～4时，槟榔次碱上的羧基的
电离倾向加大，其有效电荷呈减小趋势，因此迁移时间增大，
而槟榔次碱中酯基相对稳定．迁移时间略微增大但变化不
大，于是两样品分离度增加；当pH值增到4时，电渗流加
大，二者的迁移时间均缩短，分离度不再增加，此外发现两组
分的柱教与各自迁移时间的变化趋势相类似。所以选定pH
为3，2。总之，缓冲液的pH值是分离成败的关键因素。
由于影响电泳速度的因素为各组分的荷质比，如果电荷
数相同或相近，可因相对分子质量差别而分离，但待分离组
分相对分子质量的绝对差值相对于相对分子质量的比值(即
相对分子质量的相对差)要足够大才可达到分离。到目前为
止研究的生物碱类物质的相对分子质量范围是150～700。
如果带电荷数相同、结构类似、被分析的各组分的相对分子
质量又均在700以上，那么当相对分子质量绝对差别小于
50时，用CZE模式很难分离，应考虑选用MECC模式。
用一个具体的例子来说明各因素在CZE模式下对电泳
淌度、分离度的影响。Stockigt等““对15种吲哚类生物碱进
行了毛细管电泳分析，缓冲液条件是0．1mol／L醋酸铵(pH
3．1)一乙腈为lt 1，出峰顺序是禾碱(gramine，相对分子质量
174)。色胺(tryptanmine，160)，蛇根碱(serpentine，348)，鸭
脚木碱(alstonine，348)，13-methylajmMine(341)，柳叶水甘草
碱(tabersonine，336)，长春碱(vinblastine，810)，柯楠碱
(corynanthine，354)，长春新碱(vineristine，824)，rauflori
dine(382)，阿马灵(ajmaline，326)，yohimhinieacid(340)，去
甲氧利血平(deserpidine，578)，利血平(reserpine，608)，萝美
木碱(rescinnamine，634)。出峰的一般规律是：低相对分子质
量、中等碱性的物质先被检测，如禾碱(属于季铵型生物碱)、
色胺(属于伯胺型生物碱)；接着是中等相对分子质量、强碱
性物质，如蛇根碱和鸭脚木碱；再后面是中等相对分子质量、
中等碱性物质，如柯楠碱和raufloridine；最后是高相对分子
质量而弱碱性物质，如利血平和萝美木碱等。
值得注意的是．长春碱和长春新碱是二聚物，拥有相似
的结构，前者的吲哚环上的氮原子取代了甲基，而后者这个
位置氧化成了乙醛基，推测二者的淌度不同是因为长春新碱
的乙醛基上附加了水分子，从而导致了高溶解性和低荷质
万方数据
中草药ChineseTraditionalandHerbalDrugs第36卷第12期2005年12月· 891·
比}还有柯楠碱和yohimbinicacid，结构类似且相对分子质 碱不易得到满意的分离结果(MECC模式可部分解决水溶
量相差不大，但因为后者结构中C(16)上有部分解离的羧基 性差的问题，但作用有限)，而且会导致不同程度的毛细管管
功能团，使得净电荷数少，导致了在分析时间上的较大差距} 壁吸附，甚至堵塞毛细管，可以通过添加有机溶剂来改善。
再有pmethylajmaline和阿马灵，如果假定在选的pH值的可选用 有机溶剂的种类受其对电解质溶解能力和本
缓冲液中完全质子化了，则相对分子质量高的应该比低的拥 身是否具有紫外吸收等因素的限制，常用的有甲醇、乙醇、乙
有较低的电泳淌度，但是口一methylajmaline中，在p咔啉结腈、丙酮、甲酰胺、尿素，其中以甲醇、乙腈、异丙醇使用较多。
构中的}氮原子上有取代的甲基，出现季铵结构，它阻止了 添加量的多少要根据被测物的性质而定，通常在5％～
氮原子与醋酸盐缓冲液中溶剂分子的相互作用，于是溶解度 25％，有时甚至完全采用有机溶剂作为缓冲溶液主体，即非
降低，荷质比增加；蛇根碱和鸭脚木碱，二者是差向异构，反 水毛细管电泳。在MECC模式下，有机溶剂一般在50％03以
式构型的蛇根碱使得分子呈扩展的形式因此降低了摩擦力， 下，否则可能引起胶束解体或造成其他不利影响。添加有机
相对于顺式的鸭脚木碱具有较高的电泳淌度。 溶剂会影响电流的稳定性，所以要使其与缓冲溶液充分混
从这个例子中可以看出，碱性大小在分离中的重要作 匀，也可以通过延长空白对照样品的分析时间来平衡系统。
用，同时也看到了分子结构对称性的影响(如二聚体)、不同 有机溶剂不仅可以对疏水性溶质起增溶作用，还可降低
的功能基团、分子的几何结构等都可能影响碱性，另外分析 电渗流、减小离子迁移速率、提高分离度和选择性，并且有改
物与溶剂分子的相互作用也会导致化台物电泳淌度的变化。 善峰形的作用，所以添加有机溶剂是可以考虑的优化条件之
2．1．2MECC模式：常用的表面活性剂如溴化十六烷基三 一。如纪秀红等“”在分析十大功劳属部分植物茎中生物碱
甲基铵(阳离子型)、十二烷基硫酸钠(SDS)、胆汁酸盐或去时(CZE模式)对缓冲液和甲醇的比例进行了选择：实验表
