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刺玫籽油及原花青素降血脂作用



全 文 : 刺玫籽油及原花青素降血脂作用
胡济美 1, 李倬林 2,岳玉兰 2, 容晨曦 2, 黄 威 2, 薛培宇 2, 李铁柱 2,*,张 杰 2,*
(1.中国国际工程咨询公司, 北京 100048 ;2.吉林省农业科学院,吉林 长春 130124)
摘 要:通过动物实验对刺玫籽油和刺玫籽原花青素进行降血脂功能性研究。选用昆明雄性小鼠通过高脂
饲料饲喂建立高脂模型小鼠,分别经口灌胃刺玫籽油及原花青素 5 周后,小鼠血清及肝组织匀浆里各项指
数分析显示,刺玫籽油及原花青素对小鼠体重及主要脏器指数无显著影响;中剂量、高剂量的刺玫籽原花
青素会显著降低高脂小鼠血清内 LDL-C、TC、TG 含量(p<0.05),显著升高小鼠肝组织内 SOD、CAT、
GSH-PX 水平(p<0.05),显著降低肝组织内 MDA 水平;低剂量(80mg/kg)刺玫籽油能显著降低高脂小
鼠血清内 TG 水平(p<0.05)及显著升高小鼠肝组织中 CAT 含量(p<0.05)。研究结果表明,低剂量的刺
玫籽油和中高剂量的刺玫籽原花青素对高脂血症小鼠有一定的降血脂作用。
关键词:刺玫籽油;原花青素;降血脂
Study of Rosa Seed Oil and Procyanidins Hypolipidemic Function
HU Jimei1, LI Zhuolin2, YUE Yulan2, RONG Chenxi2, HUANG Wei2, XUE Peiyu2, LI Tiezhu2,*, ZHANG
Jie2,*
(1. China International Engineering Consulting Corporation, Beijing 100048, China; 2. Jilin Academy of
Agricultural Sciences, Changchun 130033, China )
Abstract:Through the animal experiment of Rosa Rosa seed oil and procyanidins for reducing blood lipid
function research. Kunming male mice by high fat diet were fed established hyperlipidemia model mice to explore
the thorn rose seed oil and procyanidins on hyperlipidemia in mice. After 5 weeks of oral administration, the state
of the experimental animals was observed, and the indexes of serum and liver homogenate were obtained. Test
found that compared with the hyperlipidemic model group, thorn rose seed oil and procyanidins had no significant
effect on mice body weight and Viscera index. Middle dose, high dose of thorn rose seed proanthocyanidins will
significantly downward adjustment of hyperlipidemia in mice serum LDL-C, TC, TG (p < 0.05), the significant up
regulation in mice liver tissue SOD, cat, GSH-Px level (p < 0.05) significantly downward adjustment of level of
MDA in the liver tissue, HDL-C、TNF-a and IL-6 content difference is not obvious; low dose (80 mg / kg) of Rosa
davurica Pall seed oil can evidently down regulated in hyperlipidemic mice serum TG levels (p < 0.05) and
significantly increased in liver tissue of mice with cat content (p < 0.05), the effect on other indexes were not
significant. The test shows that the low dose of the thorn rose seed oil and high dose of the thorn rose seed
procyanidins on hyperlipidemic mice have a role in reducing blood lipid.
