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抱茎苦荬菜的化学成分及其抗氧化活性



全 文 :·论著·
抱茎苦荬菜的化学成分及其抗氧化活性
赵春阳1,2姜明燕1,2(1.中国医科大学附属第一医院药学部,辽宁 沈阳110001;2.中国医科大学药学院,辽宁 沈阳110001)
[作者简介] 赵春阳,硕士,药师.研究方向:药品不良反应、呼吸系
统合理用药、药学统计学、中药成分在临床的合理应用.E-mail:
i52caizcy@163.com
  [摘要] 目的 对菊科(Compositae)苦荬菜属 (Ixeris)植物抱茎苦荬菜正丁醇萃取层中的化学成分进行分离与鉴定。
方法 采用反复硅胶柱色谱﹑重结晶、Sephadex LH-20柱色谱﹑开放ODS柱色谱、HPLC等方法进行分离纯化以获得单体
化合物。通过理化性质及波谱数据鉴定这些单体化合物的化学结构,利用1,1-二苯基-2-三硝基苯肼(DPPH)和2,2-联氮基-
双-(3-乙基苯并噻唑啉-6-磺酸)二氨盐(ABTS)法评价这些化合物清除自由基的活性。结果 从抱茎苦荬菜正丁醇萃取层中
分离得到5个化合物,分别鉴定为(+)-松脂素-4-O-β-D-葡萄糖苷(1)、glochidioboside(2)、3,4,5-trimethoxyphenyl-1-O-β-D-
glucopy-ranoside(3)、芒柄花苷(4)、大豆素(5)、木犀草素(6)、芹菜素(7)。利用DPPH和 ABTS法测试了这7个化合物清除
自由基的活性。结论 化合物1~5为首次从苦荬菜属植物中分离得到,化合物1、2、4~7显示了较强的自由基清除活性。
  [关键词]  抱茎苦荬菜;化学成分;分离;鉴定;抗氧化活性
[中图分类号] R284   [文献标志码] A   [文章编号] 1006-0111(2016)01-0024-05
[DOI] 10.3969/j.issn.1006-0111.2016.01.007
The chemical constituents and antioxidant activity of Ixeris sonchifolia
ZHAO Chunyang1,2,JIANG Mingyan1,2(1.Department of Pharmacy,the First Affiliated Hospital of China Medical University,
Shenyang 110001,China;2.School of Pharmacy,China Medical University,Shenyang 110001,China)
[Abstract] Objective To study the chemical constituents of Ixeris sonchifolia.Methods Monomeric compounds were i-
solated by chromatography on silica gel column,Sephadex LH-20,ODS chromatography column and HPLC.Thestructure of
the compound wasconfirmed on the basis of physio-chemical constants and spectroscopic analysis.2,2-diphenyl-1-pikrylhydra-
zyl(DPPH)and 3-ethylbenzthiazoline-6-sulfonic acid(ABTS)assay were usedto evaluate the antioxidant activities of isolated
compounds.Results Five compounds were isolated from 70%ethanol-water extraction and their structures were identified as
(+)-pinoresinol-4-O-β-D-glucopyranoside(1),glochidioboside(2),3,4,5-trimethoxyphenyl-1-O-β-D-glucopy-ranoside(3),on-
onin(4),daidzein(5),luteolin(6),and apigenin(7).Meanwhile,antioxidant activities of al the isolates were evaluated by
DPPHand ABTS.Conclusion Compounds 1-5 were isolated from this genus for the first time.The active results showed that
1,2,4-7 exhibited potent antioxidant activity.
