全 文 ：基金项目：教育部“长江学者和创新团队发展计划”资助（ＩＲＴ０８７１）；新疆名医名方与特色方剂学实验室开放课题资助（ＸＪＤＸ０９１０－２０１０－０１）
作者简介：裴凌鹏（１９７６－），男，医学博士，副研究员，研究方向：民族医药与临床学，Ｅ－ｍａｉｌ：ｌｐｐｅｉ＠ｈｏｔｍａｉｌ．ｃｏｍ。
新疆紫草粗提物对 ＭＧＣ－８０人胃癌细胞的
体外作用研究
裴凌鹏１，田树革２，申刚义１，黄秀兰１，郑玲玲１，白　岩１
（１中央民族大学国家民委－教育部中国少数民族传统医学重点实验室，北京　１０００８１；２新疆医科大学中医学院，乌鲁木齐　８３００１１）
摘要：目的　研究不同浓度的紫草粗提物（ＳＥ）对 ＭＧＣ－８０胃癌细胞的作用。方法　荧光显微镜观察细胞形
态的变化；ＭＴＴ法检测不同浓度ＳＥ培养细胞后细胞的存活率；划痕试验检测不同浓度的ＳＥ对细胞迁移力的影
响；流式细胞仪检测细胞周期和凋亡率。结果　不同浓度ＳＥ可诱导 ＭＧＣ－８０细胞凋亡，不同浓度（０、１、２、３、４、
５ｍｇ／ｍＬ）ＳＥ处理的细胞存活率分别为［２４ｈ：（１００．００±２．１２）、（９８．１５±６．２０）、（９７．６２±２．１６）、（８５．１１±２．３０）、
（７２．４０±３．５２）、（６３．１７±２．４９）；４８ｈ：（１００．００±２．２１）、（９５．０２±１．６２）、（９２．２０±１．７０）、（６３．１８±２．５１）、（３０．２８±
２．１７）、（２２．１９±２．２６）；７２ｈ：（１００．００±１．１１）、（９２．１２±２．７１）、（９２．８１±２．３３）、（５６．３０±１．８２）、（２２．０１±１．５２）、
（１９．８５±２．２９）；９６ｈ：（１００．００±１．５９）、（９３．７０±２．２６）、（９１．２６±３．１７）、（５３．７２±２．０９）、（１９．４９±２．１１）、（１３．６２±
１．７３）；１２０ｈ：（１００．００±１．２９）、（９５．１７±１．１８）、（９２．７４±１．９８）、（７４．０５±３．４０）、（１８．１２±３．０３）、（８．０９±０．７８）；
１４０ｈ：（１００．００±２．２７）、（９６．２１±２．２６）、（９３．３１±２．１２）、（７３．４５±３．０６）、（２２．６６±１．４９）、（１２．３６±１．２５）；１６８ｈ：
（１００．００±１．３５）、（９８．６０±２．１７）、（９６．２７±１．８０）、（７５．３０±１．７２）、（２４．１３±１．７０）、（１１．８９±２．１２）］且细胞向划痕
区的愈合速度随着ＳＥ浓度（０、１、２、３、４、５ｍｇ／ｍＬ）的增高不断减慢［２４ｈ：（３５．２３±２．０１）、（２０．１７±２．０３）、（１７．４０
±２．０１）、（１０．３１±２．１０）、（７．２０±１．８０）、（４．１８±２．０８）；４８ｈ：（５５．１０±２．１２）、（３０．２１±２．３０）、（２３．６８±１．８９）、