氧胆汁酸盐(阴离子型)中，用于生物碱分析时多选择SDS。明在2：1～3：4分离良好，甲醇比例再低，峰变宽，出现拖
SDS常用的浓度范围为0．02～0．15mol／L，其中以0．05尾；甲醇比例增大，峰变锐，同时各蜂分离距离加大，分析时
moI／L最常用(临界胶束浓度0．082mmol／L)嘲。间相应延长；甲醇比例再大，由于磷酸盐的溶解度降低，溶液
缓冲溶液的pH值同时影响电渗流、溶质的有效电荷以 变得不稳定。综合考虑的结果是缓冲液与甲醇的比例为2：
及溶质与胶柬的相互作用，常用的pH范围为6～9，过低则 1。陈亚飞”3等分析槐果碱和苦参碱时，考察了不同体积分数
胶束向正极迁移的速度可能超过电渗流，过高可能增大电渗 (0、10％、20％、30％)的异丙醇对出峰时间的影响，大于
流导致溶质还未完全分离就被洗脱出来。 20％时，出峰时间达20min以上；最后选定5％的添加量，lO
在中性或碱性条件下弱碱的溶解度低，有些强碱类物质 rain内出峰且分离度达到1．5。总之，加入有机溶剂产生的效
会与阴离子胶束(如SDS)之间有强烈的电荷作用而延长保果是多方面的，应该通过实验确定添加量。
留时间．对于碱性弱或几乎无碱性的化合物优先选用此模 2．3缓冲溶液的选择：缓冲溶液一般为无机钠盐类，如磷酸
式，如辣椒碱(capsaicin)和嘌呤类生物碱““。当然MECC也盐、硼砂、醋酸盐、碳酸盐等，最常用的是磷酸盐、硼砂、醋酸
可分离强碱性的生物碱，如防己碱、防己诺林碱““。 钠缓冲溶液体系，见表1。磷酸盐的紫外吸收低，pH值缓冲
在已报道过的文献中发现有些生物碱用CZE和MECC范围比较宽，pH=1．5～13较为常用，醋酸氨缓冲液因具有
两种模式均得到了很好的分离，如槐果碱、苦参碱、氧化苦参 挥发性，适于质谱联用技术；硼酸缓冲液适于含羟基或多羟
碱‰¨sj；小檗碱、巴马亭m3；吗啡、可待因、罂粟碱m““、莨 基化合物的分离；使用磷酸一硼砂混合缓冲系统时，尽量使两
菪碱、东莨菪碱m]。 种缓冲液的浓度相近或相等。许多化合物使用不同的缓冲系
2．2水溶性问题：在毛细管电泳分析时，水溶性较差的生物 统可达到良好的分离，但分离时间的长短有所差异。
裹1 HPCE主要应用的缓冲液体系
Table1 ApplledbuffersysteminHPCE
缓冲液类型 常用浓度范围／(mot·L一1)选用的pH值范围 分离对象
里西丁类和1种吲哚类生物碱E4一；乌头碱、次乌头碱、中乌头
碱、士的宁和番本鳖碱m]、雷公藤次碱m]
磷酸盐缓冲液0．02～o08 1．5～13 黄连中的主要生物碱[”]}阿托品、东茛菪碱、山莨菪碱、樟柳
碱[1t]}可待因、吗啡、罂粟碱；浙皿乙素、西贝素、西贝昔。213}苦
参碱、氧化苦参碱}防己碱、防己诺林碱[“]{茶碱、可可碱、咖
啡因Ⅲ3f血根碱、加里福尼碱、前鸦片碱、花菱草碱。23]I氲溴酸
东茛菪碱、溴丁东莨菪碱”“
硼砂缓冲液0．02～o．08 6～9 黄连中的主要生物碱Ⅲ]；苦参碱、氧化苦参碱、槐定碱[3]；吗啡、
可待因，罂粟碱l例}月桂木姜碱、樟苍碱、异紫堇啡碱、渡耳定
等g种[26]
磷酸一硼砂混合0．ol～o．03 6～9 吗啡、可待因、罂粟碱等9种生物碱‘“3}吴莱萸碱等9种生物
缓冲系统 碱‘27]}辣椒碱、二氢辣椒碱m1、蓖菪碱、东莨菪碱、后马托品；
奎宁、奎尼丁、辛町宁、辛可尼丁~2“
万方数据
：!!!!： !兰竺!!竺：竺三：!!竺!：：!：竺!：：!：!!：竺竺!!兰!：!塑!!!!兰!!!
缓冲溶液的离子浓度通常要通过实验优化，不过一般电
导率高的磷酸盐、硼纱缓冲液的浓度可以在0．02～0．04
mol，L的基础上进行优化，一般不大于o．2mol／I一。王桂芳
等“3在分离槐定碱、苦参碱、氧化苦参碱时．在pH相同的情
况下，摸索不同的硼砂缓冲液浓度．因为电渗流随着浓度的
增大而下降，所以三者的迁移时间都随浓度的增大而延长，
当浓度为o．06m01／L时分离结构和迁移时间最理想。Bo
等嘲在分析阿托品(Atr。pine)和东莨菪碱(sc。plamine)时，在
确定了最佳pH后，又在0．02～O．06m01／L的范围内优化缓
冲渡的浓度，考虑到分离度和分析时间，最后选定了o．05
mol／L的磷酸盐缓冲液，
2．4可优化分离的添加剂：为了得到良好的分离度、对称的
色谱峰，还有一些备选的添加剂。如Yn等“”分析槐果碱和
lehmannlne时，加入1％的HPr}cD时，分离度和峰形都得
到了明显的提高}Bo等分析阿托品和东莨菪碱时加入了
lo％四氢呋喃改善峰形，Song等“3分析10种生物碱时加入
了10％的四氢呋喃提高分离度。麻黄碱和伪麻黄碱是非镜像
异构物，在酸性缓冲液中均带正电无法分离，“u等o“利用
有光学活性的异亮氨酸与之结合，再配合钡离子使之具有不