  [Key words] Ixeris sonchifolia;chemical constituents;isolation;structural identification;antioxidant activity
  抱茎苦荬菜(Ixeris sonchifolia)为菊科(Com-
positae)苦荬菜属(Ixeris)植物,又名苦碟子、满天
星等,盛产于我国东北、华北等地。《内蒙古中草药》
记载,抱茎苦荬菜味苦、辛,具清热解毒、排毒、止痛
之功效[1]。全世界苦荬菜属植物共有50余种,主要
分布于中国、朝鲜、日本、越南以及前苏联等地。我
国共有苦荬菜属植物20余种。自20世纪80年代
以来,国内外学者对抱茎苦荬菜全草的化学成分进
行了一系列的研究。发现该植物的化学成分比较复
杂,主要含黄酮类、三萜类及倍半萜内酯类化合物,
此外还含有香豆素、木脂素、甾醇、有机酸、氨基酸等
多种类型化合物[2,3]。
  本研究采用DPPH 和 ABTS法对抱茎苦荬菜
干燥叶的各个萃取层(乙酸乙酯层、正丁醇层和水
层)进行了抗氧化活性的测定,发现其正丁醇层活性
较高。因此,本研究对正丁醇层进行了系统的化学
成分研究。采用反复硅胶柱色谱、重结晶、Sephadex
LH-20柱色谱、开放ODS柱色谱、HPLC等方法进
行分离纯化,通过理化性质及波谱数据鉴定其化学
结构。从正丁醇萃取层中分离得到7个化合物,即
(+)-松脂素-4-O-β-D-葡萄糖苷(1)、glochidioboside
(2)、3,4,5-trimethoxyphenyl-1-O-β-D-glucopy-
ranoside(3)、芒柄花苷(4)、大豆素(5)、木犀草素
(6)、芹菜素(7)。最后,利用DPPH 和 ABTS法测
试了所分离得到的7个化合物清除自由基的活性。
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1 仪器与材料
  Bruker-ARX-300型核磁共振仪(瑞士Bruker
公司,TMS内标),制备型高效液相(日本 HITA-
CHI公司),质谱仪(Agilent LC-MS联用仪),CD
光谱仪为BioLogic公司的 MOS 450型号,扫描波
长为200~400nm,96孔板(Nest Biotech公司),微
量旋光仪(日本,Jasco公司),台式离心机(美国,
Thermo scientific公司),精密电子天平(Mettlerto-
ledo公司)。
  ABTS(华蓝化学试剂公司),DPPH(Sigma
Aldrich),水溶性维生素E(Trolox,华蓝化学试剂
公司),磷酸盐缓冲液(PBS,Solarbio公司),Sepha-
dex LH-20 柱色谱 (YMC 公司),ODS 柱 色 谱
(Pharmacia公司),薄层色谱和柱色谱用硅胶(青岛
海洋化工厂),甲醇(色谱纯,天津市康科德科贸有限
公司),其他试剂(分析纯,山东禹王实业有限公司)。
  抱茎苦荬菜于2013年6月购于辽宁省沈阳市,
由中国医科大学附属第一医院药学部中药师曲世为
鉴定为菊科苦荬菜属植物抱茎苦荬菜(Ixeris son-
chifolia)的干燥全草。
2 提取分离
  抱茎苦荬菜干燥全草7kg,用体积分数70%的
乙醇溶液(30L)加热回流提取3次,将提取液减压
浓缩至4L,回收溶剂,将浓缩液分别用等体积的乙
酸乙酯、正丁醇萃取3次,减压回收溶剂,得到乙酸
乙酯层浸膏216.2g,正丁醇层浸膏389.0g,水层浸
膏633.5g。选取抗氧化活性最好的正丁醇萃取层
经过硅胶柱色谱,以二氯甲烷/甲醇梯度(100∶0~
1∶1)洗脱,所得的馏分通过Sephadex LH-20柱色
谱洗脱,直接重结晶处理得到化合物6(67mg)、7
(40mg)。样品再经反复硅胶柱色谱,以二氯甲烷/
甲醇等溶剂系统进行梯度洗脱,重结晶,Sephadex
LH-20柱色谱,开放ODS柱色谱,HPLC等手段处
理得到化合物1(21mg)、2(20mg)、3(15mg)、4
(17mg)、5(11mg)。
3 结构鉴定
3.1 化合物1 黄色油状(甲醇),比旋光度为正,
[α]20D = 43.1 (c0.3,CH3 OH)。在 1 H NMR
(300MHz,DMSO-d6)谱中,在δ6.7~7.1之间为
6个芳香信号,3.75(6H,S)处为2个甲氧基的氢
信号,4.87(1H,d,J=7.0Hz,1″-H)为一个糖的
端基质子信号,根据其偶合常数可知该糖为一个β-
D-吡喃型糖。在13C NMR谱(75MHz,DMSO-d6)
谱中,δ135.3(1-C),110.3(2-C),149.0(3-C),
145.7(4-C),115.1(5-C),118.2(6-C),132.1
(1′-C),110.5(2′-C),149.0(3′-C),145.7 (4′-