（１２．０１±２．１１）、（４．８８±２．１５）、（１．２０±１．７９）；７２ｈ：（６４．０１±２．４３）、（４１．０２±２．３０）、（３０．１１±２．２６）、（１９．３０±
１．６１）、（３．５４±１．０６）、（０．８１±０．６０）；９６ｈ：（７３．２８±２．７１）、（６０．１１±２．５８）、（４３．９０±２．０５）、（１８．０１±２．１２）、（８．７１
±１．３５）、（０．６５±０．７１）］；当ＳＥ的浓度≥３ｍｇ／ｍＬ时，细胞周期 Ｇ１期比例上升（浓度＝３ｍｇ／ｍＬ时，Ｇ１为
７０．２％、浓度＝４ｍｇ／ｍＬ时，Ｇ１为６３．９％、浓度＝５ｍｇ／ｍＬ时，Ｇ１为８０．３％），并伴随Ｓ期比例下降（浓度＝
３ｍｇ／ｍＬ时，Ｓ为２１．０％、浓度＝４ｍｇ／ｍＬ时，Ｓ为１２．２％、浓度＝５ｍｇ／ｍＬ时，Ｓ为１３．８％）。结论　紫草ＳＥ能
够诱导 ＭＧＣ－８０细胞凋亡及改变细胞周期分布。
关键词：紫草粗提物；ＭＧＣ－８０；细胞凋亡；半数抑制剂量
中图分类号：Ｒ９６６　　文献标识码：Ａ　　文章编号：１００９－５５５１（２０１２）０４－０４８３－０４
Ｅｆｆｅｃｔｓ　ｏｆ　ｓｈｉｋｏｎｉｎ　ｅｘｔｒａｃｔ　ｏｎ　ＭＧＣ－８０ｃｅｌ　ｓｔｒａｉｎ
ＰＥＩ　Ｌｉｎｇ－ｐｅｎｇ１，ＴＩＡＮ　Ｓｈｕ－ｇｅ２，ＳＨＥＮ　Ｇａｎｇ－ｙｉ　１，ＨＵＡＮＧ　Ｘｉｕ－ｌａｎ１，ＺＨＥＮＧ　Ｌｉｎｇ－ｌｉｎｇ１，ＢＡＩ　Ｙａｎ１
（１　Ｓｔａｔｅ　Ｎａｔｉｏｎａｌｉｔｉｅｓ　Ａｆｆａｉｒｓ　Ｃｏｍｍｉｓｓｉｏｎ　ａｎｄ　Ｄｅｐａｒｔｍｅｎｔ　ｏｆ　Ｅｄｕｃａｔｉｏｎａｌ　Ｋｅｙ　Ｌａｂ　ｏｆ
Ｍｉｎｏｒｉｔｙ　Ｔｒａｄｉｔｉｏｎａｌ　Ｍｅｄｉｃｉｎｅ，Ｍｉｎｚｕ　Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｙ　ｏｆ　Ｃｈｉｎａ，Ｂｅｉｊｉｎｇ１０００８１，Ｃｈｉｎａ；２　Ｃｏｌｌｅｇｅ　ｏｆ
Ｃｈｉｎｅｓｅ　Ｔｒａｄｉｔｉｏｎａｌ　Ｍｅｄｉｃｉｎｅ，Ｘｉｎｊｉａｎｇ　Ｍｅｄｉｃｉｎｅ　Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｙ，Ｕｒｕｍｑｉ　８３００１１，Ｃｈｉｎａ）
Ａｂｓｔｒａｃｔ：Ｏｂｊｅｃｔｉｖｅ　Ｔｏ　ｏｂｓｅｒｖｅ　ｔｈｅ　ｅｆｆｅｃｔｓ　ｏｆ　Ｓｈｉｋｏｎｉｎ　ｅｘｔｒａｃｔ（ＳＥ）ｗｉｔｈ　ｄｉｆｆｅｒｅｎｔ　ｄｏｓａｇｅｓ　ｏｎ　ｔｈｅ　ｉｎｈｉｂｉ－
ｔｉｏｎ　ａｃｔｉｏｎ　ｏｆ　ｄｉｖｉｓｉｏｎ　ｏｆ　ＭＧＣ－８０ｃｅｌ　ｓｔｒａｉｎ　ｃｕｌｔｕｒｅ．Ｍｅｔｈｏｄｓ　Ｕｓｉｎｇ　ｔｈｅ　ｍｅｔｈｏｄｓ　ｏｆ　ｃｅｌ　ｃｕｌｔｕｒｅ，ＭＴＴ，
　第３５卷　第４期 新 疆 医 科 大 学 学 报 Ｖｏｌ．３５　ＮＯ．４
　２０１２年４月 Ｊｏｕｒｎａｌ　ｏｆ　Ｘｉｎｊｉａｎｇ　Ｍｅｄｉｃａｌ　Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｙ Ａｐｒ．２０１２
