全 文 : 韩丽荣 等/灰树花胞外多糖的结构及免疫调节活性
Chinese Journal of Biotechnology
http://journals.im.ac.cn/cjbcn May 25, 2016, 32(5): 648−656
DOI: 10.13345/j.cjb.150399 ©2016 Chin J Biotech, All rights reserved
Received: September 15, 2015; Accepted: November 30, 2015
Supported by: Key Technologies Research and Development Program of China (No. 2012BAD33B04), Key Projects of Tianjin Natural
Science Foundation (No. 13JCZDJC29800).
Corresponding author: Chunling Wang. Fax/Tel: +86-22-60912421; E-mail: wangchunling@tust.edu.cn
国家科技支撑计划 (No. 2012BAD33B04),天津应用基础重点项目 (No. 13JCZDJC29800) 资助。
网络出版时间:2016-01-07 网络出版地址:http://www.cnki.net/kcms/detail/11.1998.Q.20160107.1443.001.html
648 生 物 工 程 学 报
灰树花胞外多糖的结构及免疫调节活性
韩丽荣,程代,王莉蕊,王春玲
天津科技大学 食品工程与生物技术学院,天津 300457
韩丽荣, 程代, 王莉蕊, 等. 灰树花胞外多糖的结构及免疫调节活性. 生物工程学报, 2016, 32(5): 648–656.
Han LR, Cheng D, Wang LR, et al. Structure and immunomodulatory activity of extracellular polysaccharide from Grifola
frondosa. Chin J Biotech, 2016, 32(5): 648–656.
摘 要 : 对灰树花胞外多糖 A 组分 (EXGFP-A) 进行结构分析和免疫活性的研究。结构分析结果表明,
EXGFP-A 是一种主要含有葡萄糖的吡喃型中性多糖。气相结果说明 EXGFP-A 的单糖组成为鼠李糖、阿拉伯
糖、木糖、甘露糖、葡萄糖、半乳糖,摩尔比为 0.28∶0.31∶0.30∶0.06∶7.98∶0.61。MTT(3-(4,5-Dimethylthiazol-
2-yl)-2,5- diphenyltetrazo-lium bromide)比色实验表明,当 EXGFP-A浓度为 80 μg/mL,作用 48 h时,RAW264.7
细胞增殖指数达到最大值,为 137.5%。吖啶橙 (AO) 染色结果表明 EXGFP-A 能够激活 RAW264.7 细胞,增
强细胞内部核酸代谢水平。EXGFP-A 在一定浓度范围内,可以提高 RAW264.7 细胞中 NO 的释放量,上调细
胞内 TNF-α、IL-1β、IL-6、IL-12、IFN-γ细胞因子以及细胞中 iNOS的 mRNA水平的表达。结果表明,EXGFP-A
具有一定的免疫调节活性,为灰树花胞外多糖的结构分析和应用提供了科学依据。
关键词 : 灰树花多糖,结构分析,RAW264.7细胞,免疫活性
食品生物技术
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Structure and immunomodulatory activity of extracellular
polysaccharide from Grifola frondosa
Lirong Han, Dai Cheng, Lirui Wang, and Chunling Wang
College of Food Engineering and Biological Technology, Tianjin University of Science & Technology, Tianjin 300457, China
Abstract: We aimed at analyzing the structure of extracellular polysaccharide A from Grifola frondosa (EXGFP-A) and
testing its immunomodulatory activity. Structural analysis shows that EXGFP-A was a contained α-D-glucoside bond and
pyranose ring. GC analysis reveals that EXGFP-A was mainly composed of rhamnose, arabinose, xylose, mannose, glucose,
galactose, by the molar ratio of 0.28:0.31:0.30:0.06:7.98:0.61. The results of MTT(3-(4,5-Dimethylthiazol-2-yl)-
2,5-diphenyltetrazolium bromide) assay indicates when EXGFP-A was at a concentration of 80 μg/mL and treatment time
of 48 h, RAW264.7 cells proliferation index reached a maximum of 137.5%. Meanwhile, the AO staining showed that
EXGFP-A activated RAW264.7 cells and improved the level of intracellular nucleic acid metabolism. In addition, in a
certain range of concentration, EXGFP-A was able to increase the release of NO in RAW264.7 cells, and upregulate the
mRNA expression of immunological factor TNF-α, IL-1β, IL-6, IL-12, IFN-γ and iNOS of RAW264.7 cells. Our results
confirm that EXGFP-A had immunomodulatory activity. Our findings provided scientific basis for the structural analysis
and application of Grifola frondosa polysaccharide.