Key words:Rosa seed oil;Procyanidins;lipid-lowering
中图分类号:TS 201.1 文献标志码:A
随着我国经济稳步发展,人们生活水平快速提高,高胆固醇高油脂类食物大量摄入正影
响着人们的身体健康[1~3],人们对具有降血脂功能保健食品的需求日益增长。
刺玫籽作为刺玫加工副产物,富含大量的原花青素及刺玫籽油,具有较高的开发价值。
大量研究结果表明,原花青素有能力引导内表面依赖性血管舒张功能,增加胆固醇的逆向转
运,降低总胆固醇和低密度脂蛋白[4-7]。刺玫籽油中富含不饱和脂肪酸(如亚油酸,亚麻酸
和油酸)以及多种维生素(如维生素 C、维生素 E、维生素 B(B1和 B2)、β-胡萝卜素)[8~10]。
1因此,研究刺玫籽油及刺玫籽原花青素降血脂功能,对于刺玫籽油及刺玫籽原花青素类保
健食品的开发具有重要意义。

1收稿日期:2016-06-16
基金资助:吉林省科学技术厅重点科技攻关项目(20140204051YY);吉林省科技厅重大科技攻关专项(20140203014NY)
作者简介:胡济美(1985-),男,工程师,硕士,研究方向为天然产物化学与利用。Email: hujimei2002@163.com
*通信作者:李铁柱(1978-),男,副研究员,博士,研究方向为保健食品开发。Email:ltzjlu@126.com
*通信作者:张杰(1983-),男,助理研究员,博士,研究方向为保健食品开发。Email:narcc2007@163.com
2016-09-09
1
网络出版时间:2016-09-13 13:58:31
网络出版地址:http://www.cnki.net/kcms/detail/11.2206.TS.20160913.1358.098.html

1 材料与方法
1.1 材料与仪器
刺玫籽油,刺玫籽原花青素 实验室提取制备;豆油 购自九三粮油工业集团有限公司;
清洁级雄性昆明小鼠(生产许可证 SCXK(吉 2013-0001);使用许可证 SYXK(吉
2013-0005))购自吉林大学基础医学院实验动物中心;磷酸二氢钾,磷酸氢二钠,氯化钠,
氯化钾等购自北京化工厂;饲料:小鼠基础饲料,高脂饲料由 1%胆固醇、20%猪油、10%
蛋黄粉、69%基础饲料组成。
总胆固醇试剂盒、甘油三酯试剂盒、低密度脂蛋白-胆固醇试剂盒、高密度脂蛋白-胆固
醇试剂盒、超氧化物歧化酶试剂盒、丙二醛试剂盒、过氧化氢酶试剂盒、谷胱甘肽过氧化酶
试剂盒、肿瘤坏死因子-α 试剂盒、白细胞介素-6 试剂盒 购自上海朗顿生物科技有限公司;
BCA 蛋白浓度测定试剂盒 购自北京索莱宝科技有限公司。
5415D 型离心机 德国 Eppendorf 基因有限公司;705 型-80 Thermo℃ 超低温冰箱 美国
Thermo Fisher 科技公司;Thermo CR3i 冷冻型多功能离心机 美国 Thermo Fisher 科技公司;
基因型 1810a 摩尔超纯水器 上海摩勒科学仪器有限公司;DHP-9272 型电热恒温培养箱
上海一恒科技有限公司;722E 可见分光光度计 上海光谱仪器有限公司;ELx800 全自动酶
标仪 美国 Biotek 公司 ;FSH-II 型高速电动匀浆器 江苏金坛金城国盛实验仪器厂。
1.2 方法
1.2.1 试验动物分组设计
小鼠均自由饮食饮水,动物房通风光照良好,自然昼夜光线照明,室温 20℃左右。
小鼠普通饲料适应喂养 6~8 天,自由饮水。适应环境后,将小鼠随机分为 2 组,空白对
照组饲喂普通饲料,高脂模型组饲喂高脂饲料。4 周后,禁食不禁水 12 h,各组抽取 3 只,
测定小鼠血清中 TC、TG 水平,判定小鼠高血脂模型构造是否成功[11,12]。
待建模成功后,将小鼠进行分组,上午灌胃 1 次/天,连续干预 5 周,动物分组及灌胃
剂量见表 1。
表 1 试验动物分组及设计
Table 1 Group and design of experimental animal
组别 饲料 灌胃种类 灌胃剂量
空白对照组 基础饲料 生理盐水 0.2mL
高脂模型对照组 高脂饲料 生理盐水 0.2mL
原花青素低剂量组 高脂饲料 原花青素水溶液 50mg/kg
原花青素中剂量组 高脂饲料 原花青素水溶液 100mg/kg
原花青素高剂量组 高脂饲料 原花青素水溶液 200mg/kg
豆油对照组 高脂饲料 大豆油 120mg/kg
刺玫籽油低剂量组 高脂饲料 刺玫籽油 80mg/kg