ＦＡＣＳ，ａｎｄ　ｓｃｒａｔｃｈ　ｔｅｓｔ　ｔｏ　ｒｅｓｅａｒｃｈ　ｔｈｅ　ｅｆｆｅｃｔ　ｏｆ　ＳＥ　ｏｎ　ｃｅｌ′ｓ　ｃｙｃｌｅ　ａｎｄ　ａｐｏｐｔｏｓｉｓ　ｏｆ　ＭＧＣ－８０ｃｅｌ　ｓｔｒａｉｎ．Ｒｅ－
ｓｕｌｔｓ　Ｔｈｅ　ｒｅｓｕｌｔｓ　ｓｈｏｗｅｄ　ｔｈａｔ　ｉｔ　ｃａｎ　ｅｎｈａｎｃｅ　ｔｈｅ　ｅｆｆｅｃｔｓ　ｏｆ　ＳＥ（≥３ｍｇ／ｍＬ）ｉｎ　ｉｎｃｒｅａｓｉｎｇ　Ｇ１ｐｅｒｉｏｄ（ｔｈｅ
ｃｏｎｔｅｎｔ＝３ｍｇ／ｍＬ，Ｇ１＝７０．２％，ｔｈｅ　ｃｏｎｔｅｎｔ＝４ｍｇ／ｍＬ，Ｇ１＝６３．９％，ｔｈｅ　ｃｏｎｔｅｎｔ＝５ｍｇ／ｍＬ，Ｇ１＝
８０．３％）ａｎｄ　ｄｅｃｒｅａｓｉｎｇ　Ｓ　ｐｅｒｉｏｄ（ｔｈｅ　ｃｏｎｔｅｎｔ＝３ｍｇ／ｍＬ，Ｓ＝２１．０％，ｔｈｅ　ｃｏｎｔｅｎｔ＝４ｍｇ／ｍＬ，Ｓ＝１２．２％，
ｔｈｅ　ｃｏｎｔｅｎｔ＝５ｍｇ／ｍＬ，Ｓ＝１３．８％）ｏｆ　ｃａｎｃｅｒ　ｃｅｌｓ　ｒｅｍａｒｋａｂｌｙ，ａｎｄ　ｄｅｃｒｅａｓｅ　ｔｈｅ　ｓｕｒｖｉｖａｌ　ｐｒｏｐｏｒｔｉｏｎ　ｏｆ
ＭＧＣ－８０ｃｅｌｓ　ｕｎｄｅｒ　ｄｉｆｆｅｒｅｎｔ　ｃｏｎｔｅｎｔ　ｏｆ　ＳＥ［２４ｈ：（１００．００±２．１２），（９８．１５±６．２０），（９７．６２±２．１６），
（８５．１１±２．３０），（７２．４０±３．５２），（６３．１７±２．４９）；４８ｈ：（１００．００±２．２１），（９５．０２±１．６２），（９２．２０±
１．７０），（６３．１８±２．５１），（３０．２８±２．１７），（２２．１９±２．２６）；７２ｈ：（１００．００±１．１１），（９２．１２±２．７１），（９２．８１
±２．３３），（５６．３０±１．８２），（２２．０１±１．５２），（１９．８５±２．２９）；９６ｈ：（１００．００±１．５９），（９３．７０±２．２６），
（９１．２６±３．１７），（５３．７２±２．０９），（１９．４９±２．１１），（１３．６２±１．７３）；１２０ｈ：（１００．００±１．２９），（９５．１７±
１．１８），（９２．７４±１．９８），（７４．０５±３．４０），（１８．１２±３．０３），（８．０９±０．７８）；１４０ｈ：（１００．００±２．２７），（９６．２１±
２．２６），（９３．３１±２．１２），（７３．４５±３．０６），（２２．６６±１．４９），（１２．３６±１．２５）；１６８ｈ：（１００．００±１．３５），（９８．６０±
２．１７），（９６．２７±１．８０），（７５．３０±１．７２），（２４．１３±１．７０），（１１．８９±２．１２）］．Ｃｏｎｃｌｕｓｉｏｎ　ＳＥ　ｍａｙ　ｅｎｈａｎｃｅ　ｏｂｖｉ－
ｏｕｓｌｙ　ｔｈｅ　ｉｎｈｉｂｉｔｉｏｎ　ｅｆｅｃｔｓ　ｏｆ　ｃｈｅｍｏｔｈｅｒａｐｙ　ｏｎ　ＭＧＣ－８０ｔｕｍｏｒ　ｃｅｌ　ｄｉｖｉｓｉｏｎ　ａｎｄ　ｉｎｄｕｃｉｎｇ　ａｐｏｐｔｏｓｉｓ．
