全 文 ：
微波法提取刺玫籽原花青素的工艺优化
容晨曦1，张秀玲 1,*，李铁柱 2，胡济美 3，张 杰 2，李倬林 2
(1.东北农业大学食品学院，黑龙江 哈尔滨 150030；2.吉林省农业科学院，吉林 长春 130033；3.中国国际
工程咨询公司，北京 100048)
摘 要：利用响应面分析，对微波法提取刺玫籽中原花青素工艺进行优化。采用铁盐催化法测定原花青素质
量分数，结果表明刺玫籽中原花青素总含量为(1.55±0.12)g/100g。单因素试验结果表明，六偏磷酸钠（Sodium
Hexametaphosphate，SH）添加量为 0.2%起到最佳稳定效果。在此基础上，选取提取时间、料液比、微波功
率、乙醇浓度为自变量，以原花青素提取率为响应值，采用 Box-Behnken 设计方法，研究各因素及其交互作
用对原花青素提取率的影响。结果表明，最佳工艺参数为：提取时间 70s，料液比 1:20，微波功率 360W，乙
醇浓度 60%。经验证，单次提取原花青素的提取率为 72.58%，与预测值 73.46%相比，相对误差 1.12%，表明
优化工艺参数可靠。提取次数为 3 次时，原花青素提取率可以达到 93.19%。
关键词：刺玫籽；原花青素；响应面；提取工艺
Technology Optimization on Extracting Rosa Davurica Pall Seed Proanthocyanidins by
Microwave
RONG Chen-xi1,ZHANG Xiu-ling 1,*,LI Tie-zhu2,HU Ji-mei3,ZHANG Jie2,LI Zhuo-lin2
(1.School of Food College, Northeast Agriculture University, Harbin 150030,China；
2.Jilin Academy of Agricultural Sciences, Changchun 130033,China；
3.China International Engineering Consulting Corporation, Beijing 100048,China)
Abstract：Rosa davnrica pall seeds were used as raw material to extract the proanthocyanidins (PC) by microwave
method. And the PC content was detemined to be (1.55±0.12)g/100g by iron catalyzed method. The results of single
factor tests showed that the addition of 0.2%SH can exhibit the best stable effect. On this basis, extraction time, solid
to liquid ratio, microwave power, concentration of ethanol were selected as the independent variables, the extraction
yield of Rosa seed PC as response value. Box-Behnken design method was used to study the effects of the key factors
and their interaction on the extraction yield of the PC. Results showed that the optimum technical condition were:
extracting time 70 s, the ratio of material to liquid ratio 1:20, microwave power 360 W, ethanol concentration 60%.
The proof test gained the PC yield of the single extract was 72.58% and the relative error was 1.12% compared with
the software prediction 73.46%. It is indicated that the parameters are reliable. When the extraction times were 3,
the Rosa seed PC yield could reach 93.19% .