同的移动速度达到分离}陈永川等“1使用了缬氨酸缓冲液使
=者达到分离。
2．5其他技术问题：在毛细管电泳分析过程中还有一些较
重要的因素会影响分离结果，如电压、温度、进样方式、毛细
管内径大小和毛细管长度。运行的电压主要影响分离度和分
离效率。从目前的统计来看，20、25kV常用，实验时可再根
据具体情况调整；温度多为室温；进样方式多选用压力进样，
主要是重现性和精密度较好；毛细管内径有50和75pm两
种规格，长度在30～80cm，多数情况下50～60cm就足以达
到满意的分离结果。
3结语
HPcE是一种高效、快速的分离、分析技术，不管毛细管
区带电泳还是胶柬电动色谱(MEKc或MEcc)都有其各自
的特点和适用范围，在生物碱测定中存在着巨大的研究潜力。
致谢：承蒙北京走学刘虎教授审改文稿。
References：
[1]JlYB．chenYY，wuRJ Det—lnat】onofephedrlnealk8
loldsm印^8西ⅥslH池bynon8queo⋯8pl儿a。ye ectrophore
sIs口]c^f月T，nd“He拈西Ⅵgs(中草药)，2003，34(12)：
1127．
[2]chenYc，D。“gHcontentde erminBtionofephedrmeand
pseudo。phedri⋯nMa“capsules(H盯妇印^Fd№Rdd疆
mo月埘Pr垃印⋯抽，etc．)byhighperformanceca州larylec—
trophoresls[J]．c^』n?’∞d4P“肘耐(中成药)，1999，21
(3)·ll7一119．
[3]wa“gGF，zha“gsY，GuozG．dnf slmultaneousdeter—
mlrlationofthreealkah)idslnSop^or日月删肼jAlt．andm
yQE口月LDf⋯byhjghperformancecaplll8ryclectrophoresl8
[J]．cht月，P^Ⅱn”An口z(药物分析杂志)，2000，20(5)：
331333
[4]Jl“gzs，Ho“gxx．Determlnationofquin ll。ldingalkal01ds
intraditlonalChineseherbaldr“gsbynonqueouscapIllary
e】ectrophoresjs[J]Jc^mmd#ogr以．1999．857(卜2)：303
311．
[5]FuxY，LuJD c口pn肠删鲋∞f7叩^㈣fs(毛细管电泳)
[M]Ha“gzhou：Zh。】ia“gUnlversi‘yPress，1997．
：6]B0T，LiKA，LluHw．In—tlgali⋯ftheeffecto{sp一⋯1ronmentonthecontentsofatropineandscopol⋯⋯
zkf⋯fkzbycapjIlafyzoneeIectrophoresLsUJ，P^⋯
B㈣edHN“，2003，(31)5：885—891．
JlXH，LiY，L1uHW，Ya“gY，“nZDet—Inatlonotth8
aIkaloldc。ⅡtentindJ“e⋯tpartsof ome肘n^om4plantsby
HPcE[j]．P^口nAc￡nHPz“mF，2000，74(4)：387391．
ChenYF，TianSJ，SunZP．Separatlonanddetermlnatlon
ofalhloIdsjncom口oundsh㈣TabjeB[刀(M抽，P^口瑚
^n“(药物分析杂志)，2002，22(2)：94—97
Y⋯w，LnJ D，FuXY SeparatIonaⅡdq⋯tltatlvedeter_
mi肿tio力。farecollneandar caidlnebyc8plllaryelectrophore
sis[J]．c^znJ ^4zc“m(分析化学)，2000，28(6)：749．
StockigtJ，SheludkoY，UngerM，甜4Z．High—per{orm—e
IIquidch姗atoEraphic，capillaryelectrophoret{candcaplll ry
electtophotnlc—electr08pr3yj㈣t、onma⋯pect—tnc
analys㈣felectedalkalo；dgroups[J]．-，c^⋯￡ogrA，
2002．967：85一113．
IssaqHJ capil【aryelecrophoresisofnat⋯】productsLJj
E如ffmp^o坩ji，1997，18：2438，
Ya“gJ，I—gH．LjuH，￡fⅡf．Analyslsoitet⋯drl㈣ndfanzchlnoll⋯ntraditi。nalChi—emedIclnesbycapⅢary
eleIctrophore蛳rJl．，[*r。m口￡o∥A，l998，811：274