Keywords: Grifola frondosa polysaccharide, structural analysis, RAW264.7 cells, immunomodulatory activity
灰树花 Grifola frondosa又名贝叶多孔菌、
栗蘑,俗称云蕈、日本称舞茸,属担子菌亚门
层菌纲非褶菌目多孔菌科树花菌属。灰树花是
一种药、食兼用的珍稀真菌,具有多种生理活
性[1],如抗肿瘤[2-3]、调节血糖[4]、抗氧化[5]、抗
辐射[6]及免疫调节[7]等。近年来,灰树花的保健
功能及药用价值受到人们重视,并已证明灰树
花多糖是灰树花中主要的活性成分[8-9],但对于
灰树花多糖单一组分的结构分析及免疫活性的
研究还相对较少。巨噬细胞作为一种重要的免疫
细胞广泛分布于机体中,参与机体的特异性和非
特异性免疫反应,可作为免疫活性的研究对象。
本文对分离纯化后的灰树花胞外多糖 A 组
分 (EXGFP-A) 进行了基本的结构分析以及免
疫活性研究,为灰树花胞外多糖的应用提供科
学依据。
1 材料与方法
1.1 材料
Grifola frondosa 菌种:天津科技大学菌种
保藏中心提供,编号 39025。
RAW264.7细胞株:购自中国科学院上海生
命科学研究院生物化学与细胞生物学研究所。
1.2 EXGFP-A 的结构分析
1.2.1 EXGFP-A的红外光谱分析
1 mg EXGFP-A样品以 KBr压片,室温条
件下进行红外扫描测定。
1.2.2 EXGFP-A的扫描电镜分析
取适量冻干的 EXGFP-A 粉末均匀轻薄地
平铺在样品台导电胶的表面,吹去浮样,置于
离子溅射仪中进行真空喷金处理,然后扫描电
镜观察[10]。
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1.2.3 EXGFP-A的单糖组成分析
采用糖醇乙酸酯衍生化方法对 EXGFP-A
的水解产物进行气相色谱测定,通过查阅相关
文献,选择鼠李糖、阿拉伯糖、木糖、甘露糖、
葡萄糖、半乳糖 6 种单糖作为标准品单糖。气
相色谱条件:色谱柱:DB-17(30 m×0.32 mm×
0.5 m);检测器:氢火焰离子化检测器 (FID);
载气:N2,1 mL/min;进样口温度:280 ℃;柱
温:190 ℃;检测器温度:280 ℃。
1.3 EXGFP-A 对 RAW264.7 增殖活性的影响
本实验以小鼠巨噬细胞 RAW264.7 为研究
对象,研究 EXGFP-A 的免疫调节活性。采用
MTT法[11]:EXGFP-A作用 RAW264.7一定时间
后,使用酶标仪测定 570 nm波长处各孔的吸光
度。细胞增殖率=OD 加药/OD 对照×100%[12]。
1.4 EXGFP-A 对 RAW264.7 细胞中 DNA、
RNA 的影响
将无菌洁净的盖玻片置入 6 孔细胞培养板
中,每孔中加入浓度为 5×105 个 /mL 的
RAW264.7细胞悬液 1 mL,待细胞处于完全贴壁
状态后,加入终浓度分别为 0、40、80、160 μg/mL
的 EXGFP-A,37 ℃、5% CO2细胞培养箱中培
养 48 h。当 RAW264.7 细胞培养结束后,取出
细胞爬片,PBS缓冲液洗涤,Carony’s液 (乙醇:
冰醋酸:氯仿=6∶1∶3 (V/V/V)) 固定细胞 10 min,
以 1%醋酸进行酸化,加入 0.01% AO溶液进行
细胞染色,避光条件下室温放置 20 min,
0.1 mol/L 氯化钙溶液分色 30−60 s。PBS缓冲
液洗涤后,将细胞爬片置于洁净的载玻片上,
多功能荧光显微镜下观察并采图。
1.5 EXGFP-A 对 RAW264.7 细胞分泌 NO 的
影响
NO 的合成是巨噬细胞被激活的重要标志
之一。以 NO 标准品的浓度为横坐标,相应吸
光度值为纵坐标,完成标准曲线的绘制。然后
根据标准曲线来计算各组样品中 NO浓度[13]。
1.6 EXGFP-A 对 RAW264.7 细胞分泌细胞因
子及对细胞内 iNOS 表达的影响
1.6.1 RAW264.7细胞 RNA提取及反转录
按照北京全式金生物技术有限公司总 RNA