C),115.2(5′-C),118.7(6′-C)为苯环上的碳信号,
图1 化合物1~7的结构图
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提示有2个苯环存在。δ84.7(7-C),53.5(8-C),
71.2(9-C),85.0(7′-C),53.6(8′-C),70.8(9′-
C)为6个脂肪碳信号。δ55.6和55.7为2个芳香
环上的甲氧基的碳信号。此外,100.1(1″-C),73.2
(2″-C),76.8(3″-C),69.6(4″-C),77.0(5″-C),
60.6(6″-C)为一组糖上的碳信号。由上可推测化
合物1为一个木脂素糖苷。6个脂肪碳的信号提示
可能为一个双四氢呋喃型木脂素。化合物1与文
献[4]对照数据基本一致,故鉴定为(+)-松脂素-4-O-
β-D-葡萄糖苷 [(+)-pinoresinol-4-O-β-D-glucopyr-
anoside]。
3.2 化合物2 淡黄色油状(甲醇)。在1 H NMR
(300MHz,CD3OD)谱中:δ6.95 (1H,s,2-H),
6.76 (2H,s,2′,6′-H),6.79 (1H,d,J=
8.3Hz,5-H),6.84(1H,d,J=8.3Hz,6-H)为
苯环上的5个芳香质子信号。5.51(1H,d,J =
6.2Hz,7-H)为一个典型的苯并四氢呋喃型木脂
素7位的氢信号,偶合常数J =6.2Hz提示其为
反式构型。3.84(3H,s,3′-OCH3),3.80(3H,s,
3-OCH3)为2个甲氧基信号。2.68(2H,t,J =
6.9Hz,7′-H),1.90(2H,p,J =6.9Hz,8′-
H),3.38(2H,m,9′-H)提示存在一个丙醇结构
信号。此外,还存在1个糖端基质子信号δ4.29
(1H,d,J=6.9Hz),根据其偶合常数可知该糖为
β-D-吡喃型糖。在
13 C NMR(75MHz,CD3OD)谱
中,我们能看到12个芳香碳信号,提示该化合物含
有两个苯环。δ88.8(7-C),55.2(8-C),64.8(9-C),
32.8(7′-C),32.7(8′-C),71.4(9′-C),为母核上的
其余6个碳信号,提示该化合物2为一个苯并二氢
呋喃 型 木 脂 素。56.2(3′,3-OCH3),56.6(3′-
OCH3)为两个甲氧基的碳信号。δ104.5、78.0、
77.8、75.0、69.9、62.7为一组葡萄糖的碳信号。同
时,化合物2的CD谱在280nm处有负Cotton效
应,结合7位H的偶合常数,确定其7,8位的绝对构
型为7R,8S。以上数据与文献[4]报道的glochidiobo-
side的数据对照一致,故鉴定其为glochidioboside。
3.3 化合物3 白色无定型粉末(甲醇),体积分数
为 10% 硫 酸 显 色 剂 显 黄 色。 在 1 H NMR
(300MHz,DMSO-d6)谱中:δ6.38(2H,s)提示为
苯环上对称的氢,δ4.78(1H,d,J=7.5Hz,1′-
H)提示为糖的端基氢信号。δ3.73(6H,s)提示为
对称的2个 OCH3,3.59(3H,s)为1个 OCH3。
δ3.00~3.40(4H,m,2′,3′,4′,5′-H)为糖上其
余的氢信号。在13C NMR(75MHz,DMSO)谱中,
δ154.7(1-C),153.8(3,5-C),133.1(4-C),95.0
(1,6-C)为苯环上的6个碳信号。101.7(1′-C),
78.0(5′-C),77.6(3′-C),74.0(2′-C),70.8(4′-
C),61.6(6′-C)为β-D葡萄糖的碳数据。60.8(4-
OCH3),56.4(3,5-OCH3)为3个甲氧基碳信号。
该化合物的碳氢谱数据与文献[6]报道数据基本一
致,故确定化合物3为3,4,5-trimethoxyphenyl-1-
O-β-D-glucopy-ranoside。
3.4 化合物4 白色粉末(甲醇),体积分数为10%
硫酸显色剂显黄色。在1 H NMR (300MHz,DM-
SO-d6)谱中:δ8.44(1H,s,2-H)为异黄酮2位上
的氢信号,8.07(1H,d,J=8.8Hz,5-H),7.25
(1H,d,J=2.3Hz,8-H),7.16(1H,dd,J=
8.8,2.3Hz,6-H)为一组苯环ABX耦合系统,归
属为化合物 A 环上5,6,8位上的氢信号,7.54
(2H,d,J=8.7Hz,2′,6′-H)和7.01(2H,d,J
=8.7Hz,3′,5′-H)为一组苯环上的 AA′BB′耦合
系统上的氢信号。同时,3.79(3H,s)为一组甲氧
基信号,5.13(d,J=7.2Hz,1″-H)为一组糖的端