Ｋｅｙ　ｗｏｒｄｓ：ｓｈｉｋｏｎｉｎ　ｅｘｔｒａｃｔ；ＭＧＣ－８０；ｃｅｌ　ａｐｏｐｔｏｓｉｓ；ＩＣ５０
　 　 紫 草 为 紫 草 科 植 物 新 疆 紫 草 （Ａｒｎｅｂｉａ
ｅｕｃｈｒｏｍａ（Ｒｏｙｌｅ）Ｊｏｈｎｓｔ．）或内蒙紫草（Ａｒｎｅｂｉａ
ｇｕｔｔａｔａ　Ｂｕｎｇｅ）的干燥根，主要分布于新疆，其具有
凉血活血、解毒透疹等功效［１－２］。传统中医认为，紫
草有凉血、活血、解毒透疹功效，可用于治疗血热毒
盛、麻疹不透、湿疹［３］。现代医学研究发现，紫草具
有抗肿瘤、抗菌、抗病毒、抗艾滋病毒、解热、止血、降
血糖等广泛药理作用［４－５］。本实验研究的目的主要
是观察不同浓度的紫草提取物（ＳＥ）对人胃癌细胞
ＭＧＣ－８０的作用及毒性，为临床上选择用药剂量的
合理范围提供依据。
１　材料与方法
１．１　细胞培养及分组　人胃癌细胞 ＭＧＣ－８０细胞
株（购自协和医科大学细胞中心），用含１００ｇ／Ｌ小
牛血清的ＲＰＭ　Ｉ－１６４０培养基培养，加入１００Ｕ／ｍＬ
青霉素。１００ｍｇ／ｍＬ链霉素，在３７℃、体积分数为
５％的ＣＯ２ 培养箱培养，取细胞呈对数生长期时进
行实验。按ＳＥ的浓度０、１、２、３、４、５ｍｇ／ｍＬ分为
正常组和不同浓度组。
１．２　方法
１．２．１　凋亡细胞形态观察　不同浓度的ＳＥ处理后
２４ｈ，磷酸缓冲液漂洗３次；加入体积分数为７５％的
冰乙醇固定１５ｍｉｎ；ＰＢＳ漂洗３次；细胞重悬于 Ｈｏ－
ｅｃｈｓｔ　３３４２荧光染液（５ｇ／ｍＬ　ＰＢＳ配制）中，避光染
色１５ｍｉｎ；ＰＢＳ漂洗３次，加入少许ＰＢＳ，荧光显微镜
（紫外激发）观察细胞核的形态。凋亡细胞呈蓝色且
荧光强度增强，核染色质凝集、边缘化。
１．２．２　细胞生长活性检测　调整细胞浓度后，每孔
２００μＬ细胞悬液接种于９６孔板中，加入不同浓度
的ＳＥ，同时设有空白及阴性对照组，于３７℃、体积
分数为５％的ＣＯ２ 培养箱中培养２４ｈ，磷酸缓冲液
（ＰＢＳ）洗３遍，每孔加入无血清培养液１８０μＬ、
ＭＴＴ（５ｍｇ／Ｌ，ｐＨ　７．４，ＰＢＳ配制）２０μＬ继续培养
４ｈ后，取出，１０　０００ｒ／ｍｉｎ离心５ｍｉｎ，弃上清，每孔
加入ＤＭＳＯ１５０μＬ振荡器振荡１０ｍｉｎ，充分溶解蓝
紫色结晶，用空白孔调零，在酶标仪上用５７０ｎｍ波
长测定各孔的ＯＤ值。未受非聚焦超声辐照正常培
养的细胞生长活性为１００％，以此为标准换算各组
细胞的存活率，根据７ｄ的数据描绘不同浓度ＳＥ作
用后细胞生长曲线。按公式计算：存活率（％）＝
（ＯＤ实验孔÷ＯＤ阴性对照）×１００％。
１．２．３　不同浓度的ＳＥ对细胞迁移力的影响　将
ＭＧＣ－８０细胞接种于２４孔板内培养，在细胞层中纵
向划痕，造成培养细胞缺损区域带，划痕后ＰＢＳ洗３
次，加入不同浓度的ＳＥ继续培养。以此时作为划
痕后零时，镜下观察不同时间段划痕处细胞的覆盖