刺玫籽油中剂量组 高脂饲料 刺玫籽油 120mg/kg
刺玫籽油高剂量组 高脂饲料 刺玫籽油 160mg/kg
1.2.2指标测定的方法
1.2.2.1生理指标的测定
试验第 35 天,小鼠禁食不限饮水 14~16 h 后,摘除眼球采血,颈椎脱臼法处死,称取
肝脏、心脏、肾脏、脾脏、肾周及腹股沟脂肪,用 0.02M 的 PBS 缓冲液冲洗,滤纸吸干,
称重,计算脏器指数公式如下:
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2

100/
/%/ 
g
g
空腹体质量
脏器湿质量脏器指数
1.2.2.2血清的制备及各指标的测定方法
将血液置于 37℃恒温培养箱中静置 1h,待其充分凝固后,放于 4℃冰箱保存,3000r/min
低速离心 15min,取上清液即为血清,分离血清后,分装,于-80℃冰箱冷冻保存,并于两
天内测定相关指标[13]。切记反复冻融,避免影响各种酶活性。
以血清为材料,测定血脂指标,包括总胆固醇(TC)、甘油三酯(TG)、低密度脂蛋白胆固
醇(LDL-C)、高密度脂蛋白胆固醇(HDL-C)含量。测定血清炎症因子指标,包括肿瘤坏死因
子-α(TNF-α)、白细胞介素-6(IL-6)含量,按试剂盒说明书操作。每组标准曲线做复孔,
设定 2 个平行。
1.2.2.3肝组织匀浆的制备及各指标的测定方法
用冰冷 0.02MPBS 将肝组织漂洗,滤纸吸干,准确称取肝组织 0.3g,剪碎后与 9 倍质量
的 PBS 缓冲液混合,组织匀浆器进行匀浆。匀浆时注意离心管下端须插入冰浴,充分研磨
约 20s,4℃离心 10min,转速为 4000r/min,取上清液,得到 10%的肝组织匀浆。将肝组织
匀浆用 PBS 缓冲液稀释为不同梯度,分装后置于-80℃保存备用,避免反复冻融[14,15]。
肝组织各指标测定按照试剂盒说明书操作,包括:超氧化物歧化酶(SOD)、过氧化氢
酶(CAT)、谷胱甘肽过氧化酶(GSH-PX)、丙二醛(MDA)。
1.2.3数据统计方法
数据均采用 SPSS19.0 统计软件分析处理,进行单因素方差分析(ANOVA),以 Duncans
多重检验,字母标记法表示。

2结果与分析
2.1 高脂血症模型小鼠造模结果
实验期间,空白组精神状态较好,体质量稳定上升;高脂模型组小鼠体质量呈先增长
后降低再增长的趋势,实验前期毛发粗糙,微黄色,活跃程度下降,无腹泻。两组都不存在
搏斗现象,实验期间无动物死亡状况。由表 2 可知,实验动物经两种饲料饲喂 28d 后,高脂
饲料造模组小鼠的体质量相对空白组高出 8%,TG、TC 水平升高明显,依次比空白组高出
9.5%、35%,具有显著差异(p<0.05),结果表明高脂模型构建成功。
表 2 高脂模型小鼠建立与判定(饲养 28天,n=3)
Table 2 Establishment and determination of the hyperlipidemia mouses
model (twenty-eighth days,n=3)
组别 TC/(mmol/L) TG/(mmol/L) 体重/g
空白对照组 4.12 ± 0.38b 2.75 ± 0.23b 30.47 ± 1.96a
高脂饲料造模组 5.56 ± 0.33a 3.01 ± 0.41a 33.05 ± 2.18a
注:差异字母表示数据之间存在显著性差异(p<0.05)
2.2 刺玫籽油及原花青素对高胆固醇膳食小鼠生理指标的影响
灌胃 5 周后,比较各组小鼠体重可以看出,与空白参照组相比,高脂模型对照组体重有
显著差异(p<0.05),见表 3,表明高脂饲料进食可能会导致小鼠体重增长速度加快;其他
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处理组间体重并未见显著差异(p>0.05),说明豆油、刺玫籽油及原花青素的摄入对小鼠的
正常代谢和生长没有显著影响,间接说明小鼠能够适应各组给药剂量。
脏器指数可以反应各组小鼠营养情况和机体脏器的病变情况,当外来物质损害某内脏
时,脏器指数会上下浮动,超出正常值。将表 3 各脏器指数进行差异性分析,发现高脂模型
组的肝脏指数、脂肪指数略高于空白组以及其他干预组,说明高血脂症小鼠肝脏较肥大,但
各干预组小鼠脏器指数和脂肪指数与空白组、高脂模型对照组、豆油对照组相比,均未见显
著性差异(p>0.05),表明刺玫籽油及原花青素对重要器官没有毒副作用,不会造成脏器异
常或病变。