YuYQ，DjnEPL，ChenDF．Det⋯lnatjonofqulno【izidLne
8l㈦oidsmSo女^omme出caLp antsbyc8pilla‘yeJectfophore
s}s口]．AH“c^lmA甜4，2004，523(1)：15—20．
LluYM．I)etenninationofco口tIsine，berberi⋯ndpaImatme
intraditionalChineseⅢedlclnalprep“r tJonsbyc8pilIa7yelec—trophoresls口]．，c^㈣f。gr，19”，639；323·
TreneTryvc，wellsRJ，Roberts。nJ．Determlnatlonof
morohjneandr Iatedalkal01dslncrudemorphlne，poppy
st⋯aⅡdproparatlonby㈣UarelectrokinetlccapllIarychr。mtography[J]，c^删“僖rA，l995，708：1691 70·
HaoHY，GuoJx。shunQS，“dzDeterminationof3
bLoactlvealkalolds1ntheChlnesedrugpencaopiumpapaver镕
byHPLcandHPcE[J]．一cf。尸^洲szn(药学学报)，
2000．35(4)：259—293
LmM，ZhangZX，AnDK．F“z，SystematIcseparatIonand
quantltatL⋯nalyslsoftropanealkaloldsInBel ado⋯Prepa—
ratLonbyhlghperformancecaplIlaryelectr。phoresls[J]c^fn
丁m幽胁r5凸一wFs(中草药)，1998，29(8)：518—520．
LLuYM，SheuS J DetermmationofquaternaryaIkalolds
from∞pfzd”R^i粕柙日byc8p11laryeIectfophoresls_JJ J
C^r踟n￡DPr，1992，623：196．
FenzHT，SamF，LY．Det—lnatlonofflvetoxlcalkalolds
intwocommonherbalmedlcineswlthcapmaryelectrophore
sisJ1．Jc^r咖n如FrA，2002，973(12)：243—247．
S0nRXR，Zh扪IX，Ya“zGL，以口f．Det⋯Inanonofw¨
formem丁wp“rv雄“m砌怕耐iHook．f bynonaqueous
caPIIlaryelectrophoresis[J]．JⅣe如Ju”￡”：Ⅳ谢scI(河北大
学学报：自然科学版)，2001，21(3)：330—332·
zhaox，LuY，chenzN QuantitatlvenalysISof⋯eral
alkalold8lnFr“z“nH4L bycaplUaryeIectrophoreslsL]j
西f47k讲￡胁而Dr“gs(中草药)，2001，32(2)i116一118
LeeKJ，H∞Gs separati⋯fheophyllineand1tsana—
Iogueby眦ell⋯lectrokLnetlcchromatogr3phy：appllcatlon
tothedetermlnallonoftheophyIIi⋯nhumanplasmaLJJ，(Ⅵ⋯mFrA．1992，628：3∞
SturmS．AdLff⋯tIalsensltIvitvofoxindolca kaloldsto
normalandleukemlccellJ nes[J]PkH￡n^“dt1993，59：A
583．
WuHL，HuangCH，ChemSH．“洲．Mlcellarelectrokt
net⋯hromatographyofscopolan⋯relatBdantlcholine‘glcs
LJj．Jc^⋯no唱rA，1998，802：】07113
ZhouHL，WelLX，YangDH．DetermlnatloIIofalkalolds
1ncoptls_clnna⋯mumcompatibllitybycapmaryelec—
trophoresis[J]。，c№zHAf“￡Pr__lfd(中国中药杂志)，1999，
24(5)：30831 ．
SunSW，【。eeSS．ChenLY，d口fSeparatL0nofapo坤hme
ajkaIotdsbymlceUareIectfokLⅡetlcch—atographyLJ ．J
C^m”口0ⅥrA，1997，767：277—2“．
I．eeM(、．ChuangWC，SheuSJ．Determmatlono{thea ka