提取试剂 TransZol 说明书,无菌条件下进行细
胞总 RNA的提取。使用北京全式金公司反转录
试剂盒来进行 cDNA 的合成,步骤严格按照说
明书进行。体系完全混匀后,于 PCR仪上 42 ℃
孵育 30 min,85 ℃加热 5 min,然后反转录合成
cDNA,置于–20 ℃冻存。
1.6.2 聚合酶链反应 (PCR)
采用委托给上海生工生物工程公司合成的
相关系列引物,以反转录合成的 cDNA为模板,
进行聚合酶链式反应,并以 β-actin 为内参。相
关引物序列设计如表 1所示。
本实验中聚合酶链反应体系总体积为 50 μL,
加样体系:cDNA 2 μL、Forward Primer 1 μL、
Reverse Primer 1 μL、10×缓冲液 5 μL、2.5 mmol/L
dNTPs 4 μL、TransTaq HiFi DNA聚合酶 0.5 μL,
最后加入 ddH2O,使体系终体积为 50 μL。PCR
反应条件:94 ℃预变性 4 min;94 ℃变性 30 s,
55−60 ℃退火 30 s,72 ℃延伸 120 s,30−35个
循环;72 ℃总延伸 10 min。
1.6.3 琼脂糖凝胶电泳
琼脂糖凝胶 (1%) 制备:称取 0.4 g琼脂糖
粉末,溶于 40 mL 1×TAE溶液,微波完全融化
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表 1 PCR 引物序列
Table 1 Primers sequence of PCR
Genes Forward Reverse Products (bp)
IFN-γ CACAA GGAGG AACGC TGACT CAGAG CAGGA TGGAA AGGCA 698
TNF-α AGGGG ATTAT GGCTC AGGGT CCCGT AGGGC GATTA CAGTC 626
IL-6 TGTAA CTGGC CTGCA GTAGC TATCT CACCG GCTGG AAGGA 462
IL-12 TCCTC AGGGA AGATG GAGGG GGTCA CAAGA CTACC CAGCC 365
IL-1β GTCGC TCAGG GTCAC AAGAA CAAAG CAATG TGCTG GTGCT 300
iNOS AGGTA AGGAT GGGCA GGGAT TCTCA GGGAT GGGAC TGAGG 500
β-actin GATCG ATGCC GGTGC TAAGA TCCTA TGGGA GAACG GCAGA 270
后,冷却至 50–60 ℃,加入 4 μL核酸染料,充
分摇匀。取 5 μL PCR扩增产物和 2 μL 6×DNA
上样缓冲液混匀后上样。另外,Marker 上样量
为 5 μL。电泳电压设定为 80 V,电泳结束后,
使用凝胶成像仪拍照分析。
2 结果与讨论
2.1 EXGFP-A 的结构分析
2.1.1 EXGFP-A的红外光谱分析
由图 1可知,在 3 600−3 200 cm–1出现一宽
峰是 O-H伸缩振动;2 934 cm–1为 C-H伸缩振
动;1 652 cm–1、1 400−1 200 cm–1是 C-H的变
角振动,以上这几处特征吸收峰证明该化合物
为糖类物质[14]。而在 1 700 cm–1–1 775 cm–1范
围内无明显吸收峰,表明样品中不含羧基,即
该多糖是一种中性糖。1 870–1 540 cm–1范围内
存在的特征吸收峰是属于由 C=O伸缩振动引起
的。1 069 cm–1处的吸收峰表明 EXGFP-A中存
在 3-6-内醚桥,即样品中含有 3-6-内醚-半乳
糖[15],而 852 cm–1处形成的吸收峰表明组成的
单糖为 α-D-葡萄吡喃糖[16],即 EXGFP-A 是属
于吡喃型多糖。此外,807 cm–1处的特征峰则说
明在多糖分子中存在甘露糖苷键[17],619 cm–1
处的吸收峰表明多糖中含有葡萄糖残基。
图 1 EXGFP-A 红外光谱分析图谱
Fig. 1 IR spectroscopic analysis of EXGFP-A.