Key words：Rosa seed ;proanthocyanidins;response surface methodology;extraction technology
中图分类号：TS201.1 文献标志码：A 文章编号：
刺玫果(Rosa davnrica Pall.)又称山刺玫，是一种具有开发前途的野生经济植物，分布于我国黑龙江、
吉林、山东、内蒙古及河北等省区[1]。刺玫果果实有很高的药用价值[2~4]，刺玫果籽中也含有丰富的营养
物质，如刺玫籽油(8 wt/wt%)等[5]，然而刺玫果加工过程中产生的刺玫果籽常作为生产废料，一般不被
国内利用，或直接烧毁，或出口到国外，用于动物饲料，造成了资源的浪费。原花青素(Proanthocyanidins，
PC)是目前国际公认的天然抗氧化剂，以高效、低毒、高生物利用率著称，可预防自由基相关疾病[6~10]。
因此，若能使刺玫籽变废为宝，充分利用刺玫籽中的原花青素物质，将为刺玫果开发行业带来巨大的经
收稿日期：
基金项目：吉林省科学技术厅重点科技攻关项目(20140204051YY)
作者简介：容晨曦(1989—)，女，硕士，研究方向：农产品加工与贮藏工程。E-mail：rongchenxi@126.com
*通信作者：张秀玲(1968—)，女，教授，博士，研究方向：农产品贮藏加工。E-mail：1457945201@qq.com
2016-01-25
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网络出版时间：2016-01-26 11:14:05
网络出版地址：http://www.cnki.net/kcms/detail/11.2206.TS.20160126.1114.024.html
济利益。
近年来，利用微波技术的研究受到广泛的关注，如任俊、李瑞丽、刘丽萍等人采用微波辅助法提取
葡萄籽中的原花青素[11~13]，较传统提取方法缩短了提取时间；赵春艳等人在山楂果中提取原花青素，采
用微波法提取率是传统方法的 2 倍[14，15]。本试验采用微波法提取刺玫果籽中的原花青素，利用响应面分
析法优化提取条件，开发出简单有效的提取工艺，对延长刺玫果产业链具有重要的现实意义。
1 材料与方法
1.1 材料与仪器
刺玫籽购自长白山区；原花青素标品(纯度≥95%)购自天津一方科技有限公司；其余试剂均为国产
分析纯。
722E 可见分光光度计 上海光谱仪器有限公司；HWS24 型恒温水浴锅 上海一恒科技有限公司；
FW100 中草药粉碎机 天津市泰斯特仪器有限公司；JW-1016 低速离心机 安徽嘉文仪器装备有限公
司；FA2004B 电子分析天平 上海佑科仪器仪表有限公司；LABCONCO 冷冻干燥机 Labconco 公司。
1.2 实验方法
1.2.1 刺玫籽原花青素提取工艺流程
刺玫籽→烘干(40 ℃)→粉碎(60 目)→正己烷脱脂→滤去浸提液→脱脂刺玫籽粉末→自然挥干溶剂
→微波提取→离心取上清液(4000 r/min，10 min)
1.2.2 刺玫籽原花青素含量测定
标准曲线的绘制。以葡萄籽原花青素为标准品，分别配制浓度为 12.5、25、50、100、200μg/mL 的
标准液，采用铁盐催化法[16，17]，各取 1mL 移入带塞试管中，然后加入 2%硫酸铁铵溶液(溶解于 2mol/L
盐酸)0.2mL 和 95%正丁醇-盐酸溶液 6mL，摇匀。反应液于 100℃沸水浴中准确反应 40min 后，冰水迅
速冷却，在 550nm 波长处测定其吸光度，用乙醇代替样品作为空白对照。重复测定三次，根据吸光值
与浓度对应关系绘制标准曲线，得到回归方程为： Y=0.0036X+0.0418，R2=0.9967。原花青素浓度在
12~200 μg/mL 范围，线性关系良好。
刺玫籽中可提取原花青素总含量的测定[18]。取刺玫籽粉 200mg，加入 10mL 的 70%丙酮在室温下漩
涡混匀器提取 30min，10000r/min 下离心 15min。再用 70%丙酮洗涤残渣三次，离心，合并上清液，定
容 25mL。取待测 1 mL，加入显色剂，操作同上，测定其吸光度。重复三次。
原花青素提取率的测定。微波提取原花青素，离心，取上清液定容至一定体积(据情况而定)，取定
溶液 1 mL 替代上述方法中标准液，测定吸光度。重复三次，根据回归方程，计算提取的原花青素含量。
110)g100/g/(
m
VNc原花青素的含量
100%/ 总含量原料中可提取原花青素
原花青素的提取量原花青素提取率
式中: c 为所测溶液吸光度带入方程得到原花青素浓度(μg/mL)；m 为刺玫籽粉质量(g)；N 为稀释
倍数；V 为试样定容体积(mL)。