表 3 刺玫籽油及原花青素对小鼠肝脏、心脏、脾脏、肾脏及脂肪指数的影响(x ± s, n=10)
Table 3 Effects of Rosa seed oil and procyanidins on liver index, heart index, spleen index and fat
indext in mouses (x ± s, n=10)
组别 体重/g 肝指数 心指数 脾指数 肾指数 脂肪指数
空白对照组 34.97 ± 1.55b 3.76 ± 0.30a 0.69 ± 0.08a 0.33 ± 0.10a 1.61 ± 0.13a 2.46 ± 0.30a
高脂模型对照组 37.98 ± 1.68a 4.10 ± 0.28a 0.62 ± 0.05a 0.41 ± 0.03a 1.57 ± 0.18a 2.77 ± 0.54a
原花青素低剂量组 36.00± 2.62ab 3.82 ± 0.44a 0.50 ± 0.08a 0.35 ± 0.05a 1.39 ± 0.24a 2.56 ± 0.56a
原花青素中剂量组 35.72± 1.39ab 3.79 ± 0.44a 0.62 ± 0.08a 0.34 ± 0.07a 1.47 ± 0.16a 2.57 ± 0.48a
原花青素高剂量组 35.88 ± 3.46ab 3.71 ± 0.67a 0.62 ± 0.13a 0.35 ± 0.07a 1.32 ± 0.23a 2.68 ± 0.40a
豆油对照组 36.43 ± 1.24ab 3.95 ± 0.27a 0.57 ± 0.10a 0.31 ± 0.06a 1.33 ± 0.12a 2.59 ± 0.71a
刺玫籽油低剂量组 36.28 ± 1.33ab 3.78 ± 0.38a 0..59 ± 0.10a 0.30 ± 0.05a 1.23 ± 0.23a 2.57 ± 0.59a
刺玫籽油中剂量组 36.37 ± 2.26ab 3.81 ± 0.70a 0.52 ± 0.09 a 0.35 ± 0.09a 1.36 ± 0.24a 2.51 ± 0.50a
刺玫籽油高剂量组 36.69 ± 2.63ab 3.95 ± 0.63a 0.59 ± 0.11a 0.31 ± 0.06a 1.40 ± 0.21a 2.55 ± 0.49a
注:差异字母表示数据之间存在显著性差异(p<0.05)
2.3 刺玫籽油及原花青素对高胆固醇膳食小鼠血脂指标的影响
HDL-C 能够将血液中的胆固醇输送到肝脏中,从而降低血液中胆固醇含量,有效促进
胆固醇的输出和代谢,HDL-C 水平的提高会减缓动脉粥样硬化病症的进展,起到避免冠心
病等心脑血管类疾病的作用,因此 HDL-C 含量的升高对维持身体机能正常运转是有利的。
LDL-C 是将肝脏内部合成的胆固醇分子载入动脉壁细胞,运输到血液里,促使机体血液内
胆甾醇水平上涨,引起高血脂症发生,因此 LDL-C 水平的提高对机体是有害的[16]。从表 4
可以看出,空白对照组、高脂模型对照组、豆油对照组、刺玫籽油各剂量组及刺玫籽原花青
素各剂量组间 HDL-C 含量不存在显著差异(p>0.05),说明刺玫籽油及原花青素的摄入不
能显著影响 HDL-C 的含量。高脂模型组小鼠 LDL-C 含量与刺玫籽原花青素高剂量组相比差
异显著(p<0.05),平均降低 14.02%,表明一定剂量的刺玫籽原花青素可以降低高血脂症
小鼠血清 LDL-C 的含量,并呈量效关系。刺玫籽油低中高剂量小组 LDL-C 值较高血脂模型
参照组、豆油参照组略低,差异不显著(p>0.05),表明刺玫籽油不能显著抑制 LDL-C 水
平的升高。
TC 值经显著性分析发现,空白参照组与高脂模型参照组、豆油参照组、刺玫籽油高剂
量组相比差距极显著(p<0.01),说明高油脂摄入能够引起胆固醇总水平提升;刺玫籽原花
青素低剂量组、刺玫籽油低中剂量组对 TC 影响相似,略高于原花青素中剂量组;刺玫籽原
花青素高剂量组显著低于高脂模型参照组及豆油参照组(p<0.05),说明高剂量的刺玫籽原
花青素可以较好的抑制血液中 TC 值升高。各组 TG 值差异明显,豆油参照组、刺玫籽油高
剂量组和高脂模型参照组 TG 值在最高水平,显著高于空白参照组和其他干预组(p<0.01 或
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p<0.05),说明过高的油脂摄入对血清 TC 值影响较大;刺玫籽原花青素三个剂量组、刺玫