2.1.2 EXGFP-A的扫描电镜分析
如图 2所示,当粉末状态的 EXGFP-A平铺
在样品台上,经电镜扫描之后,显示出其形态
多为棒状、片层状,并且这些片层结构上附有
许多刺状不规则、大小不均一的碎屑。
2.1.3 EXGFP-A的单糖组成分析
六种标准单糖混合物的气相色谱图如 3A
所示,各标准单糖的分离效果很好。EXGFP-A
的气相色谱分析图如 3B 所示,对比 EXGFP-A
的出峰时间与混合标准单糖的时间,说明
EXGFP-A主要是由葡萄糖所组成,同时含有鼠
李糖、阿拉伯糖、木糖、半乳糖以及少量的甘
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图 2 EXGFP-A 的扫描电镜分析 (×500 和×2 000)
Fig. 2 SEM analysis of EXGFP-A (magnification: 500 and 2 000).
图 3 气相色谱分析图
Fig. 3 Gas chromatography analysis. (A) Standard sugars. (B) EXGFP-A. 1: rhamnose; 2: arab sugar; 3: xylose; 4:
mannose; 5: glucose; 6: galactose; 7: inositol.
露糖。根据峰面积计算出这 6种单糖 (鼠李糖、
阿拉伯糖、木糖、甘露糖、葡萄糖、半乳糖) 的
摩尔比为 0.28∶0.31∶0.30∶0.06∶7.98∶0.61。
这与文献报道[18]的灰树花均一多糖主要含有葡
萄糖相吻合,而且本研究中的 EXGFP-A中葡萄
糖含量最高,和文献报道的研究结果也相一致。
2.2 EXGFP-A 对 RAW264.7 细胞增殖指数的
影响
由 MTT实验[19]检测 EXGFP-A作用浓度对
RAW264.7 细胞增殖指数的影响,结果如图 4A
所示, EXGFP-A 在一定的浓度范围内,
RAW264.7细胞的增殖活性与EXGFP-A的作用浓
度呈正相关。在 EXGFP-A作用浓度为 80 μg/mL
时,RAW264.7 细胞的增殖指数达到最大值
137.5%。如图 4B所示,当 EXGFP-A作用浓度
为 80 μg/mL时,通过不同培养时间 (0、12、24、
36、48、72 h) 作用于 RAW264.7细胞。结果表
明,在 EXGFP-A 作用 48 h 内,细胞的数量呈
现逐渐增加的趋势。当 EXGFP-A作用时间达到
48 h时,增殖效果达到最大。
以上结果说明, EXGFP-A 能够增强
RAW264.7 细胞的增殖活性。EXGFP-A 作用于
RAW264.7 细胞的最佳浓度为 80 μg/mL,最佳
作用时间为 48 h。
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图 4 EXGFP-A 对 RAW264.7 细胞增殖指数的影响