４８４ 新 疆 医 科 大 学 学 报 第３５卷　
情况。随机测量８点垂直于划痕方向的宽度，计算
８点的均值作为实验的初始划痕宽度值。按公式计
算该划痕不同时间点的愈合速率：愈合速率＝（初始
划痕宽度值－相应点划痕宽度值）／初始划痕宽度值
×１００％。
１．２．４　ＭＧＣ－８０细胞凋亡周期检测　流式细胞仪
（美国Ｂｅｃｋｍａｎ）检测数据由仪器自带软件分析细
胞凋亡率，Ｍｕｌｔｉｃｙｃｌｅ软件分析细胞周期。
１．３　统计学处理　应用ＳＰＳＳ１０．０软件 Ｏｎｅ－ｗａｙ
ＡＮＯＶＡ分析ＳＥ处理后多个样本存活率均数的多
重比较，分析ＳＥ作用的半数抑制剂量（ＩＣ５０）。多个
样本Ｒ×Ｃ表资料的χ
２ 检验。
２　结果
２．１　凋亡细胞形态观察　不同浓度的ＳＥ培养
２４ｈ后，可见正常的活细胞呈均匀弥散的蓝色；细胞
核大小、结构比较均匀一致，表明其对正常细胞在０
～５ｍｇ／ｍＬ剂量范围内没有毒性作用。随着ＳＥ浓
度的增加凋亡细胞数量逐渐增多，尤其是４ｍｇ／ｍＬ
和５ｍｇ／ｍＬ组较多的细胞呈边界不清，体积缩小，
核固缩，染色质凝集、边缘化，甚至细胞破碎，凋亡小
体形成。
２．２　细胞生长活性检测　与正常组比较，不同浓度
ＳＥ处理的不同时间点之间细胞的存活率差异有显
著性 （Ｐ＜０．０１）。随着ＳＥ浓度的增加细胞的存活
率明显降低；ＳＥ浓度分组和不同时间组之间存在交
互效应 （Ｆ＝１６．１５，Ｐ＜０．０１）（表１）。不同时间点
ＳＥ致 ＭＧＣ－８０细胞增殖的ＩＣ５０在２４ｈ时最高，为
５．７１１ｍｇ／ｍＬ（表２）。
表１　ＳＥ不同浓度下不同时间点细胞存活率比较（ｎ＝３）
处理时间／ｈ
ＳＥ浓度／（ｍｇ·ｍＬ－１）
０　 １　 ２　 ３　 ４　 ５
Ｆ值 Ｐ
２４　 １００．００±２．１２　 ９８．１５±６．２０　 ９７．６２±２．１６　 ８５．１１±２．３０　 ７２．４０±３．５２　 ６３．１７±２．４９　 ２１．５２ ＜０．０１
４８　 １００．００±２．２１　 ９５．０２±１．６２　 ９２．２０±１．７０　 ６３．１８±２．５１　 ３０．２８±２．１７　 ２２．１９±２．２６　 １３０．８０ ＜０．０１
７２　 １００．００±１．１１　 ９２．１２±２．７１　 ９２．８１±２．３３　 ５６．３０±１．８２　 ２２．０１±１．５２　 １９．８５±２．２９　 １６６．０９ ＜０．０１
９６　 １００．００±１．５９　 ９３．７０±２．２６　 ９１．２６±３．１７　 ５３．７２±２．０９　 １９．４９±２．１１　 １３．６２±１．７３　 １８９．１３ ＜０．０１
１２　 １００．００±１．２９　 ９５．１７±１．１８　 ９２．７４±１．９８　 ７４．０５±３．４０　 １８．１２±３．０３　 ８．０９±０．７８　 ５５４．１６ ＜０．０１