1.2.3 单因素实验
称取刺玫籽粉末 0.500g，按照料液比 1:20 加入浓度为 70%的乙醇溶液及添加 0.1%的六偏磷酸钠（S
odium Hexametaph-osphate，SH），在微波功率为 160W 条件下提取 60s，测定原花青素提取率。固定
其他条件，分别考察料液比(1:10，1:15，1:20，1:25，1:30 和 1:35)，乙醇浓度(30%，40%，50%，60%，
70%和 80%)，提取时间(10s，30s，50s，70s，90s 和 110s)，微波功率(160W，320W，480W，640W 和
800W)，SH 添加量(0.0%，0.1%，0.2%，0.3%，0.4%和 0.5%)对原花青素提取率的影响。
1.2.4 响应面实验
在单因素的实验基础上，以原花青素提取率作为响应值，对提取时间、料液比、微波功率、乙醇浓
度进行条件优化，采用 Box-Behnken 试验设计，进行响应面分析。见表 1。
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表1 Box-Benhnken 设计试验因素水平及编码
Table1 Level and code of variables for Box-Benhnken design
水平
因素
提取时间
X1/s
料液比
X2/（g/mL）
微波功率
X3/W
乙醇浓度
X4/%
-1 50 15 160 50%
0 70 20 320 60%
1 90 25 480 70%
1.2.5 数据处理
数据采用 SPSS19.0 软件对数据进行方差分析及 LSD 多重比较，SigmaPlot 作图，Design Expert8.0
软件进行响应面分析。
2 结果与分析
2.1 刺玫籽中可提取原花青素总含量测定
通过铁盐催化法测定刺玫籽中可提取原花青素总含量为(1.55±0.12)g/100g。
2.2 微波法提取刺玫籽原花青素单因素实验结果
2.2.1 料液比对提取率的影响
图 1 料液比对原花青素提取率的影响
Fig.1 Effect of ratio of liquid to material on extraction yield of proanthocyanidins
由图 1 可知，当料液比为 1:10 时，溶剂挥发过多，不能充分浸提原料，原花青素提取率波动较大，
随着料液比的减小，原花青素提取率逐渐增加，在料液比为 1:30 时达到最大值，随后提取率呈稳定的
趋势，说明此时原花青素已经接近析出完全。由图 1 可知，料液比从 1:20 到 1:35 差异不显著，且继续
减小料液比会造成后续步骤减压蒸馏时间的延长和溶剂的浪费，因此单次提取最佳料液比选择为 1:30。
考虑加工中需多次提取，使浓缩时间延长，为降低提取成本，防止原花青素在浓缩过程中损失，料液比
应控制在 1:25 内为佳。
2.2.2 乙醇浓度对提取率的影响
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图 2 乙醇浓度对原花青素提取率的影响
Fig.2 Effect of ethanol concentration on extraction yield of proanthocyanidins
由图 2 可知，随着乙醇体积分数的增大，溶剂对细胞壁的穿透作用逐渐增大，对氢键的破坏能力增
强，且水在溶剂中也起到穿透细胞壁的作用，通过调节乙醇-水配比改变溶液极性[19]，有利于原花青素
的析出，在乙醇体积分数为 60%时达到最大值。随后，随着乙醇体积分数的增大提取率呈下降趋势，这
是由于一些醇溶性杂质、亲脂性强的成分与原花青素竞争[20]，同乙醇-水分子结合, 从而导致原花青素
的提取率下降。因此最佳体积分数为 60%。
2.2.3 提取时间对提取率的影响
图 3 提取时间对原花青素提取率的影响
Fig.3 Effect of extraction time on extraction yieldof proanthocyanidins
由图 3 可知，提取率随时间的延长逐渐增加，在 70s 时原花青素浸出率达到最大值，以后趋于稳定
并逐渐下降。其原因可能是随着提取时间的延长，原花青素受高温影响结构发生改变，提取率降低。因
此，选择最佳提取时间为 70s。
2.2.4 微波功率对提取率的影响
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图 4 微波功率对原花青素提取率的影响
Fig.4 Effect of microwave power on extraction yield of proanthocyanidins