Fig. 4 Effects of EXGFP-A on proliferation index of
RAW264.7 cells. (A) Concentration. (B) Time. n=6,
x s , compared with the control group, *P<0.05,
**P<0. 01.
2.3 细胞形态学观察
吖啶橙 (AO) 是一种能和细胞中的核酸相
结合并产生特异性荧光的染料。当吖啶橙与细
胞核内的 DNA 和 RNA 结合,呈绿色荧光。如
图 5所示,加入 80 μg/mL的 EXGFP-A诱导细
胞 48 h之后,细胞处于激活状态,细胞体积变
大,细胞数目也增多,细胞核区的绿色荧光亮
度增强,说明 80 μg/mL的 EXGFP-A作用下,
RAW264.7细胞被激活,核酸代谢能力增强。
2.4 EXGFP-A 对 RAW264.7 细胞产生 NO 的
影响
巨噬细胞[20]是产生 NO 的重要的免疫细胞
之一,在免疫系统信号转导中,NO作为一个关
键介质,它的合成可作为巨噬细胞被激活的一
个重要标志。
如图 6 所示,处于正常状态的对照组细胞
产生 NO 浓度较低,而加入不同浓度的
EXGFP-A与 RAW264.7细胞共同培养 48 h后,
发现 EXGFP-A 均能够显著促进细胞分泌产生
NO。结果表明,EXGFP-A 能够诱导并且激活
RAW264.7细胞,促进 RAW264.7细胞分泌 NO,
通过增强 RAW264.7 细胞产生 NO 的能力,从
而发挥其免疫调节作用。
图 5 EXGFP-A 作用 RAW264.7 细胞的 AO 染色
(×400)
Fig. 5 AO staining of RAW264.7 treated with
EXGFP-A (×400).
图 6 EXGFP-A 作用浓度对 RAW264.7 细胞 NO 表
达量的影响
Fig. 6 Effects of EXGFP-A concentration on the
production of NO in RAW264.7 cells. n=6, x s ,
compared with the control group, *P<0.05, **P<0. 01.
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2.5 EXGFP-A 对 RAW264.7 细胞免疫因子
mRNA 表达水平的影响
由上述结果可知,EXGFP-A 可以促进
RAW264.7 细胞的增殖活性。本实验进一步从
基因水平检测了 EXGFP-A对 RAW264.7细胞中
细胞因子 TNF-α、IL-1、IL-6、IL-12以及 IFN-γ[21]