１４０　 １００．００±２．２７　 ９６．２１±２．２６　 ９３．３１±２．１２　 ７３．４５±３．０６　 ２２．６６±１．４９　 １２．３６±１．２５　 ５２６．０３ ＜０．０１
１６８　 １００．００±１．３５　 ９８．６０±２．１７　 ９６．２７±１．８０　 ７５．３０±１．７２　 ２４．１３±１．７０　 １１．８９±２．１２　 ４８０．５８ ＜０．０１
Ｆ值 ０．０００　 ２．１６　 ４．８９　 １６．１５　 ３３．２０　 ２６．４０ （Ｆ＝１６．１５，
Ｐ ＞０．０５ ＞０．０５ ＜０．０１ ＜０．００１ ＜０．００１ ＜０．００１ Ｐ＜０．０１）＊
　　注：＊交互效应的Ｆ值和Ｐ 值，各时间组相比，Ｐ＜０．０５。
表２　ＳＥ对细胞的半数抑制剂量
培养时间／ｈ　 ＩＣ５０／（ｍｇ·ｍＬ－１）
２４　 ５．７１１
４８　 ４．４７９
７２　 ３．８２３
９６　 ３．４９０
１２０　 ３．８６１
１４４　 ３．９７９
１６８　 ３．９９８
２．３　不同浓度的ＳＥ对细胞迁移力的影响　与阴
性对照组比较，在同一时间段随着ＳＥ浓度的增高
ＭＧＣ－８０细胞向划痕区的迁移速度不断减慢，９６ｈ
时０～４ｍｇ／ｍＬ组划痕区均出现不同程度的变窄，
而５ｍｇ／ｍＬ组细胞划痕区反而增宽，镜下可见部
分细胞坏死脱落（表３）。
表３　不同浓度的ＳＥ对细胞迁移力的影响（ｎ＝８）
处理时间／ｈ
ＳＥ浓度／（ｍｇ·ｍＬ－１）
０　 １　 ２　 ３　 ４　 ５
Ｆ值 Ｐ
２４　 ３５．２３±２．０１　 ２０．１７±２．０３　 １７．４０±２．０１　 １０．３１±２．１０　 ７．２０±１．８０　 ４．１８±２．０８　 ６２．１７ ＜０．０１
４８　 ５５．１０±２．１２　 ３０．２１±２．３０　 ２３．６８±１．８９　 １２．０１±２．１１　 ４．８８±２．１５　 １．２０±１．７９　 １２８．８８ ＜０．０１
７２　 ６４．０１±２．４３　 ４１．０２±２．３０　 ３０．１１±２．２６　 １９．３０±１．６１　 ３．５４±１．０６　 ０．８１±０．６０　 １４０．３８ ＜０．０１
９６　 ７３．２８±２．７１　 ６０．１１±２．５８　 ４３．９０±２．０５　 １８．０１±２．１２　 ８．７１±１．３５　 ０．６５±０．７１　 １５８．２５ ＜０．０１
Ｆ值 ３６１．１１　 １０３．４７　 ４２．１９　 ２３．２２　 ３．１８　 ３．３０ （Ｆ＝３８．０８，
Ｐ ＜０．０１ ＜０．０１ ＜０．０１ ＜０．０１ ＜０．０１ ＜０．０１　 Ｐ＜０．０１）＊
　　注：＊交互效应的Ｆ值和Ｐ 值，各时间组相比，Ｐ＜０．０５。
５８４　第４期 裴凌鹏等：新疆紫草粗提物对 ＭＧＣ－８０人胃癌细胞的体外作用研究
２．４　细胞周期分布及凋亡率检测　各组细胞周期
的变化差异有统计学意义 （Ｐ＜０．０１），当ＳＥ浓度
≥３ｍｇ／ｍＬ时，Ｇ１比例的上升并伴随着Ｓ期比例
的下降；同时可见当ＳＥ的浓度＜３ｍｇ／ｍＬ时对
ＭＧＣ－８０细胞凋亡率的影响不大，而ＳＥ的浓度为