籽油高剂量组与高脂模型参照组差异显著(p<0.05),说明刺玫籽原花青素和一定剂量刺玫
籽油能较好的调节血清内 TC 水平。
表 4 刺玫籽油及原花青素对小鼠血脂水平的影响(x ± s, n=10)
Table 4 Effects of Rosa seed oil and procyanidins on serum lipid levels in mouses (x ± s, n=10)
组别 HDL-C/(μg/L) LDL-C/(μg/L) TC/(mmol/L) TG/(mmol/L)
空白对照组 118.37 ± 8.02a 65.51 ± 6.07ab 4.34 ± 0.23c 1.85 ± 0.25c
高脂模型对照组 111.08 ± 6.68a 75.91 ± 3.37b 5.69 ± 0.22a 2.86 ± 0.18ab
原花青素低剂量组 125.88 ± 9.85a 72.93 ± 9.36ab 5.19 ± 0.33ab 2.16 ± 0.14c
原花青素中剂量组 119.38 ± 22.96a 66.80 ± 9.12ab 5.14 ± 0.33abc 2.02 ± 0.27c
原花青素高剂量组 121.17 ± 14.35a 65.27 ± 5.02a 4.60 ± 0.48bc 1.91± 0.33c
豆油对照组 118.79 ± 4.14a 74.61 ± 6.78ab 5.62 ± 0.43a 3.01 ± 0.26a
刺玫籽油低剂量组 114.78 ± 11.66a 69.91 ± 7.37ab 5.35 ± 0.64ab 2.25 ± 0.58c
刺玫籽油中剂量组 121.86 ± 5.66a 68.18 ± 4.63ab 5.22 ± 0.15ab 2.37 ± 0.72bc
刺玫籽油高剂量组 126.25 ± 18.78a 70.28 ± 6.95ab 5.58 ± 1.01a 2.98 ± 0.21a
注:差异字母表示数据之间存在显著性差异(p<0.05)
2.4 刺玫籽油及原花青素对高胆固醇膳食小鼠血清中炎症因子的影响
大量临床研究表明,脂肪组织具有功能复杂的代谢活动,会渗出 TNF-α 和 IL-6 等一系
列炎症因子,从而影响生命个体代谢和健康状态[17~19]。原因是单核细胞受油脂影响,分化
成巨噬细胞,巨噬细胞激活脂肪组织,从而释放出更多的炎症因子包围脂肪,引起能量的过
渡蓄积,造成高血脂症或肥胖症患者长期处于低炎症水平,并可能诱发糖尿病,促进动脉硬
化[20~23]。
由表 5 可知,各个干预组之间的动物血清中 TNF-α 及 IL-6 水平并不存在显著差异
(p>0.05)。说明刺玫籽油及原花青素没有显著降低或提高小鼠炎症因子,分析原因可能是:
(1)由于所有组别小鼠均参与灌胃,可能会对咽喉造成一定刺激,两种炎症因子含量略高。
(2)受条件限制,包括试验条件、试验小鼠个体差异明显、刺玫籽油及原花青素试验中使
用剂量问题等因素影响试验结果,造成试验数据效果中出现一定范围内偏差。(3)刺玫籽
油及原花青素不能通过改善小鼠体内炎症的通路来降低血脂含量。以上原因有待后续验证。

表 5 刺玫籽油和刺玫籽原花青素使用对小鼠血清中 TNF-α、IL-6 的影响(x ± s, n=10)
Table 5 Effect of Rosa seed oil and procyanidins on serum TNF-α and IL-6 in mouses (x ± s,n=10)
组别 TNF-α/(ng/L) IL-6/(pg/mL)
空白对照组 187.79 ± 14.34a 185.07 ± 9.53a
高脂模型对照组 201.25 ± 21.63a 191.23 ± 16.93a
原花青素低剂量组 191.66 ± 22.45a 187.68 ± 19.80a
原花青素中剂量组 177.48 ± 18.17a 169.28 ± 14.57a
原花青素高剂量组 189.26 ± 12.98a 172.41 ± 15.36a
豆油对照组 201.39 ± 17.06a 190.47 ± 8.79a
刺玫籽油低剂量组 170.84 ± 23.11a 179.31 ± 23.16a
刺玫籽油中剂量组 182.22 ± 28.31a 171.23 ± 11.55a
刺玫籽油高剂量组 171.58 ± 13.65a 188.72 ± 12.18a
注:差异字母表示数据之间存在显著性差异(p<0.05)