的影响,此外还检测了 EXGFP-A对 RAW264.7
细胞中 iNOS[22]在 mRNA水平上的影响。
RT-PCR结果如图 7所示,对照组的正常细
胞处于静息状态,TNF-α、IL-1、IL-6、IL-12、
IFN-γ 和 iNOS 的 mRNA 几乎不表达或表达量
极低。不同浓度的 EXGFP-A (20、40、80、
160 μg/mL) 与 RAW264.7细胞共培养 48 h后,
发现均能显著上调 TNF-α、IL-1、IL-6、IL-12、
IFN-γ 和 iNOS 的产生,在一定的浓度范围内
(20–80 μg/mL),随着 EXGFP-A浓度的增加,细
胞产生 TNF-α、IL-1、IL-6、IL-12、IFN-γ和 iNOS
的 mRNA的表达量均相应增加,当 EXGFP-A作
用浓度达到 80 μg/mL时,表达量均达到最大值。
RT-PCR 结果表明:EXGFP-A 能够激活
RAW264.7细胞,促进 TNF-α、IL-1β、IL-6、IFN-γ
和 IL-12 等细胞因子的分泌以及上调细胞中
iNOS的 mRNA表达水平,并且在一定浓度范围
内具有明显的浓度依赖性。证明 EXGFP-A可以
通过多途径激活 RAW264.7 细胞,增强机体的
免疫活性。
3 结论
灰树花作为近年来开发研究的珍贵真菌之
一,已有相关研究表明其在多种生物活性方面
均有显著功效。国内外对于灰树花的研究主要
集中在灰树花子实体多糖的功能学评价,而有
关灰树花多糖的结构和免疫活性的研究相对较
少。本文对灰树花多糖的单一组分进行结构分
析,并研究其免疫活性。
图 7 EXGFP-A 作用浓度对 RAW264.7 细胞中细胞
因子表达水平的影响
Fig. 7 Effects of EXGFP-A concentration on the
mRNA expression of cytokine in RAW264.7 cells. n=6,
x s , compared with the control group, *P<0.05,
**P<0.01.
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在本研究中,灰树花胞外多糖 EXGFP-A是
一种主要含有葡萄糖的吡喃型中性多糖,单糖
组成为鼠李糖、阿拉伯糖、木糖、甘露糖、葡
萄糖、半乳糖,摩尔比为 0.28: 0.31: 0.30: 0.06:
7.98: 0.61。EXGFP-A能够增强 RAW264.7的细
胞增殖和吞噬活性[23],促进 TNF-α、IL-1β、IL-6、
IFN-γ 和 IL-12 等细胞因子的分泌以及上调细胞
中 iNOS 的 mRNA 表达水平,并且在一定浓度
范围内具有明显的浓度依赖关系。以上结果说
明 EXGFP-A可以通过多途径激活 RAW264.7细
胞,增强机体的免疫活性。
多糖的糖组成和糖苷键类型对生物活性有
一定的影响[24],EXGFP-A主要由 α-D-葡萄吡喃
糖组成,这可能与其免疫活性有着密切的关系。
本文的研究结果证实了灰树花多糖 EXGFP-A
是一种以葡萄糖为主的吡喃型中性多糖,并具
有一定的体外免疫活性,为多糖的结构与活性
的研究提供了理论依据。
REFERENCES
[1] Mayell M. Maitake extracts and their therapeutic
potential. Altern Med Rev, 2001, 6(1): 48−60.
[2] Kodama N, Komuta K, Nanba H. Can maitake MD
fraction aid cancer patients?. Altern Med Rev,
2002, 7(3): 236–239.
[3] Hishida I, Nanba H, Kuroda H. Antitumor activity
exhibited by orally administered extracted from
fruit body of Grifola frondosa. Chem Pharm Bull,
1988, 36(5): 1819−1827.
[4] Kurushima H, Kodama N, Nanba H. Activities of
polysaccharides obtained from Grifola frondosaon
insulin-dependent diabetes mellitus induced by
streptozotocin in mice. Mycoscience, 2000, 41(5):
473–480.
[5] Mau J L, Lin HC, Song SF. Antioxidant properties
of several specialty mushrooms. Food Res Int,
2002, 35(6): 519–526.
[6] Jin GQ, Ye BP, Xi T. Preliminary study on the
antiradiation effect of intracellular grifolan comes
from Grifola frondosa. Pharm Biotechnol, 2003,
10(1): 40–42 (in Chinese).
金国虔, 叶波平, 奚涛. 灰树花胞内多糖抗辐射
作用的初步研究 . 药物生物技术 , 2003, 10(1):
40–42.
[7] Inoue A, Kodama N, Nanba H. Effect of maitake
(Grifola frondosa) D-fraction on the control of T
lymph node Th-1/Th-2 proportion. Bio Pharm Bull,
2002, 25(4): 536–540.
[8] Adachi Y, Okazaki M, Ohno N, et al. Enhancement
of cytokine production by macrophages stimulated
with (1→3)-beta-D-glucan, grifolan (GRN),
isolated from Grifola frondosa. Biol Pharm Bull,
1994, 17(12): 1554–1560.
[9] Nanba H, Hamaguchi A, Kuroda H. The chemical
structure of an antitumor polysaccharide in
fruitbodies of Grifola frondosa (maitake). Chem
Pharm Bull, 1987, 35(3): 1162–1168.
[10] Ni DJ, Chen YQ, Xie BJ, et al. Spectrum, M or
phological and thermal characteristics of OTPS 2–1
in polysaccharides from Oolong Tea. Chem J Chin
Univ, 2004, 25(12): 2263–2268 (in Chinese).
倪德江 , 陈玉琼 , 谢笔钧 , 等 . 乌龙茶多糖
OTPS 2-1 的光谱特性、形貌特征及热特性研究.
高等学校化学学报, 2004, 25(12): 2263–2268.
[11] Peng Y, Li ZJ. Immunostimulating effect and
signal pathway of fungal polysaccharides on
macrophages and dendritic cells. J Food Sci, 2012,
33(15): 318–323 (in Chinese).