基氢信号。在13 C NMR (75MHz,DMSO)谱中共
给出22个碳信号,δ174.4 (4-C),161.3 (7-C),
159.1(4′-C),157.2 (9-C),153.1 (2-C),130.0
(2′,6′-C),127.0(5-C),124.1(1′-C),118.6(10-
C),115.6(6-C),113.6(3′,5′-C),103.6 (8-C),
100.0(1″-C),78.1(5″-C),77.7(3″-C),74.1(2″-
C),70.9(4″-C),61.3(6″-C)。以上信号与文献[7]
报道的数据基本一致,确定化合物4为芒柄花苷
(ononin)。
3.5 化合物5 白色针晶(甲醇)。在1 H NMR
(300MHz,DMSO)谱中:δ8.14(1H,s,2-H)为异
黄酮2位上的特征氢信号,7.95 (1H,d,J=
8.8Hz,5-H),6.97(1H,d,J=2.1Hz,8-H),
6.88(1H,dd,J=8.8,2.1Hz,6-H)为一组苯环
ABX耦合系统,并归属为化合物A环上5,6,8位上
的氢信号,7.40(2H,d,J=8.7Hz,2′,6′-H)和
6.80(2H,d,J=8.7Hz,3′,5′-H)为一组苯环上
的AA′BB′耦合系统上的氢信号。以上信号与文
献[8]报道的数据基本一致,确定化合物5为大豆素
(daidzein)。
3.6 化合物6 黄色针晶(甲醇),Mg-HCl反应阳
性,化合物6与对照品木犀草素共聚酰胺薄层板,斑
点颜色和Rf值完全一致,同样色谱条件下在HPLC
上的保留时间一致,故鉴定化合物6为木犀草素
(luteolin)。
3.7 化合物7 黄色针晶(甲醇),Mg-HCl反应阳
性,化合物7与对照品芹菜素共聚酰胺薄层板,斑点
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颜色和Rf值完全一致,同样色谱条件下在 HPLC
保留 时 间 一 致,故 鉴 定 化 合 物 7 为 芹 菜 素
(apigenin)。
4 抗氧化活性测试
  研究表明抗氧化是预防衰老的重要步骤,自由
基会将细胞和组织分解,并影响代谢功能。如果人
体能够消除过多的氧化自由基,即能预防许多自由
基引起的及与老化相关的疾病。例如常见的癌症、
动脉硬化、糖尿病、心血管病、老年痴呆、关节炎等,
这些疾病的发生都被认为与自由基有一定的关
系[9]。从自然界中寻找新型的副作用小的天然抗氧
化剂,也是目前天然药物化学研究的一个热点。
  待测样品清除DPPH 自由基的活性测定参照
文献[10]进行,并稍做修改。将2.0ml DPPH (1×
10-4 mol/L)乙醇溶液置5ml具塞试管中,配好不
同浓度(0.02、0.05、0.1、0.2、0.5mg/ml)的待测样
品乙醇溶液后,每种浓度溶液加0.2ml至上述具塞
试管中,充分混合后,室温避光静置60min,于
517nm测定各混合液的吸光度值,吸光度值越低,
则说明该化合物清除DPPH自由基的活性越强。
  待测样品清除 ABTS自由基的活性测定参照
文献[11]中方法,并稍做改动。将ABTS溶解于PBS
中,配制成7mmol/L的ABTS溶液,使之与过硫化
钾(终浓度2.45mmol/l)反应以生成ABTS·+,室
温避光放置16h。将此 ABTS+溶液用PBS稀释,
使其在734nm吸光度达到(0.70±0.02),30℃平
衡30min后可用于测定。将2.0ml ABTS+溶液
置5ml具塞试管中,配好不同浓度(0.02、0.05、
0.1、0.2、0.5mg/ml)的待测样品乙醇溶液后,每种
浓度溶液加0.2ml至上述具塞试管中,充分混合
后,静置20min,于734nm测定各混合液的吸光度
值,吸光度越低,说明清除 ABTS自由基的活性
越强。
  化合物对DPPH 和ABTS+的清除活性均用以
下公式计算:
  DPPH/ABTS+清除活性(%)=[1-(S-SB)/
(C-CB)]×100%
  S、SB、C和CB分别代表样品、样品空白、对照
和空白对照的吸光度。即,S:0.2ml样品溶液+
20ml DPPH或ABTS+溶液;SB:0.2ml样品溶液
+2.0ml PBS;C:0.2ml乙醇+2.0ml DPPH 或
ABTS+溶液;CB:0.2ml乙醇+2.0ml PBS。
  活性结果如表1所示。在抱茎苦荬菜提取物的
不同萃取层中,正丁醇萃取层显示了较强的自由基
表1 抱茎苦荬菜提取物的各个萃取层和
单体化合物的自由基清除活性(IC50,μg/ml)
样品 DPPH  ABTS(IC50,μg/ml)
乙酸乙酯层 74.20±2.34  62.21±2.30
正丁醇层 32.33±2.15  26.16±4.15
水层 131.43±1.75  145.20±3.40