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2.5 刺玫籽油及原花青素对高胆固醇膳食小鼠肝脏抗氧化系统的影响
SOD 含量可以很好反映生命个体对抗自由基的能力,由表 6 可知,豆油参照组 SOD 含
量最低,显著低于其他干预组(p<0.05),表明一定剂量大豆油的摄入能够降低机体 SOD
活性;与高脂模型参照组相比,刺玫籽原花青素中高剂量组差异极显著(p<0.01),表明一
定给药量刺玫籽原花青素可以提高机体 SOD 活性,使小鼠肝组织抗氧化能力明显增强,从
而帮助消除体内氧自由基,并呈量效关系。刺玫籽原花青素低剂量、刺玫籽油三个剂量与高
脂模型参照组及空白参照组差异不明显(p<0.05),表明刺玫籽油的摄入对小鼠 SOD 活力
影响不大。
GSH-PX 活性可以间接反映肝脏组织的还原能力。刺玫籽原花青素中高剂量组 GSH-PX
活力显著高于空白对照组(p<0.05),并呈量效关系,再一次说明刺玫籽原花青素具有良好
的抗氧化能力。刺玫籽油高、中、低剂量的 GSH-PX 水平与刺玫籽原花青素低剂量组
(50mg/kg)相似,均大于高脂模型参照组,差异性不显著(p>0.05),表明其还原能力较
弱,但仍具有一定得抗氧化能力。
由表 6 可知各干预组对 CAT 含量的影响,相比高脂模型对照组、豆油对照组,刺玫籽
原花青素中高剂量组,刺玫籽油低剂量组的 CAT 活力显著升高,上升幅度分别为 24.79%
(p<0.05)、35.04%(p<0.01)、16.24%(p<0.05);刺玫籽原花青素低剂量组、刺玫籽油
中高剂量组的 CAT 活力与高脂模型参照组之间并无显著差异(p>0.05)。
表 6 刺玫籽油及原花青素关于小鼠肝脏抗氧化酶活力的影响(x ± s, n=8)
Table 6 Effect of Rosa seed oil and procyanidins on hepatic antioxidant enzyme activities
in mouse livers (x ± s, n=8)
组别 SOD/(pg/mg) GSH-PX/(ng/mg) CAT/(ng/mg)
空白对照组 492.74 ± 63.9b 2.29 ± 0.27abc 1.40 ± 0.22bc
高脂模型对照组 413.17 ± 38.82bc 1.76 ± 0.34c 1.17 ± 0.08d
原花青素低剂量组 464.30 ± 72.22b 2.11 ± 0.19abc 1.27 ± 0.13cd
原花青素中剂量组 596.48 ± 68.35a 2.33 ± 0.36ab 1.46 ± 0.18ab
原花青素高剂量组 608.48 ± 49.55a 2.56 ± 0.43a 1.58 ± 0.13a
豆油对照组 375.94 ± 58.09c 1.99 ± 0.23bc 1.13 ± 0.13d
刺玫籽油低剂量组 473.19 ± 46.93b 2.15 ± 0.35abc 1.36 ± 0.17bc
刺玫籽油中剂量组 460.40 ± 89.38b 2.23 ± 0.31abc 1.23 ± 0.22cd
刺玫籽油高剂量组 435.75 ± 47.14bc 1.89 ± 0.51bc 1.27 ± 0.10cd
注:差异字母表示数据之间存在显著性差异(p<0.05)

脂质在生物个体肝组织中进行过氧化反应,而 MDA 为脂质氧化的衍生物,同时也是不
饱和脂肪酸由自由基氧化后的产物,因此通过检测肝组织中 MDA 水平可以分析机体受氧自
由基破坏的严重性[24]。由图 1 可知,高脂模型组、豆油参照组与空白参照组相比 MDA 含量
显著增加(p<0.05),说明过多油脂的摄入会产生一定危害。与高脂模型对照组相比,刺玫
籽原花青素中、高剂量组 MDA 水平显著降低(p<0.05),刺玫籽原花青素低剂量组(50 mg/kg)
MDA 水平略有降低,差异性不显著(p>0.05),说明刺玫籽原花青素可以有效降低实验动
物小鼠肝脏组织内 MDA 水平,减少氧自由基作用。刺玫籽油 3 个剂量组 MDA 含量介于空
白参照组与高脂模型对照组、豆油对照组之间,差异性不显著(p>0.05),不呈量效关系,
说明刺玫籽油降低 MDA 值有一定效果。
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注: A.空白对照组 B.高脂模型对照组 C.原花青素低剂量组 D.原花青素中剂量组 E.原花青素高剂量组 F.