彭颖, 李宗军. 菌物多糖对巨噬细胞和树突状细
胞的免疫刺激作用及信号通路. 食品科学, 2012,
33(15): 318–323.
[12] Seewaldt VL, Kim JH, Parker MB, et al.
Dysregulated expression of cyclin D1 in normal
human mammary epithelial cells inhibits
all-trans-retinoic acid-mediated G0/G1-phase arrest
and differentiation in vitro. Exp Cell Res, 1999,
249(1): 70–85.
[13] Hibbs JB Jr, Taintor RR, Vavrin Z, et al. Nitric
ISSN 1000-3061 CN 11-1998/Q Chin J Biotech May 25, 2016 Vol.32 No.5
http://journals.im.ac.cn/cjbcn
656
oxide: a cytotoxic activated macrophage effector
molecule. Biochem Biophys Res Commun, 1988,
157(1): 87–94.
[14] Liu H, Zhang J. Determination of molecular
structure of carboxymethyl pumpkin polysaccharide
by gas chromatography and IR spectroscopy. Chin
J Spectr Lab, 2008, 25(3): 313–318 (in Chinese).
柳红, 张静. 用气相色谱和红外光谱对羧甲基化
南瓜多糖结构的研究. 光谱实验室, 2008, 25(3):
313–318.
[15] Chiovitti A, Bacic A, Craik DJ, et al. A pyruvated
carrageenan from australian specimens of the red
alga Sarconema filiforme. Carbohydr Res, 1998,
310(1/2):77–83.
[16] Sheng JR, Zeng LH, Zhai C, et al. The extraction,
isolation and structure analysis of polysaccharids. J
Guangxi Teach Coll: Nat Sci Ed, 1999, 16(4):
49-54 (in Chinese).
盛家荣,曾令辉,翟春,等. 多糖的提取、分离
及结构分析. 广西师院学报: 自然科学版, 1999,
16(4): 49–54.
[17] Xia CH, Dai Q, Fang W, et al. Research on the IR
spectrscopy of kinds of polysaccharide. J Wuhan
Univ Technol, 2007, 29(1): 45–47 (in Chinese).
夏朝红, 戴奇, 房韦, 等. 几种多糖的红外光谱
研究. 武汉理工大学学报, 2007, 29(1): 45–47.
[18] Xu H, Liu JH, Shen ZY, et al. Analysis of chemical
composition, structure of Grifola frondosa
polysaccharides and its effect on skin TNF-α levels,
lgG content, T lymphocytes rate and caspase-3
mRNA. Carbohydr Polym, 2010, 82(3): 687–691.
[19] Mosmann T. Rapid colorimetric assay for cellular
growth and survival: application to proliferation
and cytotoxicity assays. J Immunol Methods, 1983,
65(1-2): 55–63.
[20] Wang YF, Zhang LN, Zhang YL, et al. Correlation
of structure to antitumor activities of five
derivatives of a β-glucan from Poria cocos
sclerotium. Carbohydr Res, 2004, 339(15):
2567–2574.
[21] Boehm U, Klamp T, Groot M, et al. Cellular
responses to interferon-gamma. Annu Rev
Immunol, 1997, 15: 749–795.
[22] Commins SP, Borish L, Steinke JW. Immunologic
messenger molecules: cytokines, interferons, and
chemokines. J Allergy Clin Immunol, 2010,
125(S2): S53–S72.
[23] Oh JY, Cho KJ, Chung SH, et al. Activation of
macrophages by GLB, a protein-polysaccharide of
the growing tips of Ganoderma lucidum. Yakh
Hoeji, 1998, 42(3): 302–306.
[24] Wang XJ, Wei CW, Xu SY, et al. Progress in
polysaccharides chemical structure and
structure-activity. Guangzhou Chem Ind, 2004,
32(1): 6–10 (in Chinese).
王晓娟, 魏传晚, 徐淑永, 等. 生物活性多糖结
构与功效关系的研究进展 . 广州化工 , 2004,
32(1): 6–10.
(本文责编 陈宏宇)