由图 4 可知，原花青素提取率随着微波功率的增大呈现先增后降的趋势，原花青素提取率在 320W
时达到最大值，随着提取功率的继续增加，提取率明显降低。原因是提取功率的增大释放出大量的热，
造成溶液温度过高，导致原花青素结构被破坏，易发生氧化聚变，并且高温下固体原料本身会起化学变
化[21]，使杂质过多从而提取率降低。
2.2.5 SH 添加量对提取率的影响
图 5 SH 添加量对原花青素提取率的影响
Fig.5 Effect of SH concentration on extraction yield of proanthocyanidins
从图 5 可知，SH 添加量在 0.2%之内时，原花青素得率随添加量增加而增加，原因是 SH 保护原花
青素不被氧化，但过多的 SH 会改变提取液的极性[22]，可能导致原花青素的提取率下降。所以选择 0.2%
作为 SH 添加量，可起到最佳稳定效果。
2.3 响应面试验结果
2.3.1 响应面法分析数学模型的建立及显著性分析
在单因素的实验基础上，采用 Box-Behnken 中心组合实验设计原理，以原花青素提取率为响应值，
选取提取时间(X1)、料液比(X2)、微波功率(X3)、乙醇浓度(X4)为影响因素，进行四因素三水平的响应面
分析。使用 Design Expert8.0 软件，对表 2 的数据进行处理、分析，得到表 3 回归方程方差分析表，利
用软件进行非线性回归的二次多项式拟合，得到预测模型如下：
2
4
2
3
2
2
2
1434232
4131214321
55.414.434.464.512.273.248.1
11.057.181.266.113.417.292.128.72
XXXXXXXXXX
XXXXXXXXXXY
对该模型进行显著性检验，如表 3 所示，可以看出该模型回归显著(p<0.0001)，失拟项不显著，且
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R2=0.9272 ，R2Adj=0.8545，说明该模型与实际拟合度较好，自变参数与响应值之间关系显著，因此可以
用于微波法提取刺玫籽原花青素的工艺预测。根据 F 检验可以得到各个因素影响的大小顺序为：
X3 >X2 >X1 >X4，即微波功率>料液比>提取时间>乙醇浓度。
根据回归方程，做出响应面分析图，考察所拟合的响应曲面的形状，分析各因素之间的相互作用。
表 2 Box-Behnken 实验设计及结果
Table 2 Box-Benhnken design and results
实验号 X1 X2 X3 X4 原花青素提取率/%
1 1 0 -1 0 61.61
2 0 0 0 0 71.83
3 0 0 -1 -1 64.07
4 0 0 0 0 68.92
5 -1 1 0 0 64.27
6 0 -1 0 1 55.93
7 0 0 0 0 74.89
8 0 1 0 1 68.35
9 1 0 1 0 68.15
10 -1 -1 0 0 57.06
11 1 -1 0 0 65.56
12 -1 0 -1 0 53.11
13 -1 0 1 0 65.93
14 1 0 0 -1 65.01
15 0 0 0 0 71.89
16 0 0 0 0 73.89
17 0 1 -1 0 65.05
18 0 0 1 -1 68.96
19 0 0 1 1 66.95
20 1 1 0 0 61.52
21 0 -1 -1 0 57.61
22 0 1 1 0 68.03
23 0 -1 0 -1 63.29
24 0 1 0 -1 64.8
25 0 0 -1 1 53.57
26 -1 0 0 1 59.97
27 -1 0 0 -1 61.98
28 1 0 0 1 63.46
29 0 -1 1 0 66.53
表 3 方差分析
Table 3 Variance analysis of experimental results
变异来源 平方和 自由度 均方 F 值 p 值 显著性
模型 807.36 14 57.67 12.75 < 0.0001 ***
X1 44.05 1 44.05 9.73 0.0075 **
X2 56.51 1 56.51 12.49 0.0033 **
X3 204.44 1 204.44 45.18 < 0.0001 ***
X4 32.93 1 32.93 7.28 0.0173 *
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X1 X2 31.64 1 31.64 6.99 0.0192 *
X1 X3 9.86 1 9.86 2.18 0.162