豆油对照组 G.刺玫籽油低剂量组 H.刺玫籽油中剂量组 I.刺玫籽油高剂量组
图 1 刺玫籽油及原花青素对小鼠肝组织 MDA 含量的影响
Fig.1 Effect of Rosa seed oil and procyanidins on the content of MDA in mouse livers

3 结 论

刺玫籽油及原花青素对高脂血症小鼠体重及脏器指数无显著干扰(p>0.05),高剂量
(200mg/kg)的刺玫籽原花青素摄入可以显著降低高脂血症模型小鼠血清中 LDL-C、TC、
TG 含量(p<0.05),进一步调节小鼠血脂代谢,有助降低动脉粥样硬化症发展的风险。这
与Vinson J A等表述的GSPE单独使用和联合菸碱酸铬施加能明显影响高脂小鼠胆固醇和甘
油三酯水平,以及脂质氧化损伤所形成的硫代巴比妥酸反应物质的结论吻合[25]。低剂量
(80mg/kg)的刺玫籽油可以显著下调高脂血症小鼠血清内 TG 水平(p<0.05),对 HDL-C、
LDL-C、TC 含量并无显著效果(p>0.05)。刺玫籽油及原花青素对高脂血症小鼠血清中 TNF-α
和 IL-6 含量无显著影响(p>0.05)。刺玫籽原花青素可以显著升高小鼠肝脏内 SOD、GSH-PX、
CAT 三种酶水平(p<0.05),显著降低 MDA 水平(p<0.05),并显示出量效依赖;刺玫籽
油的适当摄入可以显著下调试验动物(小鼠)肝脏中 CAT 水平(p<0.05),对小鼠肝组织
中 SOD、GSH-PX、MDA 水平无显著影响,可能是因为刺玫籽油中有效成分较少,不能改
善机体抗氧化能力。
试验结果表明,刺玫籽原花青素能够一定程度下调高脂血症小鼠血脂水平,可能是因
为刺玫籽原花青素分子具有显著抗氧化的能力,起到消除氧自由基效果,从而防止血脂在动
脉壁内堆积沉降,促进血液循环;另一方面,刺玫籽原花青素能够降低 LDL-C 水平,阻碍
LDL-C 将肝脏中胆固醇分子带入动脉壁细胞,进一步降低机体血液内胆固醇含量,为研发
保健食品提供了理论依据。



参考文献:
[1] Byun E B,Korematsu S,Ishikawa T,et al. Apple procyanidins induce hyperpolarization of rat aorta endothelial cells via activation
of K + channels[J]. Journal of Infectious Diseases,2013,58(1):1-25. DOI:10.1016/j.jnutbio.2010.12.005
[2] Xu J,Hui G,Li Z,et al. A combination of flaxseed oil and astaxanthin alleviates atherosclerosis risk factors in high fat diet fed
2016-09-09
7

rats[J]. Lipids in Health & Disease,2014,13(1):1-7. DOI:10.1186/1476-511x-13-63
[3] Holvoet P,Mertens A,Verhamme P,et al. Circulating oxidized LDL is a useful marker for identifying patients with coronary artery
disease[J]. Arteriosclerosis Thrombosis & Vascular Biology, 2001,21(5):844-848. DOI: 10.1161/01.ATV.21.5.844
[4] Jess R. Cranberry flavonoids,atherosclerosis and cardiovascular health[J]. Critical Reviews in Food Science & Nutrition,2002,
42(3 Suppl):301-16. DOI: 10.1080/10408390209351919
[5] Fuyin H, Min X, Jian L, ,et al.Ameliorative Effect of Grape Seed Proanthocyanidin Extract on Cadmium-Induced Meiosis
Inhibition During Oogenesis in Chicken Embryos[j].The Anatomical Record:2016,229(4):450-460.DOI: 10.1002/ar.23320
[6] Raymond C,D James M,Morré D M. Medicinal benefits of green tea: Part I. Review of noncancer health benefits[J]. Journal of
Alternative & Complementary Medicine,2005,11(3):521-528. DOI: 10.1089/acm.2005.11.521
[7] Ana R M,Akari I,Kazuaki M,et al. Blueberry intervention improves vascular reactivity and lowers blood pressure in high-fat,
high-cholesterol-fed rats[J]. British Journal of Nutrition,2013,109(10):1-9. DOI: 10.1017/S0007114512003911
[8] Machmudah S,Kondo M,Sasaki M,et al. Pressure effect in supercritical CO2 extraction of plant seeds[J]. Journal of Supercritical
Fluids,2008,44(3):301-307. DOI:10.1016/j.supflu.2007.09.024
[9] Kim W C, Maznah I. Supercritical carbon dioxide fluid extraction of Hibiscus cannabinus L. seed oil: A potential solvent-free and