1  129.20±3.22  12.19±1.74
2  78.89±1.12  10.21±2.10
3 >200   55.61±2.55
4  44.27±0.75  14.98±0.71
5  16.21±0.93  8.58±0.68
6  27.90±1.45  7.29±0.91
7  14.31±0.67  8.82±0.76
水溶性维生素E* 11.06±0.55  9.72±0.11
  注:*水溶性维生素E作为阳性对照药,实验结果用均数±标准
差表示,每组实验结论进行了3次平行实验
清除活性。因此,我们对正丁醇萃取层进行了系统
的化学成分研究,分离得到了7个单体化合物。在
对这7个单体化合物的抗氧化活性研究中发现,化
合物1、2、4~7均显示了较强的自由基清除活性,而
4个黄酮化合物(4~7)的活性强于2个木脂素糖苷
类化合物(1和2)。实验结果显示抱茎苦荬菜正丁
醇萃取层中所分离得到的黄酮和木脂素类化合物有
成为天然抗氧化剂的潜力。
【参考文献】
[1] 江苏新医学院.中药大辞典[M].上海:上海人民出版社,
1977:1300.
[2] 封锡志.抱茎苦荬菜的化学成分和生物活性的研究[D].沈
阳:沈阳药科大学,2001:2-29.
[3] 侯 晶,艾瑞婷,周凌艳,等.苦碟子化学成分的分离与鉴
定[J].沈阳药科大学学报,2011,28(11):879-881.
[4] Rahman MMA,Dewick PM,Jackson DE,et al.Lignans of
Forsythia intermedia[J].Phytochemistry,1990,29:1971-
1980.
[5] Yoshio T,Chieko M,Toshiya M,et al.Glochidioboside,a
glucoside of (7S,8R)-dihydro-dehydrodiconiferyl alcohol
from leaves of Glochidion obovatum [J].Phytochemistry,
1998,49(7):2137-2139.
[6] Wang RR,Gu Q,Wang YH,et al.Anti-HIV-1activities of
compounds isolated from the medicinal plant Rhus chinensis
[J].J Ethnopharmacol,2008,117(2):249-256.
[7] Meera B, Kalidhar SB. Phytochemical evaluation of
Pongamia pinnata L.seeds oil[J].Indian J Pharm,2004,
66(4):447-448.
[8] Yadav PP,Ahmad G,MauryaR.Furanoflavonoids from
Pongamia pinnatafruits[J].Phytochemistry,2004,65(4):
439-443.
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弊。高效液相色谱-质谱联用法和气相色谱法对仪
器的要求较高,较难实现实验室的常规监测。本方
法选用的试剂均以国产为主,成本低廉,方法操作简
便,分析周期短,灵敏度和专一性达到临床检测要
求。在所使用的条件下得到的日内和日间精密度均
较低。
  富马酸喹硫平主要在肝脏经CYP3A4酶氧化
代谢,其在体内的代谢途径十分复杂,已确定的代谢
产物有11种,其中7-羟喹硫平和7-羟-N-去烷基喹
硫平可能具有药理活性,但在血浆中浓度低,对富马
酸喹硫平药理活性的贡献并不大[13,14]。又由于在
方法建立过程中未能得到有关喹硫平代谢物的标准
品,故未做代谢物的浓度检测。
  在本法测定条件下,笔者对本院常用的几种精
神科药物进行了保留时间的分析,结果表明,几种精
神科用药不影响富马酸喹硫平的色谱峰,另内源性
物质对富马酸喹硫平的色谱峰也无影响,因此,本方
法具有很高的特异性。
  喹硫平血药浓度测定方法的建立对于日常监测
具有较大的意义,富马酸喹硫平有效血药浓度范围
目前仍存在争议,我院建立其血药浓度的 RP-
HPLC方法,对于异常浓度值进行分析,对指导临床
合理用药,发现药物不合理联用等具有重要的意义。
  总之,本试验所建立的方法简便、准确,线性范
围宽,重现性好,灵敏度和特异性高,适用于富马酸
喹硫平血药浓度的监测,能够指导医生合理使用药
物,进行个体化给药。
【参考文献】
[1] Marder SR.Management of treatment-resistant patients with
schizophrenia[J].Clin Psychiatry,1996,57(11):26-30.