X1 X4 0.053 1 0.053 0.012 0.9154
X2 X3 8.82 1 8.82 1.95 0.1844
X2 X4 29.76 1 29.76 6.58 0.0225 *
X3 X4 18.02 1 18.02 3.98 0.0658
X12 206.11 1 206.11 45.55 < 0.0001 ***
X22 122.22 1 122.22 27.01 0.0001 **
X32 111.42 1 111.42 24.62 0.0002 **
X42 134.18 1 134.18 29.66 < 0.0001 ***
残差 63.34 14 4.52
失拟项 42.3 10 4.23 0.8 0.6468
R2 0.9272
R2Adj 0.8545
注：***差异极度显著(p<0.0001)，**差异高度显著(0.0001
功率、乙醇浓度对原花青素提取率有极显著的影响。X1、X2、X22、X32的偏回归系数差异高度显著，X4、
X1 X2、X2 X4的偏回归系数差异显著，说明因素之间存在交互作用，并且因素对响应值并非简单的线性
关系。
2.3.2 响应面曲面分析
图 8 各两因素交互作用对原花青素提取率影响的响应面图
Fig.8 Response surface plot for the mutual effects of four variables on extraction rate of proanthocyanidins
50.00
55.00
60.00
65.00
70.00
50.00 58.00
66.00 74.00
82.00 90.00
50
55
60
65
70
75
提
取
率
/%
A：提取时间/m in D：乙醇浓度/%
160.00
240.00
320.00
400.00
480.00
15.00 17.00
19.00 21.00
23.00 25.00
50
55
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75
提
取
率
/%
B：料液比/(g:m L) C：微波功率/W 50.00 55.00
60.00
65.00
70.00
160.00
240.00
320.00
400.00
480.00
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提
取
率
/%
C：微波功率/W D：乙醇浓度/%
160.00
240.00
320.00
400.00
480.00
50.00 58.00
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率
/%
A：提取时间/m in C：微波功率/W
15.00 17.00
19.00 21.00
23.00 25.00
50.00 58.00
66.00 74.00
82.00 90.00
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提
取
率
/%
A：提取时间/m in B：料液比/(g:m L) 50.00 55.00
60.00
65.00
70.00
15.00 17.00
19.00 21.00
23.00 25.00
50
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提
取
率
/%
B：料液比/(g:m L) D：乙醇浓度/%
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响应面图曲面坡度陡峭、等高线密集成椭圆形表示两因素交互影响大，由图 8-c、图 8-d 可以看出，
提取时间与料液比、料液比与乙醇浓度交互作用较大。图 8-a、图 8-e 坡度相对平缓，等高线呈圆形，
说明提取时间与乙醇浓度、料液比与微波功率的交互作用对刺玫籽原花青素提取率影响相对较小。图
8-e、图 8-f 中，随着微波功率增大，原花青素提取率明显增大，表明微波功率对原花青素的影响较大，
微波功率在 320~400W 时，提取率最高。原因是微波功率在 160W 时，对细胞膜破坏较小，原花青素析
出较少，而微波功率为 480W 时，温度过高，原花青素氧化损失，结构受到破坏[23]。
2.3.3 验证试验
利用 Design Expert8.0 软件，分析得出微波法提取原花青素的最佳提取条件为：提取时间 71.45s、
料液比 1:20.69、微波功率 392.26W、乙醇浓度 60%，此时原花青素提取率预测值为 73.46%。考虑实际