loldslnE御dzⅡPFr“““sbycaplllaryelectrophoreslsLJJ JC^⋯柚∥^，l996，755：113 1 9
M。nnervilleALDet一；natl㈣fcapsal(1mandlhydroc3p
salclnby⋯eIl⋯kctroklneticcapilla‘ychromatographyand
；ts appIlc8tiontovarLo⋯pecles。fC口pH洲·Sol⋯⋯e
[J]Jc^⋯胁口rA，1999，838：293—302·
AkadaY，Kuro西M．Determlnationofc chonaalkaloidsln
ctnc加nnbarkbycaplla。ye【ec{rophores．s口]．B⋯“K口
zuh．1997，46(12)：931
L【uYM，ShuennJS．Determlnationofephedrm⋯dpseu一
(10ephedrl⋯nCh ⋯eh rba】prop—tlonsbycapillaryeIec—
trophore8isJ『．．，ch⋯dfo舻，1993，637{2lg．
刀
钉
妇
叩
钉妇
姐
胡
妇
观
钉
钉
叼
∞
妇
幻
胡
胡
钉
胡
力
胡
钉
明
跚
阱
嘲
嗍
叫M
㈨
M
嘲
㈨
M
嘲
㈣
㈨
叫
蚴
嘲
㈨
跚
跚
嘲
嘲
嘲
㈨
万方数据
高效毛细管电泳技术用于生物碱的分析
作者： 张蕊， 郭宝林， ZHANG Rui， GUO Bao-lin
作者单位： 中国医学科学院,中国协和医科大学药用植物研究所,北京,100038
刊名： 中草药
英文刊名： CHINESE TRADITIONAL AND HERBAL DRUGS
年，卷(期)： 2005,36(12)
被引用次数： 6次

参考文献(30条)
1.Ji Y B;Chen Y Y;Wu R J Determination of ephedrine alkaloids in Ephedra sinica by nonaqueous
capillary electrophoresis[期刊论文]-中草药 2003(12)
2.Chen Y C;Dong H Content determination of ephedrine and pseudoephedrine in Mafu Capsules (Herba
Ephedrae,Radix Aconiti Praeparata,etc.) by high performance capillary electrophoresis 1999(03)
3.Wang G F;Zhang S Y;Guo Z G Simultaneous determination of three alkaloids in Sophora flavescens
Ait.and in Yeyean Lotions by high performance capillary electrophoresis[期刊论文]-药物分析杂志
2000(05)
4.Jing Z S;Hong X X Determination of quinoliziding alkaloids in traditional Chinese herbal drugs by
nonqueous capillary electrophoresis 1999(1-2)
5.Fu X Y;Lu J D 毛细管电泳 1997
6.Bo T;Li K A;Liu H W Investigation of the effect of space environment on the contents of atropine
and scopolamine in Datura metal by capillary zone electrophoresis[外文期刊] 2003(31)
7.Ji X H;Li Y;Liu H W;Yang Y Determination of the alkaloid content in different parts of some
Mahonia plants by HPCE[外文期刊] 2000(04)
8.Chen Y F;Tian S J;Sun Z P Separation and determination of alkaloids in Compound Shiwei Tablets[期
刊论文]-药物分析杂志 2002(02)
9.Yuan W;Li J D;Fu X Y Separation and quantitative determination of arecoline and arecaidine by
capillary electrophoresis[期刊论文]-分析化学 2000(06)