４、５ｍｇ／ｍＬ 时细胞的凋亡率明显升高，分别为
２５．１％和３２．３％（表４）。
表４　不同浓度ＳＥ作用 ＭＧＣ－８０细胞后２４ｈ的流式
细胞检测结果
浓度／ｍｇ·ｍＬ－１ 凋亡率／％
周期／％
Ｇ１ Ｇ２ Ｓ
０　 １．６　 ５５．７　 １１．２　 ２６．１
１　 ２．２　 ４７．３　 ９．４　 ４１．３
２　 ２．９　 ５０．７　 ８．９　 ３３．４
３　 ２．７　 ７０．２　 ６．８　 ２１．０
４　 ２５．１　 ６３．９　 ２０．９　 １２．２
５　 ３２．３　 ８０．３　 ５．９　 １３．８
３　结论
近年来ＳＥ已被广泛运用于临床治疗各种疾
病，尤其是对肿瘤的使用，但对于ＳＥ的用药剂量安
全说法不一［６－７］。以往抗肿瘤药物的治疗窗口较
窄，药物剂量对正常组织有不同程度的毒性，主要临
床毒副作用为胃肠道的不良反应及对肝脏的毒性
［８］。
紫草作为一种天然植物药，其成分为多种萘醌
类色素，如紫草素、去氧紫草素、消旋乙酰紫草素、
１－甲氧基乙酰紫草素、β，β－二甲基丙烯紫草素、２，３－
二甲基戊烯酰紫草素等，不同临床用药剂量报道说
法不一，安全剂量范围不定［９－１０］。
本实结果初步表明：ＳＥ对 ＭＧＣ－８０细胞的生
长和愈合抑制作用明显。随着ＳＥ浓度的增加细胞
存活率和愈合速度逐渐下降，１、２、３ｍｇ／ｍＬ组在
ＳＥ作用９６ｈ时细胞的存活率降至最低，１２０ｈ细胞
的存活率开始回升；４、５ｍｇ／ｍＬ组则在ＳＥ作用
１２０ｈ时细胞的存活率降至最低，１４４ｈ开始回升。
这可能是由于随着时间的延长ＳＥ逐渐被受试细胞
所分解外排，从而导致溶液中药物浓度降低，受试细
胞逐渐恢复增殖能力所致。此外用药后２４ｈＩＣ５０较
其他时间高，表明该阶段ＳＥ对细胞的抑制作用较
弱，毒性较小。进一步分析ＳＥ作用２４ｈ时细胞周
期及凋亡率的变化，发现当ＳＥ浓度≥３ｍｇ／ｍＬ时
细胞的周期均发生明显的变化，即Ｇ１期的比例明
显升高而Ｓ期的比例下降。综上所述，新疆紫草提
取物可在体外有效抑制人 ＭＧＣ－８０胃癌细胞的增
殖，并在一定浓度范围内呈现量效关系，但就其抑制
肿瘤的作用机制还需深入研究。
参考文献：
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ｅｘｔｒａｃｔ　ｏｆ　Ｏｎｏｓｍａ　ｐａｎｉｃｕｌａｔａ　Ｂｕｒ．ｅｔ　Ｆｒ．，Ａｒｎｅｂｉａ　Ｅｕｃｈｒｏｍａ
（Ｒｏｙｌｅ）Ｊｏｈｎｓｔ．ａｎｄ　Ｌｉｔｈｏｓｐｅｒｍｕｍ　Ｅｒｙｔｈｒｏｒｈｉｚｏｎ　Ｓｉｅｂ．ｅｔ
Ｚｕｃｅ［Ｊ］．Ｃｈｉｎ　Ｊ　Ｅｔｈｎｏｍｅｄ　Ｅｔｈｎｏｐｈａｒｍ，２００２，５６（３）：１７４－
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［收稿日期：２０１１－１０－２０］
６８４ 新 疆 医 科 大 学 学 报 第３５卷