操作，选择提取时间(X1)70s、料液比(X2)1:20、微波功率(X3)360W、乙醇浓度(X4)60%，验证试验得到刺
玫籽原花青素提取率为 72.58%，与预测值相比，其相对误差为 1.12%，说明试验优化得到的技术参数是
可靠稳定的。
2.3.4 提取次数确定试验
表 4 不同提取次数条件下原花青素的提取效果
Table 4 Effect of extraction times on the extraction rate of proanthocyanidins
提取次数 1 2 3 4 5
原花青素累计提取率 72.58% 87.42% 93.19% 94.17% 94.89%
由表 4 可以看出，在响应面优化工艺条件基础上，当提取次数为 2 次、3 次时提取率分别为 87.42%、
93.19%；当提取次数为 4 次、5 次时，原花青素提取率为 94.17%、94.89%，相比提取 3 次提取率增长不
明显。所以提取次数确定为 3 次。
3 结论
在植物籽中，除葡萄籽中原花青素含量(6.83%)较高，少见植物籽含有丰富的原花青素，个别不含原
花青素[24]。据测定，本研究选用的刺玫籽中原花青素总含量为(1.55±0.12)g/100g。通过单因素试验显示：
添加 0.2%的 SH 起到最佳稳定效果。以响应面分析法对微波法提取工艺继续优化，拟合了提取时间、料
液比、微波功率、乙醇浓度 4 个因素对原花青素提取率影响的回归模型，得到优化的工艺条件为：提取
时间 70s，料液比 1:20，微波功率 360W，乙醇浓度 60%。在此条件下，原花青素提取率为 72.58%，与
预测值相比，其相对误差为 1.12%，说明试验优化得到的技术参数可靠。以响应面优化后的参数，提取
3 次时刺玫籽的原花青素提取率可以达到 93.19%。
试验结果表明，采用微波工艺提取刺玫籽中的原花青素，不仅较传统方法大大缩短了提取时间和加
热时间[25]，提取率较高，且操作简单，为刺玫籽原花青素的进一步开发提供了试验基础。
参考文献：
[1] 杨晓辉, 李国兴. 刺玫果的种源选择[J]. 中国林副特产, 2010, 21(2): 39-40.10.3969/j.issn.1001-6902.2010.02.017
[2] 何媛媛, 陈凡, 孙爱东. 刺玫果功效及食品开发研究进展[J]. 中国食物与营养, 2015, 21(6): 25-28.
[3] Guo Z, Xu L. Procyanidin: aplant medicine with many uses[J]. World Phytomed, 1996, 11(5): 196-205.
[4] 张国贞, 李芳兰. 野生刺玫瑰果营养成分分析及评价[J]. 食品研究与开发, 2001, 22(6):
38-40.10.3969/j.issn.1005-6521.2001.06.017
[5] SZNTMIHALYI K, VINKLER P, LAKATOS B, et al. Rose hip (Rosa canina L.) oil obtained from waste hip seeds by different
extraction methods[J]. Bioresource Technology, 2002, 82(2): 195-201.10.1016/S0960-8524(01)00161-4
[6] 叶春皓. 超临界 CO2 萃取-大孔树脂吸附提取原花青素的研究[D]. 天津大学, 2005.10.7666/d.y848414
[7] WU Zhaoxia , XJ Meng , LI Xingxia , et al. Study on extracting of grape seed oil and procyanidins (OPC’s) by supercritical fluid
extract-CO2[J]. Food Science & Technology, 2005(7): 47-49.10.3969/j.issn.1005-9989.2005.07.014
2016-01-25
8
[8] SUN C, MCINTYER K, SALEEM A, et al. The relationship betweenantiglycation activity and procyanidin and phenolic content in
commercial grape seed products[J]. Canadian Journal of Physiology and Pharmacology, 2012, 90(2): 167-174.10.1139/y11-121