10.Stockigt J;Sheludko Y;Unger M High-performance liquid chromatographic,capillary electrophoretic
and capillary electrophoretic-electrospray ionisation mass spectrometric analysis of selected
alkaloid groups 2002
11.Issaq H J Capillary elecrophoresis of natural products[外文期刊] 1997(12/13)
12.Yang J;Long H;Liu H Analysis of tetrandrine and fangchinoline in traditional Chinese medicines by
capillary elelctrophoresis 1998
13.Yu Y Q;Ding P L;Chen D F Determination of quinolizidine alkaloids in Sophora medical plants by
capillary electrophoresis[外文期刊] 2004(01)
14.Liu Y M Determination of coptisine,berberine and palmatine in traditional Chinese medicinal
preparations by capillary electrophoresis 1993
15.Trenerry V C;Wells R J;Robertson J Determination of morphine and related alkaloids in crude
morphine,poppy straw and preparation by micellar electrokinetic capillary chromatography 1995
16.Hao H Y;Guo J X;Shun Q S Determination of 3 bioactive alkaloids in the Chinese drug pericarpium
papaveris by HPLC and HPCE[期刊论文]-药学学报 2000(04)
17.Lin M;Zhang Z X;An D K Systematic separation and quantitative analysis of tropane alkaloids in
Belladonna Preparation by high performance capillary electrophoresis 1998(08)
18.Liu Y M;Sheu S J Determination of quaternary alkaloids from Coptidis Rhizoma by capillary
electrophoresis 1992
19.Feng H T;Sam F;Li Y Determination of five toxic alkaloids in two common herbal medicines with
capillary electrophoresis 2002(1-2)
20.Song X R;Zhao J X;Yang G L Determination of wilforine in Tripterygium wilfordii Hook.f.by
nonaqueous capillary electrophoresis[期刊论文]-河北大学学报(自然科学版) 2001(03)
21.Zhao X;Lu Y;Chen Z N Quantitative analysis of several alkaloids in Fritillaria L.by capillary
electrophoresis[期刊论文]-中草药 2001(02)
22.Lee K J;Heo G S Separation of theophylline and its analogue by micellar electrokinetic
chromatography:application to the determination of theophylline in human plasma 1992
23.Sturm S A differential sensitivity of oxindole alkaloids to normal and leukemic cell lines[外文期
刊] 1993
24.Wu H L;Huang C H;Chem S H Micellar electrokinetic chromatography of scopolam in related