[2] Khnlein O,Lutz R,Schmauss M,et al.Determining serum
concentrations of the modern antipsychotic quetiapin:clinical
relevance in therapeutic drug monitoring[J].Psychiatr Prax,
2004,31(Suppl 1):175-177
[3] Gerlach M,Hünnerkopf R,Rothenhfer S,et al.Therapeutic
drug monitoring of quetiapine in adolescents with psychotic
disorders[J].Pharmacopsychiatry,2007,40(2):72-76.
[4] Guo RC,Fu CM.Relationship among serum concentrations,
doses and clinilcal responses of quetiapine fumarate in patients
with schizophrenia[J].Chin J Clin Pharmacol Ther,2003,8
(6):627-630.
[5] Mauri MC,Volonteri LS,Fiorentini A,et al.Two weeks′
quetiapine treatment for schizophrenia,drug-induced psycho-
sis and borderline personality disorder:a naturalistic study
with drug plasma levels[J].Expert Opin Pharmacother,
2007,8(14):2207-2213.
[6] 李坤艳,李焕德.临床治疗剂量喹硫平体内代谢机制研究[J].
中国药学杂志,2007,42(20):1564-1567.
[7] 贾攀峰,张淑飞,王寿春,等.喹硫平对丙戊酸血清浓度的影响
[J].中国药师,2009,12(4):534-535.
[8] 林治光,翁毅仁,庄冬梅,等.RP-HPLC法测定人体中富马酸
喹硫平血药浓度[J].四川精神卫生,2003,16(3):140-142.
[9] Mandrioli R,Fanali S,Ferranti A,et al.HPLC analysis of
the novel antipsychotic drug quetiapine in human plasma[J].J
Pharm Biomed Anal,2002,30(4):969-977.
[10] Lin SN,Chang Y,Moody DE,et al.A liquid chromato-
graphic-electrospray-tandem mass spectrometric method for
quantitation of quetiapine in human plasma and liver micro-
somes:application to study in vitro metabolism[J].J Anal
Toxicol,2004,28(6):443-448.
[11] 李坤艳,李焕德.HPLC-MS/ESI+测定人血浆中喹硫平及其
代谢产物[J].中南药学,2006,4(2):88-91.
[12] 金 鸣,卫婷婷,梁 曼,等.人血、尿中富马酸喹硫平的气相
色谱分析[J].中国法医学杂志,2008,23(6):373-375.
[13] DeVane CL,Nemeroff CB.Clinical pharmacokinetics of que-
tiapine:an atypical antipsychotic[J].Clin Pharmacokinet,
2001,40(7):509-522.
[14] Davis PC,Wong J,Gefvert O.Analysis and pharmacokineties
of quetiapine and two metabolites in human plasma using re-
versed-phase HPLC with ultraviolet and electrochemical de-
tection[J].J Pharm Biomed Ana1,1999,20(1-2):271-282.
[收稿日期] 2014-12-05 [修回日期] 2015-04-01
[本文编辑] 顾文华
(上接第27页)
[9] Deng J,Cheng W,Yang G.A novel antioxidant activity in-
dex(AAU)for natural products using the DPPH assay[J].
Food Chem,2011,125:1430-1435.
[10] Sharma OP,Bhat TK.DPPH antioxidant assay revisited[J].
Food Chem,2009,113:1202-1205.
[11] Wu SB,Dastmalchi K,Long C,et al.Metabolite profiling of
jaboticaba(Myrciaria cauliflora)and other dark-colored fruit
juices[J].J Agric Food Chem,2012,60,7513-7525.
[收稿日期] 2015-03-22 [修回日期] 2015-07-23
[本文编辑] 顾文华
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药学实践杂志 2016年1月25日第34卷第1期
Journal of Pharmaceutical Practice,Vol.34,No.1,January 25,2016