[9] TAKAHATA Y, OHNISHI K M, FURUTA S, et al. Highly polymerized procyanidins in brown soybean seed coat with a high
radical-scavenging activity[J]. Journal of Agricultural and Food Chemistry, 2001, 49(12): 5843-5847.10.1021/jf010307x
[10] DAUGHENBAUGHA K F, HOLEDMESS J, GRAFF J C, et al.Contribution of transcript stability to a conserved
procyanidin-inducedcytokine response in γδ T cells[J]. Genes and Immunity, 2011, 12(5):378-389.10.1038/gene
[11] 任俊 , 曹飞 , 卢金珍 . 微波辅助有机溶剂法提取葡萄籽中原花青素的工艺研究 [J]. 保鲜与加工 , 2010, 10(4):
44-47.10.3969/j.issn.1009-6221.2010.04.013
[12] 李 瑞 丽 , 马 润 宇 . 微 波 辅 助 提 取 葡 萄 籽 原 花 青 素 的 工 艺 研 究 [J]. 粮 食 与 食 品 工 业 , 2008, 15(1):
33-35.10.3969/j.issn.1672-5026.2008.01.011
[13] 刘丽萍, 赵祥颖, 刘建军. 葡萄籽原花青素的功能及提取工艺[J]. 食品与药品, 2006, 8(12):
17-21.10.3969/j.issn.1672-979X.2006.12.006
[14] 赵春艳, 张泽生, 刘海俊. 微波提取山楂果中原花青素工艺的研究[J]. 食品研究与开发, 2006, 26(6):
37-40.10.3969/j.issn.1005-6521.2005.06.011
[15] SPARR ESKILSSON C, BJORKLUND E. Analytical-scale microwave-assisted extraction[J]. Journal of Chromatography
A, 2000, 902(1): 227-250.10.1016/S0021-9673(00)00921-3
[16] 李华, 肖付才, 袁春龙, 等. 铁盐催化比色法测定葡萄籽超微粉中的原花青素[J]. 食品研究与开发, 2007, 28(9): 114-117.
10.3969/j.issn.1005-6521.2007.09.036
[17] 肖付才, 李华, 王华. 葡萄籽原花青素的提取和检测方法[J]. 食品研究与开发, 2007, 28(6):
165-169.10.3969/j.issn.1005-6521.2007.06.051
[18] 李春阳. 葡萄籽中原花青素的提取纯化及其结构和功能研究[D]. 江南大学, 2006.10.7666/d.y968311
[19] 余红军, 李立祥, 倪媛, 等. 油茶籽壳中多糖和原花青素的超声波提取工艺[J]. 食品与发酵工业, 2010, 8(8): 194-197.
[20] 张力, 孙秀利, 王松青. 微波法提取葡萄籽中原花青素的工艺研究[J]. 中草药, 2008, 38(12): 1808-1811.
10.3321/j.issn:0253-2670.2007.12.015
[21] 魏福祥, 韩菊, 王改珍. 低聚原花色素提取技术研究[J]. 食品工业科技, 2004, 24(9): 54-55.10.3969/j.issn.1002-0306.2003.09.024
[22] 赵国建, 陈晓丹, 高海涛. 六偏磷酸钠辅助提取茄子多酚及其体外抗氧化研究[J]. 中国食品学报, 2012, 12(10): 56-61.
[23] 张佰清, 张艳艳, 李龙杰. 微波提取树莓籽中原花青素工艺[J]. 食品科学, 2011, 32(6): 25-28.
[24] 刘 洪 , 李 淼 , 冯 静 , 等 . 成 都 地 区 市 售 水 果 中 原 花 青 素 含 量 的 分 析 比 较 [J]. 陕 西 农 业 科 学 , 2011,
57(4):35-37.10.3969/j.issn.0488-5368.2011.04.013
[25] 张海晖, 李金凤, 段玉清, 等. 板栗壳原花青素提取及其稳定性研究[J]. 食品科学, 2011, 32(8):5-9.
2016-01-25
9