anticholinergics 1998
25.Zhou H L;Wei L X;Yang D H Determination of alkaloids in coptis-cinnamormum compatibility by
capillary electrophoresis 1999(05)
26.Sun S W;Lee S S;Chen L Y Separation of aporphine alkaloids by micellar electrokinetic
chromatography[外文期刊] 1997
27.Lee M C;Chuang W C;Sheu S J Determination of the alkaloids in Evodiae Fructus by capillary
electrophoresis[外文期刊] 1996(1)
28.Monnerville A L Determination of capsaicim and dihydrocapsaicin by micellar electrokinetic
capillary chromatography and its application to various species of Capsicum,Solanaceae 1999
29.Akada Y;Kurogi M Determination of cinchona alkaloids in Cinchona bark by capillary
electrophoresis[外文期刊] 1997(12)
30.Liu Y M;Shuenn J S Determination of ephedrine and pseudoephedrine in Chinese herbal preparations
by capillary electrophoresis 1993

本文读者也读过(10条)
1. 韩丽君.钱传范 高效毛细管电泳在农药分析中的应用[会议论文]-2003
2. 王德先 高效毛细管电泳分析鉴定中药材[学位论文]2000
3. 王青虎.奥乌力吉.包建华.WANG Qing-hu.AO Wu-li-ji.BAO Jian-hua 高效毛细管电泳法同时测定小白蒿5种黄
酮类化合物的含量[期刊论文]-中国实验方剂学杂志2011,17(16)
4. 胡成刚.高言明.王柳卜.孙济平.贾宪生.HU Cheng-gang.GAO Yan-ming.WANG Liu-bu.SUN Ji-ping.JIA Xian-
sheng 高效毛细管电泳法测定三棵针中3种生物碱的含量[期刊论文]-中国实验方剂学杂志2011,17(18)
5. 魏鹏.查学强.罗建平 高效毛细管电泳法测定吲哚乙酸氧化酶的活力[期刊论文]-安徽农业科学2008,36(8)
6. 许庆平.王蕾.何友昭.XU Qing-ping.WANG Lei.HE You-zhao 毛细管区带电泳富集分离烟草生物碱[期刊论文]-
中国科学技术大学学报2006,36(10)
7. 刘春海.杨永华.王实强 温脾汤附子先煎、大黄后下的研究[期刊论文]-中草药2003,34(6)
8. 王洁.曹冲.张一鸣.陈安家.WANG Jie.CAO Chong.ZHANG Yi-ming.CHEN An jia HPCE测定脑力宝丸中远志皂苷元
和远志酸[期刊论文]-中国实验方剂学杂志2011,17(7)
9. 赵兴玲.王巍.曹秋娥 测定羟自由基的高效毛细管电泳研究[会议论文]-2006
10. 杨伟峰.赵维良 胶束电动毛细管色谱法测定西洋参中人参皂苷Rb1,Re的含量[期刊论文]-中国中药杂志
2003,28(12)

引证文献(6条)
1.郭兴辉.刘伟 HPCE法测定夏枯草中咖啡酸含量[期刊论文]-中国药事 2010(2)
2.刘训红.宋建平.李俊松.蔡宝昌.韩乐.傅兴圣 非水毛细管电泳测定黄柏饮片中4种生物碱的含量[期刊论文]-中成
药 2010(11)
3.黄玉芝.房娟娟.李金.闫滨 高效毛细管电泳法测定清胃黄连丸中盐酸小檗碱含量[期刊论文]-中国药业 2011(19)
4.刘玉婕.李国玉.杨炳友.匡海学 三种黄酮类化合物在高效毛细管电泳中电泳行为的研究[期刊论文]-世界科学技
术-中医药现代化 2006(4)
5.李俊松.刘训红.蔡宝昌.张月婵.傅兴圣.尹娣 非水毛细管电泳测定黄连饮片中5种生物碱[期刊论文]-色谱
2010(4)
6.阮磊.王艳红.文汉 高三尖杉酯碱注射液含量的毛细管电泳法测定[期刊论文]-中国农学通报 2008(5)


本文链接：http://d.wanfangdata.com.cn/Periodical_zcy200512050.aspx