high antioxidative edible oil[J]. Food Chemistry . 2008 , 114 (3): 970-975.DOI: 10.1016/j.foodchem.2008.10.055
[10] Zlatanov M D. Lipid composition of Bulgarian chokeberry,black currant and rose hip seed oils[J]. Journal of the Science of Food &
Agriculture,1999,79(12):1620-1624. DOI: 10.1002/(SICI)1097-0010(199909)79:12<1620::AID-JSFA410>3.0.CO;2-G
[11] 文镜,张静,桑婷婷等. 用高血脂小鼠模型评价降血脂保健食品可行性的探讨[J]. 食品科学, 2006, 27(11) ):479-482. DOI:
10.3321/j.issn:1002-6630.2006.11.118
[12] 刘靖 ,陆大祥 ,戚仁斌等 . 性别对小鼠高脂血症动物模型的影响 [J]. 中国比较医学杂志 , 2010, 20(09):16-18. DOI:
10.3969/j.issn.1671-7856.2010.09.005
[13] 程 霜 , 郭 长 江 , 杨 继 军 . 石 榴 皮 多 酚 提 取 物 降 血 脂 效 果 的 实 验 研 究 [J]. 解 放 军 预 防 医 学 杂
志,2005,23(3):160-163.DOI:10.13704/j.cnki.jyyx.2005.03.002
[14] 梅秀明,潘道东. 乳酸菌胞外多糖的纯化及对小鼠血清和肝组织抗氧化性的影响[J]. 食品科学, 2009, 30(07):220-224. DOI:
10.3321/j.issn:1002-6630.2009.07.050
[15] 王晓炜,王峰,陶明煊等. 大球盖菇提取物对 CC14 所致肝损伤小鼠的抗氧化作用研究[J]. 食品科学, 2008, 29(12):663-667.
DOI:10.3321/j.issn:1002-6630.2008.12.155
[16] 邓利群 , 胡玉萍 . 降脂胶囊对高脂血症大鼠血脂水平的影响及机理研究 [J]. 陕西中医 , 2009, 30(5):632-633.
DOI:10.3969/j.issn.1000-7369.2009.05.090
[17] 李江波,呼和朝魯,鄭凯駿,等. 脂肪组织慢性炎症与动脉硬化研究新进展[J]. 中国医药导报,2010,7(8):13-14.
DOI:10.3969/j.issn.1673-7210.2010.08.010
[18] Cawthorn W P , Sethi J K. TNF- α and adipocyte biology[J]. Febs Letters , 2008 , 582(1):117-131. DOI:
10.1016/j.febslet.2007.11.051
[19] Stienstra R,Duval C,Kersten S. PPARs,Obesity,and Inflammation[J]. Ppar Research,2007,2007(2):277-279. DOI:
10.1155/2007/95974
[20] 王华龙,袁其云,史志远.黄连解毒汤对高脂血症小鼠血脂及炎症因子的影响[J].中国卫生标准管理,2016(2):185-186.
DOI:10.3969/j.issn.1674-9316.2016.02.137
[21] Gaal L F V,Mertens I L,Block C E D. Mechanisms linking obesity with cardiovascular disease.[J]. Nature,2006,444(14):875-880.
DOI: 10.1038/nature05487
[22] Schieffer B,Schieffer E,Hilfiker-Kleiner D,et al. Expression of angiotensin II and interleukin 6 in human coronary atherosclerotic
plaques: potential implications for inflammation and plaque instability[J]. Circulation , 2000 , 101(12):1372-1378.
DOI:10.1016/j.tips.2004.04.001.
[23] Qureshi A A,Reis J C,Papasian C J,et al. Tocotrienols inhibit lipopolysaccharide-induced pro-inflammatory cytokines in
macrophages of female mice[J]. Lipids in Health & Disease,2010,9(4):1-15. DOI: 10.1186/1476-511X-9-143
2016-09-09
8

[24]Sun D Q,Li A W,Li J,et al. Changes of lipid peroxidation in carbon disulfide-treated rat nerve tissues and serum[J].
Chemico-Biological Interactions,2009,179(s 2–3):110-117. DOI:10.1016/j.cbi.2008.11.014
[25] Vinson J A,Mandarano MAShuta D L,Bagchi M,et al. Beneficial effects of a novel IH636 grape seed proanthocyanidin extract and
a niacin-bound chromium in a hamster atherosclerosis model[J]. Molecular & Cellular Biochemistry,2002,240(1-2):99-103.DOI:
10.1023/A:1020611925819


2016-09-09
9